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Method Article
대뇌 피질의 발달에서 유전자의 기능의 신속한 평가를 실시하기 위해, 우리는 관련된 방법을 설명 예 생체내 electroporation 억제 RNA (RNAi)와 murine 배아 피질에서 GFP를 공동 표현. 이 프로토콜은 neurogenesis,의 연결을 마이 그 레이션 및 dendrite와 축삭의 파생물을 포함하여의 연결을 morphogenesis 등 neurodevelopment의 다양한 측면의 연구를 의무이다.
대뇌 피질은 고등인지 기능을 연결해줍니다. 이 여섯 계층 구조는 마지막으로 태어난 뉴런은 뇌의 1의 표면을 향해 첫 번째 태어난 뉴런 지났 마이 그 레이션하는 동안 첫 번째 태어난 뉴런은 뇌실에 가깝게 유지하는 내부 - 먼저, 외부 - 지난 방식에 생성됩니다. 의 연결을 마이 그 레이션이 이외에, 정상적인 대뇌 피질의 기능을위한 핵심 프로세스의 연결을 morphogenesis 3의 규정입니다. 의 연결을 morphogenesis는 기본 문화권의 체외에서 공부 할 수 있지만,이 프로세스가 조직 환경에서 규제하는 방식으로부터 배울 것이 많이 있습니다.
우리는 대뇌 피질 4,6의 organotypic 조각에의 연결을 마이 그 레이션 및 / 또는 morphogenesis을 분석하는 기법을 설명합니다. pSilencer 수정된 벡터는 이중 좌초된 머리 핀의 자형으로 RNA를 몰고 U6업자와 B를 구동 GFP 단백질을 암호화 별도의 표현 카세트를 모두 포함하는 데 사용됩니다또 CMV 프로 모터 7-9. 우리의 접근법은 후보 유전자의 특정 최저시 neurite 가지 결함의 신속한 평가를 허용하고 성공적으로 neurite의 파생물 8 규제에 대한 화면에 사용되었습니다. 세포만을 집합은 RNAi 구조를 표현하므로, organotypic 조각은 잠재 phenotypes의 모자이크 분석을 위해 수 있습니다. 이 분석은 생체내 환경의 가까운 근사치에 완료되기 때문에 더구나, 그것은 미지의 대뇌 피질 기능의 유전자에 대한 낮은 비용과 유전자 변형 또는 녹아웃 동물의 생성에 대한 빠른 대안을 제공합니다. 마지막으로 생체내의 electroporation 기술에 비해, 전직 생체내의 electroporation 실험의 성공 여부는 능숙하게 수술 기술 개발에 의존 아니므로 짧은 훈련 시간과 기술이 함께 수행할 수 있습니다.
1. (아니라 비디오) 문화 솔루션 및 미디어 준비하기
2. Organotypic 슬라이스 삽입을합니다 (동영상) 준비
3. (아니라 비디오) Electroporation 준비하기
4. 해부 및 Electroporation (동영상)
5. (비디오) 삽입 및 Electroporated Cortices의 Sectioning
6. 문화 Organotypic 조각의 분석 (동영상)
7. Organotypic 조각의 대체 파라핀의 임베딩합니다 (동영상)
8. 대표 결과
organotypic 조각의 murine 피질과 문화 electroporation의 도표 표현은 그림 1에 표시됩니다. 이 방법은 rapi를위한 유용한 전략입니다의 연결을 개발 11에 관련된 유전자의 기능의 D 평가. DNA electroporated의 양과 electroporation에서 배아 단계에 따라 transfection 효율이 달라집니다. 조각은 적어도 8시간 포스트 electroporation과 세포 문화 neurogenic 이벤트 (증식, 이주, 그리고 초기의 연결을 분화)의 정상적인 순서를 받게 될 것이다 GFP를 표현하기 시작합니다. 그림 2는 pSilencer-GFP 컨트롤을 표출하는 electroporated 뇌의 슬라이스를 보여줍니다 벡터와 하나의 연결을 progenitors, 마이 그 레이션 뉴런과 슬라이스의 차별화된 뉴런을 관찰하실 수 있습니다. 그들이 세포막에 좋은 미디어 에어 인터페이스에 유지하고 있으며 문화에 적어도 5 일 이내에 사용할 수있는 Organotypic 조각은 긴 것처럼 그들의 형태를 유지합니다.
1 그림. 전직 생체내의 electroporation과 organotypic 슬라이스의 삽화문화 분석. E14.5 배아 밖을 해부하고, 개별적으로 사출 사이트를 시각화하기 위해 빠른 녹색 색소가 섞인 DNA에 주입하고 있습니다. 측면 심실을 채우기 위해 그림에 또는 제 3 뇌실에 묘사된대로 DNA가 측면 심실 모두에서 주입 수 있습니다. 주사 후, 두뇌는 두뇌의 원하는 측면에 긍정적인 전극을 배치 평방 파도 electroporator로 electroporated있다. 두뇌는 3퍼센트 낮은 용융 점 아가로 오스와 vibratome를 사용 sectioned에 포함됩니다. 250 μm의 뇌 조각은 0.4 μm의 삽입에 위치하고 주일까지 배양해 있습니다. GFP는 8 시간 포스트 transfection 후 볼 수 있습니다.
그림 2. electroporated 뇌 슬라이스의 분석. Electroporated 뇌 조각이 Hoescht 위해 물들어 있었다. 등 부분의 피질 심실 구역 (VZ)에서 electroporated의 연결을 progenitors를 보여줍니다. corti의 뉴런칼 플레이트 (CP)는 한계 구역 (MZ)로 구분된 있습니다. 흰색 화살표가 이주 뉴런을 보여줍니다. 이 경우, 두뇌는 E15.5에 주입되었고 pSilencer GFP 제어 벡터와 electroporated. 섹션 4 일 electroporation 후 피질 explants를 나타냅니다. 스케일 바 100 μm의.
문제 해결 :
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이중 좌초된 RNA 헤어핀 8과 4는 몇 가지 뚜렷한 장점을 제공 organotypic 조각 문화 인코딩 plasmids의 전직 생체내의 electroporation을 포함한 이러한 방법. 첫째, 이러한 방법은 RNAi 파생 phenotypes의 신속한 평가를 위해 수 있습니다. 이중 좌초된 RNA의 머리핀을 운전 U6 프로 모터를 포함하는 동일한 pSilencer 벡터의 표현 카세트 인코딩 GFP의 포함은 RNAi 벡터와 electroporated 세포의 신속한 식별 및 ...
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우리는 공개 할게 없다.
우리는 pSil-GFP 만들어낸 그림 1의 그림에 대한 박사 Alper Uzun 및 공촛점 현미경을위한 Leduc Bioimaging 시설을 제공하는 박사 Shirin Bonni 감사드립니다. EMM은 버로우즈 Wellcome 기금, NARSAD 젊은 수사관 수상, 그리고 NIH NCRR 코브레 P20 RR018728-01에서 의학을위한 경력 수상에 의해 지원됩니다. SBL은 NIH NCRR 코브레 P20 RR018728-01에 의해 지원되며, PHS NRSA 5T32MH019118-20의 지원을 받았습니다.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
시약의 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
해밀턴 주사기 | 해밀턴 | 80,008 | 0.5 인치 길이 31 게이지, PT-4 (포인트 beveling 수준), 10μl 부피 |
플래티넘 tweezertrodes | BTX | 45-0489 | 5mm 크기 |
ECM830 electroporator | BTX | 45-0002 | |
BTX Footswitch | BTX | 45-0208 | ECM830 electroporator 함께 사용하기위한 |
블레이드 마이크로톰 진동 | LEICA | VT1000 S | |
6 - 삽입과 함께 사용하기 위해 잘 요리 | 매 | 353,502 | 삽입에 맞게 노치를 포함 |
조직 문화에 삽입 | 매 | 353,090 | 0.4 마이크로 미터 |
빠른 그린 | 시그마 | F7252 | |
낮은 녹는 아가로 오스 | 어부 | BP165-25 | DNA 학년 |
Laminin | 시그마 - 올드 리치 | L2020 | |
폴리-L-라이신 | 시그마 - 올드 리치 | P5899 | |
기저 중간 이글 | 시그마 알드리치 | B-1522 | |
칼슘과 MG없이 10X HBSS | GIBCO | 14180-046 | |
HEPES없는 산 | 시그마 - 올드 리치 | H4034 |
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