<a href="https://www.jove.com/video/3527">A Based Chitosan, Laser adhesivo activado Thin Film quirúrgica, &#39;SURGILUX&#39; Preparación y demostración.</a> L. John R. Foster, Elizabeth Karsten Bio / polímero Research Group de la Universidad de Nueva Gales del Sur La fabricación de una novela, de película delgada adhesivo flexible quirúrgico de los ingredientes aprobados por la FDA, el quitosano y verde de indocianina se describe. La unión de este adhesivo para tejido colágeno a través de un proceso de activación simple con una baja potencia de infrarrojos láser se demuestra. <a href="https://www.jove.com/video/4158">Fabricación y Aplicación de Rosa de Bengala-quitosano Films en Tissue Repair Laser</a> Antonio Lauto 1, Marcus Stoodley 2, Matthew Barton 1, John W. Morley 1, David A. Mahns 1, Leonardo Longo 3, Damia Mawad <sup&gt; 1 1 Bioelectrónica y Neurociencias (Bens) grupo de investigación de la Universidad de Western Sydney, NSW, Australia, Australia 2 Escuela de Medicina Avanzada, Universidad Macquarie, Nueva Gales del Sur Australia, 3 de la Facultad de Medicina de la Universidad de Siena, Italia Las suturas son generalmente necesarios para reparar el tejido durante los procedimientos quirúrgicos. Sin embargo, su aplicación puede ser problemático, ya que son invasivos y pueden dañar el tejido. Los métodos de fabricación y aplicación de un adhesivo tisular novela se informó aquí. Esta película de adhesivo se activa por láser y no requiere el uso de suturas. <a href="https://www.jove.com/video/4193">Un ensayo Galvanotaxis por análisis de la cinética precursoras neurales migración celular en un campo aplicado externamente directo Corriente Eléctrica</a> Robart babona Pilipos-1, Milos Popovic R. 2, Cindi M. Morshead 3 1Instituto de Biomateriales e Ingeniería Biomédica de la Universidad de Toronto, 2 Lyndhurst Centre, Toronto Rehabilitation Institute, 3 Departamento de Cirugía, Universidad de Toronto En este protocolo, se muestran cómo construir cámaras personalizados que permitan la aplicación de un campo eléctrico de corriente directa para activar el tiempo de imágenes a intervalos de cerebro adulto derivado translocación célula precursora neural durante galvanotaxia. <a href="https://www.jove.com/video/4214">Específico de célula análisis de las hojas de Arabidopsis usando citometría de flujo</a> Jesper Grønlund T. 1, Alison Eyres 1, Sanjeev Kumar 1, Vicky Buchanan-Wollaston 1, 2, Miriam L. Gifford 1, 2 1 Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad de Warwick, Warwick 2 Sistemas de Biología, Universidad de Warwick Lamétodo para producir protoplastos de Arabidopsis hoja que son compatibles con la clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS), lo que permite estudios de poblaciones celulares específicas. Este método es compatible con cualquier línea de Arabidopsis que expresa GFP en un subconjunto de células. <a href="https://www.jove.com/video/4227">La visualización de las respuestas inducidas por toxinas bacterianas mediante microscopía de fluorescencia de células en vivo</a> Peter A. Keyel 1, Michelle E. Heid 1, Simon C. Watkins 2, Russell D. Salter 1 1 Departamento de Inmunología de la Universidad de Pittsburgh School of Medicine, 2 Departamento de Biología Celular y Fisiología, Universidad de Pittsburgh School of Medicine Los métodos para purificar el colesterol unión toxina estreptolisina O de E. recombinante coli y la visualización de la toxina se unen a vivir las células eucariotas son describird. Entrega localizada de la toxina induce cambios rápidos y complejos en células específicas que revelan nuevos aspectos de la biología de la toxina. <a href="https://www.jove.com/video/4247">Alto rendimiento secuencial ELISA para la Validación de Biomarcadores de aguda injerto contra huésped</a> Bryan Fiema *, Andrew C. Harris *, Aurelie Gómez, Pongtornpipat Praechompoo, Lamiman Kelly, Mark T. Vander Lugt, Sophie Paczesny Sangre Pediátrica y el Programa de Trasplante de Médula de la Universidad de Michigan * Estos autores contribuyeron por igual Validación de alto rendimiento de candidatos a biomarcadores múltiples pueden ser realizadas por ELISA secuencial con el fin de minimizar ciclos descongelación / congelación y el uso de muestras de plasma preciosos. Aquí, demostramos cómo realizar secuencialmente ELISAs para seis diferentes biomarcadores plasmáticos validados 1-3 de la enfermedad de injerto contra huésped (GVHD) 4 en el mismo plmuestra de asma. <a href="https://www.jove.com/video/4448">Análisis de imágenes de Neuron a la interacción glía en la Plataforma Cultura Microfluidic (MCP)-Based Axón Neuronal y Sistema Glia Co-cultura</a> Haruki Higashimori 1, Yongjie Yang 1, 2 1 Departamento de Neurociencias de la Universidad de Tufts, 2 Programa de Neurociencia, Tufts Sackler School of Graduate Ciencias Biomédicas Este estudio describe los procedimientos de instalación de un axón neuronal y la novela (astro) glia plataforma de co-cultivo. En este sistema de co-cultivo, la manipulación de la interacción directa entre un solo axón (y células gliales único) se hace factible, permitiendo un análisis mecanicista de la neurona mutuo de señalización gliales. <a href="https://www.jove.com/video/50129">De ángulo resuelto espectroscopia de fotoemisión a bajas temperaturas</a> Sergey V. Borisenko 1, Volodymyr B. Zabolotnyy 1, Alexander A. Kordyuk 1, 2, Danil V. Evtushinsky 1, Timur K. Kim 1, 3, 4 Emanuela Carleschi, Bryan P. Doyle 4, Rosalba Fittipaldi 5, Mario Cuoco 5, Antonio Vecchione 5, Helmut Berger 6 1 Instituto de Investigación del Estado Sólido, IFW-Dresde, 2 Instituto de Física de metal de la Academia Nacional de Ciencias de Ucrania, 3 Diamond Light Source Ltd, 4 Departamento de Física de la Universidad de Johannesburgo, 5 CNR-SPIN, y Dipartimento di Fisica ER &quot; Caianiello &quot;, Università di Salerno, 6 Instituto de Física de la Materia Complex, École Polytechnique Fédérale de Lausanne El objetivo general de este método es determinar la estructura electrónica de baja energía de los sólidos a bajas temperaturas utilizando Angle-Resolved Spectrosc Fotoemisiónopiar con radiación sincrotrón. <a href="https://www.jove.com/video/261">La fabricación de un dispositivo microfluídico para la compartimentación de las neuronas y los axones Soma</a> Joseph Harris 1, Hyuna Lee 1, 1 Behrad Vahidi, Christina Ma 2, David Cribbs 3, Noo Li Jeon 1, Carl Cotman 3 1 Departamento de Ingeniería Biomédica de la Universidad de California, Irvine, 2 de Células Madre del Centro de Investigación de la Universidad de California, Irvine, 3 Instituto de Envejecimiento Cerebral y Demencia de la Universidad de California, Irvine En este video se demuestra la técnica de la litografía blanda con polidimetilsiloxano (PDMS) que usamos para farbricate un dispositivo de microfluidos para el cultivo de neuronas. <a href="https://www.jove.com/video/305">Preparación de las neuronas corticales de rata E18 de compartimentación en un micrófono</a>Dispositivo rofluidic Joseph Harris 1, Hyuna Lee 1, Christina Tu Tu 2, David Cribbs 3, Carl Cotman 3, Noo Li Jeon 1 1 Departamento de Ingeniería Biomédica de la Universidad de California, Irvine, 2 de Células Madre del Centro de Investigación de la Universidad de California, Irvine, 3 Instituto de Envejecimiento Cerebral y Demencia de la Universidad de California, Irvine En este video se demuestra la preparación de E18 neuronas corticales de rata. <a href="https://www.jove.com/video/410">No plasma Unión de PDMS de bajo costo de fabricación de dispositivos de microfluidos</a> Joseph Harris 1, Hyuna Lee 1, 1 Behrad Vahidi, Cristina Tu 2, David Cribbs 3, Carl Cotman 3, Noo Li Jeon 1 1 Departamento de Biomédica Engineering, de la Universidad de California, Irvine, 2 Stem Cell Research Center de la Universidad de California, Irvine, 3 Instituto de Envejecimiento Cerebral y Demencia de la Universidad de California, Irvine En este vídeo se muestra cómo utilizar el dispositivo de microfluidos neurona sin vinculación plasma.

No hay conflictos de interés declarado.

october 2012: this month in jove

Éstos son algunos aspectos destacados de la 10 2012 cuestión de la revista Journal of experimentos visualizados (Jove). Grønlund et al. Demuestran cómo aislar y analizar los tipos específicos de células en las hojas de plantas que expresan la proteína verde fluorescente (GFP) mediante fluorescencia de clasificación de células activadas (FACS). Este método supera la fluorescencia interferente de la clorofila en las hojas, y distingue que expresan GFP-protoplastos a partir de protoplastos no-GFP. En JoVE Neuroscience, babona-Pilipos et al. demostrar cómo construir una cámara para medir galvanotaxia, o la migración de células dentro de un campo eléctrico. A través de imágenes de lapso de tiempo y análisis de imágenes, los autores pueden estudiar el comportamiento migratorio de las células precursoras neurales en un campo eléctrico, que puede conducir a la utilización de la estimulación eléctrica directa de los precursores neuronales a los sitios de lesión o enfermedad. Artículos relacionados microfluIDIC plataformas tienen una historia significativa publicación en Jove. Harris et al  . han publicado tres artículos, que incluyen un dispositivo de microfluidos para la separación de los axones de los cuerpos celulares neuronales. Este mes en JoVE Neuroscience, Higashimori et al. utilizar esta plataforma microfluídica para investigar las interacciones entre axones neuronales y células gliales, que son críticos para la función fisiológica del sistema nervioso. En Bioingeniería JoVE, dos grupos de investigación demuestran las nuevas propiedades bioadhesivas de quitosano-un polímero derivado de quitina, que se encuentran en las paredes celulares de los hongos o en los exoesqueletos de los crustáceos e insectos. El quitosano se utiliza en muchas aplicaciones industriales y agrícolas, y bioingenieros también están encontrando usos para ella en aplicaciones quirúrgicas. Foster et al. han desarrollado un láser activadopelícula quirúrgico llamado SURGILUX, que combina quitosano con indocianina verde ICG), un colorante fotosensible. Esta película quirúrgico se une fuertemente a los tejidos, tales como el músculo, después de la irradiación láser. Lauto et al. desarrollado una película quirúrgica que combina quitosano con el colorante fotoactivo, Rosa de Bengala. Esta nueva película también se une fuertemente a los tejidos, tales como el intestino, después de que se irradia. Estas películas adhesivas son biocompatibles y, potencialmente, puede ser utilizado en diversos procedimientos quirúrgicos en lugar de suturas. En Medicina Clínica y Traslacional JoVE, Fiema et al. demostrar una técnica de alto rendimiento para la validación de biomarcadores en la enfermedad injerto contra huésped, una complicación común y potencialmente mortal de la célula o tejido. Los autores utilizan ELISA comercialmente disponibles para analizar múltiples proteínas en forma secuencial. En JoVE Inmunología e Infección, Keyel et al. Demuestran cómo medir la cinética de tiempo real de imlas respuestas inmunes celulares a las toxinas bacterianas usando alta velocidad microscopia de células vivas. Este método se puede utilizar para mostrar cómo las células inmunes responder a las toxinas bacterianas. Combinado con la alta velocidad microscopía confocal 3D, esta técnica también puede visualizar la respuesta de reparación celular. En JoVE Física Aplicada, Borisenko et al. determinar la estructura electrónica de materiales complejos usando ángulo de resolverse la espectroscopia de fotoemisión en una instalación de irradiación synchotron. Mediante la combinación de los recientes avances en la radiación synchotron, ciencia de superficies, y criogenia, este método se puede obtener una imagen precisa de la energía y el impulso de los electrones dentro de un sólido, y abordar cuestiones clave en el campo de la física de la materia condensada. Esta vista previa resume sólo algunas de las notables vídeo-artículos disponibles en el 10 2012 cuestión de Jove. Para más videos, por favor visite <a href="http://www.jove.com">www.jove.com</a> .

Watch this Scientific Journal Video about October 2012: This Month in JoVE at JoVE.com

October 2012: This Month in JoVE

Éstos son algunos aspectos destacados de la 10 2012 cuestión de la revista Journal of experimentos visualizados (Jove).

Octubre 2012: Este mes en la JoVE

Here are some highlights from the October 2012 issue of Journal of Visualized Experiments (JoVE).  Gr&oslash;nlund et al. demonstrate how to isolate and ...

Research

JoVE Journal

Biology

10.2K vistas.  Massachusetts Eye and Ear. Éstos son algunos aspectos destacados de la 10 2012 cuestión de la revista Journal of experimentos visualizados (Jove).

Video: October 2012: This Month in JoVE

August 2012: This Month in JoVE

Traditional microscopy requires lens objectives to magnify specimens, and can involve numerous optical components like additional objectives, filters, and mirrors to refract and direct light to optical sensors. The August 2012 issue of JoVE (Journal of Visualized Experiments) is marked by the third publication from the Ozcan Lab (University of California, Los Angeles) on their lens free lens-free "on-chip" microscopy platform, which they have pioneered.
Back in 2009, the Ozcan lab published their first article, which demonstrated the use of a lens-free imaging platform that could image cells within whole blood. This imaging technique involves placing a sample directly on an optoelectric sensor array, like the CCD or CMOS chips found in the standard camcorder. Then, LED illumination from above the sample casts shadows on the chip, which are recorded as digital holograms that can be subjected to image processing. Not only does this lensless imaging system allow for an extremely large field of view (FOV of 0.6-8 cm2), the lack of bulky optical components makes it excellent for microfluidic applications. The Ozcan group demonstrates this in their follow-up 2011 JoVE article, in which fluorescently labeled white blood cells are imaged within a microfluidic chip.
This August in JoVE, the Ozcan group demonstrates further advancements to their lens-free microscopy platform by applying it to tomographic imaging of the nematode, C. elegans. By changing the angle of illumination, using a motorized rotation stage, the Ozcan group shows how multiple holographic slices may be generated for a sample-which, following processing, can be combined into tomograms. The Ozcan group confirms that their 3D reconstruction of the worm is successful by citing that the pharyngeal tube, a 5-micron-thick structure, is only visible in a single slice and in a 3D reconstructed cross section.
The compact and inexpensive nature of the lens-free imaging systems - designed and assembled by the Ozcan group - make them well suited for point-of-care diagnostic applications, or even cell phone based microscopy that can be performed in the field.
At the Ernest Gallo Clinic and Research Center at University of California, San Francisco JoVE learns how to visualize morphological changes in single cells using three-dimensional fluorescence microscopy and computer analysis. In this procedure, cells are given agonist, antagonist plus agonist, or no treatment, and prepared for immunofluorescence microscopy. Three-dimensional images are acquired with the help of a two-photon laser system, and the fluorescence data are processed on the computer using Imaris and Matlab.
To demonstrate the power of this technique, our authors quantify single-cell phenotypic changes in transfected HEK293 cells. Three-dimensional morphometric analysis shows dramatic changes in cells treated with agonist. These changes are not always apparent when using conventional 2D analysis. This technique allows morphological changes in single cells to be quantified and characterized in response to pharmacologic stimuli, offering a powerful new assessment tool to the arsenal of drug discovery research.
This month, in JoVE Applied Physics, we travel to South Carolina to visit the School of Materials Science and Engineering at Clemson University. Here, researchers show us how to construct lithium batteries for laboratory research.
The basic components of a lithium coin cell are the working electrode, the lithium electrolyte, and a lithium foil counter electrode. The different components of the coin cell are carefully assembled and sealed with a crimping machine. The finished coin cell can then be characterized in a battery tester. Using their homemade coin cells, our researchers can experiment with using different materials to make the cathodes of lithium coin cells.
This month in JoVE Immunology and Infection, we head to Basel, Switzerland to witness two techniques for diagnosing helminth infections. We also see how investigators perform the shuttle run test in children, in order to assess the effects of these infections on physical fitness.
Helminths are parasitic worms that can live inside humans and animals. Many species infect the intestinal tract, and may be transmitted through soil. Our authors demonstrate the Kato-Katz technique, which is used for diagnosing several common soil-transmitted helminths. They also demonstrate the Baermann technique, which uses light to stimulate the migration of certain types of phototactic helminths out of sample preparations. The various types of helminth species can subsequently be determined based on morphology.
Our authors then demonstrate how to set up and perform a 20-meter shuttle run test for children, and to measure the impact of helminth infections on physical fitness. This method can help determine the true burden of soil-transmitted helminth infections on overall health.
This brief summary highlights but a few notable video-articles that will be released in August. We'll also feature articles that demonstrate how to express genes in the midbrain of the chick embryo, study neutrophil transmigration in parallel flow chambers lined with endothelial cells, and precisely measure proteolytic degradation of the extracellular matrix.

Traditional microscopy requires lens objectives to magnify specimens, and can involve numerous optical components like additional objectives, filters, and mirrors to refract and direct light to optical sensors. The August 2012 issue of JoVE (Journal of Visualized Experiments) is marked by the third publication from the Ozcan Lab (University of California, Los Angeles) on their lens-free "on-chip" microscopy platform, which they have pioneered.

08 2012: Este mes en Jove

Traditional microscopy requires lens objectives to magnify specimens, and can involve numerous optical components like additional objectives, filters, and ...

Investigación

Biología

2012: A Year In Review

Here's a look at some of the milestones and highlights of the year 2012 in Journal of Visualized Experiments (JoVE).
At the start of 2012, JoVE reached a major milestone by publishing our 1500th article. In this publication, in JoVE Bioengineering, Yu et al. described a method for analyzing the free radical composition of cigarette smoke. This method simulated cigarette puffing with a single-port smoking device, and combined it with electron spin resonance (ESR) spectroscopy to measure the degree to which antioxidant compounds can scavenge free radicals in cigarette smoke. A possible outcome of this research is the creation of less harmful cigarettes.
JoVE Bioengineering also contained the most-viewed article of 2012. Owczarczak et al. described a method for hacking a standard inkjet printer, loading ink cartridges with a cell-suspension "bioink," and printing lines of live cells onto glass slides. The thermal inkjet printing process creates temporary pores in the cell membrane, visualized by the incorporation of fluorescently labeled actin monomers. This concept, called "bioprinting," has many potential applications in cell and tissue engineering.
Also in 2012, JoVE Bioengineering featured a protocol by Hsia et al. for isolating and purifying spider silk protein, spinning it into fibers, and assessing the fiber strength. This protocol for laboratory-scale production of spider silk, which is stronger than tensile steel, can potentially be extended to large-scale manufacturing.
In JoVE Clinical and Translational Medicine, we featured a number of articles related to stroke, one of which. In one article, M&ouml;bius-Winkler et al. demonstrated placement of the WATCHMAN left atrial appendage occlusion device from Boston Scientific. This device is designed to prevent strokes by trapping clots within the left atrial appendage of the heart before they exit. Our authors demonstrated how to insert the guide wire through the femoral artery into the heart, advance the device into the left atrium, and deploy the device in the left atrial appendage.
Another article focused on stroke, Hamel et al. described the use of a driving simulator to study how patients compensate for visual field defects following stroke. By analyzing the compensatory gaze behavior of patients as they navigated through virtual driving courses with varying degrees of complexity, our authors see great potential for the use of driving simulators in stroke rehabilitation.
In JoVE Immunology and Infection, we published an article by Keyel et al. describing the real-time kinetics of immune cell responses to bacterial toxins using live cell microscopy. Combined with high-speed 3D confocal microscopy, this technique can also visualize the cellular repair response.
Also in JoVE Immunology and Infection, we featured an article by Yap et al. describing methods for diagnosing helminth infections in children. Helminths are parasitic worms that can infect the intestinal tract of humans and animals, and may be distinguished based on their morphology. The same article demonstrated how to measure the impact of helminth infections on physical fitness in children, which is a measure of overall health.
In JoVE Neuroscience, we featured a method by Hoffmann et al., who used tiny headphones to alter the auditory feedback in songbirds, and analyzed the computational and neurophysiological basis of vocal learning in birds when they adjust their singing in response to altered acoustic signals.
Also in JoVE Neuroscience, we moved from birds to bees with a method that assesses associative and non-associative tactile learning in honeybees. This method, by Mujagi&#263; et al., allowed bees to scan different metal surfaces with their antennae, then conditioned them to expect sugar water when their antennae touched particular surfaces, and analyzed the corresponding changes in antennal movement.
In 2012, we launched a brand-new section: JoVE Applied Physics, which features articles on subjects ranging from plasma physics to material science. The Applied Physics section also contained JoVE's 2000th video article, filmed in a synchrotron radiation facility, where Borisenko et al. showed how to determine the electronic structure of complex materials using angle-resolved photoemission spectroscopy.
In the JoVE General section, we published an article by Artioli et al. demonstrating the use of a portable gas analyzer to measure oxygen consumption during complex exercise - such as judo. By analyzing oxygen consumption and collecting blood for measuring plasma lactate concentration, this method can determine the relative contributions of different energy systems to specific aspects of complex exercise.
Finally, JoVE followed Dolhi et al. to a permanently ice-covered saline lake in Antarctica. There, scientists drilled through the ice to study single-celled microorganisms called protists that live in the harsh conditions of Antarctica.
This Year in Review was just a brief glimpse of a few of over 600 video articles that JoVE offered in 2012. Browse the JoVE archives to see thousands of other videos, and stay tuned for what's coming up this year in JoVE: The Journal of Visualized Experiments.

Here's a look at some of the milestones and highlights of the year 2012 in Journal of Visualized Experiments (JoVE).

2012: Un año en revisión

 
 
Here's a look at some of the milestones and highlights of the year 2012 in Journal of Visualized Experiments (JoVE).
At the start of 2012, JoVE ...