This research was supported by grant from INSERM, University of Lille 1, University of Lille 2, Regional Hospital Center of Lille (CHR de Lille). MCCH acknowledges supports from the Fondation de France and wishes to thank IRCL, Pr. Sonenberg for the gift of the V5-plasmids, Dr. Dissous (Pasteur Institute, Lille) for the gift of anti-GFP antibodies, UMS 3387 (University of Rennes) where Xenopus oocytes are purchased and Dr Taymans (JPArc, Lille) for critical reading of the manuscript text.

すべてのアフリカツメガエルの実験は、実験動物実験のための欧州共同体理事会のガイドライン（609分の86 / EEC）の規則に従ってリール1大学の動物施設で実施しました。動物プロトコルは、（アン実験ANIMALEノールパドカレ、CEEA 07/2010ComitéドールEthique）ローカルの機関審査委員会によって承認されました。 1.卵母細胞の取り扱い<ol><li>滅菌水1Lにトリカインメタンスルホン酸の粉末1gを溶かす：麻酔液を準備します。 </li><li>プランジメスアフリカツメガエルは、エスケープを回避し、完全に（足のピンチに任意の反応なし）鎮静されるべき動物のために約45分を待つようにビーカーをカバーし、この溶液に、 アフリカツメガエル 。 </li><li>石鹸でカエルを洗い、きれいなアルミ箔の上に、その背中に動物を配置した後、水道水ですすいでください。 </li><li>腹部の横部分のとピンセットで卵巣レベルで皮膚を固定します。エタノール70％で使用する前に洗浄はさみで約1cmの切開を行います。セクションでは、十分な深さであることを確認し、開発のさまざまな段階で、いくつかの卵母細胞が発見された卵巣組織の切除を可能にするために、基礎となる腹壁に到達します。 </li><li> ND96培地（96ミリモルのNaCl、2mMのKClを含むペトリ皿（50 mm）の中にそれらを4回洗浄し、卵巣葉を分析、1mMのMgCl 2、1.8mMのCaCl 2を、5mMのHEPESは、NaOHでpH7.4に調整補っ50μg/ mlのストレプトマイシン/ペニシリン、225 / mlのピ​​ルビン酸ナトリウムと、/ mlの大豆トリプシン阻害剤30μgの、1μL/ mlのテトラサイクリン）の血液や破片の痕跡をすべて削除します。 注意：テトラサイクリンは、最適な保全とマイクロインジェクション処理後の良好な回収を可能にします。 </li><li>一週間のために彼らの保存を可能にする、14℃で培地中に沈め覆われたペトリ皿に保管してください。 </li><li>獣医吸収トンと腹壁と皮膚をステッチhreadと縫合針（3または4のステッチが必要となります）。 </li><li>水なしでビーカー内で動物を置き、カエルが再び移動されるまで、水道水で肌をしっとり。逃げるのを防ぐために、ビーカーをカバー。 </li><li> 10倍の倍率での実体顕微鏡下に鉗子の2組を使用して、慎重に5〜10個の卵母細胞のグループで培地中で卵巣ローブを区切ります。第VI段階で卵母細胞を選択します。彼らは、茶色の色素性動物極と直径10 1.2 mmまでⅱ）その大きさの優れた明瞭なベルトで区切られた黄色の栄養極に）iで、その形や色を認識することができます。 </li><li> （コラゲナーゼは、卵母細胞/濾胞細胞接続を消化）卵母細胞defolliculationを容易にするために、45分の間、穏やかな攪拌下シャーレ内コラゲナーゼ溶液（テトラサイクリンなしND96に溶解クロストリジウムヒストリチカムから1 mg / mlのコラゲナーゼA）で選択された卵母細胞をインキュベートします。 ND96培地で3〜4回は14に保たれた卵母細胞をすすぎます°C。 注：以下の卵母細胞または卵母細胞表面タンパク質を破壊する、貧しい生存能力を引き起こすリスクに起因する以上45分間インキュベートしないでください。コラゲナーゼ処理は、自発GVBDを誘導することができます。 </li><li> 3-4時間のための培地中の卵母細胞をインキュベートします。両眼虫眼鏡の下に細かいピンセットで濾胞細胞を除去し、ND96培地で19℃で保管してください。 </li></ol> mRNAの合成の調製<ol><li> Pme I制限酵素の酵素を用いた酵素消化により以下のプラスミド5μgのを線形化。 注：1599のアミノ酸eIF4G1 cDNAを、野生型（eIF4G1-WT; NM_198241）を含むpcDNA6.2 / V5-DEST変異c.2105TでeIF4G1ドミナントネガティブのcDNA（eIF4G1-DN）を含む、pcDNA6.2 / V5-DEST &gt; G c.2106A&gt; C、c.2120-&gt; G、c.2122T&gt; A、2125T&gt; -位置612でeIF4G1とのeIF4E間の相互作用の領域にとc.2126T&gt; G乱す対応するタンパク質の618に対話betweアンeIF4G1とのeIF4E 8、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（GFP）を含むpcDNA6.2 / C-EmGFP。 3プラスミドのそれぞれについて、2の混合物を準備します。I酵素Pmeを含む第1および制御などの酵素なし秒。 </li><li>古典的なエタノールの手順を用いてプラスミドDNAを沈殿し、ヌクレアーゼフリーのH 2 O20μlに再懸濁し、それを</li><li>分光光度計を用いてその濃度を決定します。濃度は、cRNAのを転写するμlの150 ngの/よりも優れている必要があります。 </li><li>プラスミド線形化を確認するために、0.8％アガロースゲルでのローディングバッファー5μlのサンプルとそのコントロールの1μLを実行します。 </li><li> in vitro転写し、製造業者の指示に従ってcRNAを精製するためのキットを使用してください。転写されたcRNAは、ヌクレアーゼフリーの H 2 O20μlに再懸濁し、必要に応じて、サンプルは-80℃で保存することができます。 </li><li> 0.2 M MOPS（pH7.0）で、20メートルを含むMOPS 10X移行バッファを準備M酢酸ナトリウムおよび10mM EDTA（pHは8.0）。 0.45μmのフィルターで溶液を滅菌します。溶液の酸化を避けるために、室温で、光から保護した溶液をストック。 </li><li> NaOH、HClを用いて連続的に電気泳動槽を清掃し​​、完全にO / NのRNaseを避け、RNA分解を防ぐためのための二重濾過し、水ですすぎました。 </li><li> MOPSおよびホルムアルデヒドを含む1.5％アガロースゲルをキャストします。完全にアガロースに溶解するまで加温し、それが55℃まで冷却しましょう​​。ヒュームフードの下では、MOPS 10X 0.1容量、ホルムアルデヒドの6.6％エチジウムブロマイドの4μgの（10mg / ml）を追加します。ヒュームフードの下でゲルを注ぎ、ゲルが硬化するのに約1時間を待ちます。 注意：ホルムアルデヒドとエチジウムブロマイドは有毒です。 </li><li> cRNAの1μlを、ホルムアルデヒドの8.8％、ホルムアミドの60％とMOPS 10X 0.1容量0.2 mlチューブに移行するためのサンプルを準備します。 70℃で3分間インキュベートし、氷上で10分間、チューブを置きました。遠心サンプル数秒で5,000×gで。ゲルローディング緩衝液2μlのを追加します。 注意：ホルムアミドは有毒です。 </li><li> 90Vで20分間、サンプルを実行します。 cRNAの品質をチェックするためにそれを分析する前に、ゲルを脱色するためにヌクレアーゼフリーH 2 OO / Nでゲルを浸し。 </li><li>分光光度計を使用したcRNAの濃度を測定し、-80℃で保存します。 </li></ol>合成されたRNAおよび卵母細胞成熟刺激の3マイクロインジェクション<ol><li>卵母細胞のマイクロインジェクションのために必要な機器を準備します。小さなガラスキャピラリーを引っ張ってマイクロピペットプラーを使用してください。実体顕微鏡下では、平滑末端を作成するために、ピンセットでキャピラリーの先端を断ちます。反対側の先端にミリポア0.45μmのフィルターで1mlシリンジを使用して、鉱物油とキャピラリーマイクロピペットを埋めます。マイクロインジェクションピペットの上にマイクロピペットをマウントします。適切なガラスキャピラリーを使用した場合に良好な精度を得るためにメーカーで校正正確なマイクロピペットを選択してください。 </li><li> 、defolliculation後に14℃に保たれた卵母細胞に、卵母細胞の回復のために必要な遅延をマイクロインジェクション1〜2時間を実行します。ボトムでペトリ皿を使用した卵母細胞のための接着面を作成し、ND96媒体でそれらを埋めるためにピンセットで掻き取っ。 </li><li> 45℃の角度でキャピラリーマイクロピペットで卵母細胞の連続注入を可能にするペトリ皿で​​掻き取っレーンに沿って卵母細胞を配置します。 </li><li>細胞質中のサンプルの最適な拡散のための着色された動物のエリアの下に、卵母細胞赤道域に注入します。深さの約150〜200ミクロンのキャピラリー先端の唯一の最も薄い部分を挿入します。 </li><li>最初の卵母細胞における60 NL量の異なるプラスミドからそれぞれ得られたcRNAの30 ngのを注入します。注入後、サンプルエスケープ（ 図2A）を回避するために、キャピラリー先端を除去する前に5〜10秒間待ちます。 注意：120 NLを超えないようにしてください。ゆっくりとすることができますように注入します。蒸留水で制御することをお勧めします。 </li><li>次卵母細胞を注入するために手動でペトリ皿を移動します。 注意：先端が2〜3マイクロインジェクション後、浴溶液から小さなパルスを生成することにより、目詰まりしていないことを確認します。 </li><li>転送が新鮮ND96培地3mlで満たし、19℃でそれらを残す（10卵母細胞/ウェル）を24ウェルの培養プレートに卵母細胞を注入しました。 </li><li> pcDNA6.2 / V5-DESTeIF4G1とpcDNA6からそれぞれ取得した19°C、ポリアデニル化cRNAをマイクロインジェクション後15時間または4時間で減数分裂成熟（GVBD）をトリガするためにプロゲステロン（PG）（2μg/ ml）でND96で卵母細胞をインキュベート0.2 / C-EmGFPは、コントロール（ 図2A）として使用します。 注：cRNAを蛍光マーカーの同時注入は、cRNAを注入した卵母細胞に残ったことを確実にするために便利なツールです。 GFPタグと利益のcRNAを使用して、このような予備実験を行います。 </li><li> TEのためにポリアデニルeIF4G1-WT及びeIF4G1-DNのcRNAの＃3.5異なる比（1：;：; 2 3 3 2 1）のように顕微注入しますST変異体の表現型（ 図2D）にeIF4G1-WTたcRNAの翻訳効果が。 </li></ol> 4.卵核胞崩壊の決意<ol><li>実体顕微鏡と黒の動物極に白いスポットの存在を観察することにより、PG刺激後、成熟した卵母細胞の数をカウントします。第二十四時間（ 図2B、2C）までカウントを時間ごとに繰り返します。 </li></ol> 5.ウエスタンブロット（WB）分析<ol><li> 50mMのHEPES、pHが7.4、500mMのNaCl、0.05％SDS、5mMのMgCl 2、1mgの次のバッファ内の200μl中、4℃で、マイクロピペットチップで前後に動きによって10卵母細胞のグループを均質化/ mlのウシ血清アルブミン、10 mg / mlのロイペプチン、10 mg / mlのアプロチニン、10 mg / mlの大豆トリプシン阻害剤、10 mg / mlのベンズアミジン、1mMのPMSF、1mMのバナジン酸ナトリウム。 </li><li>脂質（上相）および膜（下相）は、fを除去するために万×gで15分間遠心サンプルractions。細胞質画分を集め、タンパク質濃度を決定し、レムリまたはビス - トリスサンプル緩衝液（1：1）を用いて、残りを完了するためにアリコートを格納します。 注：ビス - トリスゲルローディング緩衝液は、加水分解からタンパク質を保護し、より中性のpHを有します</li><li> 10分間95℃で試料の20μgのを加熱します。アクリルアミドゲルのウェルに各サンプルをロードします。適切な緩衝液を用いてタンク内にゲルを置きます。 </li><li> 200 Vで1時間電気泳動を行います</li><li>またはウサギ抗と共に：ヤギ抗オーロラA / Eg2の（3000、2時間1）を用いてTBS pH8.0の中でWB（トリスHCl 15mMの、NaClを150 mMの、ツイーン0.1％、10％のウシ血清アルブミンを含む）を実現-Aurora A / Eg2の-P（1：4°Cで1,000 O / N）、マウス抗ERK2（1：3000、2時間）、ヤギ抗ERK2-P（Tyr204）（1：3000、2時間）、ウサギ抗MOS（1：5000、4時間）、ウサギ抗GFP（1：10,000 2時間）およびウサギ抗Rskが（1：3000、2時間）antibodies.Useマウス抗V5を（1抗体：1,000、2時間）（）のローディングコントロールとして。 </li><li>ウォッシュ膜をTBS-Tween中で10分間3回、抗マウスまたは抗ウサギまたは1の希釈で抗ヤギ（IgM抗体）、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識二次抗体のいずれかで1時間インキュベートする：5000、1：7500および1 ：それぞれ5,000。 </li><li> TBS-Tween中で10分の3回の洗浄を行い、高度なECL検出システムと抗原抗体複合体を検出します。 </li></ol> 6.ポリアデニル化アッセイ<ol><li>サンプル1.5ミリリットルで条件あたり5卵母細胞。ヌクレアーゼフリーのPBS 1X（pHは7.4）1mlでそれらを洗ってください。次の手順では、ヒュームフードの下で行われます。 </li><li> （製造元の説明書を参照してください）​​古典的な有機の手順を用いてRNAを抽出します。 </li><li> 4℃で5分間の遠心分離（10,000×gで）によるRNAを回復します。 10分間上清と空気乾​​燥RNAを削除します。 </li><li>ヌクレアーゼフリーH 2 O30μlの中で再懸濁し、RNAペレット</li><li>新しいチューブ内のサンプルの15μLを取り、ヌクレアーゼフリーの H 2 Oの85μlを添加しますクリーンアップSEのサンプルを、製造業者の説明書に従って、シリカのカラム上での品質を向上させることができます。ヌクレアーゼフリーの H 2 O 30μLを用いてRNAを溶出</li><li> RNAの完全性を確認するために、0.8％アガロースゲル上のローディングバッファー5μlのサンプルの1μLを実行します。 </li><li>分光光度計を用いてRNA濃度を決定します。 </li><li> RNAリガーゼの10 U、10×バッファーの0.1体積、1mMのATP、PEG8000の10％：50％以下の試薬 ​​を用いて（ すなわち、eIF4G1-WT、eIF4G1-DNとH 2 Oコントロール）条件あたり2ライゲーション混合物を準備します、0.1プライマーP1（5&#39;-P-GGTCACCTTGATCTGAAGC-NH2-3 &#39;）11μgのとヌクレアーゼフリーのH 2 Oで10μlの最終容量をもたらしますPG刺激することなく、卵母細胞から得られた第一の混合物のRNA中に追加して、PGから得られた第2の混合物のRNA中に卵母細胞を刺激しました。 </li><li>酵素を不活性化するために65°Cで20分間、次いで37℃で1時間インキュベートします。 </li><li>お問い合わせEA cDNAを逆転写（RT）キット。チューブあたり、RT混合物を準備します。10X RT緩衝液の0.1容量、プライマーP2（5&#39;-GCTTCAGATCAAGGTGACCTTTTT）100.1μgの、4 mMののdNTP混合物、逆転写酵素の50 U最終容量にヌクレアーゼフリーのH 2 Oで完全に10μlに。先に得られたライゲーション反応物10μlを追加します。製造業者によって記載された条件の下でRTを実行します。 </li><li>バッファ10倍の0.1体積、1.5のMgCl 2、133μMのdNTP混合物、0.2μMの特異的プライマー、0.2μMのプライマーP2、0.025 UのTaqポリメラーゼ 、cDNAの1μlのとで完了：チューブあたりポリメラーゼ連鎖反応（PCR）の混合物を、準備50μlの最終体積にヌクレアーゼフリーH 2 Oを。 * 40サイクル、72°C [30秒、30秒、1分、56℃、95℃、72℃]、10分間、2分間、95°C、50°C以下の条件でPCRを行います10分9用 。次のように特異的プライマーは以下のとおりです。モス、GTTGCATTGCTGTTTAAGTGGTAAヒストン様B4、AGTGACAAACTAGGCTGATATACT。サイクリンA1、CATTGAACTGCTTCATTTTCCCAG。サイクリンB1：GTGGCATTCCAATTGTGTATTGTT 9。 </li><li> 3％アガロースゲルを準備します。各PCR産物をローディング緩衝液10μlに追加します。最適な移行のために110 Vでのサンプルの10μlのゲルを実行します。テールポリ（A）の長さとその翻訳するための前提条件であるので、RNAの成熟を反映した大きさの変化を観察するために10と20分後にゲルを分析。 </li></ol>

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M., Capelluto, D. G., Finkielstein, C. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulatory+pathways+coordinating+cell+cycle+progression+in+early+Xenopus+development.">Regulatory pathways coordinating cell cycle progression in early Xenopus development.</a> Results Probl Cell Differ. 53, 171-199 (2011).</li><li>Schmidt, E. K., Clavarino, G., Ceppi, M., Pierre, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SUnSET,+a+nonradioactive+method+to+monitor+protein+synthesis.">SUnSET, a nonradioactive method to monitor protein synthesis.</a> Nat Methods. 6 (4), 275-277 (2009).</li><li>Moreno, J. A., Halliday, M., Molloy, C., Radford, H., Verity, N., Axten, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oral+treatment+targeting+the+unfolded+protein+response+prevents+neurodegeneration+and+clinical+disease+in+prion-infected+mice.">Oral treatment targeting the unfolded protein response prevents neurodegeneration and clinical disease in prion-infected mice.</a> Sci Transl Med. 5 (206), 206ra138 (2013).</li><li>Doyle, K. M., Kennedy, D., Gorman, A. M., Gupta, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unfolded+proteins+and+endoplasmic+reticulum+stress+in+neurodegenerative+disorders.">Unfolded proteins and endoplasmic reticulum stress in neurodegenerative disorders.</a> J Cell Mol Med. 15 (10), 2025-2039 (2011).</li><li>Gandin, V., Sikstr&#246;m, K., Alain, T., Morita, M., McLaughlan, S., Larsson, O., Topisirovic, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Polysome+fractionation+and+analysis+of+mammalian+translatomes+on+a+genome-wide+scale.">Polysome fractionation and analysis of mammalian translatomes on a genome-wide scale.</a> J Vis Exp. (87), e51455 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

翻訳は、いくつかの神経変性疾患を含む多数のヒトの疾患の生理病理学に関与する機構です。パーキンソン病における例えばいくつかの報告は、遺伝性突然変異8,12,13に関連付けられている訳で障害を示唆しました。 いくつかの細胞モデルは、翻訳を勉強するために利用可能です。ここでは、eIF4G1とeIF4Eのパートナー8との間の相互作用を減少させるなどの...

タンパク質は、細胞の生命の本質的な要素であり、したがって、生物の大規模で。彼らは、それらの発現はmRNAのタンパク質への変換を可能にする翻訳の複雑な機構の結果であるなど構造、輸送、反応触媒、規制、遺伝子発現を含む細胞機能の大部分を確保します。翻訳に適応するために、開発および分化、老化、生理学的ストレスまたは病理学的徴候の間、細胞の必要に応じて遺伝子発現を調節するために様々な制御に供されます。 キャップ依存性、キャップ非依存の内部リボソーム侵入セグメント（IRES）の構造とキャップ非依存性翻訳エンハンサー（ 経由 ：翻訳は、3開始翻訳システムこれらのニーズに対応するために3段階（開始、伸長及び終了）やプレゼントに分割され、 ）CITE。 ほとんどの真核生物のmRNAはキャップDEPEに翻訳されていますタンパク質合成の間に認識機能として機能7-メチル5&#39;-三リン酸キャップ経由 ndentの方法。このキャップは、eIF4Eの、eIF4G1とeIF4AとeIF4F複合体の成分に結合します。ポリ（A）結合タンパク質（PABP）のような他のパートナーに関連する、EIF2-GTP-Metの-tRNAのMetは 、これらの翻訳開始因子は、mRNAを環状と認識1 AUG開始コドンまで、フォームに43S複合体をそのアクセス性を向上させることができます。このイベントは、翻訳開始、すなわち、翻訳の最初のステップの終わりに相当します。 キャップ非依存性翻訳は、例えば細胞増殖およびアポトーシスのために誘導するストレスの条件下で必須タンパク質をコードするmRNAによって使用されます。このメカニズムは、mRNA中の二次構造を伴う5&#39;-非翻訳領域（UTR）はIRES、eIF4Aおよび43S複合体と会合しeIF4G1のカルボキシ末端と呼ばれます。この43S開始前Cの結合IRESにomplexは、eIF4Eの係数2,3を必要とせずにキャップ依存性翻訳を開始します。 mRNAのUTR 4内に配置された構造をCITE を経由して最後に、まだよくわかっていない別の変換メカニズムは、ストレス条件下では、このキャップ非依存性翻訳活性をサポートしています。 彼らの開始段階によって異なる翻訳のこれらの様々なモードを通じ、翻訳が細胞の恒常性に重要な役割を果たし、これらのプロセスのいずれかの変化は、このように大規模な効果のために小さなと生物に影響を与えるだろう。実際、開始は、タンパク質へのmRNAの正しい翻訳プロセスを支配する律速段階であるため、多数のコントロールの対象と規制点5です。一つは欠陥があることが判明した場合、それは後者のために、またはこれらのプロセスのコンポーネントのためのものであるかどうか、それが細胞内で確立されたバランスを乱すますので、病理学的コンディにつながる可能性ション。この文脈では、翻訳因子における変異は、潜在的に、ウォルコット-Rallison症候群（PERK用EIF2AK3をコードする遺伝子）7に 、白matter&#39;（eIF2B1-5サブユニット）6を消失して、そのような`巣性白質脳症などの神経変性疾患を含むいくつかの疾患に関与してきましたパーキンソン病（eIF4G1のp.R1205H）8。それは、疾患の開発に、翻訳開始の一般的な方法で知識を高めるために、これらの変異体タンパク質の細胞および分子の試験を実施することが重要です。 これらの研究を行うためには、これらの変異の影響を観察するための最も適切なモデルを選択することが重要であるアフリカツメガエルの卵母細胞は、特によく、それらの生理学的および生化学的性質に適合されているアフリカツメガエル ：（細胞周期の位相G2にブロックされた）生理的な同期タンパク質合成の、大容量（200〜400 ngの/日/卵母細胞）、抽出されたOOCの数が多いです同じ動物からytes（800〜卵母細胞/女性）と、その操作を容易に細胞の大きさ（直径1.2〜1.4ミリメートル）。合成されたmRNAとアフリカツメガエル卵母細胞のマイクロインジェクションは簡単に翻訳手順を分析するために実施することができます。このビューでは、他の利点を提供します。減数分裂の進行の速さと翻訳のmRNAのマイクロインジェクション（〜24時間）の後を考えると、 アフリカツメガエル卵母細胞は、再構成された携帯（ 大腸菌から抽出された、小麦胚芽やウサギ網状赤血球...）システムmRNAがある、と比較して高速なシステムを表しています縮小翻訳速度とし、低速で翻訳。だから、mRNA中に導入された変異の効果はすぐに観測可能となり、簡単にいくつかの卵母細胞で研究。 アフリカツメガエル卵母細胞のもう一つの利点は、母性mRNAが潜伏しているとタンパク質翻訳がプロゲステロンの刺激の前にブロックされていることです。プロゲステロンの添加は、このように、翻訳の誘導を制御するための良い手段です。細胞質Polyadenylationは卵形成時に発生しません。これは、時間順にプロゲステロンで刺激した卵母細胞で卵成熟の間に始まり、開発の初期段階を通じて継続し、翻訳の異なる段階を研究するために使用することができます。 MOS mRNAのポリアデニル化が起こり、最初のうちであり、それはチャールズワースらに定義されている「早期成熟」遺伝子のクラスにオーロラA / Eg2の、ヒストン様B4 mRNAと属しています。（2004）9。そのようなサイクリンA1およびサイクリンB1と「後期」のmRNAの翻訳の誘導は、胚胞崩壊（GVBD）の頃に発生します。 MOS mRNAは、セリン/スレオニンプロテインキナーゼをコードします。それは間接的に卵成熟を活性化するMAPキナーゼカスケードを誘発するので、その翻訳は非常に重要です。実際には、プロゲステロンに応答して、MOS mRNAのポリアデニル化を目でオーロラA / Eg2の調節タンパク質および他のRNA結合タンパク質を伴うプロセスを介して促進されますMOS mRNAの電子3&#39;UTR。 MOS mRNAのこの増加したポリアデニル化は、次にMEK1を活性化するMOSタンパク質レベルの増加をもたらします。このプロセスは、細胞外シグナル調節キナーゼ2（ERK2）（ 図1）の活性化を媒介します。このシグナル伝達カスケードは、その後成熟M期促進因子、サイクリンBとはCdc2キナーゼによって形成された複合体をトリガーし、最終的に減数分裂再開につながることができます。 アフリカツメガエル卵母細胞したがって、そのようなMOSなどの母性mRNAの研究では、簡単にいくつかのモス、シグナリング成分もGVBD率の決意を含めての翻訳への効率的なポリアデニル化のいくつかのエンドポイントとその翻訳可能をテストするために使用することができます。このシステムは、新たに転写されたmRNAまたはトランスフェクション効率を妨害することなく、翻訳開始因子の突然変異の最初の結果を評価することは興味深いことである問題がしばしば発生してeukary耳の細胞研究。 ここでは、プロトコルは、 アフリカツメガエル卵母細胞と母性mRNAの翻訳をテストするに変異eIF4G1のmRNAが微量注入される確立されています。卵母細胞の減数分裂細胞周期を通って、初期および後期のクラスのmRNAのその後の翻訳のために進行に不可欠であるGVBD進行中の欠陥、MOSのmRNAのポリアデニル化の存在下で確認されます。リン酸化オーロラA / Eg2のおよびERKものMOS deregulation.Thusの結果を確認するために検討され、 アフリカツメガエル卵母細胞は、mRNAの翻訳の異なるステップを分析するための簡単な方法を表します。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Tricaine methane sulphonate</td>
			<td>Sandoz</td>
			<td>MS-222</td>
			<td rowspan="8">oocytes handling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Moria</td>
			<td>Dumont MC40</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Streptomycin/penicillin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>781</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium pyruvate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P2256</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Soybean trypsin inhibitor</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T9128</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetracyclin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T7660</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Veterinarian absorbable Vicryl thread</td>
			<td>Johnson&#38;Johson Intl</td>
			<td>JV1205</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase A</td>
			<td>Roche diagnostics</td>
			<td>10103586001</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PmeI</td>
			<td>New England Biolabs</td>
			<td>R0560S</td>
			<td rowspan="14">Preparation of synthetic mRNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNAse/RNAse free H2O</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>10977</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Acetate</td>
			<td>Merck</td>
			<td>6268</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Absolute ethanol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>02854</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nano Drop</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TBE 10X</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>0032006.507</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethidium bromide 10 mg/mL</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>15585-011</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mMESSAGE mMACHINE&#174; Kit</td>
			<td>Ambion by Life Technologies</td>
			<td>AM1344</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MOPS</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>M1254</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>03609</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agarose</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>16500-500</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formaldehyde 37%</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1.04003.1000</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formamide</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>47671</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gel Doc Imager</td>
			<td>Biorad</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oocyte Pipet with 100 8&#34; Glass Capillaries</td>
			<td>Drummond Scientific Company</td>
			<td>3-000-510-X</td>
			<td rowspan="4">microinjection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Replacement Glass 8&#34;</td>
			<td>Drummond Scientific Company</td>
			<td>3-000-210-G8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0,45 &#181;m filter</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SLHA025NB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Progesterone</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P0130</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hepes</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H3375</td>
			<td rowspan="32">Western Blot</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S5886</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SDS</td>
			<td>Biorad</td>
			<td>161-0301</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgCl2</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A3294</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine serum albumin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A4612</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>leupeptin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>L8511</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>aprotinin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A1153</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>benzamidine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B6506</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PMSF</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P7626</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sodium vanadate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S6508</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laemmli buffer</td>
			<td>Biorad</td>
			<td>161-0737</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NuPAGE Novex 4-12% Bis-Tris Protein Gels, 1.0 mm, 15 well</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>NP0323BOX</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SDS-PAGE electrophoresis, mini-Protean TGX</td>
			<td>Biorad</td>
			<td>456-1036 and -1096</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>horizontal semi-dry blotting system</td>
			<td>W.E.P. Compagny</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycine</td>
			<td>Biorad</td>
			<td>161-0718</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris-HCl</td>
			<td>Biorad</td>
			<td>161-0719</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hybond ECL Membrane</td>
			<td>Amersham Life Science</td>
			<td>10401180</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol</td>
			<td>VWR</td>
			<td>20846-292</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ponceau Red (0,5%)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P3504</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tween 20</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P2287</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-GFP</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>A11122</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-V5</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-58052</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-Eg2</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-27884</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-Eg2-P</td>
			<td>Cell Signaling</td>
			<td>C39D8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-ERK2</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-1647</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-ERK2-P (Tyr204)</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-7976</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-Rsk</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-231</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mos</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-86</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse horseradish peroxidase labeled secondary antibody</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-2005</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-rabbit horseradish peroxidase labeled secondary antibody</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-2812</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-goat horseradish peroxidase labeled secondary antibody</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-2378</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Advanced ECL Detection System</td>
			<td>Amershan Life Science</td>
			<td>RPN2135</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS 1x</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P4417</td>
			<td rowspan="11">polyadenylation assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRIZOL (Qiazol Lysis Reagent)</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>79306</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloroform</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>31998-8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>278475-1L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNeasy mini kit</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>74106</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RTL buffer&#160;</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>79216</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNAse free DNAse set</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>79254</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primers</td>
			<td>Eurogentec</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T4 RNA ligase 1&#160;</td>
			<td>New England Biolabs</td>
			<td>M0204S</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High capacity c-DNA Reverse Transcription kit</td>
			<td>Applied Biosystems, Life Technologies</td>
			<td>4368813</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Taq polymerase</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>10342020</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

xenopus laevis as a model to identify translation impairment

タンパク質合成は、多様な生物学的プロセスに影響を与える遺伝子発現環境条件に特に適応への基本的なプロセスです。 mRNAの開始コドン、eIF4G1含む関与の開始因子でリボソームサブユニットの組み立てを伴う開始段階、。翻訳のこの律速段階の欠陥は、多様な疾患にリンクされています。そのような規制緩和の潜在的な影響を検討するために、 アフリカツメガエル卵母細胞が、ヒトとの本質的な細胞および分子メカニズムの保全度の高い魅力的なモデルを構成しているアフリカツメガエル 。また、減数分裂成熟中に、卵母細胞は、転写抑制され、すべての必要なタンパク質は、既存の、母体由来のmRNAから翻訳されます。この安価なモデルは、効果的な翻訳と完全に統合になるために、外因性のmRNAを可能にします。ここではSTORを使用して（ここではeIF4G1）興味の率で翻訳を評価するためのプロトコルに記載されています生理的な読み出しとして、卵母細胞の成熟中にポリアデニル化および翻訳することが最初のものである母性mRNAのエド。最初に、関心のプラスミドのインビトロ転写（ここeIF4G1）によって合成さmRNAは卵核胞崩壊検出が決定されることにより、卵母細胞および卵成熟の速度で注入されます。研究母性mRNA標的は、セリン/スレオニンプロテインキナーゼモスです。そのポリアデニル化およびその後の翻訳は、卵母細胞の成熟に関与するシグナル伝達カスケードMOSのタンパク質の発現およびリン酸化と一緒に検討しています。現在のプロトコルのバリエーションが提唱する翻訳の欠陥は、その一般的な適用性を強調するために提案されています。異常なタンパク質合成は、神経疾患の病因に関与し得ることを新たな証拠に照らして、そのようなモデルは、簡単にこの障害を評価し、新たな標的を同定するための機会を提供します。

アフリカツメガエル卵母細胞とPG刺激の24時間後の割合卵母細胞GVBDの決意（ 図2B、2C）のキネティック成熟： eIF4G1-DN変異の翻訳結果を研究するために、 アフリカツメガエルにおけるPGに対する応答は（H 2 O、GFP）eIF4G1-WTおよび他の制御条件と比較されたcRNA eIF4G1-DNに微量注入した卵母細胞をアフリカツメガエル 。コントロールは?...

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Xenopus laevis as a Model to Identify Translation Impairment

Protein synthesis control occurs mainly at the translation initiation step, deficiencies in which are linked to diverse disorders. To better understand their etiology, we described here a protocol using Xenopus laevis oocytes assessing the translation of mos transcript in the presence of a mutant of translation initiation factor eIF4G1.

アフリカツメガエルは、翻訳減損を識別するためのモデルとして、 アフリカツメガエル

Protein synthesis is a fundamental process to gene expression impacting diverse biological processes notably adaptation to environmental conditions. The ...

xenopus-laevis-as-a-model-to-identify-translation-impairment

Research

JoVE Journal

Biology

Xenopus laevis as a Model to Identify Translation Impairment

10.6K ビュー.  INSERM UMR-S1172, CHRU Lille, University of Lille 1 and Lille 2. Protein synthesis control occurs mainly at the translation initiation step, deficiencies in which are linked to diverse disorders. To better understand their etiology, we described here a protocol using Xenopus laevis oocytes assessing the translation of mos transcript in the presence of a mutant of translation initiation factor eIF4G1.

ビデオ: Xenopus laevis as a Model to Identify Translation Impairment

Dissection of Organizer and Animal Pole Explants from Xenopus laevis Embryos and Assembly of a Cell Adhesion Assay

This video demonstrates the technique used for preparation of organizer and animal pole explants from Xenopus laevis embryos, including the use of the eyebrow knife - a specialized dissection tool made of one's eyebrow. The protocol for assembling an adhesion assay is also given, which probes for the presence of key adhesion molecules present on the surface organizer or animal pole cells that are critical for proper development.

アフリカツメガエルの胚および細胞接着アッセイのアセンブリから主催し、動物極の外植片の解剖

生物学

Plastic Embedding and Sectioning of Xenopus laevis Embryos

Plastic sections maintain true tissue morphology in thin sections of tissue that can be immunostained with fluorescent secondary antibodies, making this method more useful than paraffin-embedded or frozen sections for many types of tissue. The method for staining, plastic embedding, and sectioning is demonstrated in this video.

プラスチック製の埋め込みとアフリカツメガエル胚のセクショニング

Obtaining Eggs from Xenopus laevis Females

The eggs of Xenopus laevis intact, lysed, and/or fractionated are useful for a wide variety of experiments. This protocol shows how to induce egg laying, collect and dejelly the eggs, and sort the eggs to remove any damaged eggs.

The eggs of Xenopus laevis intact, lysed, and/or fractionated are useful for a wide variety of experiments. This protocol shows how to induce egg laying, collect and dejelly the eggs, and sort the eggs to remove any damaged eggs.

アフリカツメガエル女性から卵子を入手

The eggs of Xenopus laevis intact, lysed, and/or fractionated are useful for a wide variety of experiments. This protocol shows how to induce egg laying, ...

Preparation and Fractionation of Xenopus laevis Egg Extracts

Crude and fractionated Xenopus egg extracts can be used to provide ingredients for reconstituting cellular processes for morphological and biochemical analysis. Egg lysis and differential centrifugation are used to prepare the crude extract which in turn in used to prepare fractionated extracts and light membrane preparations.

Crude and fractionated Xenopus egg extracts can be used to provide ingredients for reconstituting cellular processes for morphological and biochemical analysis. Egg lysis and differential centrifugation are used to prepare the crude extract which in turn in used to prepare fractionated extracts and light membrane preparations.

アフリカツメガエル卵抽出物の調製と分画

Crude and fractionated Xenopus egg extracts can be used to provide ingredients for reconstituting cellular processes for morphological and biochemical ...

Microinjection of Xenopus Laevis Oocytes

Microinjection of Xenopus laevis oocytes followed by thin-sectioning electron microscopy (EM) is an excellent system for studying nucleocytoplasmic transport. Because of its large nucleus and high density of nuclear pore complexes (NPCs), nuclear transport can be easily visualized in the Xenopus oocyte. Much insight into the mechanisms of nuclear import and export has been gained through use of this system (reviewed by Pant&eacute;, 2006). In addition, we have used microinjection of Xenopus oocytes to dissect the nuclear import pathways of several viruses that replicate in the host nucleus. 
Here we demonstrate the cytoplasmic microinjection of Xenopus oocytes with a nuclear import substrate. We also show preparation of the injected oocytes for visualization by thin-sectioning EM, including dissection, dehydration, and embedding of the oocytes into an epoxy embedding resin. Finally, we provide representative results for oocytes that have been microinjected with the capsid of the baculovirus Autographa californica nucleopolyhedrovirus (AcMNPV) or the parvovirus Minute Virus of Mice (MVM), and discuss potential applications of the technique.

Here we demonstrate cytoplasmic microinjection of Xenopus laevis oocytes with a nuclear import substrate, as well as preparation of the injected oocytes for visualization by thin-sectioning electron microscopy.

アフリカツメガエル卵母細胞のマイクロインジェクション

Microinjection of Xenopus laevis oocytes followed by thin-sectioning electron microscopy (EM) is an excellent system for studying nucleocytoplasmic ...

Tissue Determination Using the Animal Cap Transplant (ACT) Assay in Xenopus laevis

Many proteins play a dual role in embryonic development. Those that regulate cell fate determination in a specific tissue can also affect the development of a larger region of the embryo. This makes defining its role in a particular tissue difficult to analyze. For example, noggin overexpression in Xenopus laevis embryos causes the expansion of the entire anterior region, including the eye1,2. From this result, it is not known if Noggin plays a direct role in eye determination or that by causing an expansion of neural tissue, Noggin indirectly affects eye formation. Having this complex phenotype makes studying its eye-specific role in cell fate determination difficult to analyze. We have developed an assay that overcomes this problem. Taking advantage of the pluripotent nature of the Xenopus laevis animal cap 3, we have developed an assay to test the ability of gene product(s), like noggin or the eye field transcription factors (EFTFs), to transform caps into particular tissue or cell types by transplanting this tissue onto the side of the embryo 4. While we have found either Noggin protein treatment or a collection of transcription factors can determine retinal cell fate in animal caps, this procedure could be used to identify gene product(s) involved in specifying other tissues as well.

Tissue Determination Using the Animal Cap Transplant ACT Assay in Xenopus laevis

Animal caps overexpressing gene product(s) are transplanted to the flank of developing Xenopus laevis embryos in order to establish whether tissue is determined.

でアニマルキャップの移植（ACT）アッセイを用いて組織の決定アフリカツメガエル</em

Many proteins play a dual role in embryonic development. Those that regulate cell fate determination in a specific tissue can also affect the development ...

Live-cell Imaging and Quantitative Analysis of Embryonic Epithelial Cells in Xenopus laevis

Embryonic epithelial cells serve as an ideal model to study morphogenesis where multi-cellular tissues undergo changes in their geometry, such as changes in cell surface area and cell height, and where cells undergo mitosis and migrate. Furthermore, epithelial cells can also regulate morphogenetic movements in adjacent tissues1. A traditional method to study epithelial cells and tissues involve chemical fixation and histological methods to determine cell morphology or localization of particular proteins of interest. These approaches continue to be useful and provide "snapshots" of cell shapes and tissue architecture, however, much remains to be understood about how cells acquire specific shapes, how various proteins move or localize to specific positions, and what paths cells follow toward their final differentiated fate. High resolution live imaging complements traditional methods and also allows more direct investigation into the dynamic cellular processes involved in the formation, maintenance, and morphogenesis of multicellular epithelial sheets. Here we demonstrate experimental methods from the isolation of animal cap tissues from Xenopus laevis embryos to confocal imaging of epithelial cells and simple measurement approaches that together can augment molecular and cellular studies of epithelial morphogenesis.

Live-cell Imaging and Quantitative Analysis of Embryonic Epithelial Cells in Xenopus laevis

Xenopus embryonic epithelia are an ideal model system to study cell behaviors such as polarity development and shape change during epithelial morphogenesis. Traditional histology of fixed samples is increasingly being complemented by live-cell confocal imaging. Here we demonstrate methods to isolate frog tissues and visualize live epithelial cells and their cytoskeleton using live-cell confocal microscopy.

生細胞イメージングとの胚上皮細胞の定量分析アフリカツメガエル</em

Embryonic epithelial cells serve as an ideal model to study morphogenesis where multi-cellular tissues undergo changes in their geometry, such as changes ...

Production of Xenopus tropicalis Egg Extracts to Identify Microtubule-associated RNAs

Many organisms localize mRNAs to specific subcellular destinations to spatially and temporally control gene expression. Recent studies have demonstrated that the majority of the transcriptome is localized to a nonrandom position in cells and embryos. One approach to identify localized mRNAs is to biochemically purify a cellular structure of interest and to identify all associated transcripts. Using recently developed high-throughput sequencing technologies it is now straightforward to identify all RNAs associated with a subcellular structure. To facilitate transcript identification it is necessary to work with an organism with a fully sequenced genome. One attractive system for the biochemical purification of subcellular structures are egg extracts produced from the frog Xenopus laevis. However, X. laevis currently does not have a fully sequenced genome, which hampers transcript identification. In this article we describe a method to produce egg extracts from a related frog, X. tropicalis, that has a fully sequenced genome. We provide details for microtubule polymerization, purification and transcript isolation. While this article describes a specific method for identification of microtubule-associated transcripts, we believe that it will be easily applied to other subcellular structures and will provide a powerful method for identification of localized RNAs.

Production of Xenopus tropicalis Egg Extracts to Identify Microtubule-associated RNAs

We describe the collection of unfertilized Xenopus tropicalis eggs and production of a meiosis II-arrested egg extract. This egg extract can be used to purify microtubules and microtubule-associated RNAs.

の生産<em&gt;アフリカツメガエルトロピカ</em微小管関連RNAを識別するために、&gt;卵抽出

Many  organisms localize mRNAs to specific subcellular destinations to spatially and  temporally control gene expression. Recent studies have demonstrated ...

Facial Transplants in Xenopus laevis Embryos

Craniofacial birth defects occur in 1 out of every 700 live births, but etiology is rarely known due to limited understanding of craniofacial development. To identify where signaling pathways and tissues act during patterning of the developing face, a 'face transplant' technique has been developed in embryos of the frog Xenopus laevis. A region of presumptive facial tissue (the "Extreme Anterior Domain" (EAD)) is removed from a donor embryo at tailbud stage, and transplanted to a host embryo of the same stage, from which the equivalent region has been removed. This can be used to generate a chimeric face where the host or donor tissue has a loss or gain of function in a gene, and/or includes a lineage label. After healing, the outcome of development is monitored, and indicates roles of the signaling pathway within the donor or surrounding host tissues. Xenopus is a valuable model for face development, as the facial region is large and readily accessible for micromanipulation. Many embryos can be assayed, over a short time period since development occurs rapidly. Findings in the frog are relevant to human development, since craniofacial processes appear conserved between Xenopus and mammals.

Facial Transplants in Xenopus laevis Embryos

A technique for transplanting "Extreme Anterior Domain" facial tissue between Xenopus laevis embryos has been developed. Tissue can be moved from one gene expression background into another, allowing the study of local requirements for craniofacial development and for signaling interactions between facial regions.

顔面移植<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;胚

Craniofacial birth defects occur in 1 out of every 700 live births, but etiology is rarely known due to limited understanding of craniofacial development. ...

Using plusTipTracker Software to Measure Microtubule Dynamics in Xenopus laevis Growth Cones

Microtubule (MT) plus-end-tracking proteins (+TIPs) localize to the growing plus-ends of MTs and regulate MT dynamics1,2. One of the most well-known and widely-utilized +TIPs for analyzing MT dynamics is the End-Binding protein, EB1, which binds all growing MT plus-ends, and thus, is a marker for MT polymerization1. Many studies of EB1 behavior within growth cones have used time-consuming and biased computer-assisted, hand-tracking methods to analyze individual MTs1-3. Our approach is to quantify global parameters of MT dynamics using the software package, plusTipTracker4, following the acquisition of high-resolution, live images of tagged EB1 in cultured embryonic growth cones5. This software is a MATLAB-based, open-source, user-friendly package that combines automated detection, tracking, visualization, and analysis for movies of fluorescently-labeled +TIPs. Here, we present the protocol for using plusTipTracker for the analysis of fluorescently-labeled +TIP comets in cultured Xenopus laevis growth cones. However, this software can also be used to characterize MT dynamics in various cell types6-8.

Using plusTipTracker Software to Measure Microtubule Dynamics in Xenopus laevis Growth Cones

The MATLAB-based, open source software package, plusTipTracker, can be used to analyze image series of fluorescently-labeled +TIPs to quantify microtubule dynamics.

で微小管ダイナミクスを測定するためにplusTipTrackerソフトウェアを使用した<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;成長円錐

Microtubule (MT) plus-end-tracking proteins (+TIPs) localize to the growing plus-ends of MTs and regulate MT dynamics1,2. One of the most well-known and ...

アフリカツメガエルは、翻訳減損を識別するためのモデルとして、 アフリカツメガエル

アフリカツメガエルは、翻訳減損を識別するためのモデルとして、アフリカツメガエル