この作品は、寛大に自然科学とカナダの工学研究評議会（NSERC）と健康の研究（CIHR）のカナダの協会によってサポートされていました。

この手順では、大学オタワの動物管理委員会の要件を満たしています。利害の競合が宣言されていない。下記の機器や材料のメーカーとモデルのための材料および試薬の表を参照してください。カスタム書かSpike2とMATLABスクリプト、およびサンプル·データは、補足ファイルで提供されています。 1。水槽と隔離室のセットアップ<ol><li> 抗 V リブレーションの床 。下から上（ 図1A）にゴムパッド、音響発泡スチロール、船舶用合板パネル、ポリウレタンフォームパッドを積層して防振面（2.1 MX 2.1メートル）を構築。水槽の縁をサポートするために、合板パネルの4木製スタッド（5センチメートル×10センチ）横たわっていた。 </li><li> 床暖房 。 （ 図1Dの下部を参照）を熱傾斜フォームパッドの上に電気的にシールドされた発熱体を築く。金属を加熱素子を覆う電気シールド用LICメッシュ。 </li><li> 空間的なタンク 。 （ 図1Aを参照）1.3センチメートルに厚い強化ガラスパネル、L字型のアルミフレームと水族館·グレードのシリコーンを使用して広く浅い水槽（1.8 MX 1.8 MX 30センチメートル）を構築。高い結像コントラスト（プロトコル3を参照）を提供するために、白地の大きなシートでタンクの下面を覆う。 </li><li>アクリルシート（0.64センチメートル厚いマットホワイト、）で作られた（22.5センチ）の壁を設置することにより（ 図1（b）参照 ）、中央·アリーナ（1.5メートル直径）に水槽を分割し、4隅の区画。 <ol><li> 4湾曲した壁部を作成し、4コーナー区画から中央アリーナを分離するために、シリコンコーキングを使用してタンク底部に取り付けますに熱を加えることにより、曲げ4アクリルシート（22.5センチ×102.7センチメートル）。ゲートのインストールのために湾曲した部分の間に20センチのスペースを残す。 </li><li> 4重壁のWIをインストールして別々の隣接コーナーコンパートメントこのようなハイドロフォンなど水中のセンサーのための余分な電気的絶縁や場所を提供する第15cmのギャップ。 </li></ol></li><li> 4電動ゲートを組み立てて、コーナーのコンパートメントと中央のアリーナの間にそれらをインストールしてください。 <ol><li> 図1Cに示すように、4つのドアフレームを組み立てる。各ドア枠に6ウェル（0.64センチメートル深い）を作成し、ナイロンドングリナット（0.64センチメートル直径スレッド）を埋め込むとエポキシで固定します。 </li><li>アクリルゴムシートから4ドアパネルをカットし、ロック機構のためのアクリルゴムパネルに6つの穴（0.64g直径1cm）を作成します。シリコンコーキングを使用して、アクリル系、ゴムのパネルに参加します。 </li><li>アクリルをインストールすると、ドアフレームにドアパネルに参加するヒンジ。 </li><li>マウントされます（ 図1C参照 ）サーボモータに腕を振って、ドアフレームの上に取り付けます。ドアパネルにスイングアームをリンクするためにケーブルタイでのループを作る。 </li><li> GA上にゲートアセンブリを配置するpsの湾曲した壁部との間に作成され、シリコーンコーキングを使用してそれらを固定する。 </li><li>サーボコントローラにすべてのサーボモータを接続し、アクティブなUSB延長ケーブルを介して電源とコンピュータに接続します。サーボコントローラに供給された制御ソフトウェアを使用してゲートをテストする。 </li><li>シリコーンは硬化した後、ナイロンネジですべてのゲートをロックし、一度に1室を充填することにより水密性を確認してください。 </li></ol></li><li> 隔離室 。 （ 図1D参照 ）水槽を囲み、光、音、電気的ノイズの外部ソースをブロックする隔離室を構築します。 <ol><li> 3壁パネル（2 MX 2 MX 5cm）にし、4ドア·パネル（1.9 MX 0.95 MX 5センチ）を作る。各パネルには、矩形の枠を作成するために、アルミ成形品（5センチメートル×2.5 cm）の参加とアルミフレームの白い波形プラスチックパネルをリベット。パネル内の音響グラスファイバーバットを記入し、黒波形プラスチックパネルとの緊密な。</li><li>防振床に3壁パネルをインストールし、インストールしてピアノは壁パネルに4ドア·パネルに参加するヒンジ。 </li><li>アルミメッシュとの隔離室を囲むと、グランドはファラデーケージを作成するためにすべての側面に噛み合っている。 </li></ol></li><li> 湿度制御 。加熱から過剰な湿気の蓄積を除去するために、低騒音、排気ファン（ 図1Fの一番上）をインストールします。少なくとも2メートル離れて記録サイトからの排気ファンを配置し、隔離室と排気ファンとの間に空気ダクトを取り付けます。 </li><li>日常監視し、水槽の水と動物の状態を維持する。 <ol><li> 10cmの深さ、100μS/ cmの導電率と水又は塩原液（レシピクヌーセン33を参照）加えてpHを7.0で一定に水の条件を維持する。 pHが6.5以下になると粉砕した珊瑚の袋を追加します。 </li><li>クリーニングのために浅瀬で動作することができ、垂直水槽のフィルタをインストールする通気目的（ 図1Fの下）。フィルターを外し、記録セッション中に、中央のアリーナの外にそれらを取る。 </li><li>ゴムひもで吸盤上に取り付けることにより、タンクの底にライブミルワームを提供します。録音中に浮遊プレイの制御不能な送を防止するために、このようなblackwormsなどのフリーフローティング餌を避けてください。 </li></ol></li></ol> 2。 EODの追跡<ol><li> 電極の取り付け 。 8黒鉛電極を組み立てて、同じように中央のアリーナの湾曲した壁のスペースにそれらを。 <ol><li>さ（長さ15センチメートル、火星カーボン2ミリメートルタイプHB）のリード線を描く取得し、リードの外部コーティングを剃り落とす。 </li><li>同軸ケーブル（RG-174）の8 10cmのセグメントをカットしたグラファイト棒の一方の端の周りにケーブルコアをラップし、熱収縮に強く、安定した電気的接続のためにそれらの上にチューブを適用します。両端（左図2A）のBNCジャックコネクタを接続します。&lt;/李&gt; <li>テーピングで壁に電極を配置し、シリコーンから保護するために、電極表面上にマスキングテープの薄いストリップを適用します。永久に電極を保持し、シリコーンが硬化（ 図2A右）の前に、すべてのテープを削除するには、シリコンコーキングを適用します。 </li></ol></li><li>アンプ部に各電極からの距離を測定し、長さで同軸ケーブル（RG-54）を切断することにより8ケーブルアセンブリをビルドします。ケーブルの両端にBNCプラグコネ​​クタを取り付けます。 </li><li>アンプユニットに全ての電極を配線するケーブルアセンブリを使用してください。差動で2 90°指向の電極を組み合わせることで増幅する（ 図2B参照 ）、ファラデーケージにそれらを接続することにより、すべての同軸シールド線を接地してください。 </li><li>信号飽和限界以下のアンプゲインを設定し、ノイズを除去するバンドパスフィルタ（200Hzの-5 kHz）を適用する。 40 KS /秒で4つの記録電極対をデジタル化。 </li><li> オンライン信号処理。命令は、Spike2ソフトウエアのために書かれており、パラメータ設定がGymnotus種のために最適化される。 （概要について図2Cを参照してください）。 <ol><li>追加DCが全ての記録チャンネルにプロセス（τ= 0.1秒）を取り外します 。 </li><li>すべての録音チャンネルにRECTIFYプロセスを追加。 </li><li>すべての4つの録音チャンネルを合計することによって、仮想チャネルを作成します。 </li><li>は、RMS（二乗平均平方根を追加することで、EODパルスあたりの単峰エンベロープを抽出<img alt="" fo:content-width="40px" src="/files/ftp_upload/50962/50962_clip_image002.gif" width="70px" />明確パルスタイミングを決定するために、EODサイクルごとに単一のピークを生成するための仮想チャネル）の処理（τ= 0.25ミリ秒）。 </li><li> 仮想チャネルからrealmarkチャンネルを作成し、すべてのEODパルスWIをキャプチャするために、適切なしきい値を設定した後、時間とピーク振幅の値を記録パルス欠落thout、誤検知を回避しながら。 </li><li> 瞬時周波数モードにrealmarkチャンネルのチャンネル表示オプションを設定することで、リアルタイムで瞬時EOD率を監視します。 </li><li> realmarkチャンネルを複製することによって、リアルタイムでの魚の動きを監視し、 波形モードへの表示オプションを設定します。 </li><li> realmarkチャネル （0.01秒のサンプリング周期）から仮想チャネルを作成することにより、EOD振幅の傾きのRMSから活動レベルを定量化し、スロープ（τ= 0.25ミリ秒）とRMS（τ= 0.5秒）プロセスを追加。 </li><li> MATLABの形式にSpike2ソフトウェアでrealmarkチャンネルをエクスポートします。 </li></ol></li></ol> 3。同期されたビデオトラッキング<ol><li>背景シーンを作成します。 <ol><li>マットホワイトカウンターフィルムで覆うことにより、水面に反射をキャストし、任意のオブジェクトを非表示にします。 </li><li>白いマットをインストールカメラと通気孔を非表示にするには、15センチメートル天井の下波形プラスチックパネル。 </li><li>カメラのキャリブレーションのための白い大きな紙に印刷グリッドパターン、コントラストの高いバックグラウンドを提供するために、タンクの下に置きます。 </li></ol></li><li>光源を取り付けます。 <ol><li>入手したIR LEDが点灯して、ノイズを低減するために、組み込みのファンを取り外します。ファラデーケージの外に配置され、電流直流安定化電源でLEDを駆動。 </li><li> IRは、暗闇の中でイメージング用ライト、およびテストの魚に日周光サイクルを駆動する白色LEDライトをLEDにインストールします。間接的で均一な照明（ 図3A）を達成するために、天井に向けて直接的全ての光源。 </li><li>白を駆動することにより、日周光周期を調節するタイマー制御スイッチ（HRオフon/12 例えば 12時間）とLEDが点灯します。 </li></ol></li><li>直接水族館の上にカメラを設置。 <ol><li> NIRに敏感なカメラを取得、またはIRブロッキングfilteを削除レンズ組立体の後方に着色ガラスの薄いシートを壊すことによってrを視野角は、画像全体の中央アリーナに十分な幅であることを確認してください。 </li><li>天井パネルの中央にある小さな視聴穴を開け、穴の真上にカメラを置きます。 </li><li>光源はグレアを生成する場合、レンズの周りに白い輪ガードを取り付けます。 </li></ol></li><li>時間同期録画を行います。 <ol><li>時刻同期パルス（1ミリ秒の持続時間、10秒周期）を生成するために4つのタンクのコーナーの一つにIR LEDを配置する。直列に負荷制限抵抗（1kΩの）を追加し、デジタイザハードウェアのデジタル出力ポートからIR LEDを駆動します。 </li><li>利用可能な場合は、カメラにバンドルされているビデオ録画ソフトウェアを使用してください。最高記録品質（ 例えば可逆圧縮）およびサポートされている最高の解像度を選択します。 </li><li> EODの記録を開始する直前に録画を開始し、録画直ちにを停止EOD記録後直ちに。 </li><li>記録後、直線的に第一及び信号デジタイザとビデオ記録によって捕捉最後の光パルスの間を補間することによって、デジタイザ時間単位に画像フレーム番号に変換する。 </li></ol></li><li>自動画像追尾 命令は、MATLABの画像処理ツールボックスのために書かれており、その機能を利用している。カスタムMATLABスクリプトは、自動化された画像トラッキングについては、この提出が設けられている。 <ol><li> ビデオをインポートします 。使用して、MATLABワークスペースに直接録画ファイルをインポート」Videoreaderを 。 読む 」機能を。 </li><li> 2つの画像フレームを合成して合成背景画像を作成する。別のフレームからの同じ領域の空き画像（ 図3（b）参照 ）を用いて動物が占有する画像領域を交 ​​換してください。 </li><li> αを除外するために、中央競技場の周りに円形マスクを描画することで追跡するために画像領域を指定するREAの外側（ 図3Bの下）、および強度差の最小しきい値を設定する定数（R int型 ）を掛けます。背景以下の- （R INTは 1）例えば、RINT設定 = 0.85は強度変動15パーセント=を抑制します。 </li><li> 画像減算 。差分画像（=ΔIMk）を得るために、背景画像（IM = 0）から、画像フレーム（IM = k）を減算する。負でない整数として画像強度値を記憶する符号なし整数の数値精度を使用する。 </li><li> graythresh関数から決定された強度閾値を適用することにより、セグメントの差分画像を。 bwmorph機能を使用してバイナリ画像をきれいにし、regionprops機能を使用して、すべてのBLOB領域を計算した後、動物に対応する最大のBLOBを選択します。 </li><li>重心と主要な方向Aを決定regionprops関数を適用し、x軸と長軸を整列させるために画像を回転することによって最大のブロブのXIS。重心（ 図3Dの上）での頭と尾の部分に画像を分割する。 </li><li>ヘッド部の長軸を決定し、X軸（ 図3D左下）と整合する画像全体を回転させます。頭と尾の部分の周りにフィットバウンディング·ボックスはregionprops機能を利用して長軸に平行である。 </li><li>左、中央、バウンディングボックスの右側の垂直エッジ（ 図3Dの底に緑の点）でのブロブの中央値はy座標を決定し、そして5の特徴点（ヘッドチップ、半ば頭、中央体に割り当てる、半ば尾、尾の先端）。 </li><li>その前のフレームから決定され、動物の重心を中心とした画像フレームをクロップした後、連続したフレームを処理します。 </li><li>手動で最初のフレームのためのヘッドの向きを割り当て、ドット積betweを使用二つの連続フレームからの配向ベクトルエン自動的に頭の向きを決定する。その結果を検査し、不正に割り当てられた場合は、手動でヘッドの向きを反転させます。 </li></ol></li><li>それは神経質な外観を持っている場合、ヘッドチップを接合することにより、動物の軌跡をプロットし、中央値と平均値フィルタを用いて平滑化する（n = 3）であった。背景画像との軌跡を重ね、5つの特徴点（ 図2Eを参照）を使用して、魚の中線を補間する。 </li><li>瞬時EODレート（100 Hzのサンプリングレート）と平均（0.0625秒の時間窓）をリサンプリングすることにより、各撮像時の平均EOD率を計算する。時間を一致させたEOD率から求めた擬似色で軌跡をプロットした（ 図2F参照 ）背景画像に重ね合わせる。 </li></ol>

著者らは、開示することは何もありません。

私たちの技術の重要性。要約すると、我々は最初の大水槽の建設やWEFによって生成自発的探索行動を観察する隔離室を説明した。次に、複数の電極対を用いてリアルタイムでEOD速度および無拘束魚からの移動状態を記録および追跡する技術を実証した。最後に、我々は、時間同期の方法で水を介して赤外線ビデオ記録技術、および上体位置姿勢を測定する画像追跡アルゴリズムを記載...

背景 。動物の行動に関する定量的実験（ 例えば強制選択、ショック回避、T-迷路などが ）一般的に感覚運動技能、学習と記憶形成に関する特定の仮説を調査するために利用される。しかし、これらの制限の実験は、天然の動物の行動の豊かさの多くを欠場し、行動の基礎となる神経基盤の単純化モデルとなる可能性が高い。より自然な条件の下での実験は、それゆえ我々は、より完全に種の行動レパートリーを探ることのできる重要な補完である。自由に動く動物を含む実験は、しかし、このような動きによって誘発される記録の成果物として、それぞれの技術的な課題に対処する必要があります。刺激誘発反応とは異なり、自然発生探索行動を予測することはできません。このように実験対象は常に監視され、長期間にわたって追跡されなければならない。具体的な研究課題では、CANベスト厳選された生物および利用可能な技術的なツールによって対処する。例えば、そのような遺伝的にコードカルシウムセンサーとして光記録及び刺激技術1および2の光遺伝学正常に自由に遺伝モデル生物の3-5を移動させるために適用されてきた。代わりに、小型化された神経遠隔計測システムは、記録することができますし、小動物の6,7の移動を自由に刺激する。 電気魚 。 WEFの種は、彼らの身近に感知するために以上の長距離での通信を可能にする、電気オルガン放電（EODs）を生成します。 EODsの時間的なパターンは、自己の運動8,9、感覚刺激10,11、および社会的相互作用12,13等の異なる条件で異なります。連続的な擬似正弦波形を生成するための波型の種とは対照的に、パルス型WEF種は、離散的なパルス列を生成する。一般に、パルス型種展示MORE変数EOD率が波型種と比較し、そして動物のEOD率は密接に彼らの感覚周囲10,14の新規性の内容を反映している。パルス型の種はすぐに新たな感覚摂動（新規性応答10,11,14）への対応の単一パルス周期内でパルス間間隔（IPI）を短縮することができます。これらの魚の継続的な電気挙動は、外部からの制御不能な感覚刺激によって乱さすることができ、かつ、振動、音、電気、光などの刺激の異なる種類のトリガーノベルティ応答を知られている。そのため、特別な措置は、自由遊泳WEFの長期観察中に外部感覚刺激をブロックしたり、減衰させるように注意する必要があります。このように、EOD速度及び移動軌跡の変化は、具体的に実験者によって提示された刺激に起因し得る。 水槽と隔離室。そこで振動吸収材料の複数の層を置いたU大水槽（2.1 MX 2.1 MX 0.3メートル）NDER、光、電気的ノイズ、音と熱流束の外部ソースをブロックするために絶縁された筐体でタンクを囲んだ。 EOD率は、このように水温がしっかり南米WEFの種のために熱帯の範囲（25±1℃）に調節した、周囲の温度15,16によって異なります。私たちは、主に2次元（ 図1A）に制限されたWEFの空間探索行動を観察するために大きな浅い（10cmの水深）タンクを構築した。タンクは、空間的挙動を観察するために、中央の場に分配し、四隅の区画は、別々に、個々の魚（ 図1B）を収容する。各区画は、個人間の電気通信を防ぐために、防水建てられました。中央アリーナ動物のアクセスは4電動ゲートで外部からコントロールした。ゲートは、区画間に配置され、ロックされたときには、水密になったナイロンウィングナットで。 WEFは、金属に敏感に反応するので、全く金属部分は水中では使用されなかった。 EOD記録 。 EODsは17,18（Mormyrids中）単一または（Gymnotiforms中）の複数の空間的に分布電気器官の活性化によってステレオタイプのようにして生成される。髄ペースメーカーは、今度は前脳19から軸索投射を受ける間脳prepacemaker核、などの高次脳領域から直接、神経の入力を受け取るため、EOD率の一時的な変調は、より高いレベルの神経活動を明らかにすることができます。しかし、EOD時期は慎重に生波形記録から抽出され、動物の運動誘発性の歪みによってバイアスされていないする必要があります。 WEFによって生成される電界はダイポールとして近似することができるため、記録電極におけるEODパルス振幅は、動物、電極8,20間の相対距離と方向に依存する。動物の自己MOVEMエントは、このような動きは、異なる電極でのEODの振幅が（6月ら 8の図2（b）参照 ）は、揮発性の方法で経時的に変化させ、動物と電極との間の相対的なジオメトリを変更してください。電子オルガンの異なるセットからの相対的な寄与は、テール曲げて導入されたボディの長さと地元の曲率に沿ってそれらの位置に依存しているため、さらに、自己の運動もまた、記録されたEOD波形の形状を変更。 EOD振幅と形状の動きによって誘発される歪みは不正確で信頼できないのEODタイミング測定につながることができます。我々は、空間的に異なる位置に記録された複数のEOD波形を平均化することにより、かつ正確に自由遊泳WEFからEODタイミングを決定するために、エンベロープ抽出フィルタを追加することによってこれらの問題を克服した。加えて、我々の技術は、動物がEODの変化に基づいて、静止または能動的に移動しているかどうかを示すEOD振幅を測定する時間の経過とともに振幅（ 図2Eと2Fを参照してください）。我々は、コモンモードノイズを低減するために、記録電極対から差動増幅された信号を記録した。 EODパルスが不規則な時間間隔で生成されるため、EODイベントの時系列は、可変サンプリングレートを有する。選択肢の解析ツールによって必要な場合EOD時系列は、補間によって一定のサンプリングレートに変換することができる。 ビデオ録画 。 EOD記録は動物の総運動の活動を監視することもできますが、録画は、動物の体の位置と姿勢の直接測定を可能にします。近赤外（NIR）照明（λ= 800〜900 nm）のWEFsは暗闇の中で最も活発であり、その目はNIRスペクトル23,24に敏感ではないので、自由に魚21,22水泳の非摂動目視観察を可能にします。ほとんどのデジタル画像センサ（ 例えば CMOSまたはCCD）がwavelengtとNIRスペクトルをキャプチャすることができますフィルタ25をブロックする赤外線（IR）を除去した後800〜900 nmのHレンジ、。特定のハイエンド消費者向けのウェブカメラは、高精細、広視野角や画質に匹敵する、またはプロ級の赤外線カメラよりも優れて利用できる、はるかに大きなコストを生成することができ、良好な低照度感度を提供しています。また、一部の消費者向けのウェブカメラは、品質上の損失でビデオを圧縮することによって拡張された録画時間を許可する記録ソフトウェアにバンドルされています。ほとんどのプロ級のカメラは、デジタル化された信号と映像とのタイミングを合わせるために26時間の同期TTLパルス出力またはトリガTTLパルス入力を提供していますが、この機能は、消費者向けのウェブカメラで一般に存在しない。しかしながら、映像記録信号デジタイザとの間のタイミングを正確に同時に、カメラと信号デジタイザーで周期的に点滅IR LEDを撮像して一致させることができる。最初と最後のIRパルスタイミングを使用することができるs信号デジタイザ時間単位及びその逆に映像フレーム番号を変換するための2つのタイム較正​​マーカー。 照明＆背景 。水を介して、撮影は、水の表面での光の反射により、技術的に挑戦することができます。水面、水中、水上ビジュアルシーン、そして曖昧な視覚的特徴を反映するために、ミラーとして機能することができ、したがって水上記のシーンは、視覚的な干渉を防止するために特徴のないレンダリングしなければならない。画像の順序全体水槽では、カメラは水の上に直接配置される必要がある、そしてそれは、水面上での反射を防ぐために小さな視野穴の上の天井の後ろに隠されるべきである。光源が誤って投影される場合には更に、水の表面がグレア及び不均一な照明を生成することができる。間接照明は、天井に向かって光源を目指したことで全体の水槽の上に均一な輝度を達成することができますように、天井と周囲のWALlsが水面に達する前に、光線を反射して拡散することができる。カメラ（ 例えば 850 nmのピーク波長）のスペクトル応答と一致する赤外線照明器を選択してください。光源からの電気的ノイズは、LEDライトを使用し、ファラデーケージの外でDC電源装置を配置することによって最小限に抑えることができる。魚は近赤外波長で白色の背景によく対比さ以来、タンクの下に白い背景を配置します。同様に、隔離室の内面上に白色マットの使用は、均一で明るい背景照明を供給する。 ビデオトラッキング 。録画した後、自動画像追跡アルゴリズムは、経時的に、動物の身体の位置及び姿勢を計測することができる。ビデオトラッキングを自動的にのいずれか、すぐに使用できるソフトウェア（視点又はEthovision）、またはユーザープログラム可能なソフトウェア（またはOpenCVのMATLAB 画像処理ツール ）によって行うことができる。画像追跡の最初のステップとして、有効なトラッキングエリアは、（動作マスキング）の外側の領域を除外するために幾何学的形状を描くことによって定義される必要がある。次に、動物のイメージは、動物を含む画像から背景画像を差し引くことにより、バックグラウンドから単離する必要がある。差分画像は、重心と配向軸がバイナリモルフォロジー演算から計算することができるように、強度閾値を適用してバイナリ形式に変換される。 Gymnotiforms 27〜29と30〜32 Mormyridsでは、電子受容密度は、頭部領域の近くに最高であるため、任意の瞬間にヘッド位置が最も高く、感覚の鋭敏さの位置を示しています。頭部および尾部の位置が自動的に画像回転と境界ボックスの操作を適用することによって決定することができる。頭部および尾部端部は手動で最初のフレームで、二つの連続するフレームを比較から、それらの位置を追跡することによってそれらを定義することにより、互いに区別することができる。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1020">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">[Aquarium construction]</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Electrically shielded floor heater</td>
			<td style="width:277px;">ThermoSoft Corp., IL, USA</td>
			<td style="width:241px;">ThermoTile</td>
			<td>www.thermosoft.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Tempered glass panel</td>
			<td style="width:277px;">generic</td>
			<td style="width:241px;"> </td>
			<td>.5 inch thick, used for the aquarium construction</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Aquarium grade silicone</td>
			<td style="width:277px;">generic</td>
			<td style="width:241px;"> </td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Acrylic sheet</td>
			<td style="width:277px;">generic</td>
			<td style="width:241px;"> </td>
			<td style="width:287px;">.25 inch thick, matt white</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Natural rubber sheet</td>
			<td style="width:277px;">generic</td>
			<td style="width:241px;"> </td>
			<td>.25 inch thick</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Servomotor</td>
			<td style="width:277px;">HITECHRCD Inc., Korea</td>
			<td style="width:241px;">HS-325HB, 180deg rotation</td>
			<td>www.servocity.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Servomotor arm mount</td>
			<td style="width:277px;">HITECHRCD Inc., Korea</td>
			<td style="width:241px;">56362 Large Spline</td>
			<td>www.servocity.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Servomotor controller (6 chan.)</td>
			<td style="width:277px;">sparkfun.com</td>
			<td style="width:241px;">ROB-09664 </td>
			<td style="width:287px;">Micro Maestro 6-channel USB Servo Controller</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Active USB extension cable</td>
			<td style="width:277px;">C2G</td>
			<td style="width:241px;">38990</td>
			<td style="width:287px;">12m USB 2.0 A Male to A Female 4-Port Active Extension Cable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Exhaust fan</td>
			<td style="width:277px;">Nutone</td>
			<td style="width:241px;">ILFK120</td>
			<td>www.homedepot.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Vertical aquarium filter</td>
			<td style="width:277px;">Tetra, Germany</td>
			<td>Whisper Internal Power Filter - 40i</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Crushed coral</td>
			<td style="width:277px;"> </td>
			<td></td>
			<td>Used to increase the pH of the tank water</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;"> </td>
			<td style="width:277px;"> </td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">[EOD recording setup]</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Graphite Electrodes</td>
			<td style="width:277px;">Staedtler, Germany</td>
			<td>Mars Carbon 2-mm type HB</td>
			<td>Shave the outer coating</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Physiological Amplifier/Filter</td>
			<td style="width:277px;">Intronix, Canada</td>
			<td style="width:241px;">2015F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Coaxial Cable</td>
			<td style="width:277px;">generic</td>
			<td style="width:241px;">RG174</td>
			<td>For electrodes assembly</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Coaxial Cable</td>
			<td style="width:277px;">generic</td>
			<td style="width:241px;">RG54</td>
			<td>For wiring use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">BNC jack connector for RG-174</td>
			<td style="width:277px;">Amphenol Connex</td>
			<td style="width:241px;">112160</td>
			<td>For electrodes assembly</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">BNC plug connector for RG-54</td>
			<td style="width:277px;">Amphenol Connex</td>
			<td style="width:241px;">112116</td>
			<td>For wiring use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Signal digitizer hardware</td>
			<td style="width:277px;">Cambridge Electronic Design, UK</td>
			<td style="width:241px;">Power MKII 1401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Signal digitizer software</td>
			<td style="width:277px;">Cambridge Electronic Design, UK</td>
			<td style="width:241px;">Spike 2. ver 7</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">[Visual tracking setup]</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">White LED light</td>
			<td style="width:277px;">IKEA, Sweden</td>
			<td style="width:241px;">DIODER 201.194.18</td>
			<td>www.ikea.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Infrared LED light (850 nm)</td>
			<td style="width:277px;">Scene Electronics, China</td>
			<td style="width:241px;">S8100-60-B/C-IR</td>
			<td>Remove built-in fan</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">USB webcam</td>
			<td style="width:277px;">Logitech Inc., CA, USA</td>
			<td style="width:241px;">C910</td>
			<td>Remove Infrared blocking filter</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Motorized camera</td>
			<td style="width:277px;">Logitech Inc., CA, USA</td>
			<td style="width:241px;">Quickcam Orbit</td>
			<td>Remove Infrared blocking filter</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Video recording software</td>
			<td style="width:277px;">Logitech Inc., CA, USA</td>
			<td>Logitech Quickcam Software</td>
			<td>Download from www.logitech.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Matlab</td>
			<td style="width:277px;">Mathworks, MA, USA</td>
			<td style="width:241px;">2012a</td>
			<td>Image processing toolbox</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

long-term behavioral tracking of freely swimming weakly electric fish

長期の行動追跡は、発生頻度の少ないものを含めて天然の動物行動を捕捉し、定量化することができます。このような探査と社会的相互作用のような行動は最高の気ままな、自由に行動する動物を観察することによって調べることができる。弱い電気魚（WEF）ディスプレイ、電気オルガン放電（EOD）を放出することによって容易に観察探索および社会的行動。ここでは、同期EOD、身体位置、および長期間自由遊泳WEFの姿勢を測定するために3つの有効な技術を記載している。まず、光、音、振動などの感覚刺激の外部ソースをブロックするように設計された隔離室の内部に実験槽の構成を記載している。水槽は、4つの試験片を収容するために区画され、自動化されたゲートは、遠隔中央アリーナに対する動物のアクセスを制御した。第二に、我々は自由にWEF水泳より正確で信頼性のあるリアルタイムのEODタイミング測定方法を説明。動物の身体の動きに起因する信号歪みは、空間的および時間的平均化処理ステージで補正される。第三に、我々は非摂動夜行性動物の行動を観察する水中近赤外イメージングのセットアップについて説明します。赤外光パルスは、長い記録時間にわたってビデオ及び生理学的信号間のタイミングを同期するために使用した。私達の自動化されたトラッキングソフトウェアは、水生シーンで確実に動物の身体の位置や姿勢を計測する。組み合わせて、これらの技術は、自由に確実かつ正確な方法で、弱電気魚の水泳の自発行動の長期的な観察を可能にする。我々は我々の方法は、同様に探索や社会的行動との生理学的信号を関連付けることにより、他の水生動物の研究に適用することができると信じています。

EODの追跡結果彼らのユニークな位置と方向（ 図2Cの上部）から予想されるように異なった電極対から記録されたEOD波形は振幅と形状に変化した。複数の電極対の使用は、タンク内のWEFのすべての可能な位置および向きで強い信号の受信を確実にした。エンベロープ波形（ 図2C下 、緑のトレース）は常に正確（= IPI -1）パルス間の間隔と瞬?...

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Long-term Behavioral Tracking of Freely Swimming Weakly Electric Fish

我々は、自由に同期して、感覚の内部に特別に設計された水槽の両方で正確かつ確実に、動物の電気器官吐出​​タイミング、上体位置姿勢を測定することにより、長時間にわたって弱電気魚の水泳の自発的挙動を研究するための技術のセットを記述隔離室。

自由水泳弱電気魚の長期的な行動の追跡

Long-term behavioral tracking can capture and quantify natural animal behaviors, including those occurring infrequently. Behaviors such as exploration and ...

long-term-behavioral-tracking-of-freely-swimming-weakly-electric-fish

Research

JoVE Journal

Neuroscience

12.5K ビュー.  University of Ottawa. 我々は、自由に同期して、感覚の内部に特別に設計された水槽の両方で正確かつ確実に、動物の電気器官吐出​​タイミング、上体位置姿勢を測定することにより、長時間にわたって弱電気魚の水泳の自発的挙動を研究するための技術のセットを記述隔離室。 

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C. elegans Tracking and Behavioral Measurement

We have developed instrumentation, image processing, and data analysis techniques to quantify the locomotory behavior of C. elegans as it crawls on the surface of an agar plate. For the study of the genetic, biochemical, and neuronal basis of behavior, C. elegans is an ideal organism because it is genetically tractable, amenable to microscopy, and shows a number of complex behaviors, including taxis, learning, and social interaction1,2. Behavioral analysis based on tracking the movements of worms as they crawl on agar plates have been particularly useful in the study of sensory behavior3, locomotion4, and general mutational phenotyping5. Our system works by moving the camera and illumination system as the worms crawls on a stationary agar plate, which ensures no mechanical stimulus is transmitted to the worm. Our tracking system is easy to use and includes a semi-automatic calibration feature. A challenge of all video tracking systems is that it generates an enormous amount of data that is intrinsically high dimensional. Our image processing and data analysis programs deal with this challenge by reducing the worms shape into a set of independent components, which comprehensively reconstruct the worms behavior as a function of only 3-4 dimensions6,7. As an example of the process we show that the worm enters and exits its reversal state in a phase specific manner.

C. elegans Tracking and Behavioral Measurement

We have developed a video-rate tracking microscope system that can record and quantify C. elegans behavior at high resolution and high speeds. We have also developed computational methods to reduce the dimensionality of the worm images to a fundamental set of measurements that completely describe the shape of the worm.

C. elegansの追跡と行動計測

We have developed instrumentation, image processing, and data analysis techniques to quantify the locomotory behavior of C. elegans as it crawls on the ...

神経科学

A Molecular Readout of Long-term Olfactory Adaptation in C. elegans

During sustained stimulation most sensory neurons will adapt their response by decreasing their sensitivity to the signal. The adaptation response helps shape attention and also protects cells from over-stimulation. Adaptation within the olfactory circuit of C. elegans was first described by Colbert and Bargmann1,2. Here, the authors defined parameters of the olfactory adaptation paradigm, which they used to design a genetic screen to isolate mutants defective in their ability to adapt to volatile odors sensed by the Amphid Wing cells type C (AWC) sensory neurons. When wildtype C. elegans animals are exposed to an attractive AWC-sensed odor3 for 30 min they will adapt their responsiveness to the odor and will then ignore the adapting odor in a chemotaxis behavioral assay for ~1 hr. When wildtype C. elegans animals are exposed to an attractive AWC-sensed odor for ~1 hr they will then ignore the adapting odor in a chemotaxis behavioral assay for ~3 hr. These two phases of olfactory adaptation in C. elegans were described as short-term olfactory adaptation (induced after 30 min odor exposure), and long-term olfactory adaptation (induced after 60 min odor exposure). Later work from L'Etoile et al.,4 uncovered a Protein Kinase G (PKG) called EGL-4 that is required for both the short-term and long-term olfactory adaptation in AWC neurons. The EGL-4 protein contains a nuclear localization sequence that is necessary for long-term olfactory adaptation responses but dispensable for short-term olfactory adaptation responses in the AWC4. By tagging EGL-4 with a green fluorescent protein, it was possible to visualize the localization of EGL-4 in the AWC during prolonged odor exposure. Using this fully functional GFP-tagged EGL-4 (GFP::EGL-4) molecule we have been able to develop a molecular readout of long-term olfactory adaptation in the AWC5. Using this molecular readout of olfactory adaptation we have been able to perform both forward and reverse genetic screens to identify mutant animals that exhibit defective subcellular localization patterns of GFP::EGL-4 in the AWC6,7. Here we describe: 1) the construction of GFP::EGL-4 expressing animals; 2) the protocol for cultivation of animals for long-term odor-induced nuclear translocation assays; and 3) the scoring of the long-term odor-induced nuclear translocation event and recovery (re-sensitization) from the nuclear GFP::EGL-4 state.

A Molecular Readout of Long-term Olfactory Adaptation in C. elegans

Here we describe a molecular readout of long-term olfactory adaptation in Caenorhabditis elegans. The Protein Kinase G, EGL-4, is necessary for stable adaptation responses in the primary sensory neuron pair called AWC. During prolonged odor exposure EGL-4 translocates from the cytosol to nucleus of the AWC.

の長期嗅覚順応の分子読み出し<em&gt; Cエレガンス</em

During sustained stimulation most sensory neurons will adapt their response by decreasing their sensitivity to the signal. The adaptation response helps ...

Simultaneous Long-term Recordings at Two Neuronal Processing Stages in Behaving Honeybees

In both mammals and insects neuronal information is processed in different higher and lower order brain centers. These centers are coupled via convergent and divergent anatomical connections including feed forward and feedback wiring. Furthermore, information of the same origin is partially sent via parallel pathways to different and sometimes into the same brain areas. To understand the evolutionary benefits as well as the computational advantages of these wiring strategies and especially their temporal dependencies on each other, it is necessary to have simultaneous access to single neurons of different tracts or neuropiles in the same preparation at high temporal resolution. Here we concentrate on honeybees by demonstrating a unique extracellular long term access to record multi unit activity at two subsequent neuropiles1, the antennal lobe (AL), the first olfactory processing stage and the mushroom body (MB), a higher order integration center involved in learning and memory formation, or two parallel neuronal tracts2 connecting the AL with the MB.&#160;The latter was chosen as an example and will be described in full. In the supporting video the construction and permanent insertion of flexible multi&#160;channel wire electrodes is demonstrated. Pairwise differential amplification of the micro&#160;wire electrode channels drastically reduces the noise and verifies that the source of the signal is closely related to the position of the electrode tip. The mechanical flexibility of the used wire electrodes allows stable invasive long&#160;term recordings over many hours up to days, which is a clear advantage compared to conventional extra&#160;and intracellular in vivo recording techniques.

Simultaneous extracellular long term recordings from two different brain neuropiles or two different anatomical tracts were established in honeybees. These recordings allow the investigation of temporal aspects of neuronal processing across different brain areas at the single neuron as well as at the ensemble level in a behaving animal.

行動するミツバチの二つの神経の処理段階での同時長期レコーディング

In both mammals and insects neuronal information is processed in different higher and lower order brain centers. These centers are coupled via convergent ...

Long-term Time Lapse Imaging of Mouse Cochlear Explants

Here we present a method for long-term time-lapse imaging of live embryonic mouse cochlear explants. The developmental program responsible for building the highly ordered, complex structure of the mammalian cochlea proceeds for around ten days. In order to study changes in gene expression over this period and their response to pharmaceutical or genetic manipulation, long-term imaging is necessary. Previously, live imaging has typically been limited by the viability of explanted tissue in a humidified chamber atop a standard microscope. Difficulty in maintaining optimal conditions for culture growth with regard to humidity and temperature has placed limits on the length of imaging experiments. A microscope integrated into a modified tissue culture incubator provides an excellent environment for long term-live imaging. In this method we demonstrate how to establish embryonic mouse cochlear explants and how to use an incubator microscope to conduct time lapse imaging using both bright field and fluorescent microscopy to examine the behavior of a typical embryonic day (E) 13 cochlear explant and Sox2, a marker of the prosensory cells of the cochlea, over 5 days.

Live imaging of the embryonic mammalian cochlea is challenging because the developmental processes at hand operate on a temporal gradient over ten days. Here we present a method for culturing and then imaging embryonic cochlear explant tissue taken from a fluorescent reporter mouse over five days.

マウス蝸牛外植片の長期的タイムラプスイメージング

Here we present a method for long-term time-lapse imaging of live embryonic mouse cochlear explants. The developmental program responsible for building ...

Agarose Microchambers for Long-term Calcium Imaging of Caenorhabditis elegans

Behavior is controlled by the nervous system. Calcium imaging is a straightforward method in the transparent nematode Caenorhabditis elegans to measure the activity of neurons during various behaviors. To correlate neural activity with behavior, the animal should not be immobilized but should be able to move. Many behavioral changes occur during long time scales and require recording over many hours of behavior. This also makes it necessary to culture the worms in the presence of food. How can worms be cultured and their neural activity imaged over long time scales? Agarose Microchamber Imaging (AMI) was previously developed to culture and observe small larvae and has now been adapted to study all life stages from early L1 until the adult stage of C. elegans. AMI can be performed on various life stages of C. elegans. Long-term calcium imaging is achieved without immobilizing the animals by using short externally triggered exposures combined with an electron multiplying charge-coupled device (EMCCD) camera recording. Zooming out or scanning can scale up this method to image up to 40 worms in parallel. Thus, a method is described to image behavior and neural activity over long time scales in all life stages of C. elegans.

Agarose Microchambers for Long-term Calcium Imaging of Caenorhabditis elegans

Imaging behavior and neural activity over long time scales without immobilization of the animal is a prerequisite to understand behavior. Agarose microfluidic chambers imaging (AMI) can be used to image neural activity and behavior for all life stages of Caenorhabditis elegans.

の長期カルシウムイメージングのためのアガロースマイクロチャンバー<em&gt;線虫（Caenorhabditis elegans）</em

Behavior is controlled by the nervous system. Calcium imaging is a straightforward method in the transparent nematode Caenorhabditis elegans to measure ...

Quantifying Fish Swimming Behavior in Response to Acute Exposure of Aqueous Copper Using Computer Assisted Video and Digital Image Analysis

Behavioral responses of aquatic organisms to environmental contaminants can be precursors of other effects such as survival, growth, or reproduction. However, these responses may be subtle, and measurement can be challenging. Using juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus) with copper exposures, this paper illustrates techniques used for quantifying behavioral responses using computer assisted video and digital image analysis. In previous studies severe impairments in swimming behavior were observed among early life stage white sturgeon during acute and chronic exposures to copper. Sturgeon behavior was rapidly impaired and to the extent that survival in the field would be jeopardized, as fish would be swept downstream, or readily captured by predators. The objectives of this investigation were to illustrate protocols to quantify swimming activity during a series of acute copper exposures to determine time to effect during early lifestage development, and to understand the significance of these responses relative to survival of these vulnerable early lifestage fish. With mortality being on a time continuum, determining when copper first affects swimming ability helps us to understand the implications for population level effects. The techniques used are readily adaptable to experimental designs with other organisms and stressors.

Measuring the impacts of environmental contaminants on fish behavior is often subjective and challenging particularly when dealing with sublethal endpoints. We describe methods including video technology to quantify swimming behavior of early life stage white sturgeon (Acipenser transmontanus) during and after 96 hr acute exposures to various concentrations of copper.

コンピュータ支援ビデオとデジタル画像解析を用いた銅水溶液の急性暴露に応答して、魚の遊泳行動を定量化

Behavioral responses of aquatic organisms to environmental contaminants can be precursors of other effects such as survival, growth, or reproduction.  ...

A Simplified Method for Ultra-Low Density, Long-Term Primary Hippocampal Neuron Culture

Culturing primary hippocampal neurons in vitro facilitates mechanistic interrogation of many aspects of neuronal development. Dissociated embryonic hippocampal neurons can often grow successfully on glass coverslips at high density under serum-free conditions, but low density cultures typically require a supply of trophic factors by co-culturing them with a glia feeder layer, preparation of which can be time-consuming and laborious. In addition, the presence of glia may confound interpretation of results and preclude studies on neuron-specific mechanisms. Here, a simplified method is presented for ultra-low density (~2,000 neurons/cm2), long-term (&#62;3 months) primary hippocampal neuron culture that is under serum free conditions and without glia cell support. Low density neurons are grown on poly-D-lysine coated coverslips, and flipped on high density neurons grown in a 24-well plate. Instead of using paraffin dots to create a space between the two neuronal layers, the experimenters can simply etch the plastic bottom of the well, on which the high density neurons reside, to create a microspace conducive to low density neuron growth. The co-culture can be easily maintained for &#62;3 months without significant loss of low density neurons, thus facilitating the morphological and physiological study of these neurons. To illustrate this successful culture condition, data are provided to show profuse synapse formation in low density cells after prolonged culture. This co-culture system also facilitates the survival of sparse individual neurons grown in islands of poly-D-lysine substrates and thus the formation of autaptic connections.

Low density cultures of primary hippocampal neurons usually require glia feeder layer to supply neurotrophic factors and sustain longevity. We describe here a simplified method to culture ultra-low density neurons on glass coverslips in the presence of a high density neuronal feeder layer, which facilitates investigation of specific neuronal-autonomous mechanisms.

超低密度のために簡略化された方法、長期初代海馬ニューロンの文化

Culturing primary hippocampal neurons in vitro facilitates mechanistic interrogation of many aspects of neuronal development. Dissociated embryonic ...

A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees (Bombus terrestris)

Generalist pollinators like the buff-tailed bumble bee, Bombus terrestris, encounter both nutrients and toxins in the floral nectar they collect from flowering plants. Only a few studies have described the gustatory responses of bees toward toxins in food, and these experiments have mainly used the proboscis extension response on restrained honey bees. Here, a new behavioral assay is presented for measuring the feeding responses of freely-moving, individual worker bumble bees to nutrients and toxins. This assay measures the amount of solution ingested by each bumble bee and identifies how tastants in food influence the microstructure of the feeding behavior.
The solutions are presented in a microcapillary tube to individual bumble bees that have been previously starved for 2-4 hr. The behavior is captured on digital video. The fine structure of the feeding behavior is analyzed by continuously scoring the position of the proboscis (mouthparts) from video recordings using event logging software. The position of the proboscis is defined by three different behavioral categories: (1) proboscis is extended and in contact with the solution, (2) proboscis is extended but not in contact with the solution and (3) proboscis is stowed under the head. Furthermore the speed of the proboscis retracting away from the solution is also estimated.
In the present assay the volume of solution consumed, the number of feeding bouts, the duration of the feeding bouts and the speed of the proboscis retraction after the first contact is used to evaluate the phagostimulatory or the deterrent activity of the compounds tested.
This new taste assay will allow researchers to measure how compounds found in nectar influence the feeding behavior of bees and will also be useful to pollination biologists, toxicologists and neuroethologists studying the bumble bee&#39;s taste system.

A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees Bombus terrestris

A novel behavioral assay is described for investigating the short term gustatory responses of the mouthparts of freely-moving bumble bees (Bombus terrestris) toward nutrients and toxins in solution.

小説行動アッセイ個人の味覚応答を調査するために、自由に移動バンブル蜂（<em&gt;セイヨウオオマルハナバチ</em&gt;）

Generalist pollinators like the buff-tailed bumble bee, Bombus terrestris, encounter both nutrients and toxins in the floral nectar they collect from ...

Generation and Long-term Maintenance of Nerve-free Hydra

The interstitial cell lineage of Hydra includes multipotent stem cells, and their derivatives: gland cells, nematocytes, germ cells, and nerve cells. The interstitial cells can be eliminated through two consecutive treatments with colchicine, a plant-derived toxin that kills dividing cells, thus erasing the potential for renewal of the differentiated cells that are derived from the interstitial stem cells. This allows for the generation of Hydra that lack nerve cells. A nerve-free polyp cannot open its mouth to feed, egest, or regulate osmotic pressure. Such animals, however, can survive and be cultured indefinitely in the laboratory if regularly force-fed and burped. The lack of nerve cells allows for studies of the role of the nervous system in regulating animal behavior and regeneration. Previously published protocols for nerve-free Hydra maintenance involve outdated techniques such as mouth-pipetting with hand-pulled micropipette tips to feed and clean the Hydra. Here, an improved protocol for maintenance of nerve-free Hydra is introduced. Fine-tipped forceps are used to force open the mouth and insert freshly killed Artemia. Following force-feeding, the body cavity of the animal is flushed with fresh medium using a syringe and hypodermic needle to remove undigested material, referred to here as "burping". This new method of force-feeding and burping nerve-free Hydra through the use of forceps and syringes eliminates the need for mouth-pipetting using hand-pulled micropipette tips. It thus makes the process safer and significantly more time efficient. To ensure that the nerve cells in the hypostome have been eliminated, immunohistochemistry using anti-tyrosine-tubulin is conducted.

Generation and Long-term Maintenance of Nerve-free Hydra

Through a double treatment with colchicine, a plant-derived toxin that kills dividing cells, nerve-free Hydra vulgaris can be generated. These Hydra cannot feed or egest on their own. This paper describes an improved method for long-term maintenance of nerve free Hydra vulgaris in the laboratory.

神経フリーの生成と長期維持<em&gt;ヒドラ</em

The interstitial cell lineage of Hydra includes multipotent stem cells, and their derivatives: gland cells, nematocytes, germ cells, and nerve cells. The ...

Noninvasive EEG Recordings from Freely Moving Piglets

The method allows the recording of high-quality electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen. We use a one-channel telemetric electroencephalography system in combination with standard self-adhesive hydrogel electrodes. The piglets are calmed down without the use of sedatives. After their release into the pigpen, the piglets behave normally&#8212;they drink and sleep in the same cycle as their siblings. Their sleep phases are used for the EEG recordings.

Here, we present a protocol to record telemetric electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen without the use of a sedative, making it possible to record typical EEG patterns during non-REM sleep, like spindle bursts.

子豚を自由に移動するから非侵襲的脳波

The method allows the recording of high-quality electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen. We use a one-channel ...