Name: preparation and applications of organotypic thymic slice cultures
Uploaded: 2016-08-06T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 10 s
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We would like to thank Marilaine Fournier for her comments on the manuscript and Jos&#233;e Tessier for technical assistance. C57BL/6-Tg (OT-I)-RAG1&lt;tmMom&gt; #4175 were obtained through the NIAID Exchange Program, NIH. Support for this research is provided by a grant from the SickKids Foundation and CIHR-IHDCYN (NI15-002), an operating grant from the CIHR-III (MOP-142254), and start-up funds from the FRQS (&#201;tablissement de jeunes chercheurs) and H&#244;pital Maisonneuve-Rosemont Foundation to HJM. HJM is a junior 1 scholar of the FRQS, a CIHR New Investigator (MSH-141967), and a Cole Foundation Early Career Transition award recipient.

Hôpitalメゾヌーブ-ローズモント - すべての動物実験のためのプロトコルは、センターデRECHERCHEで動物実験委員会によって承認されました。 胸腺スライスや単一細胞懸濁液の調製のための1収穫マウス胸腺<ol><li>頸椎脱臼に続いてCO 2でマウスを安楽死させます。 </li><li>層流フードでは、解剖ボードにマウス腹側をピンアップ。 70％エタノールでマウスをスプレーします。胸腔に入ると組織を損傷からエタノールを防ぐために、ガーゼで軽くたたくことによって、任意の過剰のアルコールを除去します。 </li><li>ピンセットで胸骨の基部に皮膚を持ち上げ、皮膚を介してカットをします。各前肢に上向きに皮膚のカットを拡張します。 </li><li>胸郭からダイアフラムを分離するために胸骨の基部に追加のカットを行います。その後、鎖骨に向かって胸郭の両側をカット。胸腔を露光ヘッドに向けて胸郭を裏返し。の2つのローブ胸腺は、心臓の上に横たわります。 </li><li>鉗子、マイクロ解剖ハサミ、および/または鋭い湾曲したハサミを使用して、胸腺の葉の周りの結合組織を削除します。下からや結合組織を、残りを経由して、個々のローブを持ち上げるために先端の細い湾曲鉗子のペアを使用してください。 注：直接胸腺を把握しないでください。 </li><li> PBSを含む15ミリリットルコニカルチューブに胸腺葉を置き、必要になるまで氷上に取っておきます。 </li></ol> 2.アガロース埋め込みおよび胸腺ローブのビブラトームスライス<ol><li> 50ミリリットル滅菌PBSで2グラムの低融点アガロースを溶解し、アガロースが完全に溶解するまで低設定に電子レンジにより埋め込むための4％アガロース溶液を調製します。使用するまで55℃の水浴中でアルミホイルと場所で、フラスコをカバーしています。 </li><li>組織培養フード中で、10％ウシ胎児血清（FBS）を含有する完全RPMI-1640培地を調製し、4mMのL-グルタミン、1×ペニシリン/ストレプトマイシン、および10μM2-メルカプトエタノール。 </li><li> 6ウェル細胞培養プレートて1.5 mlをウェル当たり完全RPMI-1640培地を加え、各ウェル中の細胞培養インサートを配置します。必要になるまで37℃のインキュベーターに置いてプレートを設定します。 </li><li>氷のバケツに水と氷でぬかるみ氷水浴を準備します。 </li><li>慎重に先端の細いピンセットを用いて、各胸腺葉を取り巻くすべての残りの結合組織を除去します。組織への転写をPBSに浸し、または解剖顕微鏡下でワイプ後に胸腺葉を、組織培養皿にPBS中に沈めている間にこれを行います。 </li><li>フラスコは、組織の過熱を防ぐため、触るとちょうど暖かいときアガロースは、40℃以下に冷却することができます。約1センチの高さに組織型の中にアガロースを冷却し、4％を注ぎます。 </li><li>慎重に組織ワイプや組織に損傷を与えることなく、それを乾燥させるために軽くロールに胸腺葉を転送するためにピンセットを使用してください。組織が完全に乾燥していることを確認またはそれはスライス中にアガロースの外にスライドします。 </li><li>慎重にアガロースにローブを挿入し、金型の底部に（スライスの数を増加させる）のいずれかの横方向（各スライスの表面積を増加させる）、または垂直に配置。アガロースが固化することを可能にするために5〜10分間氷水中で金型を置きます。 </li><li>この間、バッファトレイを取り付け、試料ディスクを組み立て、そしてビブラトームのブレードを挿入することにより、スライス用のビブラトームを準備します。検体ディスク上の実験室でのテープ片を置きます。 70％エタノールできれいに、組み立てられたワークスペースを滅菌します。 </li><li>アガロースが固化したら、アガロース埋め込まれたローブを解放するためにその中心に静かに金型とプレスを反転。 </li><li>下部に0.5センチメートル両側にアガロース〜2ミリメートルを残してと〜葉の周囲の過剰なアガロースをトリミングする鋭い刃を使用してください。 </li><li>試料ディスク上のテープ片に組織接着剤のドロップで各アガロースブ​​ロックを固定します。複数のブロックは、テープに接着することができます。 </li><li>ビブラブレードのwiを合わせますアガロースブ​​ロックの先頭番目。ブレードとアガロースブ​​ロック（複数可）が完全に浸漬されるまで、滅菌PBSでバッファトレイを埋めます。 </li><li>セクションアガロース包埋組織は400-500ミクロンの厚さの切片を得ました。 0.225ミリメートル/秒の速度、100 Hzの周波数、および5°の角度にビブラトームを設定します。 </li><li>彼らはカットされているように滅菌PBSを含む組織培養プレートに胸腺のスライスを収集するために曲がったへらを使用してください。最初と最後のスライスを破棄します。 </li><li> 4Xの倍率で光学顕微鏡下でスライスを調べます。無傷の胸腺組織と周囲のアガロース（ 図1A）でスライスを選択してください。 </li><li>優しく細胞培養インサート上に曲がっへらから胸腺のスライスをスライドするようにピペットチップを用いて、ステップ2.3で調製したプレートにスライスを転送します。各インサートは〜3スライスを収容することができます。スライスが互いにまたは細胞培養インサートの壁に触れないようにしてください。 </li><li>必要になるまで37℃でプレートを維持します。 </li></ol><pクラス= &quot;jove_title&quot;&gt; 3。オーバーレイのための胸腺細胞の調製<ol><li>項1に記載のように、2％FBSを含む滅菌PBS 5mlで満たされた滅菌15 mlの組織グラインダーを使用して単一細胞懸濁液を作製するために手動でローブを解離胸腺ローブを分離します。 15ミリリットルコニカルチューブに細胞を移します。 </li><li> 4℃で5分間、545×gで細胞を遠心。上清を廃棄し、赤血球を溶解するために3分間室温で1×ACK溶解緩衝液（0.15 M NH 4 Cl を 、10mMのKHCO 3、0.1mMののNa 2 EDTA）1ml中に細胞を再懸濁。 </li><li> PBS、2％FBSを含有する15ミリリットルにチューブを埋めます。 4℃で5分間、545×gで細胞を遠心。 </li><li> 2％FBSを含有する10mlのPBSで細胞を再懸濁し、255ミクロンのメッシュフィルターを通してセルを通過します。 </li><li>血球計数器を用いて細胞を数えます。 4℃で5分間、545×gで細胞を遠心分離し、concentrで2％FBSを含むPBS中で細胞ペレットを再懸濁1mlあたり1×10 7細胞のエーション。 </li><li>セルラーようなカルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステルなどの染料（CFSE）スライス内因性細胞から区別するためにコンジェニックマーカーまたは遺伝的にコードされた蛍光レポーターを発現するマウスから胸腺細胞を使用していない場合は、製造業者のプロトコルに従って用いて細胞を標識。 </li><li>標識された細胞の最終洗浄後、15μlの当たり1-3×10 6個の細胞で完全RPMI-1640培地中で細胞ペレットを再懸濁します。 </li></ol> 4.胸腺スライス上に胸腺細胞のオーバーレイ<ol><li>インサート上の胸腺のスライスを囲む任意の液体を吸引するピペットを使用してください。 注：アガロースを損傷しないように注意してください。アガロースが損傷している場合は、オーバーレイ胸腺細胞は、表面張力の損失にスライス表面に付着しません。 </li><li>ピペットチップでスライスを触れることなく、オーバーレイ各胸腺スライスにセクション3で調製した胸腺細胞の15μlの。 </li><li>ナンプラーをインキュベート細胞は胸腺スライスに移行することを可能にする2時間37℃でTE。 </li><li> 2時間後、まだ組織に移行していない余分なオーバーレイ胸腺細胞を除去するために、1mlのPBSで胸腺のスライスを3回すすいでください。 </li><li>胸腺スライスが実験に応じて、通常、1から72時間、収穫する準備が整うまで、37℃でプレートをインキュベートします。 </li></ol>フローサイトメトリーのための胸腺スライスの5解離<ol><li> 2％FBSを含むPBS150μlのを追加することによって、各スライスのためのマイクロチューブを準備します。 </li><li>胸腺スライスを持つ組織培養インサートに2％のFBSを含む1mlのPBSを加え、穏やかに細胞培養インサートの表面からスライスを切り離すために曲がったへらでかき混ぜます。 </li><li>曲がったスパチュラを用いてマイクロチューブに挿入からスライスを転送します。 </li><li>手動マイクロチューブサンプル乳棒を使用してスライスを混乱させる。最終容量300に、2％FBSを含むPBS150μlのを追加します。μlの。 </li><li>新しいマイクロチューブに40μmのフィルターを通して解離した組織をフィルタリングします。フィルタリング細胞は、フローサイトメトリー分析40のために染色される準備ができています。 </li><li>すべてのアガロースを除去し、フローサイトメーターを詰まらせないようにするために、フローサイトメーター上に通す前にフィルタセルもう一度。 </li><li>フローサイトメーターで細胞を取得し、あらかじめ40に記載されているように、データを分析します。 </li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

ここでは、胸腺スライスとフローサイトメトリーによるオーバーレイ事前選択MHCクラスI拘束性TCRトランスジェニック胸腺細胞の効率的な正と負の選択の代表的な結果を調製するためのプロトコルについて説明します。このシステムは、アゴニスト抗原、ネガティブ選択および胸腺のTreg開発11,12の存在下で、事前選択DP胸腺細胞32からのMHCクラスII拘束性CD4 + T細胞の正の選択をサポートするために、同様の成功を収めて使用されています36,38,39,43,44。このプロトコルは、阻害剤の存在下または非存在下での胸腺選択、定義されたペプチド、ならびに遺伝的に改変された胸腺細胞または間質細胞集団を研究するために修飾することができます。胸腺スライスはまた、胸腺細胞サブセット以外の細胞集団のオーバーレイに適しています。例えば、それは最近、胸腺のスライスの上に重ねた樹状細胞を効率的に組織に移行することが示されたと負のSelectIOをサポートすることができますnおよびTのregの開発39,43。これまでの研究では、正と負の選択を研究するために事前選択DPまたは総胸腺細胞を使用しています。 T細胞の発達は、胸腺スライスに少なくとも4日間進行させることができるが、以前の前駆細胞集団と実験の開始に興味があれば、このシステムの制約は、胸腺スライスの品質の後減少し始めることがあることを考慮しなければなりません細胞死および封入膜の不足のために、培養中の1-2日。 本明細書に記載のプロトコルは、微妙な修正を有するヒト胸腺組織からのスライスを生成するために使用することができます。アガロース中に埋め込む前に、人間の胸腺組織は、成体マウス胸腺葉のおおよそのサイズ、断片に切断する必要があります。ヒト胸腺サンプルは結合組織が豊富で、かつ、マウスの胸腺に比べ特に、良好な品質のスライスを作製することはより困難です。私たちの経験では、胎児のではなく、ヒト新生児胸腺組織は、スライスを調製するための、より助長しています。ヒト胸腺細胞サブセットの両方が、ヒトおよびマウスの胸腺スライス37上に正しく局在することが示されています。重ねヒト胸腺細胞サブセットの胸腺選択は、しかしながら、まだ胸腺スライスモデルにおいて報告されていません。ポリクローナル集団からポジティブ選択の効率は低く、そしてによる胸腺スライスにおけるオーバーレイ胸腺細胞の低い割合（〜0.5-2％）を、積極的に選択された細胞のような小さい数を評価することは困難です。正の選択効率を向上させるために、ヒト胸腺スライスにオーバーレイする前に、ヒトT細胞前駆細胞におけるヒトTCR導入遺伝子を導入することが可能であってもよいです。これはまた、とりわけ、外因性ペプチドまたは他の細胞集団とTCRシグナルのインヒビターの存在下または非存在下で内因性のT細胞集団の変化を監視する可能性を排除するものではありません。 このプロトコルはまた、広告することができます胸腺細胞の遊走、TCRシグナル、および細胞間相互作用12,32-38の可視化のためのapted。髄質は中心部にわずか2光子顕微鏡による検出の限界を超えて、胸腺内に配置されているように最近まで、 その場で胸腺細胞の挙動のほとんどの研究は、皮質に限られていました。これとは対照的に、胸腺スライスはスライスがそのまま胸腺皮質と髄質領域を持っているという点でユニークな利点を提供し、スライス面には、2光子イメージングによる髄質への直接アクセスを可能にします。また、例えば、インドールなどのカルシウム指標色素で標識された細胞を重層胸腺スライスは、二光子顕微鏡11,32,36によって正および負の選択に関連するTCRシグナルの指標として細胞質カルシウムレベルを使用して、TCRシグナルを監視するために使用することができます38,39,44。顕微鏡検査のためのサンプルを調製するために、スライスは、プロトコルのステップ4.5の後に直接使用することができます。この場合には、注意がSU適切な蛍光マーカーを選択するために取られるべきですイメージングのためのITable。 胸腺スライスの器官培養は、in situでマウスおよびヒトT細胞の発達の様々な側面を研究するための優れたツールです。しかし、この技術の成功のアプリケーションは、プロトコルにおける重要なステップに特別な注意が必要です。ハイスループット実験のために得られた胸腺スライスの数を最大化するために、使用されるマウスの齢は、マウスの寿命を通して胸腺の変化の大きさを考慮しなければなりません。私たちは、典型的にはマウスあたり〜20胸腺のスライスを生成4-8週齢のマウスを使用します。胸腺は、理論的には、ユーザの実験の必要に応じてスライスの限られた数を生成するために使用することができるが、胎児、新生児または古いマウス。良質のスライスを得るためには、アガロース中に埋め込む前胸腺ローブを取り巻くすべての結合組織を除去するために最も重要です。残りの結合組織を効率的にスライス中にビブラトーム刃によって切断されていないと胸腺に損傷を与えることができますローブと結果のスライス。結合組織の大部分は、胸腺の収穫（ステップ1.5）の間に除去し、ローブは組織自体の重要な操作をすることなく、胸腔から除去されることを可能にするべきです。ローブを単離した後、慎重にステップ2.5で概説したように、残留結合組織を除去します。また、包埋された組織を囲むアガロースの完全性を維持することは、スライス面に効果的に胸腺細胞を重ねるために不可欠です。このように、実験で使用するための胸腺のスライスを選択する際に胸腺スライスと周囲のアガロースの両方を検査することが重要です。ビブラトームは、典型的には、汚染の危険を増大させる、組織培養フードの外側に位置します。実験間で徹底的にビブラトームを清掃し、前のスライスに70％エタノールで作業領域とビブラトームを噴霧すると、汚染の可能性を制限することができます。 Pで述べたように、ステップ2.13と2.15のための無菌のPBSを使用することも重要ですrotocol。最後に、胸腺に内因性である細胞から組織へと移行するオーバーレイ胸腺細胞を区別することも重要です。これは、ステップ3.7で述べたように蛍光色素を重ねた細胞を標識することによって達成することができます。また、コンジェニックマーカーまたは遺伝的にコードされた蛍光レポーターを発現するマウスからの胸腺細胞は、45,46を使用することができます。しかし、一般に、胸腺スライスは操作が容易であり、唯一の探求され始めている広い適用をサポートするユーザの特定の実験の必要性に適合させることができます。

T細胞は、それらが機能的な、自己寛容T細胞レパートリー1-3の発生を確実にいくつかのチェックポイントが発生したその間胸腺における発生中間体の一連の分化します。正の選択は、皮質胸腺上皮細胞（CTEC）2,3上の主要組織適合遺伝子複合体分子（MHC）によって提示された中程度の親和性、ペプチドに低いと、認識することができるT細胞受容体（TCR）との胸腺細胞の生存を促進します。負の選択と制御性T（T REG）細胞の発達は、MHC 2,4によって提示される自己ペプチドに強く反応胸腺細胞の排除や流用を介した自己寛容の確立に貢献しています。未熟CD4 + CD8 +選択プロセスは、成熟T細胞亜集団に分化渡すTCRを発現しているダブルポジティブ（DP）胸腺細胞、MHCクラスであるの大半はI制限CD8 +細胞傷害性二次リンパ器官1-3エフェクター機能を実行するために胸腺を終了する前に、またはMHCクラスII拘束性CD4 +ヘルパー単一陽性（SP）T細胞。 T細胞発生の複雑さに加え、動的移動および間質細胞網5-9を通して胸腺細胞を発生する細胞の出会いです。これらの間質細胞は、胸腺細胞の開発に異なる役割を果たし、差動で正と負の選択が10を発生する胸腺皮質と髄質領域の間に分布しています。正の選択は、主に皮質で行われますが、DP胸腺細胞は、髄質に移動し、彼らは髄質は、正の選択および系統の完了に必要な追加の信号を提供することができることを示唆している成熟T細胞に分化する前に、TCR信号を必要とし続けることを蓄積証拠があります分化11,12。さらに、自己反応性胸腺細胞13,14の削除を促進する組織限定抗原を発現し、現在専門の髄質胸腺上皮細胞（MTEC）の存在にもかかわらず、負の選択の大部分は、遍在樹状によって提示された自己ペプチドを発現するために応答して、皮質で発生しますセル15,16。このように、T細胞の発達の正確なモデルは、胸腺細胞や間質細胞間の相互作用を促進し、これらの細胞は、正と負の選択を受けるよう胸腺細胞の移行をサポートし、無傷の皮質と髄質領域で、高度に組織化胸腺微小環境を提供する必要があります。 正および負の選択を研究する手段として、胸腺細胞のex vivo分析を補完するために、 インビトロ、インサイチュで 、およびT細胞の発達のin vivoモデルの数は、17-22を開発されてきました。要約する難しいことで知られています正のin vitroでの選択が、Notchリガンドを発現している間質細胞と幹細胞集団またはT細胞前駆体の共培養、特にOP9-DL1 / 4細胞は、へvitroモデルで非常に貴重なそれを作るT系譜コミットメントと制限された正の選択をサポートする機能を持っています研究T細胞の発達23-25。このシステムの限界は、しかしながら、これらの細胞が胸腺ストローマ細胞に見出される固有のペプチド加工機械や三次元の胸腺の微小環境を欠いているという事実が挙げられます。 しかし、より技術的に面倒な、 その場でおよび胸腺選択のin vivoモデルにおける in vitro系に関連する障壁のいくつかを克服することができます。再凝集胸腺器官培養（RTOC）は胸腺細胞と胸腺ストローマ細胞18,26,27の定義された混合物を含有します。これらの胸腺上皮細胞の再凝集は、MHCクラスIおよびII発現を維持し、developmeをサポートすることができNTの両方の従来のT細胞サブセットの、それでも定義皮質及び髄質構造を欠いています。胎児胸腺器官培養（FTOC）はlymphoreplete胸腺ローブにlymphodepleted胸腺ローブのハンギングドロップ培養を介して、または胸腺細胞の注射を介して胸腺細胞を播種することができ、T細胞の発達の人気モデルであり、CD4 +およびCD8 + Tの効率的な開発を支援します文化18,28-31の経時細胞。胎児胸腺葉の培養の開始時mTECsの不足はありますが、定義された皮質と髄質の構造は、条件に応じて時間をかけて開発することがあります。重要な考慮事項は、このモデルは、優先的に、成人T細胞の発達に対する胎児サポートすることができるということです。最後に、成体マウスで定義された胸腺前駆体の胸腺内注入は技術的に困難であるが、明らかにサポートするための環境を提供します in vivoでの T細胞の発達。 その場およびin vivoモデルでこれらは、優れたツールのトンですO研究T細胞の発達およびその使用は、実験ごとの実験に基づいて考慮されるべきです。 胸腺スライスは、しかし、最近ではユニークな、複雑で、一般的により高いスループット実験に対応するために、可能性とその場で胸腺選択を研究するための汎用性、補完的なモデルとして浮上しています。胸腺のスライスは、皮質と髄質領域の完全性を維持し、開発だけでなく、効率的なポジティブ及びネガティブ選択11,32-39時に胸腺細胞の移行をサポートしている間質細胞のフレームワークを提供します。胸腺のスライスの上に追加された胸腺細胞のサブセットは、組織内およびそれらの適切な微小環境ニッチ34,37に移行します。オーバーレイ胸腺細胞は、コンジェニックマーカーまたは蛍光標識を介して胸腺スライス内因性の細胞と区別することができ、数日間培養物中に維持することができます。胸腺スライス器官培養物は、様々な側面を研究するために使用することができます特に胸腺の選択、胸腺細胞の挙動（遊走と細胞の相互作用）、および胸腺細胞の局在化を含むT細胞の発生、の。マウスあたり〜20胸腺スライスを生成する能力が与えられ、実験のスケーラビリティは、胸腺選択の現場モデルにおいて 、一般に、他よりも大きいです。細胞死および封入膜の欠如を介して経時的に細胞の喪失による胸腺切片の調製は、ビブラトームように、特殊な装置を必要とし、培養物中の胸腺スライスの寿命が限られているが、胸腺スライスが優れたモデルを提供します成熟胸腺微小環境内の胸腺細胞の同期集団の胸腺選択の分析のため。ここでは、胸腺細胞の単離およびオーバーレイ、胸腺スライスの準備（胸腺を収穫含め、胸腺ローブのアガロース埋め込みおよび包埋組織のビブラトーム切片）を記述し、フローサイトメトリー分析のための胸腺スライスの解離。

<table><tbody><tr><td>Vibratome</td><td>Leica Biosystems</td><td>VT1000S&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>NuSieve GTG Agarose</td><td>Lonza</td><td>50080</td><td>Low melting temperature agarose</td></tr><tr><td>Embedding Mold (Truncated - T12)</td><td>Polyciences</td><td>18986</td><td>22 mm x 22 mm square, truncated to 12 mm x 12 mm</td></tr><tr><td>Double Edge Prep Blades</td><td>Personna</td><td>74-0002</td><td></td></tr><tr><td>Tissue Adhesive</td><td>3M&amp;nbsp;</td><td>1469SB</td><td></td></tr><tr><td>0.4 &amp;micro;m Cell Culture Inserts&amp;nbsp;</td><td>BD Falcon</td><td>353090</td><td>Of several brands tested, these maintained the cells atop the slices the best</td></tr><tr><td>Dulbecco&#039;s Phosphate-Buffered Saline</td><td>ThermoFisher</td><td>21600-010</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640 with L-glutamine</td><td>Wisent</td><td>350-000-CL</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Wisent</td><td>080-110</td><td>Heat inactivated</td></tr><tr><td>L-Glutamine, 200 mM</td><td>Wisent</td><td>609-065-EL</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin/Streptomycin, 100x</td><td>Wisent</td><td>450-201-EL</td><td></td></tr><tr><td>2-Mercaptoethanol</td><td>Alfa Aesar</td><td>A15890</td><td></td></tr><tr><td>15 ml Tenbroeck Tissue Grinders</td><td>Wheaton</td><td>357426</td><td></td></tr><tr><td>Nylon Mesh Filter</td><td>Component Supply</td><td>U-CMN-255</td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge Tube Sample Pestle</td><td>Bel-Art</td><td>F19922-0000</td><td></td></tr><tr><td>40 &amp;micro;m Nylon Cell Strainer</td><td>BD Falcon</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>Forceps Inox Tip</td><td>Dumont&amp;nbsp;</td><td>RS-5047</td><td>Fine tip curved forceps, size .17 x .10 mm</td></tr><tr><td>Micro Forceps</td><td>Dumont&amp;nbsp;</td><td>RS-5090&amp;nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

preparation and applications of organotypic thymic slice cultures

機能性、自己寛容T細胞レパートリーの生成をもたらすユニークかつ高度に組織化された胸腺微小環境における胸腺の選択に進む。T系譜コミットメントと開発を研究するためのin vitroモデルは、このプロセスに貴重な洞察を提供してきました。しかしながら、これらのシステムは、T細胞の発達に必要な完全な三次元胸腺環境を欠いており、従って、 インビボ胸腺選択の不完全な近似値です。モデル化T細胞の発達に関連した課題のいくつかは、完全にT細胞を開発する胸腺選択をサポートする完全な胸腺の微小環境を提供し、その場モデルで使用することによって克服することができます。胸腺スライス器官培養物は、 その場での技術に存在補完します。胸腺スライスは、胸腺皮質と髄質領域の整合性を維持し、定義された発生段階の、または内因性のT cのオーバーレイ胸腺細胞の発達を研究するためのプラットフォームを提供します成熟胸腺微小環境内ells。マウスあたり〜20のスライスを生成する能力を考えると、胸腺のスライスは、ハイスループット実験のための拡張性の面でユニークな利点を提示します。さらに、多様な遺伝的背景は異なる胸腺サブセットまたは他の細胞集団をオーバーレイする胸腺スライスと可能性を生成する際の相対的な容易さは、この方法の汎用性を高めます。ここでは、胸腺スライス、単離および胸腺細胞のオーバーレイ、およびフローサイトメトリー分析のために胸腺スライスの解離を調製するためのプロトコルを説明します。このシステムは、非従来型のT細胞の発達を研究するだけでなく、胸腺細胞の移行、胸腺間質細胞の相互作用、及び二光子顕微鏡で胸腺の選択に関連するTCRシグナルを可視化するために適合させることができます。

胸腺切片は、陽性および陰性選択などのT細胞の発達の様々な側面の分析をサポートします。成功した実験では、胸腺スライスの品質が最も重要です。 従って、胸腺スライスは胸腺組織の完全性を保証するために検査されるべきであり、胸腺スライスを囲むアガロースは、インタクトな（ 図1A）です。アガロースが組織内に移動胸腺細胞数の有意な減少を引き起こして破損しているときに表面張力が損なわれる可能性があります。したがって、アガロースにおける組織損傷またはニック/涙の適応症を持つ胸腺スライスが（ 図1B）は廃棄されるべきです。 TCRトランスジェニック（TG）マウスは、しばしばポリC以上の正の選択の頻度を増加させ、すべての胸腺細胞の表面上に定義された、機能的なTCRの表現に胸腺選択を研究するために使用されていますlonal集団。ポジティブ選択の各段階を捕捉するために、事前選択TCR tgの胸腺細胞は、胸腺のスライスの上に重ね合わせることができ、かつ成熟したの開発、CD4 +またはCD8 + SP T細胞は、40フローサイトメトリーで経時的に追跡しました。 OT-I TCR tgのRAG1 MHCクラスI拘束から単離した胸腺細胞- / -のβ2m - / -マウスが原因MHCクラスを関連付けるし、安定させるのβ2mの必要性にDPステージの前胸腺選択ので逮捕されたI重鎖41 、42。 - / -のβ2m上にオーバーレイすると胸腺スライス、事前選択OT-I TCR tgの胸腺細胞は、DP段階で残り、著しいCD8 + SP T細胞（ 図2A、左）を生成しません。内因性の選択リガンドを含むWT胸腺スライス上に重ねたときに対照的に、正の選択をサポートするために、このモデルの能力は、72時間（右図2A）におけるCD8 + T細胞の発生によって証明されます。屈原ポジティブ選択の読み出しなどのCD8 + T細胞の発達のantificationは、 図2Bに示されています。 胸腺スライスも負の選択を研究するために使用することができます。負の選択の大部分は、ユビキタス抗原16に応答して生じます。 - / -ユビキタス抗原、OT-I TCR TG RAG1からの総胸腺細胞にネガティブ選択をモデル化し、野生型（WT）マウスを、それぞれ、次に1で混合CFSEとCTV、標識した：WTスライスに1比およびオーバーレイ（ 図3A）。過剰な胸腺細胞を洗浄した後、胸腺のスライスを、同族の1nMの、OT-I TCR、SIINFEKL（OVAペプチド）のアゴニストペプチドの有無にかかわらず、完全RPMI-1640培地に入れました。すべてのMHCクラスIを発現する細胞は、胸腺で遍在的に発現する抗原の提示をモデル化し、抗原を提示します。 37°C、OT-I TCR tgのセル画の割合でのインキュベーションの24時間後WT対照細胞に対するLS（％ライブCFSE +）（％ライブCTV +）をフローサイトメトリー（ 図3B）によって比較しました。 OT-I TCR tgの細胞の相対的な割合の減少は、OVAペプチドに応答して、OTI TCR TG細胞の欠失を表します。 原因胸腺スライスの大きさの不均一性だけでなく、胸腺スライスにセルエントリに、1は、これらの変数を標準化するために、適切な分析や内部統制を含むべきであることに注意することが重要です。ここでは、スライス上にOT-I TCR TG細胞と混合し、重層WT細胞は、この集団が有意にOVAペプチドの存在または非存在によって影響されるべきではない内部対照として使用しました。 OTI TCR TG細胞の負の選択の範囲は、割合ではなく絶対数に基づいて定量しました。まず、WTにOT-I TCR TG（％ライブCFSE +）との間の比存在下で、各WT胸腺スライス上（％ライブCTV +）細胞<html>またはOVAペプチドの不在を算出しました。これらの比率のそれぞれは、次に、OVAペプチドの非存在下でのWTスライスのWT（％ライブCTV +）細胞に対するOT-I TCR tgの間の比率（％ライブCFSE +）の平均値で割りました。 図3Cに示すように、平均して、OT-I TCR TG細胞の80％が遍在する抗原に応答して枯渇させました。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/54355/54355fig1.jpg" /> 図1： 縦方向に埋め込 ​​まれた胸腺葉から調製した胸腺切片の代表的な画像 。 （A）包埋組織し、アガロース無傷の周囲との良好な品質のスライス。スライス中に包埋された組織の裂けによる損傷を有する（B）品質の低いスライス。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54355/54355fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <html> ove_content「FO：キープtogether.withinページ= &quot;1&quot;&gt; <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/54355/54355fig2.jpg" /> 図2： 胸腺スライスにおける正の選択のフローサイトメトリー分析 OT-I TCR tgのRAG1 - / -のβ2m - / -胸腺細胞をCFSEで標識し、β2mを非選択にオーバーレイされた- /を-またはWTのスライスを選択します。 37℃でのインキュベーションの72時間後、CD8 + T細胞の発達は、フローサイトメトリーによって分析しました。 （A）のライブのβ2mからCFSE +TCRβ 高い胸腺細胞上の細胞表面CD4とCD8の発現の代表的なデータ- / -およびWTスライス。 （B）非選択コントロールと比較してWTスライス上のライブCFSE +TCRβ 高い CD8 + T細胞の発生の定量。各ドットは個々の胸腺のスライスを表し、線は平均値を表します。 （*** P &lt;0.001、対応のないt検定）ove.com/files/ftp_upload/54355/54355fig2large.jpg &quot;ターゲット=&quot; _空白 &quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/54355/54355fig3.jpg" /> 図3： 胸腺スライスにおけるネガティブ選択のフローサイトメトリー分析1：総CFSE標識OT-I TCR tgのRAG1の1の比率- / -とCTV標識WT胸腺細胞の存在下または非存在下でのWTのスライスの上に重ねられましたOVAペプチド、SIINFEKL。 37℃でのインキュベーションの24時間後に、重ねた細胞の相対的な割合は、フローサイトメトリーにより分析しました。存在下または非存在下でのWT胸腺スライスにCFSE標識OT-I TCR TG細胞（緑色）との1：（A）実験設定CTV標識したWT細胞（青）のオーバーレイを示すの概略図1で混合しましたOVAペプチド。 （B）のライブCFSE + OT-Iの割合を描いた代表的なデータTCR TG細胞およびOVAペプチドの有無にかかわらずインキュベートしたスライスからCTV + WT細胞。 （C）データは、スライスの間で正規化した後、CTV + WT細胞を生きて生きてCFSE + OT-I TCR tgの細胞の相対的な比率が示されています。エラーバーは標準偏差を示します。各条件についてN = 3。 （* P &lt;0.05、対応のないt検定）。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54355/54355fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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Preparation and Applications of Organotypic Thymic Slice Cultures

我々は、フローサイトメトリーと組み合わせて、T細胞の開発の正および負の選択をモデル化するために使用することができ、胸腺切片の調製を記載します。胸腺スライスはまた胸腺細胞遊走、局在のその場での分析のために適合され、そして免疫蛍光及び二光子顕微鏡検査を介してシグナル伝達することができます。

調製及び器官胸腺スライス培養の応用

Thymic selection proceeds in a unique and highly organized thymic microenvironment resulting in the generation of a functional, self-tolerant T cell ...

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Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

8.0K ビュー.  Hôpital Maisonneuve-Rosemont. 我々は、フローサイトメトリーと組み合わせて、T細胞の開発の正および負の選択をモデル化するために使用することができ、胸腺切片の調製を記載します。胸腺スライスはまた胸腺細胞遊走、局在のその場での分析のために適合され、そして免疫蛍光及び二光子顕微鏡検査を介してシグナル伝達することができます。 

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Organotypic Slice Cultures for Studies of Postnatal Neurogenesis

Here we describe a technique for studying hippocampal postnatal neurogenesis in the rodent brain using the organotypic slice culture technique. This method maintains the characteristic topographical morphology of the hippocampus while allowing direct application of pharmacological agents to the developing hippocampal dentate gyrus. Additionally, slice cultures can be maintained for up to 4 weeks and thus, allow one to study the maturation process of newborn granule neurons. Slice cultures allow for efficient pharmacological manipulation of hippocampal slices while excluding complex variables such as uncertainties related to the deep anatomic location of the hippocampus as well as the blood brain barrier. For these reasons, we sought to optimize organotypic slice cultures specifically for postnatal neurogenesis research.

Here we describe a technique for studying hippocampal postnatal neurogenesis using the organotypic slice culture technique. This method allows for in vitro manipulation of adult neurogenesis and allows for the direct application of pharmacological agents to the cultured hippocampus.

生後神経発生の研究のための器官型スライス培養

Here we describe a technique for studying hippocampal postnatal neurogenesis in the rodent brain using the organotypic slice culture technique. This ...

発生生物学

3D Organotypic Co-culture Model Supporting Medullary Thymic Epithelial Cell Proliferation, Differentiation and Promiscuous Gene Expression

Intra-thymic T cell development requires an intricate three-dimensional meshwork composed of various stromal cells, i.e., non-T cells. Thymocytes traverse this scaffold in a highly coordinated temporal and spatial order while sequentially passing obligatory check points, i.e., T cell lineage commitment, followed by T cell receptor repertoire generation and selection prior to their export into the periphery. The two major resident cell types forming this scaffold are cortical (cTECs) and medullary thymic epithelial cells (mTECs). A key feature of mTECs is the so-called promiscuous expression of numerous tissue-restricted antigens. These tissue-restricted antigens are presented to immature thymocytes directly or indirectly by mTECs or thymic dendritic cells, respectively resulting in self-tolerance.
Suitable in vitro models emulating the developmental pathways and functions of cTECs and mTECs are currently lacking. This lack of adequate experimental models has for instance hampered the analysis of promiscuous gene expression, which is still poorly understood at the cellular and molecular level. We adapted a 3D organotypic co-culture model to culture ex vivo isolated mTECs. This model was originally devised to cultivate keratinocytes in such a way as to generate a skin equivalent in vitro. The 3D model preserved key functional features of mTEC biology: (i) proliferation and terminal differentiation of CD80lo, Aire-negative into CD80hi, Aire-positive mTECs, (ii) responsiveness to RANKL, and (iii) sustained expression of FoxN1, Aire and tissue-restricted genes in CD80hi mTECs.

Studying medullary thymic epithelial cells in vitro has been largely unsuccessful, as current 2D culture systems do not mimic the in vivo scenario. The 3D culture system described herein - a modified skin organotypic culture model - has proven superior in recapitulating mTEC proliferation, differentiation and maintenance of promiscuous gene expression.

髄質胸腺上皮細胞の増殖、分化および無差別遺伝子発現を支える3D器官共培養モデル

Intra-thymic T cell development requires an intricate three-dimensional meshwork composed of various stromal cells, i.e., non-T cells. Thymocytes traverse ...

Organotypic Hippocampal Slice Cultures

The hippocampus, a component of the limbic system, plays important roles in long-term memory and spatial navigation 1. Hippocampal neurons can modify the strength of their connections after brief periods of strong activation. This phenomenon, known as long-term potentiation (LTP) can last for hours or days and has become the best candidate mechanism for learning and memory 2. In addition, the well defined anatomy and connectivity of the hippocampus 3 has made it a classical model system to study synaptic transmission and synaptic plasticity4.
As our understanding of the physiology of hippocampal synapses grew and molecular players became identified, a need to manipulate synaptic proteins became imperative. Organotypic hippocampal cultures offer the possibility for easy gene manipulation and precise pharmacological intervention but maintain synaptic organization that is critical to understanding synapse function in a more naturalistic context than routine culture dissociated neurons methods.
Here we present a method to prepare and culture hippocampal slices that can be easily adapted to other brain regions. This method allows easy access to the slices for genetic manipulation using different approaches like viral infection 5,6 or biolistics 7. In addition, slices can be easily recovered for biochemical assays 8, or transferred to microscopes for imaging 9 or electrophysiological experiments 10.

We describe a method to prepare organotypic hippocampal slices that can be easily adapted to other brain regions. Brain slices are laid on porous membranes and culture media is allowed to form an interface. This method preserves the gross architecture of the hippocampus for up to 2 weeks in culture.

器官型海馬切片培養

The hippocampus, a component of the limbic system, plays important roles in long-term memory and spatial navigation 1. Hippocampal neurons can modify the ...

神経科学

A Three-dimensional Thymic Culture System to Generate Murine Induced Pluripotent Stem Cell-derived Tumor Antigen-specific Thymic Emigrants

The inheritance of pre-rearranged T cell receptors (TCRs) and their epigenetic rejuvenation make induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived T cells a promising source for adoptive T cell therapy (ACT). However, classical in vitro methods for producing regenerated T cells from iPSC result in either innate-like or terminally differentiated T cells, which are phenotypically and functionally distinct from na&#239;ve T cells. Recently, a novel three-dimensional (3D) thymic culture system was developed to generate a homogenous subset of CD8&#945;&#946;+ antigen-specific T cells with a na&#239;ve T cell-like functional phenotype, including the capacity for proliferation, memory formation, and tumor suppression in vivo. This protocol avoids aberrant developmental fates, allowing for the generation of clinically relevant iPSC-derived T cells, designated as iPSC-derived thymic emigrants (iTE), while also providing a potent tool to elucidate the subsequent functions necessary for T cell maturation after thymic selection.

This article describes a novel method to generate tumor antigen-specific induced pluripotent stem cell-derived thymic emigrants (iTE) by a three-dimensional (3D) thymic culture system. iTE are a homogenous subset of T cells closely related to na&#239;ve T cells with the capacity for proliferation, memory formation, and tumor suppression.

マウス誘導多能性幹細胞由来腫瘍抗原特異的胸腺移民を生成する三次元胸腺培養システム

The inheritance of pre-rearranged T cell receptors (TCRs) and their epigenetic rejuvenation make induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived T cells a ...

がん研究

Organotypic Slice Cultures of Embryonic Ventral Midbrain: A System to Study Dopaminergic Neuronal Development in vitro

The mouse is an excellent model organism to study mammalian brain development due to the abundance of molecular and genetic data. However, the developing mouse brain is not suitable for easy manipulation and imaging in vivo since the mouse embryo is inaccessible and opaque. Organotypic slice cultures of embryonic brains are therefore widely used to study murine brain development in vitro. Ex-vivo manipulation or the use of transgenic mice allows the modification of gene expression so that subpopulations of neuronal or glial cells can be labeled with fluorescent proteins. The behavior of labeled cells can then be observed using time-lapse imaging. Time-lapse imaging has been particularly successful for studying cell behaviors that underlie the development of the cerebral cortex at late embryonic stages 1-2. Embryonic organotypic slice culture systems in brain regions outside of the forebrain are less well established. Therefore, the wealth of time-lapse imaging data describing neuronal cell migration is restricted to the forebrain 3,4. It is still not known, whether the principles discovered for the dorsal brain hold true for ventral brain areas. In the ventral brain, neurons are organized in neuronal clusters rather than layers and they often have to undergo complicated migratory trajectories to reach their final position. The ventral midbrain is not only a good model system for ventral brain development, but also contains neuronal populations such as dopaminergic neurons that are relevant in disease processes. While the function and degeneration of dopaminergic neurons has been investigated in great detail in the adult and ageing brain, little is known about the behavior of these neurons during their differentiation and migration phase 5. We describe here the generation of slice cultures from the embryonic day (E) 12.5 mouse ventral midbrain. These slice cultures are potentially suitable for monitoring dopaminergic neuron development over several days in vitro. We highlight the critical steps in generating brain slices at these early stages of embryonic development and discuss the conditions necessary for maintaining normal development of dopaminergic neurons in vitro. We also present results from time lapse imaging experiments. In these experiments, ventral midbrain precursors (including dopaminergic precursors) and their descendants were labeled in a mosaic manner using a Cre/loxP based inducible fate mapping system 6.

Organotypic Slice Cultures of Embryonic Ventral Midbrain: A System to Study Dopaminergic Neuronal Development in vitro

A method to generate organotypic slices from the E12.5 murine embryonic midbrain is described. The organotypic slice cultures can be used to observe the behavior of dopaminergic neurons or other ventral midbrain neurons.

胚腹側中脳の器官型スライス培養：ドーパミン作動性ニューロンの発達を研究するための体制 in vitroで</em

The  mouse is an excellent model organism to study mammalian brain development due  to the abundance of molecular and genetic data. However, the ...

Preparation of 2-dGuo-Treated Thymus Organ Cultures

In the thymus, interactions between developing T-cell precursors and stromal cells that include cortical and medullary epithelial cells are known to play a key role in the development of a functionally competent T-cell pool. However, the complexity of T-cell development in the thymus in vivo can limit analysis of individual cellular components and particular stages of development. In vitro culture systems provide a readily accessible means to study multiple complex cellular processes. Thymus organ culture systems represent a widely used approach to study intrathymic development of T-cells under defined conditions in vitro. Here we describe a system in which mouse embryonic thymus lobes can be depleted of endogenous haemopoeitic elements by prior organ culture in 2-deoxyguanosine, a compound that is selectively toxic to haemopoeitic cells. As well as providing a readily accessible source of thymic stromal cells to investigate the role of thymic microenvironments in the development and selection of T-cells, this technique also underpins further experimental approaches that include the reconstitution of alymphoid thymus lobes in vitro with defined haemopoietic elements, the transplantation of alymphoid thymuses into recipient mice, and the formation of reaggregate thymus organ cultures. (This article is based on work first reported Methods in Molecular Biology 2007, Vol. 380 pages 185-196).

This video demonstrates the dissection and removal of the fetal thymus as well the preparation of ex vivo cultures of 2-dGuo-treated thymus.

2 - dGuo処理した胸腺器官培養の準備

In the thymus, interactions between developing T-cell precursors and stromal cells that include cortical and medullary epithelial cells are known to play ...

生物学

Organotypic Slice Cultures to Study Oligodendrocyte Dynamics and Myelination

NG2 expressing cells (polydendrocytes, oligodendrocyte precursor cells) are the fourth major glial cell population in the central nervous system. During embryonic and postnatal development they actively proliferate and generate myelinating oligodendrocytes. These cells have commonly been studied in primary dissociated cultures, neuron cocultures, and in fixed tissue. Using newly available transgenic mouse lines slice culture systems can be used to investigate proliferation and differentiation of oligodendrocyte lineage cells in both gray and white matter regions of the forebrain and cerebellum. Slice cultures are prepared from early postnatal mice and are kept in culture for up to 1 month. These slices can be imaged multiple times over the culture period to investigate cellular behavior and interactions. This method allows visualization of NG2 cell division and the steps leading to oligodendrocyte differentiation while enabling detailed analysis of region-dependent NG2 cell and oligodendrocyte functional heterogeneity. This is a powerful technique that can be used to investigate the intrinsic and extrinsic signals influencing these cells over time in a cellular environment that closely resembles that found in vivo.

A technique to study NG2 cells and oligodendrocytes using a slice culture system of the forebrain and cerebellum is described. This method allows examination of the dynamics of proliferation and differentiation of cells within the oligodendrocyte lineage where the extracellular environment can be easily manipulated while maintaining tissue cytoarchitecture.

オリゴデンドロサイトダイナミクスと髄鞘形成を研究するための器官型スライス培養

NG2 expressing cells (polydendrocytes, oligodendrocyte precursor cells) are the fourth major glial cell population in the central nervous system. During ...

Establishment and Analysis of Tumor Slice Explants As a Prerequisite for Diagnostic Testing

Organotypic primary tissue explant cultures, which include precision-cut slices, represent the three-dimensional (3-D) tissue architecture as well as the multicellular interactions of native tissue. Tissue&#160;slices immediately cut from freshly resected tumors preserve spatial aspects of intratumor heterogeneity (ITH), thus making them useful surrogates of in vivo biology. Careful optimization of tissue slice preparation and cultivation conditions is fundamental for the predictive diagnostic potential of tumor slice explants. In this regard, murine models are valuable, as these provide a consistent flow of tumor material to perform replicate and reproducible experiments. This protocol describes the culturing of murine lung tumor-derived tissue slices using a rotating incubation unit, a system that enables intermittent exposure of tissues to oxygen and nutrients. Our previous work showed that the use of rotating incubation units improves the viability of tissue compared to other culture methods, particularly floating slices and stagnant filter supports. Here, we further show that slice thickness influences the viability of cultured slices, suggesting that optimization of slice thickness should be done for different tissue types. Pronounced ITH in relevant oncogenic functions, such as signaling activities, stromal cell infiltration or expression of differentiation markers, necessitates evaluation of adjacent tissue slices for the expression of markers altered by drug treatment or cultivation itself. In summary, this protocol describes the generation of murine lung tumor slices and their culture on a rotating incubation unit and demonstrates how slices should be systematically analyzed for the expression of heterogeneous tissue markers, as a prerequisite prior to drug response studies.

We provide a method for the generation, cultivation and systematic analysis of organotypic slices derived from murine lung tumors. We also describe how to optimize for slice thickness, and how to select drug concentrations to treat tumor slices.

診断テストのための前提条件として外植体腫瘍スライスの樹立と解析

Organotypic primary tissue explant cultures, which include precision-cut slices, represent the three-dimensional (3-D) tissue architecture as well as the ...

免疫・感染学

Visualization of Thalamocortical Axon Branching and Synapse Formation in Organotypic Cocultures

Axon branching and synapse formation are crucial processes for establishing precise neuronal circuits. During development, sensory thalamocortical (TC) axons form branches and synapses in specific layers of the cerebral cortex. Despite the obvious spatial correlation between axon branching and synapse formation, the causal relationship between them is poorly understood. To address this issue, we recently developed a method for simultaneous imaging of branching and synapse formation of individual TC axons in organotypic cocultures.
This protocol describes a method which consists of a combination of an organotypic coculture and electroporation. Organotypic cocultures of the thalamus and cerebral cortex facilitate gene manipulation and observation of axonal processes, preserving characteristic structures such as laminar configuration. Two distinct plasmids encoding DsRed and EGFP-tagged synaptophysin (SYP-EGFP) were co-transfected into a small number of thalamic neurons by an electroporation technique. This method allowed us to visualize individual axonal morphologies of TC neurons and their presynaptic sites simultaneously. The method also enabled long-term observation which revealed the causal relationship between axon branching and synapse formation.

This protocol describes a method for simultaneous imaging of thalamocortical axon branching and synapse formation in organotypic cocultures of the thalamus and cerebral cortex. Individual thalamocortical axons and their presynaptic terminals are visualized by a single cell electroporation technique with DsRed and GFP-tagged synaptophysin.

視床皮質軸索分岐とシナプスの可視化脊髄共培養系における形成

Axon branching and synapse formation are crucial processes for establishing precise neuronal circuits. During development, sensory thalamocortical (TC) ...

Preparation and Immunostaining of Myelinating Organotypic Cerebellar Slice Cultures

In the nervous system, myelin is a complex membrane structure generated by myelinating glial cells, which ensheathes axons and facilitates fast electrical conduction. Myelin alteration has been shown to occur in various neurological diseases, where it is associated with functional deficits. Here, we provide a detailed description of an ex vivo model consisting of mouse organotypic cerebellar slices, which can be maintained in culture for several weeks and further be labeled to visualize myelin.

Here we present a method to prepare organotypic slice cultures from mouse cerebellum and myelin sheath staining by immunohistochemistry suitable for investigating mechanisms of myelination and remyelination in the central nervous system.

準備や髄脊髄小脳スライス培養の免疫染色

In the nervous system, myelin is a complex membrane structure generated by myelinating glial cells, which ensheathes axons and facilitates fast electrical ...