この出版物で報告された研究は、キングアブドゥッラー科学技術大学(KAUST)の支援を受けました。

注意: 使用する前に、関連するすべての製品安全データシート(MSDS)を必ず参照してください。すべての適切な安全対策と個人用保護具(安全メガネ、手袋、白衣、フルレングスのズボン、つま先の閉じた靴)を使用してください。生物学的ヒュームフードですべての生物学的反応を実行します。
注:このプロトコルは、3 x 104抗体/NWの密度で抗CD44抗体でコーティングされた0.36 mgの鉄/ mLに相当する2 x 1010生体機能化NW / mLを生成することを目的としています。酸化鉄-鉄(コアシェル)NWは長さ2.5μm、直径41.5nmである。
1. 鉄ナノワイヤの放出
注:鉄/酸化鉄NWの製造プロセスは、以前の出版物59で詳細に説明されている。
<ol><li>カッティングマットの上で、アルミニウム(Al)ディスク(図2A)を片刃と小さなハンマーを使用して細かく切断し(図2B)、2 mLチューブに収めます。ピンセットを使用して、小さなAl片をチューブに移します。</li>
	<li>Alの小片が入った2 mLチューブに、1 mLの1 M水酸化ナトリウム(NaOH)を充填します。すべてのAl片がNaOHで覆われていることを確認してください。</li>
	<li>溶液を化学ヒュームフード内で室温で30分間作動させたままにします。</li>
	<li>ピンセットを使用してAl片のみを取り除き、放出されたNW(黒いクラスター、 図3A)をNaOH溶液にさらに30分間保持します。NaOH溶液は変更しないでください。</li>
	<li>2 mL チューブを磁気ラックに入れて NW を回収し、2 分間待ってから古い 1 M NaOH 溶液を取り出します。新鮮なNaOH溶液と交換してください。</li>
	<li>NW を含む 2 mL チューブを 30 秒間超音波処理し、化学ヒュームフード内に 1 時間放置します。</li>
	<li>手順1.5〜1.6を少なくとも4回繰り返します。</li>
	<li>2 mLチューブを磁気ラックに入れてNWを洗浄し、2分間待ちます。</li>
	<li>NaOH溶液を廃棄し、1 mLの無水エタノールと交換します。</li>
	<li>チューブを30秒間超音波処理します。</li>
	<li>2 mL チューブを磁気ラックに入れ、2 分間待ちます。</li>
	<li>古い無水エタノール溶液を廃棄し、1 mLの新鮮な無水エタノールと交換し、30秒間超音波処理します。</li>
	<li>手順 1.11 と 1.12 を少なくとも 4 回繰り返します。</li>
	<li>NWは、必要になるまで室温で1 mLの無水エタノールに浸けておきます。</li>
	<li>誘導結合プラズマ質量分析(ICP-MS)を使用して、鉄の濃度、ひいてはNWの濃度を測定します。 注: プロトコルはここで一時停止できます。ただし、長期間保存する場合は、必要になるまで Al テンプレートから NW を解放しないでください。放出されたNWを頻繁な超音波処理なしでエタノール中に長時間沈殿させ続けると、分離するためにより長い時間の超音波処理を必要とする凝集体が作成されます。</li>
</ol>2. ナノワイヤをAPTESでコーティング
注:このプロトコルでは、100 μLのAPTES溶液(密度0.946 g / mL61)は、1.6 x 107 m2 / gのNWをコーティングするのに十分です。ナノマテリアルの比率や質量に変化がある場合は、それに応じてAPTESの体積を調整する必要があります。
<ol><li>ステップ 1.14 の NW を 1 mL のピペットを使用して 5 mL のガラス管に移します。</li>
	<li>2 mL チューブに残った NW を回収するには、1 mL の無水エタノールを加えて空の 2 mL チューブを 2 回洗浄し、1 mL ピペットを使用して 5 mL のガラスチューブに移します。</li>
	<li>ピペットを使用して、100 μLのAPTESを採取し、NW溶液に直接添加します。</li>
	<li>5 mL ガラス管を 10 秒間ボルテックスします。</li>
	<li>5 mLのガラス管を実験室用レトルトスタンドのクランプで調整します。</li>
	<li>5 mLのガラス管の半分を超音波浴の水の中に入れ、1時間超音波処理します。</li>
	<li>超音波浴から5 mLのガラス管を取り出し、400 μLの脱イオン(DI)水と20 μLの1 M NaOH(塩基性触媒)を加えます。 注意: 最初に脱イオン水を追加することが重要です。</li>
	<li>ステップ2.5〜2.6で説明したように5 mLのガラス管を調整し、さらに1時間超音波処理します。</li>
	<li>超音波浴から5mLのガラス管を取り出します。</li>
	<li>ガラス管の横に磁石を5分間置き、NWを収集します。</li>
	<li>上清を1 mLの新鮮な無水エタノールと交換し、10秒間超音波処理します。</li>
	<li>手順2.10〜2.11を4回繰り返します。</li>
	<li>1 mLピペットを使用して、すべてのNW懸濁エタノールを新しい5 mLガラスチューブに移します。 注:APTESコーティングされたNWは、必要になるまでエタノールでガラス管に保管できます。プロトコルはここで一時停止できます。</li>
</ol>3. ナノワイヤの生体機能化
<ol><li>抗体の活性化 注:約 3 x 104 部の抗体/NW を達成するには、鉄 0.1 mg あたり 30 μL の抗体(1 mg/mL)を使用します。<ol><li>2 mL チューブに、0.4 mg の 3-3-ジメチル-アミノプロピルカルボジイミド(EDC)と 1.1 mg のスルホ-N-ヒドロキシスルホスクシンイミド(スルホ-NHS)を 1 mL の 2-N-モルホリノエタンスルホン酸水和物(MES)(pH 4.7)に溶解します。 注意: EDC / sulfo-NHS混合物は、使用前に新鮮で準備する必要があります。</li>
		<li>新しい 2 mL チューブに、抗 CD44 抗体 (1 mg/mL) 30 μL、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS、pH 7) 960 μL、EDC/スルホ-NHS 混合物 10 μL (ステップ 3.1.1 で調製) をそれぞれ加えます。</li>
		<li>2 mLのチューブを10 x g のチューブシェーカーに入れ、室温で15分間加熱します。</li>
	</ol></li>
	<li>APTES被覆ナノワイヤの作製<ol><li>ステップ3.1.3の15分間のインキュベーション中に、APTESでコーティングされたNWチューブ(ステップ2.13から)の隣に磁石を置き、NWを2分間洗浄し、NWを回収します。</li>
		<li>エタノールを廃棄し、1 mL の 0.1 M PBS(pH 7)と交換し、10 秒間超音波処理します。</li>
		<li>手順3.2.1〜3.2.2を4回繰り返します。</li>
		<li>ステップ 3.2.1 の説明に従って NW を収集し、0.1 M PBS を廃棄します。溶液なしでNWをチューブに保管してください。</li>
	</ol></li>
	<li>抗体の結合<ol><li>すべての活性化抗体溶液(ステップ3.1.3で調製)をNWsチューブ(3.2.4で調製)に移し、10秒間超音波処理します。</li>
		<li>ガラス管をローテーターに4°Cで一晩置きます。</li>
		<li>手順3.2.1と同様に磁石でNWを回収し、上澄みを捨てます。</li>
		<li>2%ウシ血清アルブミン(BSA)溶液1 mLを4°Cで1時間添加し、反応をブロックします。</li>
		<li>抗体官能基化NWの抗原性を、免疫沈降(IP)アッセイやウェスタンブロット(WB)アッセイなどを用いて確認します。 注:より良い結果を得るには、ブロッキングステップの直後に、IP、WB、または生体適合性アッセイで生体官能基化NWを使用してください。</li>
	</ol></li>
</ol>4. 生体適合性アッセイ
注:NWの生体適合性を研究するために、さまざまな細胞生存率アッセイおよびさまざまな細胞株を使用できます。ここで用いたNWの濃度は、以前の出版物16に基づく。細胞播種は、NWの生体機能化の1日前に行う必要があります。
注意: 以下のすべての手順は、バイオセーフティキャビネットの下で実行する必要があります。
<ol><li>96ウェルプレートに、マッコイの細胞培養培地(100 μL/ウェル)に懸濁した結腸がん細胞(HCT116細胞株)4 x 104 を9ウェルに播種し、インキュベーター内で37°C、5%二酸化炭素(CO2)で一晩置きます。</li>
	<li>ステップ3.2.1と同様に、NW(ステップ3.3.4から)を磁石で回収してPBSで洗浄し、古い溶液を1 mLの0.01 M PBS(pH 7)と交換します。この手順を 3 回繰り返します。</li>
	<li>ステップ3.2.1と同様に磁石を使用して回収し、温めたマッコイ培地でNW(ステップ4.2から)を洗浄し、古いPBSを1 mLの温めたマッコイ培地と交換します。この手順を 3 回繰り返します。</li>
	<li>ステップ3.2.1と同様に磁石を用いて(ステップ4.3から)NWを回収し、1mLの温めたマッコイ培地を900μLの温めたマッコイ培地と交換する。NWs 濃度は 0.02 mg/mL の NW にする必要があります。</li>
	<li>96ウェルプレート(ステップ4.1)をインキュベーターからバイオセーフティキャビネットに運びます。</li>
	<li>バイオセーフティキャビネットの下で、細胞から古い培地を廃棄し、100 μLの懸濁NW(ステップ4.4で調製)と交換します。</li>
	<li>プレート(ステップ4.6で調製)を手で振とうし、インキュベーター内で37°C、5%CO2で24時間インキュベートします。</li>
	<li>翌日、インキュベーターから96ウェルプレート(ステップ4.7で調製)を取り出します。バイオセーフティキャビネットの下で、多層ピペットを使用して、11 μLの細胞生存率試薬(材料表)を各ウェルに加えます。</li>
	<li>プレートシェーカーでプレートを10 x g の速度で10秒間振とうします。</li>
	<li>プレートをインキュベーターで1時間インキュベートします。</li>
	<li>インキュベーターから96ウェルプレート(ステップ4.10で調製)を取り出します。細胞生存率試薬(励起540 nm、発光590 nm)の吸光度を測定して、マイクロプレートリーダー(材料表)でプレートを読み取ります。</li>
</ol>

著者は何も開示していません。

他のナノ材料製造およびコーティング方法と同様に、使用される溶液には高品質の溶液が必要です。遊離型(1 M NaOH)および官能基化(MES)溶液は、数回再利用できます。ただし、新しいプロセスを開始する前にpH値を確認することは非常に重要です。放出工程では、NWをNaOHで洗浄することを少なくとも4回行う必要があります。洗浄が良いほど、NWの安定性が向上し、NWの凝集が少なくなります。酸化物層は、エタノールまたは水63への浸漬時のNWの安定性を高める。
NWの直径と長さは、APTESと抗体でコーティングした後に影響を受けました。ここで、NWを切断する超音波処理ステップにより、直径は41.5nmから70nmに増加し、長さは2.5μmから1.6μmに減少しました。したがって、生体機能化工程後のNWの形態を特徴付けることが不可欠である。
抗体のNWへの結合は、アミン基(APTES)とカルボキシル基(抗体)の間の共有結合相互作用に依存しています。したがって、APTESコーティングの存在を確認することは重要なステップであり、EELSマッピングを使用しました。コーティング方法は安全で簡単です。高温や長いインキュベーション時間を必要としません。また、APTESコーティングは、カルボキシル基を持つ他の抗体やタンパク質の共有結合を可能にするリンカーとしても機能します。
抗体でNWを生体官能基化する場合、生体機能化プロセス後の抗体の結合部位の抗原性が影響を受ける可能性があります。この問題を調査するには、IP および WB メソッドを使用できます。このプロトコルで述べられるbiofunctionalization方法を使用して抗体が特定のセル受容器に高い抗原性のNWsに結合することを可能にする。さらに、抗体でNWを生体機能化することで、目的の受容体であるCD44を持つ細胞を標的にする能力が加わりました。これは共焦点顕微鏡によって確認されました。コーティングされていないNWの生体適合性は高かったが(>95%)、NWにAPTESコーティングまたは抗体を添加すると、生体適合性が100%向上した。
さらに、コーティングおよび生体機能化プロトコルは、効率的、経済的、および再現性があります。これは、他の酸化鉄-鉄ナノ材料にも適用できるはずであり、コーティングと結合抗体の両方の濃度は、ナノ材料の表面積と質量に基づいて最適化する必要があります。このプロトコルは、一般的な実験室の周囲条件で安全に行うことができます。生体機能化により、ナノマテリアルの生体適合性とターゲティング能力が大幅に向上しました。一般に、NWはナノメディカルアプリケーション(マルチモーダルまたはコンビナトリアル処理、細胞検出またはガイダンス、生物学的センシングを含む)にとって非常に有望な材料です。ここで説明するように、生体機能化と組み合わせることで、特定の細胞ターゲティングを達成し、精度と有効性を高めることができます。

磁性ナノ材料のユニークな特性は、磁場1に応答する能力であり、これは多くの方法でそれらを作動させるために有益に利用することができるが、例えば、磁気共鳴画像法(MRI)によって監視することも可能である。交流磁界を高周波で印加すると、熱を発生し、高体温症を誘発し、治療の選択肢となります1。別のアプローチは、近赤外線(NIR)レーザーで実現できる光熱処理です2,3。
多数の磁性ナノ材料の中で、酸化鉄は、磁気分離、温熱療法2,4、細胞誘導5、薬物送達6,7,8、MRIの造影剤9,10などの生物学的応用において最も注目されています。これは、それらの高い生体適合性11,12、大きな磁化11,12、コーティングされる能力9,13,14,15、薬物を運ぶ能力2,16、薬物で官能基化される能力2,16および標的化剤12,13,17によるものである、18、および光エネルギーを熱に変換する能力2。最近、MagForceは、ハイパーサーミア治療に酸化鉄ナノ粒子を使用する癌患者の臨床試験を開始しました19。
最近、磁性ナノワイヤ(NW)は、生物医学的用途にますます利用されています3,11,16,20,21,22。それらは磁性ナノビーズと同様の特性を有するが、異方性形状と非常に大きな磁気モーメントを提供し、磁気力学的効果を誘発する低周波作動を含む磁場23,24による非常に効率的な遠隔制御を可能にする25,26,27,28,29.その結果、NWは、エクソソーム単離30、細胞追跡21、癌治療3、11、16、薬物送達16、31、32、およびMRI造影剤33などの異なる生物学的用途のために実施されている。
特定の細胞標的化能力を持つ生体機能化磁性ナノ材料は、生物医学的応用や精密医療に大きな可能性を秘めています34,35。これらの標的剤を付着させるには、ナノ材料の表面改質が必要です。典型的には、それらは、処理剤の付着を容易にする官能基を提供するコーティングを必要とする。文献には、磁性ナノ材料用の有機および無機コーティングが多数あります。ナノ材料に固定化できる官能基に基づいて、これらのコーティングは、カルボン酸基に基づく分子、ポリマー、ヒスチジン、およびシラン基に基づく分子の4つの主要なグループに分類できます。
カルボン酸基に基づく分子は、表面改質法の1つです。それは高い類縁を利用します コーティング上の負のカルボン酸基と磁性ナノ材料上の正電荷との間36,37,38。カルボン酸の金属表面への結合プロセスは、金属カルボン酸塩の生成またはカルボキシル基の金属への付着を伴い得る。しかし、鉄/金やニッケル/金のNWなど、バイオ用途に優れた特性を持つマルチセグメントNWの場合39,40、このタイプのコーティングは簡単には適用できません。金セグメントを修飾するためのチオール基と、磁気セグメント(鉄またはニッケル)用のカルボキシル基の2つの異なるコーティングを同時に必要とします38。カルボキシル基に基づく分子の例としては、ヘマトポルフィリン、ピメリン酸、パルミチン酸、および3-[(2-アミノエチル)ジチオ]プロピオン酸(AEDP)がある38。ポリマーを用いた磁性ナノ材料の表面改質には、いくつかの明確な利点があります。ポリマーの分子量が大きいため、溶液38中の磁性ナノ材料の安定性を高める。但し、ナノ材料38のサイズを著しく大きくすることになる。ポリビニルピロリドン(PVP)、ポリエチレンイミン(PEI)、アルギニン-グリシン-Dアスパラギン酸(RGD)、およびポリエチレングリコール(PEG)は、表面改質に最も一般的に使用されるポリマーの例です。それぞれに独自の機能があり、38を使用します。第3の表面改質方法は、ヒスチジンコーティングを用いることである。ヒスチジンは、ヒスチジンアミノ酸側鎖を持つタンパク質であり、ニッケル38などの限られた数の磁性ナノ材料に対して高い親和性を持っています。それは蛋白質の浄化プロセス38,41,42に使用することができる。ヒスチジンコーティングは、ニッケル/金NW38などのマルチセグメントNWにも適用できます。ナノ材料表面のシラン化は、十分に確立されたプロセスである38,43,44。これは、3つの単結合を介して任意の金属酸化物表面に結合したケイ素原子に基づいており、同時にこのケイ素原子はアルキル鎖を介して末端の官能基に結合しています38,43,44。このコーティングの利点は遊離アミン基を提供することであり、ニッケルや金などの磁性材料と非磁性材料の両方をそれぞれコーティングする能力があります38,45。したがって、生理食塩水基に基づく分子を使用することは、多節化されたNWを生体機能化するための実用的なルートです。シラン基に基づく分子の例としては、(3-アミノプロピル)トリエトキシシラン(APTES)および(3-アミノプロピル)トリメトキシシラン(APTMS)がある38,45。
コーティングへのターゲティング剤の添加は、罹患細胞の診断および治療の両方において重要な役割を果たすことができ、同時に、健康な組織に対する副作用を最小限にすることができる46,47。ナノ材料の表面に標的化剤を添加すると、エンドサイトーシス受容体を介した細胞の選択的結合と内在化の両方が促進されます7。これらの標的化リガンドがなければ、ナノ材料は細胞膜と非特異的に相互作用し、細胞膜はリガンドを有するナノ材料と比較してより低い速度で結合する48。がん組織を標的とする際の課題の1つは、健康な組織との類似性です。したがって、ターゲティングの成功は、主に生物学的標的として使用する適切なリガンドを決定することに依存する49,50。ナノ材料を癌細胞に誘導するために様々な標的化剤が用いられている48,51(例えば、CD44は、健康な細胞と比較して癌細胞で高い発現を示すためである52,53,54,55)。
ターゲティング剤は、その構成要素とその複雑さに基づいて、アプタマーベースのターゲティング、リガンドベースのターゲティング、抗体ベースのターゲティングの3つの主要なグループに分類できます。アプタマーは、化学的に合成されたDNAまたはRNAオリゴヌクレオチドの短い鎖で、2次元および3次元構造に折りたたまれており、特定の抗原、ほとんどの場合タンパク質を標的とすることができます56。リガンドベースのターゲティングには、ペプチドおよび短いアミノ酸鎖が含まれる57。抗体ベースのターゲティングは、抗体全体、または抗体フラグメント、例えば一本鎖可変フラグメントまたは抗原結合フラグメント51の使用を含む。この方法を用いることは、その特異的標的抗原に対して高い結合親和性を有する2つの結合部位を有するという利点を有し、これにより極めて高い選択性が得られる58。結合部位はロックに類似し、抗原はキー58に類似している。
この作業において、使用されたNWは、以前の出版物59に詳細に記載された方法である酸化アルミニウム膜上に電着することによって製造された。ここでの焦点は、これらの酸化鉄(コアシェル)NWを膜から放出し、特異的抗体で生体機能化して標的化能力を提供することです。抗体は酸化鉄-鉄NWに直接結合できず、リンカーを必要とします。NWをAPTESでコーティングすると遊離アミン基が得られ、抗体のカルボキシル基を介した共有結合が可能になります(図1)。APTESコーティングの利点は、鉄/金またはニッケル/金NWs 45などの磁性21と非磁性60の両方の材料で機能する能力です。このプロトコルで説明されているすべてのコーティングおよび生体機能化ステップは、一般に、あらゆる酸化鉄/酸化鉄ナノ材料で利用できます。ここでは、例として鉄/酸化鉄NWを使用しました。その結果、抗体官能基化NWは特定の細胞表面受容体に対して高い抗原性を有しており、さまざまな用途に使用できることが示されました。例としては、細胞分離、薬物送達、光熱および/または磁気機械処理を使用した特異的がん細胞治療が含まれます。

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>2 mL tube (snap-cap Microcentrifuge)</td>
			<td>Eppendorf, Fisherscientific</td>
			<td>05-402-7</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-N-Morpholino EthaneSulfonic acid hydrate 99% (MES)</td>
			<td>Thermscientific</td>
			<td>AC172590250</td>
			<td>Concentration 0.1 M and pH 4.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-3-Dimethyl-aminopropyl Carbodiimide (EDC)</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>PG82079</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-AminoPropyl-Tri-Ethoxy-Silane (APTES)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>919302</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 mL glass tube</td>
			<td>Fisherscientific</td>
			<td>03-339-22C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well plate ( flat bottom)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>CLS3595</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-CD44 antibody</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>550990</td>
			<td>Clone 515, concentration 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APTES ((3-Aminopropyl)triethoxysilane), 99%</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>919-30-2</td>
			<td>Concentration 99%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BCA assay (Pierce BCA Protein Assay Kit)</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>23225</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin solution (BSA)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>9048-46-8</td>
			<td>Concentration 35%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell incubator</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>50116047</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell viability reagent</td>
			<td>AlamarBlue,Thermofisher</td>
			<td>DAL1025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Colon cancer cells - HCT116 cell line</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>430641</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hardwood Hammer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Any hammer tool can be used, there is no specific brand.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inductively coupled plasma Mass Spectrometer (ICP-MS)</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>ELAN 9000 ICP-MS</td>
			<td>The used software is &#34;Elan instrument control session&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laboratory Retort Stand with Clamp</td>
			<td>RVFM</td>
			<td>13-0140</td>
			<td>This is used to handle the 5 mL glass tube in the sonicator bath.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetic rack (DynaMag-2 Magnet)</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>12321D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>McCoy&#8217;s 5A Medium 1x</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>16600082</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microplate reader (Bio-Rad xMark Absorbance Spectrophotometer)</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>1681150</td>
			<td>Microplate Manager 6 software (#168-9520)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline (PBS) 10x</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14200067</td>
			<td>Concentration 0.1 M (No calcuim, no magnesium)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline (PBS) 1x</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14190136</td>
			<td>Concentration 0.01 M (No calcuim, no magnesium)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plate shaker (Microplate Genie)</td>
			<td>Scientific Industries (Genie)</td>
			<td>SI-0400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Single Edge Razor blades</td>
			<td>Polysciences</td>
			<td>08410-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodum hydrixide (NaOH)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>1310-73-2</td>
			<td>Concentration 1 M, pH 13</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sulfo-N-HydroxySulfosuccinimide (sulfo-NHS)</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>106627-54-7</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>30-2101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tube rotator</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10136-084</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tube shaker (Eppendorf Thermomixer R Mixer, 2.0 mL)</td>
			<td>Eppendorf, Fisherscientific</td>
			<td>05-400-204</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasonic bath (2510)</td>
			<td>Branson</td>
			<td>2489502</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

biofunctionalization of magnetic nanomaterials

磁性ナノ材料は、さまざまな生物医学的用途で大きな注目を集めています。これらのナノマテリアルを特定の標的薬で生体官能基化することは、副作用を最小限に抑えながら診断や治療における有効性を高めるための重要な側面です。非磁性材料と比較した磁性ナノ材料の利点は、非接触で長距離にわたって磁場に応答する能力です。これにより、それらをガイドまたは蓄積することができますが、監視することもできます。近年、バイオメディカル応用のためのユニークな特徴を持つ磁性ナノワイヤ(NW)が開発されています。これらのNWの大きな磁気モーメントは、磁場による動きのより効率的な遠隔制御を可能にします。これは、がん治療、薬物送達、細胞追跡、幹細胞分化、磁気共鳴画像法などで大きな成功を収めています。さらに、テンプレート支援電気化学堆積によるNW製造は、NW特性を厳密に制御する汎用性の高い方法を提供します。特に鉄NWと酸化鉄-鉄(コアシェル)NWは、磁化率が高く毒性が低いため、生物医学的用途に適しています。
本研究では、多数のがん細胞で過剰発現している特定の細胞表面マーカーに対する特異的抗体を用いて、鉄/酸化鉄NWを生体機能化する方法を提供します。酸化鉄表面の性質を利用するため、超常磁性酸化鉄ナノ粒子にも応用できます。NWはまず、リンカーとして作用する3-アミノプロピル-トリ-エトキシ-シラン(APTES)でコーティングされ、抗体はこれに共有結合します。APTESコーティングと抗体の生体機能化は、電子エネルギー損失分光法(EELS)とゼータ電位測定によって証明されています。さらに、NW上の抗体の抗原性は、免疫沈降とウェスタンブロットを使用してテストされます。生体官能基化NWの特異的標的化とその生体適合性は、共焦点顕微鏡と細胞生存率アッセイによって研究されています。

アルミニウム(Al)ディスク(図2A)を細かく切断し(図2B)、使用するチューブに収まるようにすることが重要です。Al片に1 M NaOHを添加した後、すぐに反応が開始され、気泡の発生によって観察されます。1分以内に反応が起こらない場合、または反応が非常に速く、溶液が白い雲で完全に濁った場合は、すぐに古いNaOH溶液を取り除き、新しい溶液と交換してください。NaOH溶液のpH値を確認してください。pH>12である必要があります。NaOHで最初の30分間にNWがAl片から放出されると、NW(黒いクラスター、 図3A)はNaOH溶液内に浮遊します。NWを解放する最後のステップでは、解は均質でなければなりません。NWのクラスタは存在しません(図3B)。NWを磁石で3分間回収した場合、溶液は透明になり、NWペレットは黒色になります(図3C)。ペレットが灰色だった場合は、チューブを廃棄し、新しいAlサンプルからやり直してください。
放出プロセス中に、NWは、以前のレポート11,16,20と同様の厚さ約5 nmの天然酸化鉄層を取得します。この酸化物層は、NWの生体適合性16、官能基化16,18および磁気特性20に重要な寄与を有する。ただし、必要になるまでNWをテンプレートに保持する(つまり、リリースしない)と、環境への影響を防ぐことができます。放出プロセス後のNWの平均直径と長さは、それぞれ2.5μmと41.5nmでした。単一のNWの質量は、表1に示すように計算することができ、誘導結合プラズマ質量分析法(ICP-MS)によって確認された。ここでは、各アルミナディスクには約0.3mgの鉄が含まれていました。
放出後のNWの凝集を低減し、さらなる機能化を可能にするために、NWをAPTESでコーティングしました。このコーティングは遊離アミン基を提供し、磁性材料と非磁性材料の両方をコーティングする能力を備えているため39,45、鉄/金NWなどのマルチセグメントNWのコーティングに適しています。ナノワイヤのコーティングでは、2つの点に着目することが重要です。まず、NWの表面積と質量に基づいて、APTES分子62から必要な体積を計算します。これらの計算を表2に示します。次に、ナノワイヤの凝集や、APTESコーティングによるNW表面の一部のブロッキングを防ぐために、ナノワイヤを連続的に動かします。例えば、このプロトコルでは、ナノワイヤは、APTESコーティングと抗体の機能化中に、それぞれ超音波浴とローテーターの下でインキュベートされました。各APTES分子は、ケイ素原子と末端官能性アミン基21とを含む。したがって、電子エネルギー損失分光法(EELS)マップを使用して、北西表面にシリコン原子(ピンク色)を示すことにより、APTESコーティングの存在を確認できます(図4A)。対照的に、コーティングされていないNWは、鉄原子を樹皮青色(図4B)で、鉄/酸素混合原子を水色(図4B)で示しています。コーティングされていないNWの対応するEELSマッピング(図4C、4D)は、表面(図4D)よりも中心部(図4C)の方が鉄と酸素の強度が高いことを示しており、鉄-酸化鉄(コアシェル)構造を示しています。EELSマッピング(図4C、4D)は、NW上の酸化鉄層がFe2O3よりもFe3O4多いことが確認され、これは以前の出版物20と同様である。
結合した抗体の抗原性は、IPおよびWBアッセイを用いて確認することができ、陽性サンプルではバンドが観察されますが、陰性対照では観察されません(図5)。クリアバンドを観察するには、0.1 mg/10 x 106 セル未満のNWを使用しないでください。BCAアッセイ(材料表)を、 表3 に示したいくつかの計算と組み合わせて、NW上の抗体数を定量するために使用しました。
さらに、ゼータ電位測定を用いて、表面官能基化を解明しました。APTESの末端アミン基は、 図6に示すように、コーティングされていないNWの負電荷を減少させました。抗体で修飾されたNWは、APTESでコーティングされたNWと比較して電荷も変化しました(図6)。ゼータ電位の測定はすべて pH 7 で行いました。
抗体官能基化NWの特異的な細胞標的化は、共焦点顕微鏡を用いて確認することができます(図7)。新しいナノ材料の生体適合性は、アプリケーションを開始する前にテストする必要があります。そこで、細胞生存率測定法を用い、非コーティング、APTESコーティング、抗体コーティングNWは高濃度でも生体適合性を有することを確認しました(図8)。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig01.jpg"> 図1:概略図は、ナノワイヤのコーティングおよび生体機能化方法を表しています。 (A)鉄NWをAPTESでコーティングします。(B)EDC+スルホ-NHSを用いて抗体を活性化し、末端に(C)抗体官能基化ナノワイヤを有する。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig01large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig02.jpg"> 図2:鉄蒸着アルミニウムディスク。 (A)切断前のアルミディスク。(B)赤い線は、ディスクをカットする場所を示しています。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig02large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig03.jpg"> 図3:ナノワイヤの放出ステップ。 (A)ナノワイヤのクラスターがNaOH溶液中に浮遊している。画像は、NaOHを添加し、Al膜を除去してから10分後に撮影しました。(B)エタノールに懸濁したナノワイヤ。写真は、超音波処理ステップの直後の最後のリリースステップで撮影されました。(C)磁石で捕集した黒色ナノワイヤペレット。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig03large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig04.jpg"> 図4:電子エネルギー損失分光法(EELS)マップ。 (A)APTES被覆ナノワイヤ(APTES-NW)。青とピンクの色は、それぞれ鉄原子とケイ素原子を表しています。(B)非被覆ナノワイヤ(NW)。樹皮の青と水色は、それぞれ鉄と鉄/酸素の混合マッピングを表しています。(C)コアと(D)コーティングされていないNWのシェルの対応するEELSマッピング。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig04large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig05.jpg"> 図5:抗体結合ナノワイヤの機能発現と活性の確認。 CD44-NWの抗原性は、免疫沈降(IP)およびウェスタンブロット(WB)を用いて確認された。+Ve:ポジティブコントロール(全細胞ライセート)を表します。-Ve:ネガティブコントロール(コーティングされていないNWのみ)を表します。– CD44細胞:CD44抗原を発現しない細胞を表します。+ CD44細胞:CD44抗原を発現する結腸がん細胞を表します。これは、n = 3つの独立した実験の代表的なブロットです。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig05large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig06.jpg"> 図6:NW、APTES-NW、および抗体のゼータ電位値。 バーは標準誤差±平均を表します。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig06large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig07.jpg"> 図7:共焦点顕微鏡画像は、特定のターゲティングを示しています。 CD44-NWは付着している(A および C)が示されているが、Isotype-NW(ネガティブコントロール)は付着していない(B および D)。赤、青、緑の色は、それぞれCD44-NWの細胞膜、核、クラスターを表しています。A と B は、それぞれ C と D の明視野像です。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig07large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61360/61360fig08.jpg"> 図8:大腸がん細胞(HCT116)を異なる製剤のナノワイヤーでインキュベートした細胞生存率の研究。 細胞を24時間のインキュベーション後にNWで処理し、次いでNWで24時間インキュベートしました。すべての実験は、37°Cのインキュベーター内で行いました。 バーは標準誤差±平均を表します。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61360/61360fig08large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>パラメーター</td>
			<td>価値</td>
			<td>単位</td>
			<td rowspan="6"></td>
			<td rowspan="6"></td>
		</tr><tr><td>Fe NWの長さ(h)</td>
			<td>2.6</td>
			<td>μmの</td>
		</tr><tr><td>半径 (直径/2) (r)</td>
			<td>0.01679231</td>
			<td>μmの</td>
		</tr><tr><td>Fe密度(D)</td>
			<td>7.87</td>
			<td>g/cm3</td>
		</tr><tr><td>1 Fe NW体積(V)= π r ^ 2h</td>
			<td>2.30E-15</td>
			<td>CM3</td>
		</tr><tr><td>1 Fe NW質量 = V x D</td>
			<td>1.80E-08</td>
			<td>μgの</td>
		</tr><tr><td>1 Fe NW 表面積 = 2π r^2 + 2πrh</td>
			<td>2.76E-01</td>
			<td>μm2</td>
			<td>2.8E+05</td>
			<td>nmの2</td>
		</tr></tbody></table>表1:鉄NW質量の計算。
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>パラメーター</td>
			<td>価値</td>
			<td>単位</td>
		</tr><tr><td>APTES/100 μLの密度*</td>
			<td>9.50E-01</td>
			<td>g</td>
		</tr><tr><td>APTESの分子ワイト(MW)</td>
			<td>2.21E+02</td>
			<td>g/mol</td>
		</tr><tr><td>APTESモル数=質量/MW</td>
			<td>4.29E-03</td>
			<td>商船三井</td>
		</tr><tr><td>APTES分子数/100 μL**</td>
			<td>2.57E+21</td>
			<td>分子</td>
		</tr><tr><td>APTESサイズ***</td>
			<td>5.00E-01</td>
			<td>海里</td>
		</tr><tr><td>APTES表面積</td>
			<td>2.00E-01</td>
			<td>nmの2</td>
		</tr><tr><td>NW表面積****</td>
			<td>2.76E+05</td>
			<td>nmの2</td>
		</tr><tr><td>0.3mgのNW中のNWの数****</td>
			<td>1.70E+10</td>
			<td>NWの</td>
		</tr><tr><td>北西の周囲に1つの層を作るのに必要なAPTES分子の数</td>
			<td>1.38E+06</td>
			<td>APTES分子</td>
		</tr><tr><td>0.3 mg の NW に必要な APTES 分子数</td>
			<td>2.35E+16</td>
			<td>APTES分子</td>
		</tr><tr><td colspan="3">*参照番号61</td>
		</tr><tr><td colspan="3">** 分子数 = mol*アボガドロ数 (6E+23)</td>
		</tr><tr><td colspan="3">参照番号 62</td>
		</tr><tr><td colspan="3">表1より</td>
		</tr></tbody></table>表2:NWsコーティングに必要なAPTES分子数の計算。
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> </td>
			<td>Y字型IgG抗体</td>
			<td>北西</td>
		</tr><tr><td>抗体1個あたりの質量</td>
			<td>2.3E-13 μg</td>
			<td>1.8E-08 μg※</td>
		</tr><tr><td>1つの抗体の表面積</td>
			<td>23 nm2</td>
			<td>2.6E+05 nm2</td>
		</tr><tr><td>BCAアッセイに基づく</td>
			<td colspan="2">1 mgあたり0.3 mg。</td>
		</tr><tr><td>NW1mg当たりの抗体0.3mg中の抗体分子数とNWの数</td>
			<td colspan="2">~1E+15抗体** ~5.6E+10 NWあたり</td>
		</tr><tr><td>NWあたりの抗体分子数</td>
			<td colspan="2">~2E+04抗体/1 NW***</td>
		</tr><tr><td colspan="3">※表1より算出</td>
		</tr><tr><td colspan="3">**0.3 mg中の抗体数は、BSAアッセイから受け取った抗体数(0.3 mg)をY字型IgG抗体の平均分子量(180 kDa = 3E-16 mg)で割って計算しました。</td>
		</tr><tr><td colspan="3">Y字型IgG抗体1分子の表面積(~23 nm2)と1つのNWの表面積(~2.6E+05 nm2)に基づくと、約1E+04抗体でNW上に単層を形成するのに十分です。私たちの場合、抗体の密度は予想量の2倍でした。これは、抗体の高度な接着を可能にするより多くのアームを提供するAPTESコーティングに関連している可能性があります。この場合、NWが抗体で完全に覆われ、NWの配向に関係なく、抗体が細胞表面抗原に結合する機会が高くなります。ただし、抗体密度が予想される数(1E+04分子の抗体)よりも低い場合、細胞とNW間の結合可能性は低くなります。</td>
		</tr></tbody></table>表3:ナノワイヤ上の抗体数の計算。

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Biofunctionalization of Magnetic Nanomaterials

この研究では、特定の細胞を標的とする抗体を用いて磁性ナノ材料を生体機能化するためのプロトコルを提供します。その一例として、鉄ナノワイヤを用いてがん細胞を標的としています。

磁性ナノ材料の生体機能化

Magnetic nanomaterials have received great attention in different biomedical applications. Biofunctionalizing these nanomaterials with specific targeting ...

biofunctionalization-of-magnetic-nanomaterials

Research

JoVE Journal

Bioengineering

2.5K ビュー.  King Abdullah University of Science and Technology. この研究では、特定の細胞を標的とする抗体を用いて磁性ナノ材料を生体機能化するためのプロトコルを提供します。その一例として、鉄ナノワイヤを用いてがん細胞を標的としています。

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Registered Bioimaging of Nanomaterials for Diagnostic and Therapeutic Monitoring

Nanomedications can be carried by blood borne monocyte-macrophages into the reticuloendothelial system (RES; spleen, liver, lymph nodes) and to end organs. The latter include the lung, RES, and brain and are operative during human immunodeficiency virus type one (HIV-1) infection. Macrophage entry into tissues is notable in areas of active HIV-1 replication and sites of inflammation. In order to assess the potential of macrophages as nanocarriers, superparamagnetic iron-oxide and/or drug laden particles coated with surfactants were parenterally injected into HIV-1 encephalitic mice. This was done to quantitatively assess particle and drug biodistribution. Magnetic resonance imaging (MRI) test results were validated by histological coregistration and enhanced image processing. End organ disease as typified by altered brain histology were assessed by MRI. The demonstration of robust migration of nanoformulations into areas of focal encephalitis provides '"proof of concept" for the use of advanced bioimaging techniques to monitor macrophage migration. Importantly, histopathological aberrations in brain correlate with bioimaging parameters making the general utility of MRI in studies of cell distribution in disease feasible. We posit that using such methods can provide a real time index of disease burden and therapeutic efficacy with translational potential to humans.

Bioimaging methods used to assess cell biodistribution of nanoparticles are applicable for therapeutic and diagnostic monitoring of nanoformulated compounds. The methods described herein are sensitive and specific when assessed by histological coregistration. The methodologies provide a translational pathway from rodent to human applications.

診断と治療モニタリングのためのナノ材料の登録バイオイメージング

Nanomedications can be carried by blood borne monocyte-macrophages into the reticuloendothelial system (RES; spleen, liver, lymph nodes) and to end ...

生物工学

Magnetic Resonance Elastography Methodology for the Evaluation of Tissue Engineered Construct Growth

Traditional mechanical testing often results in the destruction of the sample, and in the case of long term tissue engineered construct studies, the use of destructive assessment is not acceptable. A proposed alternative is the use of an imaging process called magnetic resonance elastography. Elastography is a nondestructive method for determining the engineered outcome by measuring local mechanical property values (i.e., complex shear modulus), which are essential markers for identifying the structure and functionality of a tissue. As a noninvasive means for evaluation, the monitoring of engineered constructs with imaging modalities such as magnetic resonance imaging (MRI) has seen increasing interest in the past decade1. For example, the magnetic resonance (MR) techniques of diffusion and relaxometry have been able to characterize the changes in chemical and physical properties during engineered tissue development2. The method proposed in the following protocol uses microscopic magnetic resonance elastography (&mu;MRE) as a noninvasive MR based technique for measuring the mechanical properties of small soft tissues3. MRE is achieved by coupling a sonic mechanical actuator with the tissue of interest and recording the shear wave propagation with an MR scanner4. Recently, &mu;MRE has been applied in tissue engineering to acquire essential growth information that is traditionally measured using destructive mechanical macroscopic techniques5. In the following procedure, elastography is achieved through the imaging of engineered constructs with a modified Hahn spin-echo sequence coupled with a mechanical actuator. As shown in Figure 1, the modified sequence synchronizes image acquisition with the transmission of external shear waves; subsequently, the motion is sensitized through the use of oscillating bipolar pairs. Following collection of images with positive and negative motion sensitization, complex division of the data produce a shear wave image. Then, the image is assessed using an inversion algorithm to generate a shear stiffness map6. The resulting measurements at each voxel have been shown to strongly correlate (R2&gt;0.9914) with data collected using dynamic mechanical analysis7. In this study, elastography is integrated into the tissue development process for monitoring human mesenchymal stem cell (hMSC) differentiation into adipogenic and osteogenic constructs as shown in Figure 2.

The procedure demonstrates the methodology of magnetic resonance elastography for monitoring the engineered outcome of adipose and osteogenic tissue engineered constructs through noninvasive local assessment of the mechanical properties using microscopic magnetic resonance elastography (&mu;MRE).

ティッシュエンジニアーコンストラクトの成長評価のための磁気共鳴エラストグラフィの方法論

Traditional mechanical testing often results in the destruction of the sample, and in the case of long term tissue engineered construct studies, the use ...

Low Molecular Weight Protein Enrichment on Mesoporous Silica Thin Films for Biomarker Discovery

The identification of circulating biomarkers holds great potential for non invasive approaches in early diagnosis and prognosis, as well as for the monitoring of therapeutic efficiency.1-3 The circulating low molecular weight proteome (LMWP) composed of small proteins shed from tissues and cells or peptide fragments derived from the proteolytic degradation of larger proteins, has been associated with the pathological condition in patients and likely reflects the state of disease.4,5 Despite these potential clinical applications, the use of Mass Spectrometry (MS) to profile the LMWP from biological fluids has proven to be very challenging due to the large dynamic range of protein and peptide concentrations in serum.6 Without sample pre-treatment, some of the more highly abundant proteins obscure the detection of low-abundance species in serum/plasma. Current proteomic-based approaches, such as two-dimensional polyacrylamide gel-electrophoresis (2D-PAGE) and shotgun proteomics methods are labor-intensive, low throughput and offer limited suitability for clinical applications.7-9 Therefore, a more effective strategy is needed to isolate LMWP from blood and allow the high throughput screening of clinical samples. 
Here, we present a fast, efficient and reliable multi-fractionation system based on mesoporous silica chips to specifically target and enrich LMWP.10,11 Mesoporous silica (MPS) thin films with tunable features at the nanoscale were fabricated using the triblock copolymer template pathway. Using different polymer templates and polymer concentrations in the precursor solution, various pore size distributions, pore structures, connectivity and surface properties were determined and applied for selective recovery of low mass proteins. The selective parsing of the enriched peptides into different subclasses according to their physicochemical properties will enhance the efficiency of recovery and detection of low abundance species. In combination with mass spectrometry and statistic analysis, we demonstrated the correlation between the nanophase characteristics of the mesoporous silica thin films and the specificity and efficacy of low mass proteome harvesting. The results presented herein reveal the potential of the nanotechnology-based technology to provide a powerful alternative to conventional methods for LMWP harvesting from complex biological fluids. Because of the ability to tune the material properties, the capability for low-cost production, the simplicity and rapidity of sample collection, and the greatly reduced sample requirements for analysis, this novel nanotechnology will substantially impact the field of proteomic biomarker research and clinical proteomic assessment.

We developed a technology based on mesoporous silica thin film for the selective recovery of low molecular weight proteins and peptides from human serum. The physico-chemical properties of our mesoporous chips were finely tuned to provide substantial control in peptide enrichment and consequently profile the serum proteome for diagnostic purposes.

バイオマーカー探索のためのメソポーラスシリカ薄膜の低分子量蛋白質の濃縮

The identification of circulating biomarkers holds great potential for non invasive approaches in early diagnosis and prognosis, as well as for the ...

Hollow Microneedle-based Sensor for Multiplexed Transdermal Electrochemical Sensing

The development of a minimally invasive multiplexed monitoring system for rapid analysis of biologically-relevant molecules could offer individuals suffering from chronic medical conditions facile assessment of their immediate physiological state. Furthermore, it could serve as a research tool for analysis of complex, multifactorial medical conditions. In order for such a multianalyte sensor to be realized, it must be minimally invasive, sampling of interstitial fluid must occur without pain or harm to the user, and analysis must be rapid as well as selective.
Initially developed for pain-free drug delivery, microneedles have been used to deliver vaccines and pharmacologic agents (e.g., insulin) through the skin.1-2 Since these devices access the interstitial space, microneedles that are integrated with microelectrodes can be used as transdermal electrochemical sensors. Selective detection of glucose, glutamate, lactate, hydrogen peroxide, and ascorbic acid has been demonstrated using integrated microneedle-electrode devices with carbon fibers, modified carbon pastes, and platinum-coated polymer microneedles serving as transducing elements.3-7,8
This microneedle sensor technology has enabled a novel and sophisticated analytical approach for in situ and simultaneous detection of multiple analytes. Multiplexing offers the possibility of monitoring complex microenvironments, which are otherwise difficult to characterize in a rapid and minimally invasive manner. For example, this technology could be utilized for simultaneous monitoring of extracellular levels of, glucose, lactate and pH,9 which are important metabolic indicators of disease states7,10-14 (e.g., cancer proliferation) and exercise-induced acidosis.15

This article details the construction of a multiplexed microneedle-based sensor. The device is being developed for in situ sampling and electrochemical analysis of multiple analytes in a rapid and selective manner. We envision clinical medicine and biomedical research uses for these microneedle-based sensors.

多重経皮電気化学センシングのための中空マイクロニードルベースの​​センサ

The development of a minimally invasive multiplexed monitoring system for rapid analysis of biologically-relevant molecules could offer individuals ...

Determination of the Transport Rate of Xenobiotics and Nanomaterials Across the Placenta using the ex vivo Human Placental Perfusion Model

Decades ago the human placenta was thought to be an impenetrable barrier between mother and unborn child. However, the discovery of thalidomide-induced birth defects and many later studies afterwards proved the opposite. Today several harmful xenobiotics like nicotine, heroin, methadone or drugs as well as environmental pollutants were described to overcome this barrier. With the growing use of nanotechnology, the placenta is likely to come into contact with novel nanoparticles either accidentally through exposure or intentionally in the case of potential nanomedical applications. Data from animal experiments cannot be extrapolated to humans because the placenta is the most species-specific mammalian organ 1. Therefore, the ex vivo dual recirculating human placental perfusion, developed by Panigel et al. in 1967 2 and continuously modified by Schneider et al. in 1972 3, can serve as an excellent model to study the transfer of xenobiotics or particles.
Here, we focus on the ex vivo dual recirculating human placental perfusion protocol and its further development to acquire reproducible results.
The placentae were obtained after informed consent of the mothers from uncomplicated term pregnancies undergoing caesarean delivery. The fetal and maternal vessels of an intact cotyledon were cannulated and perfused at least for five hours. As a model particle fluorescently labelled polystyrene particles with sizes of 80 and 500 nm in diameter were added to the maternal circuit. The 80 nm particles were able to cross the placental barrier and provide a perfect example for a substance which is transferred across the placenta to the fetus while the 500 nm particles were retained in the placental tissue or maternal circuit. The ex vivo human placental perfusion model is one of few models providing reliable information about the transport behavior of xenobiotics at an important tissue barrier which delivers predictive and clinical relevant data.

Determination of the Transport Rate of Xenobiotics and Nanomaterials Across the Placenta using the ex vivo Human Placental Perfusion Model

The ex vivo dual recirculating human placental perfusion model can be used to investigate the transfer of xenobiotics and nanoparticles across the human placenta. In this video protocol we describe the equipment and techniques required for a successful execution of a placenta perfusion.

使用プラ​​センタアクロス異物およびナノ材料の輸送速度の決定<em&gt; ex vivoで</em&gt;ヒト胎盤灌流モデル

Decades ago the human placenta was thought to be an impenetrable barrier between mother and unborn child. However, the discovery of thalidomide-induced ...

Magnetic Tweezers for the Measurement of Twist and Torque

Single-molecule techniques make it possible to investigate the behavior of individual biological molecules in solution in real time. These techniques include so-called force spectroscopy approaches such as atomic force microscopy, optical tweezers, flow stretching, and magnetic tweezers. Amongst these approaches, magnetic tweezers have distinguished themselves by their ability to apply torque while maintaining a constant stretching force. Here, it is illustrated how such a &#8220;conventional&#8221; magnetic tweezers experimental configuration can, through a straightforward modification of its field configuration to minimize the magnitude of the transverse field, be adapted to measure the degree of twist in a biological molecule. The resulting configuration is termed the freely-orbiting magnetic tweezers. Additionally, it is shown how further modification of the field configuration can yield a transverse field with a magnitude intermediate between that of the &#8220;conventional&#8221; magnetic tweezers and the freely-orbiting magnetic tweezers, which makes it possible to directly measure the torque stored in a biological molecule. This configuration is termed the magnetic torque tweezers. The accompanying video explains in detail how the conversion of conventional magnetic tweezers into freely-orbiting magnetic tweezers and magnetic torque tweezers can be accomplished, and demonstrates the use of these techniques. These adaptations maintain all the strengths of conventional magnetic tweezers while greatly expanding the versatility of this powerful instrument.

Magnetic tweezers, a powerful single-molecule manipulation technique, can be adapted for the direct measurements of the twist (using a configuration called freely-orbiting magnetic tweezers) and torque (using a configuration termed magnetic torque tweezers) in biological macromolecules. Guidelines for performing such measurements are given, including applications to the study of DNA and associated nucleo-protein filaments.

ツイストとトルクの計測のための磁気ピンセット

Single-molecule techniques make it possible to investigate the behavior of individual biological molecules in solution in real time. These techniques ...

Porous Silicon Microparticles for Delivery of siRNA Therapeutics

Small interfering RNA (siRNA) can be used to suppress gene expression, thereby providing a new avenue for the treatment of various diseases. However, the successful implementation of siRNA therapy requires the use of delivery platforms that can overcome the major challenges of siRNA delivery, such as enzymatic degradation, low intracellular uptake and lysosomal entrapment. Here, a protocol for the preparation and use of a biocompatible and effective siRNA delivery system is presented. This platform consists of polyethylenimine (PEI) and arginine (Arg)-grafted porous silicon microparticles, which can be loaded with siRNA by performing a simple mixing step. The silicon particles are gradually degraded over time, thereby triggering the formation of Arg-PEI/siRNA nanoparticles. This delivery vehicle provides a means for protecting and internalizing siRNA, without causing cytotoxicity. The major steps of polycation functionalization, particle characterization, and siRNA loading are outlined in detail. In addition, the procedures for determining particle uptake, cytotoxicity, and transfection efficacy are also described.

Delivery remains the main challenge for the therapeutic implementation of small interfering RNA (siRNA). This protocol involves the use of a multifunctional and biocompatible siRNA delivery platform, consisting of arginine and polyethylenimine grafted porous silicon microparticles.

siRNAの治療を送達するための多孔質シリコンマイクロ粒子

Small interfering RNA (siRNA) can be used to suppress gene expression, thereby providing a new avenue for the treatment of various diseases. However, the ...

Fabrication of a Functionalized Magnetic Bacterial Nanocellulose with Iron Oxide Nanoparticles

In this study, bacterial nanocellulose (BNC) produced by the bacteria Gluconacetobacter xylinus is synthesized and impregnated in situ with iron oxide nanoparticles (IONP) (Fe3O4) to yield a magnetic bacterial nanocellulose (MBNC). The synthesis of MBNC is a precise and specifically designed multi-step process. Briefly, bacterial nanocellulose (BNC) pellicles are formed from preserved G. xylinus strain according to our experimental requirements of size and morphology. A solution of iron(III) chloride hexahydrate (FeCl3&#183;6H2O) and iron(II) chloride tetrahydrate (FeCl2&#183;4H2O) with a 2:1 molar ratio is prepared and diluted in deoxygenated high purity water. A BNC pellicle is then introduced in the vessel with the reactants. This mixture is stirred and heated at 80 &#176;C in a silicon oil bath and ammonium hydroxide (14%) is then added by dropping to precipitate the ferrous ions into the BNC mesh. This last step allows forming in situ magnetite nanoparticles (Fe3O4) inside the bacterial nanocellulose mesh to confer magnetic properties to BNC pellicle. A toxicological assay was used to evaluate the biocompatibility of the BNC-IONP pellicle. Polyethylene glycol (PEG) was used to cover the IONPs in order to improve their biocompatibility. Scanning electron microscopy (SEM) images showed that the IONP were located preferentially in the fibril interlacing spaces of the BNC matrix, but some of them were also found along the BNC ribbons. Magnetic force microscope measurements performed on the MBNC detected the presence magnetic domains with high and weak intensity magnetic field, confirming the magnetic nature of the MBNC pellicle. Young&#39;s modulus values obtained in this work are also in a reasonable agreement with those reported for several blood vessels in previous studies.

Here, we present a protocol to make a bacterial nanocellulose (BNC) magnetic for applications in damaged blood vessel reconstruction. The BNC was synthesized by G. xylinus strain. On the other hand, magnetization of the BNC was realized through in situ precipitation of Fe2+ and Fe3+ ferrous ions inside the BNC mesh.

酸化鉄ナノ粒子との機能を有する磁性細菌Nanocelluloseの作製

In this study, bacterial nanocellulose (BNC) produced by the bacteria Gluconacetobacter xylinus is synthesized and impregnated in situ with iron oxide ...

Synthesis of Cationized Magnetoferritin for Ultra-fast Magnetization of Cells

Many important biomedical applications, such as cell imaging and remote manipulation, can be achieved by labeling cells with superparamagnetic iron oxide nanoparticles (SPIONs). Achieving sufficient cellular uptake of SPIONs is a challenge that has traditionally been met by exposing cells to elevated concentrations of SPIONs or by prolonging exposure times (up to 72 hr). However, these strategies are likely to mediate toxicity. Here, we present the synthesis of the protein-based SPION magnetoferritin as well as a facile surface functionalization protocol that enables rapid cell magnetization using low exposure concentrations. The SPION core of magnetoferritin consists of cobalt-doped iron oxide with an average particle diameter of 8.2 nm mineralized inside the cavity of horse spleen apo-ferritin. Chemical cationization of magnetoferritin produced a novel, highly membrane-active SPION that magnetized human mesenchymal stem cells (hMSCs) using incubation times as short as one minute and iron concentrations as lows as 0.2 mM.

A protocol for the synthesis and cationization of cobalt-doped magnetoferritin is presented, as well as a method to rapidly magnetize stem cells with cationized magnetoferritin.

細胞の超高速磁化のためのカチオン化Magnetoferritinの合成

Many important biomedical applications, such as cell imaging and remote manipulation, can be achieved by labeling cells with superparamagnetic iron oxide ...

Metabolic Support of Excised, Living Brain Tissues During Magnetic Resonance Microscopy Acquisition

This protocol describes the procedures necessary to support normal metabolic functions of acute brain slice preparations during the collection of magnetic resonance (MR) microscopy data. While it is possible to perform MR collections on living, excised mammalian tissue, such experiments have traditionally been constrained by resolution limits and are thus incapable of visualizing tissue microstructure. Conversely, MR protocols that did achieve microscopic image resolution required the use of fixed samples to accommodate the need for static, unchanging conditions over lengthy scan times. The current protocol describes the first available MR technique that enables imaging of living, mammalian tissue samples at microscopic resolutions. Such data is of great importance to the understanding of how pathology-based contrast changes occurring at the microscopic level influence the content of macroscopic MR scans such as those used in the clinic. Once such an understanding is realized, diagnostic methods with greater sensitivity and accuracy can be developed, which will translate directly to earlier disease treatment, more accurate therapy monitoring and improved patient outcomes.
While the described methodology focuses on brain slice preparations, the protocol is adaptable to any excised tissue slice given that changes are made to the gas and perfusate preparations to accommodate the tissue&#39;s specific metabolic needs. Successful execution of the protocol should result in living, acute slice preparations that exhibit MR diffusion signal stability for periods up to 15.5 h. The primary advantages of the current system over other MR compatible perfusion apparatuses are its compatibility with the MR microscopy hardware required to attain higher resolution images and ability to provide constant, uninterrupted flow with carefully regulated perfusate conditions. Reduced sample throughput is a consideration with this design as only one tissue slice may be imaged at a time.

The current protocol describes a method by which users can maintain viability of acute hippocampal and cortical slice preparations during the collection of magnetic resonance microscopy data.

代謝サポートの切除、生体脳磁気共鳴顕微鏡集録時に

This protocol describes the procedures necessary to support normal metabolic functions of acute brain slice preparations during the collection of magnetic ...