この記事で紹介した方法は、BBSRC BB / I021507 / 1（TB、RJTW）から資金提供を受け、仕事とMRC博士学生の身分（MH）から生じました。

注意：全ての実験は、キングスカレッジロンドン、英国、英国内務省動物保護ガイドラインに基づいて実施しました。 E14小脳の1解剖<ol><li>胚14日目に38℃で茶色の受精鶏卵をインキュベートします。 </li><li>卵のはさみを使用すると、 卵内ニワトリ胚を刎ねると氷冷PBS（ 図1A）を含むペトリ皿に頭を削除します。 </li><li>標準の鉗子を使用して、目と上顎の除去、組織を通ってそれぞれの目の後ろにすべての方法を切開を行います。すべての方法下顎（ 図1B）を除去咽頭を介して第2の切開を行います。 </li><li>標準の鉗子を使用して、（ 図1C）を 、それを剥がすことにより、頭蓋骨の表面からすべての皮膚を除去し、前頭葉と頭頂骨を削除し、脳を明らかにする。 </li><li>腹側面から、咽頭軟骨と補助間葉を削除します。 </li><li>背側面から、慎重にLY軟膜を損傷しないように注意しながら後脳、独立した脳全体（ 図1D）に間充織の背側を削除します。 </li><li>すべての方法中脳と後脳と小脳（ 図1E）を含む別々の後脳の間の組織を通して切開を行います。 </li><li>すべての方法小脳および後脳の翼板の両側接合部で組織を通って切開を行うことにより、解剖を通してPIAの整合性（ 図1F）を維持するために注意しながら、全体の小脳を削除します。形成脈絡叢（ 図1G）を取り外します。 </li><li>氷冷HBSSに解剖小脳を移動します。 </li></ol> E14小脳の2スライス培養<ol><li>開口部を広げるために切り取ら先端でヘラまたは3ミリリットルパスツールピペットを用いて組織チョッパーの無菌プラットフォームに全体小脳を転送します。ピペットを用いて余分な液体を除去します。 </li><li>トンで全体の全体小脳をカット彼は最大の50％で切削速度で設定組織チョッパーを用いて300μmの厚さで向きを必要としました。組織の完全性は、最も簡単に矢状セクションに保存されます。しかしながら、配向はまた、細胞分析のための重要な考慮事項（顆粒細胞の軸索は、プルキンエ細胞の樹状突起の平面に垂直な、横方向に実行しつつ、プルキンエ細胞の樹状突起はサジタル、整列されている）です。 </li><li> 3ミリリットルパスツールピペットを用いて、氷でスライスした小脳冷HBSSをカバーしています。 </li><li>カットチップを3ミリリットルパスツールピペットを用いて、氷冷新鮮なHBSSを含む60ミリメートルペトリ皿にHBSS中のスライスを転送します。 </li><li>光ファイバー光源で照明解剖顕微鏡下で、時計メーカーの鉗子を使用して、個々のスライスの分離を確保します。スライスが自分の組織の完全性および内外方向の位置に基づいて、エレクトロポレーションすることが確認します。 注：培養培地中でのインキュベーションをスライスに至るまで胚からの各解剖は約10〜20分間応じUPOを取りますn個の経験。その小脳を確保するために、一度に解剖いずれかを実行は、断頭し、ex vivoでの文化の間の最小時間を費やしています。 </li></ol>スライスの3エレクトロポレーション<ol><li>絶縁テープと60ミリメートルペトリ皿のベースにエレクトロのアノードを固定することにより、エレクトロポレーションチャンバーを構築します。電極を覆うHBSSの約1ミリリットルを追加します。 </li><li> HBSS中で覆われた電極の上に0.4μmのカルチャーインサートを置きます。カルチャーインサートは、必ずインサートと電極との接触が常にある作る電極上に載るようにします。 注：この設定では、スライスを持つカルチャーインサートは、回路を維持するが、カソードの空間的な標的化を可能にする、溶液の表面に載るます。 </li><li>転送特定されたスライス（培養インサートあたり最大5つの）カットの先端で3ミリリットルのパスツールピペットを用いて培養インサート上に。セパレートとsagitt培養インサート上に決済することができアル方向。 </li><li>スライスがもはや溶液中に浸されるようにピペットを用いて、過剰のHBSSを削除しません。 </li><li>スライスの標的領域の表面に20％速いグリーンで希釈した（1μg/μlの濃度で）P10ピペットチップ、ピペットDNAを使用。 20％速いグリーンは、粘性DNA溶液を保証し、法外DNAの広い分散を防ぐことができます。各スライス（ 図2B）に約5μlのDNA /ファストグリーンソリューションを追加します。 </li><li>希望の標的組織の上に陰極を配置し、3×10 V、10ミリ秒持続時間のパルスでエレクトロポレーション。組織と陰極の直接の接触を避けてください。代わりに、（実際に組織に触れることなく、可能な限り組織の近くに陰極を配置）伝導性を維持するために、液体の表面張力を利用します。 </li><li>必要に応じて、それぞれの個々の小脳スライスにEGLの複数の領域にDNA送達およびエレクトロポレーションを繰り返します。 </li><li>エレクトロポレーションが完了すると、転送培養inse30ミリメートルペトリ皿に室温。 </li><li>各培養物に、予め温めた培養培地1mlを加える（基礎培地イーグル、0.5％（w / v）のD - （+） - グルコース、1％のB27サプリメント、2mMのL-グルタミン、100 U / mlペニシリン、カルチャーインサート媒体と接触しているが、スライスは、それを浴びないように培養インサートの下に100μg/ mlのストレプトマイシン）。 </li><li>最大3日間37℃/ 6％CO 2で培養物をインキュベートします。培地新鮮予め温めた培地を用いて24時間毎の全てを交換してください。 </li><li>文化に続いて、文化上のスライスを修正することはありません培養培地と新鮮な30ミリメートル皿に4％パラホルムアルデヒド（または4℃でO / N）で1時間挿入します。 </li></ol>小脳スライスの4イメージング<ol><li>固定後、PBSで5分間、切片を3回洗浄します。 </li><li>かみそりの刃を使用して、スライスの周りに切断及びスライスし、それが接着されているインサートの領域を除去することにより培養インサートからそれぞれのエレクトロ培養小脳スライスを分析。行うカルチャーインサート表面からスライスを削除しようとしません。 </li><li>レーザー走査型共焦点顕微鏡を用いてマウント気泡を導入しないように注意しながら、カバースリップ下（必要な場合）、DAPIを含む封入剤の約1ミリリットル中のスライス、および画像。 注：イメージングパラメータは、エレクトロポレーションの構築に応じて変化し、個々のユーザーの裁量ですることができます。 </li></ol>

The authors have nothing to disclose.

ここで報告プロトコルは、解剖電気穿孔とひよこから胚14日目小脳のスライスを培養するための方法を説明します。このプロトコルは、個々の小脳ローブの孤立したターゲティングを含むEGLの小さな焦点領域にエレクトロポレーションのターゲティングが可能。これは、高解像度と利便性で遺伝子解析とイメージングを可能にし、低コストでげっ歯類43-47で確立された技術と比較。こ?...

小脳は、後脳の前方端に座って、成熟した脳内の感覚と運動処理の統合を担当するだけでなく、高い認知過程1を規制です。哺乳類や鳥類では、成人の脳におけるニューロンの半分以上が生産する開発中に、前駆細胞の大規模なトランジット増幅の産物を精巧な形態を有し、重く葉状されます。小脳は、何世紀にもわたって、および分子時代の神経生物学者のための調査の対象となっている、同様に重要な注目を集めています。これは、本質的に興味深い生物学だけでなく、それが頻繁にそのような最も一般的な小児の脳である自閉症スペクトラム障害2と最も顕著に小脳癌、髄芽腫3、などの発達の遺伝的障害を含む、ヒトの疾患に関与しているという事実だけでなく、関連します腫瘍。重要なことは、WH内の優れたモデル系でありますICHは、脳の発達4中に運命の割り当てと神経新生を研究します。近年では、それはまた、脊椎動物系統5-10横切っ見小脳形態の巨大な多様性のために、脳の発達の比較研究のためのモデル系として確立されています。 小脳は、後脳11でrhombomere 1の背側半分から発達と発達二つの主要な前駆細胞集団、菱形リップと脳室帯から構成されています。菱形リップは、屋根板との国境で後脳の神経上皮の背部の周りに延びます。これは、小脳12-14のグルタミン酸作動性ニューロン興奮性の発祥の地です。脳室帯は最も顕著に抑制GABA作動性小脳ニューロン、大プルキンエニューロン14,15を生じさせます。その後、開発中（マウスでは約胎生13.5から、ひよこ16でE6）、グルタミン酸作動PROGENitorsは菱形リップから接線方向に移動して、前駆細胞の軟膜層を形成：二前駆ゾーンは外部顆粒層（EGL）と呼ばれます。これは、成熟した脳で見つかった顆粒ニューロンの膨大な数につながる大規模なトランジット増幅を受け、この層です。 EGLでの増殖は、長い細胞周期出口に切り替え、中央に外側EGL層からの出口に関連している前駆細胞の神経分化と、菱形リップ 17から接線方向の移行から得られるサブ軟膜の場所にリンクされていますEGL 18。内側-外側軸における有糸分裂後の顆粒細胞の広範な接線方向の移行は、成熟した小脳皮質の内側顆粒層への最終的な放射状の移行前に、ミドルとインナーEGL 19で発生します。小脳表面上の菱形リップからの細胞の移動は、軟膜20-22からCXCL12シグナリングに依存しています</sup&gt;と顆粒細胞は、CXCL12受容体CXCR4を発現します。彼らの接線方向の移行は、このような阻害介在ニューロン集団に23-25 ​​の移行新皮質の接線方向のそれを彷彿とさせます。興味深いことに、電子顕微鏡の研究17は、増殖形態を持つEGL細胞が哺乳類の大脳皮質26の基底前駆細胞を連想させるようにして増殖能力を有する細胞の挙動を結ぶ、軟膜の接触を維持することを示唆しています。これは、個別の細胞外環境によって定義され、顆粒の前駆体は、異なる遺伝子発現シグネチャ18を持っているされている3つの副層へのEGLの前述の層別化に反映されています。 oEGLにおける前駆細胞の増殖は、前駆細胞を個別に遺伝的にマウスでは胚発生の末端で標識されたとき、彼らは250〜500グラムの有糸分裂後の中央値の平均を生じさせるようなクローンサイズの正規分布で発生ranuleニューロン27,28。増殖は、プルキンエニューロン29-32の根底にあるから分裂促進Shhシグナル伝達に依存しています。 SHHに応答する能力は 、in vitro およびin vivo 33 34,35 の両方において 、転写因子のAtoh1の細胞自律的な発現に完全に依存することが示されています。同様に、細胞周期の出口と分化は、おそらくのAtoh1 37の直接のリプレッサーである下流の転写因子NeuroD1 36の発現に依存することが示されています。 細胞周期出口38〜42の細胞生物学的基礎を解読で、この進歩し、かなりの進歩にもかかわらず、意思決定の根底にある基本的な分子機構（複数可）は、細胞周期を終了し、差別化ニューロンへの前駆から移行すること、およびインナーEGLならびに後、スイッチの関連する有糸分裂後の接線方向の移行ラジアル移行に、完全には理解のまま。これは、EGLの実験的扱いにくさの大部分は次のとおりです。同じ神経性分子の多くが菱形リップで以前顆粒前駆体の生活の中でも極めて重要であるため、それが遅れて開発している、と遺伝的に標的にすることは困難。この問題を克服するために、多数の著者は、げっ歯類43-48で出生後の小脳を対象とする方法として in vivo および ex vivoエレクトロポレーションで開発しています。ここでは、コストと利便性の面で顕著な利点を表すEGLを研究するために、ニワトリにex vivoでのエレクトロポレーションの使用を開拓します。私たちのエレクトロポレーションの方法とひよこのex vivoでのスライス培養小脳組織は、EGLの増殖のピークで組織胚の日から解剖14雛を使用しています。この方法は、独立して菱形リップのEGLの遺伝子ターゲティングを可能にし、顆粒からの移行の遺伝的解剖のための段階を設定します小脳における分裂停止後の顆粒ニューロンの前駆。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="573">
	<tbody>
		<tr height="105">
			<td height="105" style="height:105px;width:216px;">McIlwain tissue chopper</td>
			<td style="width:71px;">Mickle Laboratory Engineering Ltd</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Cut at 300&#956;m for best results.</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Basal Medium Eagle (Gibco)</td>
			<td style="width:71px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:119px;">41010-026</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">L-glutamine</td>
			<td style="width:71px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">G7513</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">penicillin/streptomycin</td>
			<td style="width:71px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">P4333</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">0.4&#956;m culture insert</td>
			<td style="width:71px;">Millipore</td>
			<td>PICM0RG50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">TSS20 Ovodyne electroporator&#160;</td>
			<td style="width:71px;">Intracel</td>
			<td style="width:119px;">01-916-02</td>
			<td>Use 3x10v, 10ms pulses for electroporation.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

ex vivo culture of chick cerebellar slices and spatially targeted electroporation of granule cell precursors

小脳外顆粒層（EGL）は、脳の発達で最大のトランジット増幅のサイト、および神経増殖および分化を研究するための優れたモデルです。また、その増殖能力の進化の変更は、小脳脊椎動物の脳のEVO-DEVO研究のための優れたモデルを作り、羊膜における小脳のサイズの劇的な拡大を担当しています。 EGLを構成する細胞は、小脳顆粒前駆細胞は、また、髄芽腫のための最も一般的な小児神経腫瘍の起源の有意な細胞を表します。トランジット増幅後、顆粒の前駆体は、彼らが成熟した哺乳動物の脳における最大のニューロン集団を表す小脳の内部顆粒層に半径方向に移動します。ひよこでは、EGLの増殖のピークは妊娠の第2週の終わりに向かって発生します。この層での遺伝子改変を標的とするために増殖のピークは、我々は、胚14日目のニワトリ胚から小脳スライスのex vivoでのエレクトロポレーションを介して、遺伝子操作のための方法を開発しました。この方法は、 インビボでの顆粒ニューロンの発達のいくつかの重要な局面を再現すると、小脳顆粒細胞の増殖および分化の、ひいては小脳の開発、展開、および疾患の完全な理解を生成するのに有用であろう。

このセクションでは、胚の14日目のニワトリからスライスエレクトロポレーションおよび小脳の文化を使用して得ることができる結果の例を示します。小脳の解剖は 、図1に示され、セットアップのエレクトロポレーションチャンバーは、図2に示されている。我々は、それが成功したin vitroで （ 図3A）、その構...

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Ex Vivo Culture of Chick Cerebellar Slices and Spatially Targeted Electroporation of Granule Cell Precursors

小脳外顆粒層は、脳の発達で最大のトランジット増幅のサイトです。ここでは、胚の14日目のニワトリ胚からex vivoでエレクトロポレーションおよび小脳スライスの文化を使用して、増殖のピーク時にこの層に遺伝子改変をターゲットにするプロトコルを提示します。

チック小脳スライスと顆粒細胞前駆体の空間的にターゲットを絞ったエレクトロポレーションの ex vivo培養

The cerebellar external granule layer (EGL) is the site of the largest transit amplification in the developing brain, and an excellent model for studying ...

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ex Vivo Culture of Chick Cerebellar Slices and Spatially Targeted Electroporation of Granule Cell Precursors

9.2K ビュー.  King's College London. 小脳外顆粒層は、脳の発達で最大のトランジット増幅のサイトです。ここでは、胚の14日目のニワトリ胚からex vivoでエレクトロポレーションおよび小脳スライスの文化を使用して、増殖のピーク時にこの層に遺伝子改変をターゲットにするプロトコルを提示します。 

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Efficient Gene Transfer in Chick Retinas for Primary Cell Culture Studies: An Ex-ovo Electroporation Approach

The cone photoreceptor-enriched cultures derived from embryonic chick retinas have become an indispensable tool for researchers around the world studying the biology of retinal neurons, particularly photoreceptors. The applications of this system go beyond basic research, as they can easily be adapted to high throughput technologies for drug development. However, genetic manipulation of retinal photoreceptors in these cultures has proven to be very challenging, posing an important limitation to the usefulness of the system. We have recently developed and validated an ex&#160;ovo plasmid electroporation technique that increases the rate of transfection of retinal cells in these cultures by five-fold compared to other currently available protocols1. In this method embryonic chick eyes are enucleated at stage 27, the RPE is removed, and the retinal cup is placed in a plasmid-containing solution and electroporated using easily constructed custom-made electrodes. The retinas are then dissociated and cultured using standard procedures. This technique can be applied to overexpression studies as well as to the downregulation of gene expression, for example via the use of plasmid-driven RNAi technology, commonly achieving transgene expression in 25% of the photoreceptor population. The video format of the present publication will make this technology easily accessible to researchers in the field, enabling the study of gene function in primary retinal cultures. We have also included detailed explanations of the critical steps of this procedure for a successful outcome and reproducibility.

Efficient Gene Transfer in Chick Retinas for Primary Cell Culture Studies: An Ex-ovo Electroporation Approach

Embryonic chick retinal cell cultures constitute valuable tools for the study of photoreceptor biology. We have developed an efficient gene transfer technique based on ex&#160;ovo plasmid electroporation of the retinas prior to culture. This technique considerably increases transfection efficiencies over currently available protocols, making genetic manipulation feasible for this system.

初代細胞培養研究のためのひよこ網膜における効率的な遺伝子導入：<em&gt;元オボ</em&gt;エレクトロポレーションアプローチ

The cone photoreceptor-enriched cultures derived from embryonic chick retinas have become an indispensable tool for researchers around the world studying ...

発生生物学

Optimized Ex-ovo Culturing of Chick Embryos to Advanced Stages of Development

Research in anatomy, embryology, and developmental biology has largely relied on the use of model organisms. In order to study development in live embryos model organisms, such as the chicken, are often used. The chicken is an excellent model organism due to its low cost and minimal maintenance, however they present observational challenges because they are enclosed in an opaque eggshell. In order to properly view the embryo as it develops, the shell must be windowed or removed. Both windowing and ex ovo techniques have been developed to assist researchers in the study of embryonic development. However, each of the methods has limitations and challenges. Here, we present a simple, optimized ex ovo culture technique for chicken embryos that enables the observation of embryonic development from stage HH 19 into late stages of development (HH 40), when many organs have developed. This technique is easy to adopt in both undergraduate classes and more advanced research laboratories where embryo manipulations are conducted.

Optimized Ex-ovo Culturing of Chick Embryos to Advanced Stages of Development

Viewing and accessing the chicken embryo during development can be challenging. We have developed an ex ovo method that is simple, cost effective, and can easily be used in a classroom or research setting. This method provides access to the embryo into late stages of embryonic development (HH 40).

最適化された<em&gt;元OVO</em&gt;開発の進んだ段階にニワトリ胚の培養

Research in anatomy, embryology, and developmental biology has largely relied on the use of model organisms. In order to study development in live embryos ...

Ex Utero Electroporation and Organotypic Slice Culture of Mouse Hippocampal Tissue

Mouse genetics offers a powerful tool determining the role of specific genes during development. Analyzing the resulting phenotypes by immunohistochemical and molecular methods provides information of potential target genes and signaling pathways. To further elucidate specific regulatory mechanisms requires a system allowing the manipulation of only a small number of cells of a specific tissue by either overexpression, ablation or re-introduction of specific genes and follow their fate during development. To achieve this ex utero electroporation of hippocampal structures, especially the dentate gyrus, followed by organotypic slice culture provides such a tool. Using this system to generate mosaic deletions allows determining whether the gene of interest regulates cell-autonomously developmental processes like progenitor cell proliferation or neuronal differentiation. Furthermore it facilitates the rescue of phenotypes by re-introducing the deleted gene or its target genes. In contrast to in utero electroporation the ex utero approach improves the rate of successfully targeting deeper layers of the brain like the dentate gyrus. Overall ex utero electroporation and organotypic slice culture provide a potent tool to study regulatory mechanisms in a semi-native environment mirroring endogenous conditions.

Ex Utero Electroporation and Organotypic Slice Culture of Mouse Hippocampal Tissue

Here we present a protocol providing a tool to examine regulatory mechanisms of specific genes during hippocampal development. Employing ex utero electroporation and organotypic slice culture allows the up- and down-regulation of the expression of genes of interest in single cells and follow their fate during development.

子宮外エレクトロポレーションおよびマウスの海馬組織の器官型スライス培養

Mouse genetics offers a powerful tool determining the role of specific genes during development. Analyzing the resulting phenotypes by immunohistochemical ...

Ex Vivo Culture of Pharyngeal Arches to Study Heart and Muscle Progenitors and Their Niche

The pharyngeal mesoderm of developing embryos contributes to broad regions of head and heart musculature. We have developed a novel method to study head and heart progenitor cell development with pharyngeal arches (also known as branchial arches) ex vivo. Using this method, we have recently described that the second pharyngeal arch contains self-renewing heart progenitors and serves as a microenvironment for expansion of the progenitors during mouse heart development. The progenitor cells remain undifferentiated and expansive inside the arch, but quickly become functional cardiomyocytes as they migrate out of the arch. We also reported that first pharyngeal arch contains muscle progenitors giving rise to myotubes after leaving the arch. Here, we demonstrate the procedure for the dissection and ex vivo culture of first and second pharyngeal arches from developing mouse embryos. The method enables one to study head and heart progenitor/muscle development, including cardiomyocyte and myotube formation in detail ex vivo.

Ex Vivo Culture of Pharyngeal Arches to Study Heart and Muscle Progenitors and Their Niche

Here, we present a protocol to culture pharyngeal arches to study the biology of heart and muscle progenitor cells and their microenvironment.

咽頭アーチのex vivo培養は、ハートと筋前駆細胞とそのニッチを研究します

The pharyngeal mesoderm of developing embryos contributes to broad regions of head and heart musculature. We have developed a novel method to study head ...

Forward Genetic Approach to Uncover Stress Resistance Genes in Mice &#8212; A High-throughput Screen in ES Cells

Phenotype-driven genetic screens in mice is a powerful technique to uncover gene functions, but are often hampered by extremely high costs, which severely limits its potential. We describe here the use of mouse embryonic stem (ES) cells as surrogate cells to screen for a phenotype of interest and subsequently introduce these cells into a host embryo to develop into a living mouse carrying the phenotype. This method provides (1) a cost effective, high-throughput platform for genetic screen in mammalian cells; (2) a rapid way to identify the mutated genes and verify causality; and (3) a short-cut to develop mouse mutants directly from these selected ES cells for whole animal studies. We demonstrated the use of paraquat (PQ) to select resistant mutants and identify mutations that confer oxidative stress resistance. Other stressors or cytotoxic compounds may also be used to screen for resistant mutants to uncover novel genetic determinants of a variety of cellular stress resistance.

Forward Genetic Approach to Uncover Stress Resistance Genes in Mice &amp;#8212; A High-throughput Screen in ES Cells

Stress resistance is one of the hallmarks for longevity and is known to be genetically governed. Here, we developed an unbiased high-throughput method to screen for mutations that confer stress resistance in ES cells with which to develop mouse models for longevity studies.

ES細胞におけるハイスループットスクリーニングを - マウスにおけるストレス抵抗性遺伝子を明らかにフォワード遺伝的アプローチ

Phenotype-driven genetic screens in mice is a powerful technique to uncover gene functions, but are often hampered by extremely high costs, which severely ...

Epicardial Outgrowth Culture Assay and Ex Vivo Assessment of Epicardial-derived Cell Migration

A single layer of epicardial cells lines the heart, providing paracrine factors that stimulate cardiomyocyte proliferation and directly contributing cardiovascular progenitors during development and disease. While a number of factors have been implicated in epicardium-derived cell (EPDC) mobilization, the mechanisms governing their subsequent migration and differentiation are poorly understood. Here, we present in vitro and ex vivo strategies to study EPDC motility and differentiation. First, we describe a method of obtaining primary epicardial cells by outgrowth culture from the embryonic mouse heart. We also introduce a detailed protocol to assess three-dimensional migration of labeled EPDC in an organ culture system. We provide evidence using these techniques that genetic deletion of myocardin-related transcription factors in the epicardium attenuates EPDC migration. This approach serves as a platform to evaluate candidate modifiers of EPDC biology and could be used to develop genetic or chemical screens to identify novel regulators of EPDC mobilization that might be useful for cardiac repair.

Epicardial Outgrowth Culture Assay and Ex Vivo Assessment of Epicardial-derived Cell Migration

Here, we describe methods for isolating primary mouse epicardial cells by an outgrowth culture assay and assessing the functional migration of epicardial-derived cells (EPDC) using an ex vivo heart culture system. These protocols are suitable for identifying genetic and chemical modulators of epicardial epithelial-to-mesenchymal transition (EMT) and motility.

心外膜の伸長文化検定と<em&gt; ex vivoで</em&gt;心外膜由来の細胞移動の評価

A single layer of epicardial cells lines the heart, providing paracrine factors that stimulate cardiomyocyte proliferation and directly contributing ...

Clonal Analysis of Embryonic Hematopoietic Stem Cell Precursors Using Single Cell Index Sorting Combined with Endothelial Cell Niche Co-culture

The ability to study hematopoietic stem cell (HSC) genesis during embryonic development has been limited by the rarity of HSC precursors in the early embryo and the lack of assays that functionally identify the long-term multilineage engraftment potential of individual putative HSC precursors. Here, we describe methodology that enables the isolation and characterization of functionally validated HSC precursors at the single cell level. First, we utilize index sorting to catalog the precise phenotypic parameter of each individually sorted cell, using a combination of phenotypic markers to enrich for HSC precursors with additional markers for experimental analysis. Second, each index-sorted cell is co-cultured with vascular niche stroma from the aorta-gonad-mesonephros (AGM) region, which supports the maturation of non-engrafting HSC precursors to functional HSC with multilineage, long-term engraftment potential in transplantation assays. This methodology enables correlation of phenotypic properties of clonal hemogenic precursors with their functional engraftment potential or other properties such as transcriptional profile, providing a means for the detailed analysis of HSC precursor development at the single cell level.

Here we present methodology for the clonal analysis of hematopoietic stem cell precursors during murine embryonic development. We combine index sorting of single cells from the embryonic aorta-gonad-mesonephros region with endothelial cell co-culture and transplantation to characterize the phenotypic properties and engraftment potential of single hematopoietic precursors.

並べ替え内皮細胞ニッチ共培養と組み合わせて 1 つのセル インデックスを使用して胚性造血幹細胞前駆体のクローン解析

The ability to study hematopoietic stem cell (HSC) genesis during embryonic development has been limited by the rarity of HSC precursors in the early ...

CRISPR-mediated Loss of Function Analysis in Cerebellar Granule Cells Using In Utero Electroporation-based Gene Transfer

Brain malformation is often caused by genetic mutations. Deciphering the mutations in patient-derived tissues has identified potential causative factors of the diseases. To validate the contribution of a dysfunction of the mutated genes to disease development, the generation of animal models carrying the mutations is one obvious approach. While germline genetically engineered mouse models (GEMMs) are popular biological tools and exhibit reproducible results, it is restricted by time and costs. Meanwhile, non-germline GEMMs often enable exploring gene function in a more feasible manner. Since some brain diseases (e.g., brain tumors) appear to result from somatic but not germline mutations, non-germline chimeric mouse models, in which normal and abnormal cells coexist, could be helpful for disease-relevant analysis. In this study, we report a method for the induction of CRISPR-mediated somatic mutations in the cerebellum. Specifically, we utilized conditional knock-in mice, in which Cas9 and GFP are chronically activated by the CAG (CMV enhancer/chicken &#223;-actin) promoter after Cre-mediated recombination of the genome. The self-designed single-guide RNAs (sgRNAs) and the Cre recombinase sequence, both encoded in a single plasmid construct, were delivered into cerebellar stem/progenitor cells at an embryonic stage using in utero electroporation. Consequently, transfected cells and their daughter cells were labeled with green fluorescent protein (GFP), thus facilitating further phenotypic analyses. Hence, this method is not only showing electroporation-based gene delivery into embryonic cerebellar cells but also proposing a novel quantitative approach to assess CRISPR-mediated loss-of-function phenotypes.

CRISPR-mediated Loss of Function Analysis in Cerebellar Granule Cells Using In Utero Electroporation-based Gene Transfer

Conventional loss-of-function studies of genes using knockout animals have often been costly and time-consuming. Electroporation-based CRISPR-mediated somatic mutagenesis is a powerful tool to understand gene functions in vivo. Here, we report a method to analyze knockout phenotypes in proliferating cells of the cerebellum.

CRISPR を介した損失関数における小脳顆粒細胞のエレクトロポレーション法による遺伝子導入の子宮内を使用して

Brain malformation is often caused by genetic mutations. Deciphering the mutations in patient-derived tissues has identified potential causative factors ...

Ex Vivo Perfusion of the Rodent Placenta

The placenta is a key organ during pregnancy that serves as a barrier to fetal xenobiotic exposure and mediates the exchange of nutrients for waste. An assay is described here to perfuse an isolated rat placenta and evaluate the maternal-to-fetal translocation of xenobiotics ex vivo. In addition, the evaluation of physiological processes such as fluid flow to the fetus and placental metabolism may be conducted with this methodology. This technique is suitable for evaluating maternal-to-fetal kinetics of pharmaceutical candidates or environmental contaminants. In contrast to current alternative approaches, this methodology allows the evaluation of the isolated maternal-fetal vasculature, with the systemic neural or immune involvement removed, allowing any observed changes in physiological function to be attributable to local factors within the isolated tissue.

Here is presented a protocol of ex vivo maternal-fetal vascular perfusion to enable the administration of a test article into maternal vasculature and to evaluate placental transfer of xenobiotic particles or pharmacological agents in addition to alterations in placental physiology.

げっ歯類胎盤の Ex 生体灌流

The placenta is a key organ during pregnancy that serves as a barrier to fetal xenobiotic exposure and mediates the exchange of nutrients for waste. An ...

Electroporation Method for In Vivo Delivery of Plasmid DNA in the Adult Zebrafish Telencephalon

Electroporation is a transfection method in which an electrical field is applied to cells to create temporary pores in a cell membrane and increase its permeability, thereby allowing different molecules to be introduced to the cell. In this paper, electroporation is used to introduce plasmids to ependymoglial cells, which line the ventricular zone of the adult zebrafish telencephalon. A fraction of these cells shows stem cell properties and generates new neurons in the zebrafish brain; therefore, studying their behavior is essential to determine their roles in neurogenesis and regeneration. The introduction of plasmids via electroporation enables long-term labeling and tracking of a single ependymoglial cell. Furthermore, plasmids such as Cre recombinase or Cas9 can be delivered to single ependymoglial cells, which enables gene recombination or gene editing and provides a unique opportunity to assess the cell&#8217;s autonomous gene function in a controlled, natural environment. Finally, this detailed, step-by-step electroporation protocol is used to obtain successful introduction of plasmids into a large number of single ependymoglial cells.

Presented here is an electroporation method for plasmid DNA delivery and ependymoglial cell labeling in the adult zebrafish telencephalon. This protocol is a quick and efficient method to visualize and trace individual ependymoglial cells and opens up new possibilities to apply electroporation to a broad range of genetic manipulations.

成体ゼブラフィッシュテレンスファロンにおけるプラスミドDNAの生体内送達に関するエレクトロポレーション法

Electroporation is a transfection method in which an electrical field is applied to cells to create temporary pores in a cell membrane and increase its ...