We thank Mr. Hajime Ichijo for video recording and helpful advice concerning editing the video. We also thank the Osumi lab members for animal care. This work is supported by a Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Area, Neural Diversity and Neocortical Organization, from MEXT of Japan (to N. O.). T. K. was supported by a Research Fellowship of JSPS for Young Scientists.

注：動物実験は、実験動物の管理と使用に関する健康ガイドの国立研究所に従って行った。東北大学医学部の動物実験委員会は、ここに記載の実験手順を承認した。 1。麻酔および開腹<ol style="margin-left: 40px;"><li>採血のために、特定の病原体を含まない雄のSDラットを使用しています。水を提供しながら、少なくとも18時間、ラットを絶食。血液を収集するための年齢（550〜650グラム）の6-8ヶ月で退職した男性のブリーダーラットを使用してください。 </li><li> 10分間、2.0〜3.5 L /分で、麻酔を導入するために、麻酔装置に接続ボックスに、吸入麻酔薬であるイソフルラン2.5から4.0パーセントを流れる。麻酔を導入するボックスにラットを転送します。 <ol><li>ピンセットで足に刺激に対する応答の低下を確認することによって、麻酔を確認してください。ラットのWIの鼻をカバー深く採血時にラットを麻酔するための麻酔器に接続されたマスクを番目。濃度および流量は、それぞれ、2.5から4.0パーセントと2.0〜3.5 L /分に維持される。 注：この試薬 ​​展示イソフルラン22で麻酔したラットから得られた血清中で培養した胚に比べ胚発生の遅れで麻酔したラットから採取される血清中の胚が培養されたため、ハロタン吸入麻酔のために使用すべきではありません。 </li></ol></li><li>毛皮の汚染を避けるために、麻酔したラットの腹部に70％エタノールを注ぐことによって皮膚を消毒する。ピンセットで下部領域で消毒し、皮膚や腹壁をピックアップし、内臓を露出させ、大きなハサミで胸部領域に向けて、同時に、これらの層を切った。ピンセットと腹腔の外腸を反映している。 </li><li>と後肢に向けて皮膚や腹壁をカット大鋏は、さらに後方腹部を露出させる。ピンセットと腹腔の外に余分な脂肪を反映している。 </li><li>鉗子の2ペアを使用して正中線で内臓脂肪をピックアップし、腹部大動脈を露出させ、平行方向に慎重に脂肪を分割します。簡単に腹部大動脈の分岐部を識別するために、縦方向に内臓脂肪を分割するには、この手順を繰り返します。加えて、大動脈は拍動性であり、この特性を利用して、隣接する大静脈と区別することができる。 </li><li>腹部大動脈の周りの脂肪や鉗子の2ペアを慎重に分岐をピックアップし、腹部大動脈に脂肪を分離する。 </li></ol> 2。採血<ol style="margin-left: 40px;"><li>下方向に斜面で、大動脈の分岐部に直接頭蓋20ミリリットルの注射器に接続されている21のG針の先端を慎重に挿入します。 1で注射器を保持する手、そして雄ラットからの血液の15ミリリットルを収集するために、ゆっくりとシリンジを引き出します。 </li><li>注射器から針を外し、2氷冷10-mlの滅菌試験管（ 図1A）に血液を注ぐ。血栓の形成を遅らせるために、遠心分離まで氷上にチューブを保つ。一度に複数のチューブを遠心分離することにより、遠心分離時間を短縮。 </li><li>開胸して心臓や断頭を切断することによって、麻酔したラットを安楽死させる。 </li></ol> 3。ラットの血清の準備<ol style="margin-left: 40px;"><li>上下の層（ 図1C）に血液を分離するために1,200×gで、室温（RT）で5分間採取した血液を遠心分離する。 </li><li>フィブリンクロットを修正する1.5〜2時間、4℃でチューブを保つ。 </li><li>湾曲したピンセットを使用して、上層のフィブリン塊をピックアップし、血清を分離するために、フィブリン塊を絞る。すると、DOが直面湾曲したピンセットでフィブリン塊を押す2層（ 図1D）との界面近傍wnwards。 </li><li>さらに、フィブリン塊を分離するためにステップ3.3を繰り返します。 </li><li> 1200 XGおよびRT（ 図1E）で5分間試験管を遠心分離する。 </li><li>慎重に層流気流キャビネットに滅菌ピペットを用いて、15​​ミリリットルの滅菌チューブに血清を移す。 </li><li>残りの赤血球を除去するために1,200×gで、室温で5分間収集ラット血清を遠心分離する。 </li><li>プールチューブの底に残留赤血球（ 図1F）による汚染を避けるために、滅菌ピペットを用いて注意深く新しい15ミリリットル滅菌チューブに血清。 </li><li>補体系を不活性化するために30分間56℃の水浴中で血清をインキュベートする。 </li><li>層流気流キャビネットにRTにラット血清のチューブを冷却します。血清は、個々の滅菌チューブに10ミリリットルに等分しなければならない。使用します（ 図1H）まで-20℃でチューブを保管してください。 </li></ol>

<ol>
	<li>New, D. A. T., Copp, A. J., Cockroft, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Introduction.">Introduction.</a> Mammalian Postimplantation Embryos. A Practical Approach. , 1-14 (1990).</li><li>Eto, K., Takakubo, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+development+of+rat+embryos+in+culture+during+the+period+of+craniofacial+morphogenesis.">Improved development of rat embryos in culture during the period of craniofacial morphogenesis.</a> J Craniofac Genet Dev Biol. 5, 351-355 (1985).</li><li>Takahashi, M., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+method+of+rodent+whole+embryo+culture+using+the+rotator-type+bottle+culture+system.">The method of rodent whole embryo culture using the rotator-type bottle culture system.</a> J Vis Exp. (42), e2170 (2010).</li><li>New, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole+embryo+culture,+teratogenesis,+and+the+estimation+of+teratologic+risk.">Whole embryo culture, teratogenesis, and the estimation of teratologic risk.</a> Teratology. 42, 635-642 (1990).</li><li>Matsuo, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mutation+in+the+Pax-6+gene+in+rat+small+eye+is+associated+with+impaired+migration+of+midbrain+crest+cells.">A mutation in the Pax-6 gene in rat small eye is associated with impaired migration of midbrain crest cells.</a> Nat Genet. 3, 299-304 (1993).</li><li>Nomura, T., Holmberg, J., Frisen, J., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pax6-dependent+boundary+defines+alignment+of+migrating+olfactory+cortex+neurons+via+the+repulsive+activity+of+ephrin+A5.">Pax6-dependent boundary defines alignment of migrating olfactory cortex neurons via the repulsive activity of ephrin A5.</a> Development. 133, 1335-1345 (2006).</li><li>Yamamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nodal+antagonists+regulate+formation+of+the+anteroposterior+axis+of+the+mouse+embryo.">Nodal antagonists regulate formation of the anteroposterior axis of the mouse embryo.</a> Nature. 428, 387-392 (2004).</li><li>Inoue, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+cadherins+in+maintaining+the+compartment+boundary+between+the+cortex+and+striatum+during+development.">Role of cadherins in maintaining the compartment boundary between the cortex and striatum during development.</a> Development. 128, 561-569 (2001).</li><li>Takahashi, M., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pax6+regulates+specification+of+ventral+neurone+subtypes+in+the+hindbrain+by+establishing+progenitor+domains.">Pax6 regulates specification of ventral neurone subtypes in the hindbrain by establishing progenitor domains.</a> Development. 129, 1327-1338 (2002).</li><li>Calegari, F., Haubensak, W., Yang, D., Huttner, W. B., Buchholz, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-specific+RNA+interference+in+postimplantation+mouse+embryos+with+endoribonuclease-prepared+short+interfering+RNA.">Tissue-specific RNA interference in postimplantation mouse embryos with endoribonuclease-prepared short interfering RNA.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 99, 14236-14240 (2002).</li><li>Takahashi, M., Nomura, T., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transferring+genes+into+cultured+mammalian+embryos+by+electroporation.">Transferring genes into cultured mammalian embryos by electroporation.</a> Dev Growth Differ. 50, 485-497 (2008).</li><li>Pryor, S. E., Massa, V., Savery, D., Greene, N. D., Copp, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Convergent+extension+analysis+in+mouse+whole+embryo+culture.">Convergent extension analysis in mouse whole embryo culture.</a> Methods Mol Biol. 839, 133-146 (2012).</li><li>Kikkawa, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dmrta1+regulates+proneural+gene+expression+downstream+of+Pax6+in+the+mammalian+telencephalon.">Dmrta1 regulates proneural gene expression downstream of Pax6 in the mammalian telencephalon.</a> Genes Cells. 18, 636-649 (2013).</li><li>Tabata, H., Nakajima, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+in+utero+gene+transfer+system+to+the+developing+mouse+brain+using+electroporation:+visualization+of+neuronal+migration+in+the+developing+cortex.">Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex.</a> Neuroscience. 103, 865-872 (2001).</li><li>Fukuchi-Shimogori, T., Grove, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neocortex+patterning+by+the+secreted+signaling+molecule+FGF8.">Neocortex patterning by the secreted signaling molecule FGF8.</a> Science. 294, 1071-1074 (2001).</li><li>Saito, T., Nakatsuji, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+gene+transfer+into+the+embryonic+mouse+brain+using+in+vivo+electroporation.">Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation.</a> Dev Biol. 240, 237-246 (2001).</li><li>Turnbull, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound+backscatter+microscopy+of+mouse+embryos.">Ultrasound backscatter microscopy of mouse embryos.</a> Methods Mol Biol. 135, 235-243 (2000).</li><li>Pierfelice, T. J., Gaiano, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound-guided+microinjection+into+the+mouse+forebrain+in+utero+at+E9.5.">Ultrasound-guided microinjection into the mouse forebrain in utero at E9.5.</a> J Vis Exp. (45), e2047 (2010).</li><li>Quinlan, G. A., Khoo, P. L., Wong, N., Trainor, P. A., Tam, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+grafting+and+labeling+in+postimplantation+mouse+embryos.">Cell grafting and labeling in postimplantation mouse embryos.</a> Methods Mol Biol. 461, 47-70 (2008).</li><li>Nagy, A., Gertsenstein, M., Vinterstein, K., Behringer, R., Nagy, A., Gertsenstein, M., Vinterstein, K., Behringer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Roller+culture+of+postimplantation+embryos.">Roller culture of postimplantation embryos.</a> Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual. , 237-241 (2003).</li><li>Garcia, M. D., Udan, R. S., Hadjantonakis, A. K., Dickinson, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+rat+serum+for+culturing+mouse+embryos.">Preparation of rat serum for culturing mouse embryos.</a> Cold Spring Harb Protoc. 2011, 391-393 (2011).</li><li>Brown-Woodman, P. D., Ritchie, H. E., Korabelnikoff, A., Emmanuel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Replacement+of+ether+with+alternate+volatile+anesthetics+for+collection+of+rat+serum+used+in+embryo+culture.">Replacement of ether with alternate volatile anesthetics for collection of rat serum used in embryo culture.</a> Toxicol In Vitro. 18, 719-724 (2004).</li><li>Gray, J., Ross, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+tube+closure+in+mouse+whole+embryo+culture.">Neural tube closure in mouse whole embryo culture.</a> J Vis Exp. (56), e3132 (2011).</li><li>Machado, C. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reconstruction+of+phrenic+neuron+identity+in+embryonic+stem+cell-derived+motor+neurons.">Reconstruction of phrenic neuron identity in embryonic stem cell-derived motor neurons.</a> Development. 141, 784-794 (2014).</li><li>Glanville-Jones, H. C., Woo, N., Arkell, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Successful+whole+embryo+culture+with+commercially+available+reagents.">Successful whole embryo culture with commercially available reagents.</a> Int J Dev Biol. 57, 61-67 (2013).</li><li>Ornoy, A., Yacobi, S., Yaffee, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+method+of+culture+of+11.5-day-old+rat+embryos+in+DMEM/F12+and+20%+fetal+bovine+serum.">A simple method of culture of 11.5-day-old rat embryos in DMEM/F12 and 20% fetal bovine serum.</a> J Anat. 203, 419-423 (2003).</li><li>Moore-Scott, B. A., Gordon, J., Blackburn, C. C., Condie, B. G., Manley, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+serum-free+in+vitro+culture+technique+for+midgestation+mouse+embryos.">New serum-free in vitro culture technique for midgestation mouse embryos.</a> Genesis. 35, 164-168 (2003).</li><li>Kalaskar, V. K., Lauderdale, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+Embryonic+Development+in+a+Serum-free+Whole+Embryo+Culture+System.">Mouse Embryonic Development in a Serum-free Whole Embryo Culture System.</a> J Vis Exp. (85), e50308 (2014).</li></ol>

No conflicts of interest are declared.

WECの実験における再現性のある結果は、高品質のICラット血清、正確胚解剖技法3を使用することに依存している。空腹時には、血液中のグルコース濃度を標準化する必要があるため、採血前に絶食期間を短くしないでください。ホルモンレベルが発情周期に係る雌の動物に変化するため、雌ラット血清の調製のために使用すべきではない、およびエストラジオールホルモンのこのよ?...

モデル動物種々の分子および細胞レベルでの発達のメカニズムを調べるために発生生物学において使用される。例えば、両生類や鳥類は、広くこれらの胚が母親の外側を開発するための胚を直接操作するのに適している古典的なモデル動物として使用されている。これらの動物とは対照的に、哺乳類の胚は母親の子宮で成長し、後の段階での成長は、子宮の機能に決定的に依存している。したがって、そのような直接早い段階でのマウスおよびラット由来のもののような哺乳動物の胚を操作するために、典型的には困難である。 1960年代には、デニスの新連続酸素供給や熱制御1とWECの装置を用いて哺乳動物全胚培養（WEC）の手法を確立した。 WECでは、マウスおよびラットの胚は、生体外 （ すなわち、子宮の外側）に成長することができます。 WECの技術は、多くの場合、様々なchemicを添加することによって奇形学において使用されたがらは、培養培地中に化合物が、この技術はさらに、哺乳動物2-4の固有の発達のメカニズムを調べるために、種々の発生生物学研究に使用されている。例えば、WECは、蛍光色素5、細胞移植6、および7リポフェクションおよびエレクトロ8-13を介して遺伝子導入を用いて、野生型及び変異胚におけるこのような細胞標識のような他の技術と組み合わされる。 近年、 子宮操作の後の段階でげっ歯類の胚における発生過程を分析するために使用されており、エレクトロポレーション技術14-16と組み合わされている。しかしながら、これらの技術は、初期の段階で胚にDNA溶液の正確な局所注射を達成する困難さに起因し、妊娠中期の胚の着床後の操作には適していない。初期胚への超音波ガイド下細胞移植およびウイルスベクターの注入が（ すなわち、子宮内でマウスE8.5-E-9.5）は、以前に17,18に報告されている、優れたスキルが高い成功率でこれらの実験を行うために必要とされる。したがって、高いアクセシビリティエクスビボでWECは、マウスおよびラット胚の操作に対して利点を有する。 雄性ラットから調製し、直ちに遠心分離した（IC）ラット血清は、多くの場合、WEC媒体に使用される。胚（ すなわち、ラット又はマウスE10.0においてE8.0より以前）着床後の段階で培養すると、合成培地およびICラット血清の混合物はしばしばWEC 19のための媒体として使用される。全く、現在入手可能な代替メディアが許さないので、妊娠中期での培養胚（ すなわち 、E8.0-12.5マウス胚またはラット胚におけるE10.0-E14.5）で、100％の血清を培地として使用する必要があります胚は、2日以上、インビトロで正常に成長する。 高品質のラット血清の調製物であるWECの実験で再現性を達成するための重要なステップ。遅延遠心分離に比べて、ICは、赤血球の大部分が既にフィブリン塊から分離されているので、血清はフィブリン塊を圧搾することによって収集されるときに溶血を低減するという利点を有する。溶血性ラット血清、ラットおよびマウス胚の正常な成長を支えることができないように、即時の遠心分離を用いて血清の調製は、遅延された遠心分離を用いて調製することが好ましい。我々のプロトコルは、他のプロトコルに比べて2つの手順が含まれている18〜20（ すなわち 、前最初の遠心分離に氷上で採取した血液を貯蔵し、最初の遠心分離の後、4℃で2時間採取した血液サンプルを維持する）。前者のステップは、血栓の形成を遅らせることができ、後者のステップは、簡単にスクイズのため、フィブリン塊の凝固を促進する。そのため、我々のプロトコルは、初心者で使用することができます。しかし、採血し、血清を再生する単にプロトコルブックを参照することにより正確に抽出が19-21は非常に困難である。このビデオの記事では、我々は雄ラット、遠心分離により血清の抽出の腹部大動脈から採血を含み、最適なICのラット血清の調製のための私達の標準的なプロトコルを示しています。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="892">
	<tbody>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:156px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:401px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Isoflurane</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>B506</td>
			<td>For anesthesia of rats.</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Large scissors</td>
			<td>Napox</td>
			<td>B-7H</td>
			<td>Stelized scissors for cutting the skin and muscle of rats.&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Curved forceps</td>
			<td>Napox</td>
			<td>A-3-2</td>
			<td>Stelized forceps for picking up the skin of rats and squeezing the fibrin clot.</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Sprague-Dawley (SD) rat</td>
			<td>Charles Rivers Laboratories</td>
			<td></td>
			<td>Retired male rats from colony in the lab or purchased retired male rats.</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Syringe (20 ml)</td>
			<td>TERUMO</td>
			<td>SS-29ESZ</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Needle (21G x 5/8&#34;)</td>
			<td>TERUMO</td>
			<td>NN-2116R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Sterile test (spitz) tube (10 ml)</td>
			<td>ASIAKIZAI</td>
			<td style="width:119px;">1101C000B-10</td>
			<td>For collection of boold</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Sterile disposable pipette</td>
			<td>Eiken Chemical</td>
			<td>CD2000 No.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Sterilie disposable tube (15 ml)&#160;</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>2196</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

preparation of rat serum suitable for mammalian whole embryo culture

Mammalian whole embryo culture (WEC) is a widely used technique for examining pharmacological toxicity in developing mouse and rat embryos and for investigating the mechanisms of developmental processes. Immediately centrifuged (IC) rat serum is commonly used for WEC and is essential for the growth and development of cultured mouse and rat embryos ex vivo. For the culture of midgestation embryos (i.e., E8.0-12.5 for the mouse, and E10.0-14.5 for the rat), 100% rat serum is the best media for supporting the growth of the embryo ex vivo. To prepare rat serum suitable for WEC, the collected blood should be centrifuged immediately to separate the blood cells from the plasma fraction. After centrifugation, the fibrin clot forms in the upper layer; this clot should be squeezed gently using a pair of sterile forceps and subsequently centrifuged to completely separate the blood cells from the serum. In this video article, we demonstrate our standard protocol for the preparation of optimal IC rat serum, including blood collection from the abdominal aorta of male rats and extraction of the serum by centrifugation.

図1は、血液細胞、血清を分離するための記載された手順の代表的な結果を示している。我々は、一般的に引退した雄性ラット（ 図1A）からの血液の15ミリリットルを得る。遠心分離によって、採取した血液、血清、矢印で示されているフィブリン塊、および血液細胞（ 図1C）を含む下層を含有する上層とに分離することができる。重要なことには、溶血...

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Preparation of Rat Serum Suitable for Mammalian Whole Embryo Culture

Mammalian whole embryo culture (WEC) is widely used in teratology and developmental biology. Immediately centrifuged rat serum is commonly provided as a medium for both mouse and rat WEC. In this video, we demonstrate our standard protocol for the preparation of high-quality rat serum suitable for mammalian WEC.

哺乳類の全胚培養に適したラット血清の調製

Mammalian whole embryo culture (WEC) is a widely used technique for examining pharmacological toxicity in developing mouse and rat embryos and for ...

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Research

JoVE Journal

Biology

13.7K ビュー.  Jichi Medical University. Mammalian whole embryo culture (WEC) is widely used in teratology and developmental biology. Immediately centrifuged rat serum is commonly provided as a medium for both mouse and rat WEC. In this video, we demonstrate our standard protocol for the preparation of high-quality rat serum suitable for mammalian WEC.