<a href="https://www.jove.com/video/3527">キトサンベース、レーザー活性薄膜外科用接着剤、 &#39;SurgiLux&#39;：準備と実演を行いました。</a> ジョン·R·L·フォスター、エリザベスカルステン バイオ/ポリマー·リサーチ·グループ、ニューサウスウェールズ大学小説の製造、FDAが承認した成分からフレキシブル薄膜外科用接着剤、キトサンおよびインドシアニングリーンが記載されている。低出力の赤外線レーザーで簡単なアクティベーションプロセスによりコラーゲン組織にこの接着剤の接着性を示す。 <a href="https://www.jove.com/video/4158">レーザー組 ​​織修復にローズベンガル-キトサン膜の作製と応用</a> アントニオLauto 1、マーカスStoodley 2、マシューバートン1、ジョン·W·モーリー1、デイヴィッドA. Mahns 1、レオナルドロンゴ3 Damia Mawad <sup&gt; 1 1バイオエレクトロニクスと神経科学（ベンズ）の研究グループは、ウェスタンシドニー、NSW、オーストラリア、先端医療の2オーストラリアの学校、マッコーリー大学、NSWオーストラリア、医学、シエナ、イタリアの大学の3大学の大学縫合糸は通常、外科手術の際に組織を修復するために必要とされている。彼らは侵襲的であり、組織に損傷を与える可能性があるしかし、そのアプリケーションが問題になることがあります。小説組織接着剤の製造、およびアプリケーションの方法はここで報告されます。この接着フィルムは、レーザー活性化され、縫合糸の使用を必要としません。 <a href="https://www.jove.com/video/4193">外部から印加された直流電界における神経前駆細胞の移行動態の解析のための走電性アッセイ</a> Robart Babona-Pilipos 1、ミロス·R·ポポヴィッチ2、Cindi M. Morshead 3 1生体医工学研究所、トロント大学、2リンドセンター、トロントリハビリテーション研究所、外科の3科、トロント大学このプロトコルでは、走電性の間に神経前駆細胞の転座に由来する成体脳のタイムラプスイメージングを可能にするために直流電界を印加することを許可するカスタムチャンバーを構築する方法を示します。 <a href="https://www.jove.com/video/4214">蛍光活性化細胞選別を用いたシロイヌナズナの葉の細胞特異的な分析</a> イェスパー·Tグロンルンド1、アリソンEyres 1、Sanjeev Kumarさん1、ヴィッキー·ブキャナン-ウラストン1、2、ミリアム·L·ギフォード1、2 ライフサイエンス、ウォリック大学、2ワーウィックシステム生物学、ウォーリック大学の1校 A特定の細胞集団の研究を可能にする、蛍光活性化細胞選別（FACS）と互換性のあるシロイヌナズナ葉プロトプラストの製造方法。この方法は、細胞のサブセットでGFPを発現する任意のシロイヌナズナラインと互換性があります。 <a href="https://www.jove.com/video/4227">ライブセル蛍光顕微鏡を用いた細菌毒素誘導される応答の可視化</a> ピーターA. Keyel 1、ミシェルE.ヘイド1、サイモンC.ワトキンス2、ラッセル·D·ソルター1 免疫学の1部門、ピッツバーグ大学医学部細胞生物学の2学科生理学、医学のピッツバーグ大学大学院組換え大腸菌からのコレステロール結合毒素ストレプトリジンOの精製方法真核生物の細胞を生きて結合大腸菌や毒素の可視化は記述アールD。毒素の局所送達は、毒素の生物学の新たな側面を明らかに標的細胞における迅速かつ複雑な変化を誘導する。 <a href="https://www.jove.com/video/4247">急性移植片対宿主病のバイオマーカーの検証のためのハイスループットシーケンシャルELISA</a> ブライアンFiema *、アンドリュー·C.ハリス*、Aurelieゴメス、Praechompoo Pongtornpipat、ケリーLamiman、マーク·T·ヴァンダルーフト、ソフィーPaczesny 小児血液骨髄移植プログラム、ミシガン大学 *これらの著者は、均等に寄与複数のバイオマーカー候補のハイスループットの検証は凍結/融解サイクルを最小限に抑え、貴重な血漿検体を使用するために、シーケンシャルELISA法により行うことができる。ここでは、連続して同じPLに移植片対宿主病（GVHD）の1月3日 、6つの異なる検証血漿バイオマーカー4用ELISAを実行する方法を示しASMAサンプル。 <a href="https://www.jove.com/video/4448">マイクロ流体文化·プラットフォーム（MCP）ベースの神経軸索とグリア共培養系におけるグリア相互作用へのニューロンのイメージング解析</a> 春樹Higashimori 1、Yongjieヤン1、2 神経科学、タフツ大学、2神経科学プログラム、大学院医歯薬学総合研究タフツサックラー学校の1学科この研究では、神経細胞の軸索と小説（ASTRO）グリア共培養プラットフォームをセットアップする手順について説明します。この共培養系では、単一の軸索（と単一神経膠細胞）との間の直接的な相互作用の操作は、グリアシグナリング相互ニューロンのメカニズム解析を可能にすることが可能となる。 <a href="https://www.jove.com/video/50129">超低温での角度分解光電子分光</a> セルゲイV. Borisenko 1ボロディミールB. Zabolotnyy 1、アレクサンダーA. Kordyuk 1、2、Danil V. Evtushinsky 1、ティムール·K·キム1、3、Emanuela Carleschi 4、ブライアンP.ドイル4、ロザルバ·フィッティパルディ5、マリオクォーコ5、アントニオVecchione 5、ヘルムート·バーガー6 ソリッド·ステート·研究のための1研究所、IFW-ドレスデン、2ウクライナ国立科学アカデミーの金属物理学研究所、3ダイヤモンドライトソース株式会社、物理学、ヨハネスブルグ大学の4学部5 CNR-SPIN、およびDipartimentoディFisica &quot;ER Caianiello &quot;、Universitàディ·サレルノ、6複雑な問題の物理学研究所、エコールポリテクニークローザンヌこの方法の全体的な目標は、角度分解光電子Spectroscを用いた超低温で固体の低エネルギーの電子構造を決定することである放射光を用いたOPY。 <a href="https://www.jove.com/video/261">ニューロン相馬と軸索の区画化のためのマイクロ流体デバイスの作製</a> ジョセフ·ハリス1、Hyunaリー1、Behrad Vahidi 1、クリスティーナ火2、デビッド·クリブス3、NOO李チョン1、カール·コットマン3 生体医工学の1部門、カリフォルニア大学アーバイン校、2幹細胞研究センター、カリフォルニア大学アーバイン校、脳の老化と認知症のための3研究所、カリフォルニア大学アーバイン校このビデオでは、我々は培養神経細胞用マイクロ流体デバイスをfarbricateするために使用するポリジメチルシロキサン（PDMS）とソフトリソグラフィーの技術を実証した。 <a href="https://www.jove.com/video/305">マイクに区画化のためのE18皮質ラットニューロンの準備</a>rofluidicデバイス ジョセフ·ハリス1、Hyunaリー1、クリスティーナTU TU 2、デビッド·クリブス3、カール·コットマン3、NOO李チョン1 生体医工学の1部門、カリフォルニア大学アーバイン校、2幹細胞研究センター、カリフォルニア大学アーバイン校、脳の老化と認知症のための3研究所、カリフォルニア大学アーバイン校このビデオでは、E18皮質ラットニューロンの準備を示しています。 <a href="https://www.jove.com/video/410">マイクロ流体デバイスの作製のための安価なPDMSの非プラズマボンディング</a> ジョセフ·ハリス1、Hyunaリー1、Behrad Vahidi 1、クリスティーナ火2、デビッド·クリブス3、カール·コットマン3、NOO李チョン1 バイオメディカルEngineerinの1学科脳の老化と認知症のためのグラム、カリフォルニア大学アーバイン校、2幹細胞研究センター、カリフォルニア大学アーバイン校、3研究所、カリフォルニア大学アーバイン校このビデオでは、プラズマ接合することなく、ニューロンマイクロ流体デバイスを使用する方法を示します。

特別な利害関係は宣言されません。

october 2012: this month in jove

ここでは可視化実験（ゼウス）誌の2012年10月号からいくつかのハイライトです。 グロンルンドら分離し、蛍光活性化細胞選別（FACS）を用いて緑色蛍光タンパク質（GFP）を発現している植物の葉の中の特定の細胞型を分析する方法を示しています。この方法では、葉で発見クロロフィル蛍光の妨害を克服し、GFP発現非GFPのプロトプラストからのプロトプラストを区別します。 Joveの神経科学、Babona-Piliposら。電界内走電性、または細胞移動を測定するためのチャンバーを構築する方法を示しています。タイムラプスイメージングと画像解析を通して、著者は怪我や病気のサイトへの直接の神経前駆細胞に電気刺激の使用につながる可能性電界における神経前駆細胞の移動挙動を勉強することができます。 microfluを含む記事IDICプラットフォームはJoveの中で重要な出版物の歴史を持っています。 Harrisら 。神経細胞体から軸索を分離するためのマイクロ流体デバイスを含む3つの記事をリリースしました。 Joveの神経科学、Higashimoriらで今月。ニューロンの軸索は、神経系の生理機能に重要であるグリア細胞間の相互作用を調べるために、このマイクロ流体プラットフォームを使用します。 Joveのバイオでは、2つの研究グループは、真菌の細胞壁や甲殻類や昆虫の外骨格で発見されたキチンキトサン由来ポリマーの新規な生体接着特性を示す。キトサンは多くの産業と農業のアプリケーションで使用され、生体工学はまた、外科のアプリケーションでの用途を見つけている。フォスターら。レーザー活性化を開発しました緑のICGをインドシアニンとキトサンを組み合わせSurgilux呼ば外科フィルム）、感光色素。この外科フィルムはレーザー照射後、筋肉などの組織に強く結合する。 Lautoら。光活性色素とキトサンを組み合わせた外科フィルムを開発し、ベンガルが上昇した。それが照射された後にこの小説フィルムはまた、腸のような組織に強く結合する。これらの接着フィルムは、生体適合性であり、潜在的に縫合糸の代わりに様々な外科的処置で使用することができる。 Joveの臨床およびトランスレーショナル医学、Fiemaら移植片対宿主病、細胞または組織移植の一般的な、生命を脅かす合併症のバイオマーカーを検証するためのハイスループット技術を実証した。著者らは、順番に複数のタンパク質を分析するために、市販のELISAを使用しています。 Joveの免疫と感染症では、Keyel らはイムのリアルタイム動態を測定する方法を示し高速生細胞顕微鏡を用いた細菌毒素に胸細胞応答。この方法は、ど​​のように免疫細胞が細菌毒素に反応し表示するために使用できます。高速3D共焦点顕微鏡と組み合わせることで、この技術はまた、細胞修復応答を視覚化することができます。 Joveの応用物理Borisenkoら。 synchotron放射光施設で角度分解光電子分光法を用いた複合材料の電子構造を決定する。 synchotron放射、表面科学、及び極低温における最近の進歩を組み合わせることで、この方法では、物性物理学の分野では、固体、およびアドレスの重要な質問内の電子のエネルギーと運動量の正確な画像を得ることができます。 このプレビューはJoveの2012年10月号で目に止まったビデオの記事のほんの一部をまとめたものです。他の動画については、下記をご覧ください<a href="http://www.jove.com">www.jove.comを</a> 。

Watch this Scientific Journal Video about October 2012: This Month in JoVE at JoVE.com

October 2012: This Month in JoVE

ここでは可視化実験（ゼウス）誌の2012年10月号からいくつかのハイライトです。

2012年10月：JOVEのこの月

Here are some highlights from the October 2012 issue of Journal of Visualized Experiments (JoVE).  Gr&oslash;nlund et al. demonstrate how to isolate and ...

Research

JoVE Journal

Biology

10.2K ビュー.  Massachusetts Eye and Ear. ここでは可視化実験（ゼウス）誌の2012年10月号からいくつかのハイライトです。

ビデオ: October 2012: This Month in JoVE

August 2012: This Month in JoVE

Traditional microscopy requires lens objectives to magnify specimens, and can involve numerous optical components like additional objectives, filters, and mirrors to refract and direct light to optical sensors. The August 2012 issue of JoVE (Journal of Visualized Experiments) is marked by the third publication from the Ozcan Lab (University of California, Los Angeles) on their lens free lens-free "on-chip" microscopy platform, which they have pioneered.
Back in 2009, the Ozcan lab published their first article, which demonstrated the use of a lens-free imaging platform that could image cells within whole blood. This imaging technique involves placing a sample directly on an optoelectric sensor array, like the CCD or CMOS chips found in the standard camcorder. Then, LED illumination from above the sample casts shadows on the chip, which are recorded as digital holograms that can be subjected to image processing. Not only does this lensless imaging system allow for an extremely large field of view (FOV of 0.6-8 cm2), the lack of bulky optical components makes it excellent for microfluidic applications. The Ozcan group demonstrates this in their follow-up 2011 JoVE article, in which fluorescently labeled white blood cells are imaged within a microfluidic chip.
This August in JoVE, the Ozcan group demonstrates further advancements to their lens-free microscopy platform by applying it to tomographic imaging of the nematode, C. elegans. By changing the angle of illumination, using a motorized rotation stage, the Ozcan group shows how multiple holographic slices may be generated for a sample-which, following processing, can be combined into tomograms. The Ozcan group confirms that their 3D reconstruction of the worm is successful by citing that the pharyngeal tube, a 5-micron-thick structure, is only visible in a single slice and in a 3D reconstructed cross section.
The compact and inexpensive nature of the lens-free imaging systems - designed and assembled by the Ozcan group - make them well suited for point-of-care diagnostic applications, or even cell phone based microscopy that can be performed in the field.
At the Ernest Gallo Clinic and Research Center at University of California, San Francisco JoVE learns how to visualize morphological changes in single cells using three-dimensional fluorescence microscopy and computer analysis. In this procedure, cells are given agonist, antagonist plus agonist, or no treatment, and prepared for immunofluorescence microscopy. Three-dimensional images are acquired with the help of a two-photon laser system, and the fluorescence data are processed on the computer using Imaris and Matlab.
To demonstrate the power of this technique, our authors quantify single-cell phenotypic changes in transfected HEK293 cells. Three-dimensional morphometric analysis shows dramatic changes in cells treated with agonist. These changes are not always apparent when using conventional 2D analysis. This technique allows morphological changes in single cells to be quantified and characterized in response to pharmacologic stimuli, offering a powerful new assessment tool to the arsenal of drug discovery research.
This month, in JoVE Applied Physics, we travel to South Carolina to visit the School of Materials Science and Engineering at Clemson University. Here, researchers show us how to construct lithium batteries for laboratory research.
The basic components of a lithium coin cell are the working electrode, the lithium electrolyte, and a lithium foil counter electrode. The different components of the coin cell are carefully assembled and sealed with a crimping machine. The finished coin cell can then be characterized in a battery tester. Using their homemade coin cells, our researchers can experiment with using different materials to make the cathodes of lithium coin cells.
This month in JoVE Immunology and Infection, we head to Basel, Switzerland to witness two techniques for diagnosing helminth infections. We also see how investigators perform the shuttle run test in children, in order to assess the effects of these infections on physical fitness.
Helminths are parasitic worms that can live inside humans and animals. Many species infect the intestinal tract, and may be transmitted through soil. Our authors demonstrate the Kato-Katz technique, which is used for diagnosing several common soil-transmitted helminths. They also demonstrate the Baermann technique, which uses light to stimulate the migration of certain types of phototactic helminths out of sample preparations. The various types of helminth species can subsequently be determined based on morphology.
Our authors then demonstrate how to set up and perform a 20-meter shuttle run test for children, and to measure the impact of helminth infections on physical fitness. This method can help determine the true burden of soil-transmitted helminth infections on overall health.
This brief summary highlights but a few notable video-articles that will be released in August. We'll also feature articles that demonstrate how to express genes in the midbrain of the chick embryo, study neutrophil transmigration in parallel flow chambers lined with endothelial cells, and precisely measure proteolytic degradation of the extracellular matrix.

Traditional microscopy requires lens objectives to magnify specimens, and can involve numerous optical components like additional objectives, filters, and mirrors to refract and direct light to optical sensors. The August 2012 issue of JoVE (Journal of Visualized Experiments) is marked by the third publication from the Ozcan Lab (University of California, Los Angeles) on their lens-free "on-chip" microscopy platform, which they have pioneered.

2012年8月：Joveのでは、今月

Traditional microscopy requires lens objectives to magnify specimens, and can involve numerous optical components like additional objectives, filters, and ...

生物学

2012: A Year In Review

Here's a look at some of the milestones and highlights of the year 2012 in Journal of Visualized Experiments (JoVE).
At the start of 2012, JoVE reached a major milestone by publishing our 1500th article. In this publication, in JoVE Bioengineering, Yu et al. described a method for analyzing the free radical composition of cigarette smoke. This method simulated cigarette puffing with a single-port smoking device, and combined it with electron spin resonance (ESR) spectroscopy to measure the degree to which antioxidant compounds can scavenge free radicals in cigarette smoke. A possible outcome of this research is the creation of less harmful cigarettes.
JoVE Bioengineering also contained the most-viewed article of 2012. Owczarczak et al. described a method for hacking a standard inkjet printer, loading ink cartridges with a cell-suspension "bioink," and printing lines of live cells onto glass slides. The thermal inkjet printing process creates temporary pores in the cell membrane, visualized by the incorporation of fluorescently labeled actin monomers. This concept, called "bioprinting," has many potential applications in cell and tissue engineering.
Also in 2012, JoVE Bioengineering featured a protocol by Hsia et al. for isolating and purifying spider silk protein, spinning it into fibers, and assessing the fiber strength. This protocol for laboratory-scale production of spider silk, which is stronger than tensile steel, can potentially be extended to large-scale manufacturing.
In JoVE Clinical and Translational Medicine, we featured a number of articles related to stroke, one of which. In one article, M&ouml;bius-Winkler et al. demonstrated placement of the WATCHMAN left atrial appendage occlusion device from Boston Scientific. This device is designed to prevent strokes by trapping clots within the left atrial appendage of the heart before they exit. Our authors demonstrated how to insert the guide wire through the femoral artery into the heart, advance the device into the left atrium, and deploy the device in the left atrial appendage.
Another article focused on stroke, Hamel et al. described the use of a driving simulator to study how patients compensate for visual field defects following stroke. By analyzing the compensatory gaze behavior of patients as they navigated through virtual driving courses with varying degrees of complexity, our authors see great potential for the use of driving simulators in stroke rehabilitation.
In JoVE Immunology and Infection, we published an article by Keyel et al. describing the real-time kinetics of immune cell responses to bacterial toxins using live cell microscopy. Combined with high-speed 3D confocal microscopy, this technique can also visualize the cellular repair response.
Also in JoVE Immunology and Infection, we featured an article by Yap et al. describing methods for diagnosing helminth infections in children. Helminths are parasitic worms that can infect the intestinal tract of humans and animals, and may be distinguished based on their morphology. The same article demonstrated how to measure the impact of helminth infections on physical fitness in children, which is a measure of overall health.
In JoVE Neuroscience, we featured a method by Hoffmann et al., who used tiny headphones to alter the auditory feedback in songbirds, and analyzed the computational and neurophysiological basis of vocal learning in birds when they adjust their singing in response to altered acoustic signals.
Also in JoVE Neuroscience, we moved from birds to bees with a method that assesses associative and non-associative tactile learning in honeybees. This method, by Mujagi&#263; et al., allowed bees to scan different metal surfaces with their antennae, then conditioned them to expect sugar water when their antennae touched particular surfaces, and analyzed the corresponding changes in antennal movement.
In 2012, we launched a brand-new section: JoVE Applied Physics, which features articles on subjects ranging from plasma physics to material science. The Applied Physics section also contained JoVE's 2000th video article, filmed in a synchrotron radiation facility, where Borisenko et al. showed how to determine the electronic structure of complex materials using angle-resolved photoemission spectroscopy.
In the JoVE General section, we published an article by Artioli et al. demonstrating the use of a portable gas analyzer to measure oxygen consumption during complex exercise - such as judo. By analyzing oxygen consumption and collecting blood for measuring plasma lactate concentration, this method can determine the relative contributions of different energy systems to specific aspects of complex exercise.
Finally, JoVE followed Dolhi et al. to a permanently ice-covered saline lake in Antarctica. There, scientists drilled through the ice to study single-celled microorganisms called protists that live in the harsh conditions of Antarctica.
This Year in Review was just a brief glimpse of a few of over 600 video articles that JoVE offered in 2012. Browse the JoVE archives to see thousands of other videos, and stay tuned for what's coming up this year in JoVE: The Journal of Visualized Experiments.

Here's a look at some of the milestones and highlights of the year 2012 in Journal of Visualized Experiments (JoVE).

2012：In Reviewに年

 
 
Here's a look at some of the milestones and highlights of the year 2012 in Journal of Visualized Experiments (JoVE).
At the start of 2012, JoVE ...