ミトコンドリアとリソソームの蛍光色素によるマイトファジーの可視化

要約

マイトファジーは、ミトコンドリアの品質管理の主要なメカニズムです。しかしながら、 in vivoでの マイトファジーの評価は、信頼できる定量アッセイの欠如によって妨げられている。ここでは、細胞透過性の緑色蛍光ミトコンドリア色素と赤色蛍光リソソーム色素を使用して、生細胞内のマイトファジーを観察するためのプロトコルを紹介します。

要約

細胞の原動力であるミトコンドリアは、生体エネルギー学、フリーラジカル生成、カルシウム恒常性、およびアポトーシスにおいて重要な役割を果たしています。マイトファジーはミトコンドリアの品質管理の主要なメカニズムであり、一般的に顕微鏡観察を使用して研究されていますが、 in vivo マイトファジーアッセイは実行が困難です。生きた細胞小器官をイメージングしてマイトファジーを評価することは、ミトコンドリア研究のための代替的かつ必要な方法です。このプロトコルでは、細胞透過性緑色蛍光ミトコンドリア色素MitoTracker Greenおよび赤色蛍光リソソーム色素LysoTracker Redを生細胞で使用するための手順を、色素の負荷、ミトコンドリアおよびリソソームの可視化、および期待される結果を含めて説明します。生細胞中のマイトファジーを評価するための詳細な手順、および顕微鏡ソフトウェアの設定に関するテクニカルノートも提供されています。この方法は、研究者が生細胞蛍光顕微鏡を使用してマイトファジーを観察するのに役立ちます。さらに、ミトコンドリアとリソソームの定量化やミトコンドリアの形態の評価にも使用できます。

概要

ミトコンドリアは、ほぼすべての真核細胞の原動力です^1,2。酸化的リン酸化によるATP産生に加えて、ミトコンドリアは、生体エネルギー、カルシウム恒常性、フリーラジカル生成、アポトーシス、細胞恒常性などの他のプロセスにおいて重要な役割を果たします^3,4,5。ミトコンドリアは電子伝達系内の複数の複合体から活性酸素種(ROS)を生成するため、潜在的な酸化ストレスによって絶えず刺激され、抗酸化防御システムが崩壊すると、最終的には構造的損傷や機能不全につながる可能性があります^6,7。ミトコンドリア機能障害は、代謝障害、神経変性、心血管疾患など、多くの疾患に寄与することがわかっています⁸。したがって、健康なミトコンドリア集団とその適切な機能を維持することが重要です。ミトコンドリアは非常に可塑的で動的な細胞小器官です。それらの形態と機能は、ミトコンドリアタンパク質の翻訳後修飾(PTM)、ミトコンドリア生合成、融合、分裂、およびマイトファジーを含むミトコンドリア品質管理メカニズムによって制御されています^9,10。ダイナミンスーパーファミリーのタンパク質のGTPアーゼであるダイナミン関連タンパク質1(DRP1)によって媒介されるミトコンドリア分裂は、小さくて丸いミトコンドリアをもたらし、機能不全のミトコンドリアを分離し、マイトファジーによって除去および分解することができます^11,12。

マイトファジーは、オートファジーによってミトコンドリアを選択的に分解する細胞プロセスであり、通常、損傷、老化、またはストレスの後に損傷したミトコンドリアで発生します。続いて、これらのミトコンドリアは、分解のためにリソソームに送達される¹⁰。したがって、マイトファジーは、広範囲の細胞型においてミトコンドリアの量と質を健康な状態に維持するのに役立つ異化プロセスです。これは、通常の生理学的およびストレス条件下での細胞の恒常性の回復に重要な役割を果たします^13,14。細胞は、細胞ストレスおよび発生変化の異なるシグナルによって誘発される複雑なマイトファジー機構によって特徴付けられる。マイトファジー調節経路は、ユビキチン依存性または受容体依存性に分類されます^15,16;ユビキチン依存性オートファジーは、キナーゼPINK1とユビキチンリガーゼParkin E3のミトコンドリアへの動員によって媒介されますが^17,18、受容体依存性オートファジーは、ミトコンドリア損傷に応答してマイトファジーを媒介する微小管関連タンパク質軽鎖LC3へのオートファジー受容体の結合を含みます¹⁹。

透過型電子顕微鏡(TEM)は、マイトファジーを観察および検出するために最も一般的に使用される方法であり、依然として最良の方法の1つです²⁰。マイトファジーの形態学的特徴は、オートファゴソームまたはオートファゴソームとリソソームの融合によって形成されるオートリソソームであり、これは電子顕微鏡画像から観察することができる²¹。しかし、電子顕微鏡(EM)の弱点は、生細胞²⁰におけるミトコンドリア脱分極、ミトコンドリア分裂、オートファゴソームとリソソームの融合などのマイトファジーの動的プロセスを監視できないことです。したがって、生体オルガネラのイメージングを通じてマイトファジーを評価することは、ミトコンドリア研究の魅力的な代替方法です。ここで説明するライブセルイメージング技術は、2つの蛍光色素を使用してミトコンドリアとリソソームを染色します。マイトファジーが発生すると、オートファゴソームに取り込まれた損傷または余分なミトコンドリアはミトコンドリア色素によって緑色に染色され、赤色染料はリソソームを染色します。オートリソソームと呼ばれるこれらのオートファゴソームとリソソームの融合により、緑と赤の蛍光が重なり合って黄色の点として現れ、マイトファジー^{の発生を示します22}。細胞透過性ミトコンドリア色素(MitoTracker Green)には、ミトコンドリア²³を標識するための軽度のチオール反応性クロロメチル部分が含まれています。ミトコンドリアを標識するために、細胞は単に色素と共にインキュベートされ、それは原形質膜を横切って受動的に拡散しそして活性ミトコンドリアに蓄積する。このミトコンドリア色素は生細胞を容易に染色することができ、アルデヒド固定または死細胞の染色にはあまり効果的ではありません。リソソーム色素(LysoTracker Red)は、生細胞の酸性細胞小器官の標識と追跡に使用される蛍光アシドトロピックプローブです。この色素は酸性細胞小器官に対して高い選択性を示し、ナノモル濃度で生細胞を効果的に標識することができます²⁴。

ここでは、これらの蛍光色素を生細胞に使用する手順(色素のロード、ミトコンドリアとリソソームの可視化など)について説明します。この方法は、研究者が生細胞蛍光顕微鏡を使用してマイトファジーを観察するのに役立ちます。また、ミトコンドリアとリソソームの定量化、およびミトコンドリアの形態の評価にも使用できます。

プロトコル

1. 細胞培養と継代

注:プロトコルは、例としてルーチン培養マウス胚性線維芽細胞(MEF)を使用して説明されています。

1. 10 mLのダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)を含む10 cm細胞培養皿でMEF細胞を培養します。37°Cおよび5%_CO2 でインキュベートし、顕微鏡下で細胞を100倍の倍率でモニターします。
2. 定期的な細胞継代を実行します。
   1. 細胞が80%〜90%のコンフルエントに達したら(3日ごと)、2 mLのダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(DPBS)で細胞を洗浄します。次に、2 mLの0.05%トリプシン-EDTAを1分間添加して細胞を解離し、続いて2 mLのDMEMを加えてトリプシン-EDTAの作用を停止します。細胞懸濁液を100 x g で3分間遠心分離し、細胞ペレットを1 mLのDMEMに再懸濁します。
   2. 自動セルカウンターとセルカウントチャンバースライド( 材料表を参照)を使用して細胞をカウントし、10 mLのDMEMを含む新しい10 cm細胞培養皿に1.5 x 10⁶ 細胞を接種します。
3. マイトファジーアッセイでは、ステップ1.2.1のように細胞懸濁液を調製します。細胞懸濁液を新鮮なDMEMで1 x 10⁵ 細胞/mLに希釈します。
4. 希釈した細胞懸濁液2 mLを20 mmの共焦点ディッシュ( 材料表を参照)に加え、培養ディッシュを「クロス」で振とうします。細胞培養皿を37°C、5%_CO2 インキュベーター中で24時間インキュベートする。

2.ミトコンドリア染色

1. 緑色蛍光ミトコンドリア色素と赤色蛍光リソソーム色素のストック溶液アリコート( 材料の表を参照)を-20°Cの冷凍庫から取り出します。
2. 原液をDMEMで1:1,000に希釈して染料の作業溶液を調製し、よく混ぜます。例えば、DMEM2 mLに1 mMのミトコンドリア色素とリソソーム色素をそれぞれ2 μL添加すると、両方の色素の使用濃度が1 μMになります。
3. 共焦点培養皿から培地を取り出します(ステップ1.4)。細胞を覆う染色液(ステップ2.2で調製)を1 mL加えます。細胞培養皿を37°C、5%_CO2 のインキュベーターに20〜30分間入れます。

3. 共焦点イメージング

1. 1 Lのクレブス・ヘンゼライト(KH)バッファー(138.2 mM NaCl、3.7 mM KCl、0.25 mM CaCl 2、1.2 mM KH 2 PO 4、1.2 mM MgSO 4.7H₂O、15 mM グルコース、および21.85mM HEPES、最終pH_7.4)を調製し、4°Cで保存します(最長1ヶ月間)。
2. 共焦点撮影当日は、あらかじめ冷蔵庫からKHバッファーを取り出し、室温(20〜25°C)に予温してください。
3. 共焦点顕微鏡イメージングソフトウェアのパラメータを設定します( 材料の表を参照)。 デュアル励起画像の場合、488 nmと543 nmで順次励起を使用し、それぞれ505-545 nmと>560 nmで発光を収集します。
   メモ: イメージング設定を次のように設定します。スキャンモード:フレーム;スピード:9;平均: 数値、1;ゲイン:450〜600;ピンホール:30から200;レーザー:<10%。最初にイメージングソフトウェアを起動してから、488nmレーザーを完全にオンにすることをお勧めします。543 nmレーザーは、使用前にオンにして3〜5分間安定させる必要があります(図1A)。
4. 色素を含む培養液をインキュベーターから取り出し(ステップ2.3)、1 mLのKHバッファーをディッシュに加えます。
5. マイトファジーを誘導するには、細胞をシアニドカルボニル-4-(トリフルオロメトキシ)フェニルヒドラゾン(FCCP)で1 μM(最終濃度)のKHバッファー中で室温で10分間処理し、すぐに共焦点顕微鏡を使用して細胞のイメージングに進みます。
6. 63xオイルレンズの上部に適量のオイルを塗布します( 材料の表を参照)。細胞サンプルを共焦点顕微鏡のサンプルステージに置き、対物レンズの真上に移動します。
7. イメージングソフトウェアを使用して、ソフトウェアインターフェイスの左上隅にある [検索 ]タブをクリックしてサンプルを見つけます(図1B)。実験用の緑色のフィルター セットを選択します。
8. 粗調整ノブを使用して、対物レンズを上下に動かしてすばやく焦点を合わせます。細胞サンプルが接眼レンズを通してはっきりと見えるようになったら、単一細胞の領域を検索して焦点を合わせ、視野の中心に移動します。
9. ソフトウェアインターフェイスの左上隅にある [取得 ]タブをクリックして、画像を取得します。プレビュー用に 488 nm チャンネルとフレーム解像度 1024 x 1024 のみを選択します。
10. 左上隅にある[ライブ]タブをクリックして、 ライブ スキャンを開始します。視野を最もシャープに調整し、スライダーを左右に動かしてレーザー出力を調整します(図1A)。露出オーバーを避けるために、ゲイン設定を600未満に保ちます。
11. ピンホール値を156に、ゲイン値を545に、デジタルオフセット値を0に調整します。
12. 最適な視野を選択し、2つのチャンネル(488 nmと543 nm)を確認し、フレーム解像度1024 x 1024を選択します。[ スナップ ] をクリックして 2D 画像を取得します。取得した画像を保存します。
    注:緑色のミトコンドリア色素は、490 nmに励起ピークがあり、516 nmに発光ピークがあります。488nmレーザーを使用して励起できます。赤色リソソーム色素は、576nmに励起ピークを有し、590nmに発光ピークを有する。543nmレーザーを使用して励起できます。

4. 画像解析

1. 保存した画像をImageJで開き、差し込み画像をインポートします。
2. 各セル内の黄色の点の数を手動で数えますが、これはリソソームがミトコンドリアを飲み込んでいることを示します。

結果

MitoTracker Greenは、ミトコンドリアに正確に局在することができる緑色蛍光ミトコンドリア染色剤です。この色素は生細胞を簡単に染色できますが、アルデヒド固定細胞や死細胞の染色にはあまり効果がありません(図2)。赤色蛍光リソソーム色素LysoTracker Redは、酸性リソソーム細胞小器官の標識と追跡が可能で、生細胞のみを染色することができます(図2

ディスカッション

ここで説明するプロトコルは、オートファゴソーム、リソソーム、およびミトコンドリア分裂を含む生細胞におけるマイトファジーの動的プロセスを、細胞透過性ミトコンドリアおよびリソソーム色素との共染色を通じて評価およびモニタリングする方法を提供します。この方法は、ミトコンドリアを同定し、ミトコンドリアの形態を評価するためにも使用できます。この研究で使用される?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Automated cell counter	Countstar	IC1000
Cell counting chamber slides	Countstar	12-0005-50
Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM)	Corning	10-013-CV
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS)	Corning	21-031-CVC
Glass bottom cell culture dish (confocal dish)	NEST	801002
Image J (Rasband, NIH)	NIH		https://imagej.nih.gov/ij/download.html
Krebs–Henseleit(KHB) buffer			Self-prepared
LysoTracker Red	Invitrogen	1818430	100 µmol/L, red-fluorescent lysosome dye
MitoTracker Green	Invitrogen	1842298	200 µmol/L stock, green-fluorescent mitochondria dye
Mouse Embryonic Fibroblasts			Self-prepared
Objective (63x oil lens)	ZEISS	ZEISS LSM 880
Trypsin-EDTA 0.25%	Gibico	Cat# 25200056
ZEISS LSM 880 Confocal Laser Scanning Microscope	ZEISS	ZEISS LSM 880
ZEN Microscopy Software 2.1 (confocal microscope imaging software)	ZEISS	ZEN 2.1