중금속과 미세 조류의 생산성에 다른 무기 오염 물질의 정량화

요약

Integration of microalgal cultivation with industrial flue gas will ultimately introduce heavy metals and other inorganic compounds into the growth media. This study presents a procedure used to determine the end fate and impact of heavy metals and inorganic contaminants on the growth of Nannochloropsis salina grown in photobioreactors.

초록

재생 연료에 대한 수요의 증가와 같은 미세 조류 등의 대체 원료의 가능성을 조사하는 연구가있다. 고유의 장점은 폐기물 높은 잠재적 인 수율, 비 경작지의 사용 및 통합을 포함한다. 미세 조류 대량 생산 시스템의 영양 요구는 배기 가스와 폐수로부터 영양분 이산화탄소 등의 산업 폐기물 자원으로 재배 시스템의 결합을 필요로 할 것이다. 이 폐기물에 존재하는 무기 오염 물질은 잠재적으로 부정적인 생산성과 제한 최종 사용에 영향을 미칠 미세 조류 바이오 매스의 생물 축적으로 이어질 수 있습니다. 이 연구는 충격의 실험 평가 및 Nannochloropsis의 살리나 성장에 14 무기 오염 물질 (AS, CD, 공동, CR, 구리, 수은, 망간, 니켈, 납 (SB), 셀레늄, 주석, V 및 아연)의 운명에 초점을 맞추고 . 미세 조류는 성장 M에서의 pH 7에서 984 μmol m ^-2 초에 조명 광 바이오 반응기에서 재배 ^-1 유지되었다수준의 무기 오염 물질로 오염 edia 상업적 석탄 연소 가스 시스템으로 볼 조성물을 기준으로 예상했다. 바이오 매스와 7 일간 성장 기간 말 매질에 존재 오염 분석적, 수은과 같이, CD 공동 CR, 구리, 망간, 니켈을위한 유도 결합 플라즈마 질량 분석을 통해 차가운​​ 증기를 원자 흡광 법으로 정량 하였다 납 (SB), 셀레늄, 주석, V 및 아연. 결과는 N.을 보여 살리나 이러한 오염물 도입 yieldwith 생물량 통계적 감소에 다중 금속 환경에 민감한 균주이다. 여기에 제시된 기술은 조류 성장을 정량화 및 무기 오염 물질의 운명을 결정하기에 적합.

서문

기존의 지상파 작물에 비해 더 높은 고유의 미세 조류는 태양 광 변환 효율 ^1,2- 인한 높은 생물량, 지질 및 수율을 달성하는 것으로 나타났다. 높은 생산성 속도에서 미세 조류의 배양은 외부 탄소원 등 다양한 영양소의 공급을 필요로한다. 이는 대규모 성장 설비 생산 비용을 최소화하기 위해 이러한 산업 연도 가스와 같은 산업 폐기물과 통합하고 동시에 환경 개선을 제공 할 것으로 기대된다. 산업 폐기물 탄소 기체 이산화탄소의 형태로 일반적으로 부정적인 미세 조류의 생산에 영향을 미칠 가능성이있는 오염 물질을 함유 할 수있다. 특히, 석탄 유래의 배기 가스를 포함한 다양한 오염 물질이 있지만 연소 생성물을 물과 이산화탄소뿐만 아니라 황 및 질소, 미세 먼지, 다이옥신과 퓨란 등의 유기 오염 물질의 산화물 및 무기 콘에 한정되지중금속 등 오염 물질도. 미세 조류의 생산성에 중금속으로 알려져 그들 중 일부와 무기물을 포함하여 이러한 오염 물질의 대부분의 영향은 탐구되지 않았다. 이러한 요소 중 일부는 적절한 농도의 영양분이 될 수 있지만 더 높은 농도에서 그들은 세포 기능 장애 및 사망 ^3를 생성 할 수 있습니다.

산업 연도 가스와 미세 조류의 통합은 직접 성장 배지 내로의 무기 오염 물질을 도입 할 가능성이있다. 석탄 기반의 배기 가스는 무기 요소 (예를 들면, CD, 공동, CR, 구리, 수은, 망간, 니켈, 납 (SB), 셀레늄, 주석, V 및 아연,로) 일부, 그 중 낮은에 다양한 농도에서의 숙박을 제공합니다 농도, 미세 조류의 성장을위한 영양분을 나타냅니다. 무기 오염 물질은 높은 친화력이 미세 조류에 결합하고 더 영양 운송을 통해 내부적으로 흡착 할 수있다. 일부 무기 오염물 (즉, CO, 구리, 아연 및 Mn)을 포함하는 효소의 일부를 형성 영양소광합성, 호흡 및 기타 기능 ^3,4에서 D. 그러나, 초과 금속 및 준 금속에 독성이 될 수 있습니다. 이러한 납, 카드뮴, 주석 (SB), 셀레늄로서 수은과 같은 다른 요소는 임의의 농도에서 세포의 기능을 지원하고 부정적인 배양 ^-3,5,6- 성장에 ^영향을 미칠 수있는 비 - 금속 영양소를 나타내는 알려져 있지 않다. 이러한 오염 물질의 임의의 존재는 미세 조류 세포 기능에 부정적인 영향을 생산할 수있는 잠재력을 가지고있다. 또한, 미세 조류 여러 금속의 상호 작용 성장 역학을 복잡하게하고 성장에 영향을 미칠 가능성이있다.

대규모 경제 직접 재배 시스템 ^7-19의 생산성에 연결되어있다. 이 질량의 99.9 및 99.4 %, 각각 ^20를 나타냅니다 더욱이, 개방 궤도 연못 (ORP) 또는 광 바이오 반응기 중의 미세 조류의 성장 시스템 (PBR) 중간 재활용이 중요하다. 미디어 무기 오염 물질의 존재는 궁극적으로 m을 제한 할icroalgae 생산성 인해 오염 물질 축적에 미디어의 재활용. 이 연구는 실험적으로, (CD, 공동, CR, 구리, 수은, 망간, 니켈, 납 (SB), 셀레늄, 주석, V 및 아연,로) 미세 조류 재배 시스템의 통합을 예상 농도에서 14 무기 오염 물질의 영향을 결정 석탄은 N의 생산성, 배기 가스를 유도로 살리나는 공수의 PBRS에서 성장. 이 연구에 사용 된 오염 물질은 석탄 기반의 연도 가스 그러나 생활 폐기물 기반 연도 가스, 바이오 솔리드 기반의 연도 가스, 하수, 생성 된 물, 장애인 지하수 및 해수 ^21-23에 존재하지 않을 것으로 나타났다. 본 연구에 사용 된 농도는 미세 조류 성장 시스템은 상업용 PBR 시스템 ^(20)에서 입증 흡수 효율 석탄계 CO ₂ 소스와 통합 된 경우 예상되는 것에 기초한다. 중금속 및 무기 오염 물질의 농도를지지 상세한 계산 Napan에 제시등. ²⁴ 분석 기술은 바이오 매스 미디어 환경에서 금속의 대부분의 분포를 이해하기 위해 사용되었다. 제시된 방법은 무기 오염 물질 스트레스와 최종 운명의 정량에서 미세 조류의 생산성 잠재력의 평가를 활성화.

프로토콜

1. 성장 시스템

그림 1. 미세 조류 성장 시스템. (A) 공기 rotometer, (B) CO ₂ rotometer, 솔레노이드 (C)의 pH 컨트롤러 (D) 데이터 로거, (E) - 라인 공기 필터 (F) 공기 분배 헤더, (사) 형광등 은행, (H)의 pH 미터, (I) 냉각 시스템, (J) 수조, (K) 열전대 와이어 (L) 에어 리프트 광 생물 반응기, (M) 히터 (N) 워크 인 연기 후드 (O) 벤트 (P) 공기 공급 모세관 (Q) 공기 필터 (R), 샘플링 관 (S) PBR 실리콘 덮개, 및 (T)실리콘 뚜껑 산도 잘. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

1. 다음과 같은 미세 조류 실험 성장 시스템 (그림 1)을 구축 할 수 있습니다.
   1. 유리관 반응기 직경 4.5 cm 및 실리콘 뚜껑 1.1 L의 배양 용량 높이 80cm 이루어진 열두 공수 PBRS 획득. 10cm (PBR 당 3), 길이 85cm (PBR 당 1)의 프리 컷 유리 모세관 (5mm 외경 및 내경 1mm)을 취득.
   2. -80 ° C 냉장고에 실리콘 뚜껑을 동결. 글리세롤과 드릴 비트를 윤활하고 뚜껑 드릴에게 환기, 샘플링 및 가스 공급 모세관 튜브를 호스팅 할 3 홀, 17 mm 직경의 1 구멍을 동결하는 동안의 pH 프로브를 호스팅 할 수 있습니다.
   3. PBR의 바닥에서 2cm 연장이 가장 긴 튜브와 장소에 3 모세관 튜브를 삽입합니다. 다른 모세관 튜브에 실리콘 튜브를 추가 WI원하는 샘플링 지점까지 연장하는 타단에 연결된 모세관 토륨. 실리콘 스토퍼 크기 21D와 pH 미터 용 구멍을 커버.
   4. 물을 통해 버블 링에 의해 대기를 가습 및 공기 분배 헤더에 가습 된 공기를 제공한다. 0.2 ㎛의 필터를 통해 가스를 전달하고 전달 긴 유리 모세관 튜브를 통해 조류 현탁액에 배달.
   5. 배양 현탁액에서 7.0 ± 0.1의 pH를 중성으로 유지하기 위해 습한 공기 스트림으로 압축 CO _{2을 전달한다.} 조류 문화의 pH 7.1에 도달하여 pH 6.9에서 닫을 때 자기 솔레노이드를 엽니 자동 _{이산화탄소} 약국 시스템 (PH 컨트롤러)와 _{이산화탄소} 전달의 속도를 제어 할 수 있습니다.
   6. 984 μmol 분 ^-2 초 ^-1 야외 조건 피크와 유사한 평균 조명 결과 24 T5 형광 램프를 사용하여 빛을 제공합니다.
   7. M하기 위해 물을 욕조에 PBRS을 담가약 25 ° C의 일정 온도를 aintain. 재순환 냉각 및 가열 자동화 재순환 수조 유닛 제어를 사용하여 시스템의 온도를 제어.
   8. 실시간으로 온도와 산도를 모니터링하고 데이터 로거에 기록한다.
   9. 미세 조류의 성장 시스템의 모든 구성 요소가 올바르게 특히 미세 조류 접종을 수확하거나 보존 할 수없는 등의 무기 오염 물질을 준비하기 전에, 작동하는지 확인합니다.

2. 실험실 도자기 준비

1. 비누와 수돗물로 부피 플라스크, PBRS, carboys하고 용기를 세척 할 것. 탈 이온수 (DW)와 린스.
2. 산 무기 오염물의 흔적을 제거하기 위해 랩웨어를 헹군다. 이 두 가지 방법 중 하나를 사용하여 수행 할 수 있습니다 :
   1. 호흡의 연기는, 농축 질산는 연기 ~이 심한 연소 및 유독 가스, 작업을 생성 할 수 있습니다하지 마십시오 실험실 도자기 O / N 10 %의 미량 금속 등급 질산 (주의 만끽니트릴 장갑, 고글 및 실험실 코트)를 사용하여 거라고.
   2. 50 %의 미량 금속 등급 질산에 15 분 동안 실험실 도자기를 만끽.
   3. DW 모든 산 제거했는지 확인하고 철저하게 3 회 이상 실험실 도자기를 씻어. 그것은 PBRS 철저, 특히 샘플링 튜브 및 모세관을 린스하는 것이 중요하다. 이렇게하지 ​​않으면 성장의 매체 가능한 억제의 산성화를 생성합니다. 모든 산을 검증하는 세정 수의 pH를 테스트가 제거되었다.
   4. 적어도 30 분 동안 120 ° C의 표준 대기압에서이를 오토 클레이브에 의해 PBRS, 용기 플라스크를 멸균.

3. N. 살리나 중간 준비

1. 솔루션의 준비 : 부분적으로 DW와 1 L 부피 플라스크를 입력합니다. 자기 교반 막대를 삽입하고 다른 한 후 표 1 일에 표시된 화학 물질을 추가 할 수 있습니다. 각각의 성분은 다음 성분을 첨가하기 전에 용해 있는지 확인합니다. 자석을 제거하고 일을 채우기1 리터 볼륨 마크에 전자 플라스크.

구성 요소	추가 금액 (G)	최종 농도 (G / L)
H 3 BO 3	0.900	0.900
나 2을 MoO 4 · 2H 2 O	0.012	0.012
MnCl 2 · 4H 2 O	0.300	0.300
ZnSO 4 · 7H 2 O	0.060	0.060
CuSO 4 · 5H 2 O	0.020	0.020

표 1. 해결책 레시피 수량 농축액 1 L의 제조에 필요한 양이다.

2. 비타민 용액의 조제 : 별도의 세 권에서umetric 플라스크 멸균 용기에 무균 0.2 μm의 주사기 필터를 통해 표 2에 나타낸 바와 같이. 비타민을 추가 각 비타민 용액 필터. 어둠 속에서 ° C ~ -4 비타민을 보존합니다.

비타민	양 (mg)을	최종 부피 (㎖)	최종 비타민 농도 (㎎ / ℓ)
비오틴	12.22	(500)	24.43
비타민 B12	13.50	(100)	135.00
티아민 염산염	977.63	(500)	1,955.27

표 2. 비타민 용액 레시피 수량 농축 SOLU의 제조에 필요한 양이다기.

3. 부분적으로 DW와 20 L 오토 클레이브 컨테이너를 작성하고 자기 교반 막대를 삽입합니다. 자기 교반 플레이트 위에 놓고, 용기 (비타민 제외) 표 3에 나타내는 화학 물질을 추가 한 후, 다른 각각 완전 용해 후 하나씩 추가. L. (20)에 도달하는 용기를 채우기

구성 요소	금액은 중간에 추가	단위
염화나트륨	350.00	G
염화칼슘 2 · 2H 2 O	3.00	G
KCl을	9.60	G
나 2 그런가 3 · 9H 2 O	1.14	G
황산 4 · 7H 2 O	29.60	G
KNO 3	20.40	G
KH 2 PO 4	1.36	G
암모늄 철 구연산	0.10	G
솔루션	20.00	ml의
비오틴 솔루션 *	818.00	μL
비타민 B12 용액 *	296.20	μL
티아민 염산염 용액 *	521.60	μL
* 냉각 멸균 미디어에 추가

표 3 : N. 살리나 매체 조리법. 수량은 영양이 풍부한 매체의 20 (L)의 제조에 필요한 양이다.

4. 30 ° C에서 120 분, 대기압에 대해 오토 클레이브에 의해 멸균 매체. 매체 쿠하자RT 아래로 L.
5. 자석 교반기 판에 용기를 놓습니다. 단계 3.2에서 제조 된 비타민을 추가하고 철저하게 매체 믹스를 할 수 있습니다.

4. 무기 오염 물질 재고 준비

1. 부분적으로 DW와 표 4에 표시된 용량 플라스크를 작성하고 나열된 개별 소금을 추가합니다. 필요한 최종 부피에 DW로 작성하고 철저하게 섞는다. 일부 요소가 벽을 플라스크에 흡착 이러한 주식을 보존하지 않음
   주의 : 염을 처리 할 때이 프로토콜에서 사용되는 여러 가지 무기 오염 물질, 발암 성 기형 및 돌연변이이며, 얼굴 마스크, 장갑 및 실험실 코트를 착용하십시오.

분석	소금 소스	주식의 볼륨을 준비하는 (L)	소금 플라스크에 추가(60); (mg의 소금)	분석 물질 농도가 추가로 배양 (mg의 분석 물 / L)
으로	NaAsO 2	0.1	14.8	7.74E-02
CD	을 CDCl3 2	0.5	13.5	1.50E-02
공동	의 CoCl2 · 6H 2 O	0.5	34.7	1.56E-02
CR	나 2 CR 2 O 7 · 2H 2 O	0.1	40.6	1.29E-01
구리	의 CuCl 2 · 2H 2 O	0.1	38.3	1.30E-01
수은	HgCl 2	1.0	14.6	9.80E-03
망간	MnCl 2 · 4H 2 O	0.1	58.8	1.49E-01
니켈	NiCl 2 · 6H 2 O	0.1	112.0	2.51E-01
납	PbCl 2	0.5	39.9	5.41E-02
SB	SB 2 O 3	0.5	26.7	4.06E-02
괜찮다	나 2 서 3	0.5	11.8	9.80E-03
주석	SnCl 2 · 2H 2 O	0.5	3.9	3.76E-03
V	V 2 O 5	0.1	22.2	1.13E-01
아연	ZnCl 2	0.1	99.9	4.36E-01

표 4 :. 1.1 L의 PBR 매체에이 집중 재고 1 ㎖의 고농도 무기 오염 물질의 재고 준비 추가는 마지막 열에 표시된 최종 농도를 생성합니다.

2. 멸균 0.2 μm의 주사기 필터를 통해 용액을 통과시켜 무기 오염물 축적량을 소독 멸균 튜브 여액을 모은다.

5. N. 살리나 접종 생산

1. 500㎖의 삼각 플라스크에 단계 3에서 제조 한 배지 200㎖를 추가 한 다음 한천 3g을 추가한다. 120 ℃에서 20 분 동안 알루미늄 포일과 함께 오토 클레이브 플라스크 커버. 멸균 페트리 접시에 솔루션을 붓고 굳은 때까지 냉각을 할 수 있습니다. 이는 무균 후드이거나 적어도 오염의 위험을 최소화하기 위해 깨끗한 환경에서 불꽃 근처 완료되어야한다.
2. 킬 N. 무균 배양-DIS에서 살리나 세포HES는 무균 접종 루프를 사용하여 단계 5.1에서 제조. 실온에서 유지 T12의 빛으로 조명 테이블에 페트리 접시 문화를 놓습니다. 식민지가 표시 될 때까지 미세 조류의 성장 보자.
3. 전송 식민지는 영양이 풍부한 배지 200㎖ 3 단계에서 준비하고 조명 흔드는 테이블 (1000 RPM)에 그들을 유지를 포함하는 삼각 플라스크를 당황 멸균한다. 매체가 녹색이 될 때까지 문화가 성장하자.
4. 1.1 L 멸균 PBR로 미세 조류를 전송합니다. 순환 냉각 장치 및 자동 난방 순환 수조 제어에 의해 23 ° C에서 200 μmol 분 ^-2 초 ^-1 T8 형광 조명 조명 유지 접종 물을 욕조에 PBR를 놓습니다. 각각 ^-1 인 min 분 ^-1 2.5 L 및 25 CC에 공기와 _{이산화탄소} rotometers를 조정합니다.
5. 새로운 매체를 포함하는 새로운 1 0.1 L의 PBRS로 성장 분할 바이오 매스의 주 후에는 건조 중량 바이오 매스되어 적어도 28g의 총까지 성장하자광학 밀도를 측정 할 수있는 두 반응기 사이를 얻을.
6. 오염을 방지하기 위해 멸균 원심 병 및 무균 기술을 사용하여 10 ° C에서 15 분 동안 2054 × g에서 원심 분리하여 접종 매스 수확. 뜨는 폐기하고 필요에 따라 세포 농도를 계속합니다.
7. 일단 모든 미생물을 원심 분리하여 신선한 멸균 배지 300 ㎖에 세포를 다시 일시.
8. DW 3ml를 미세 조류 배양에 0.1 mL로 희석하고 3 ml의 DW이 새로운 용액 0.1 mL로 희석한다. 샘플을 확인하는 것은 완전히 혼합이다. 750 nm에서의 미세 조류 농축 물의 광학 농도 (OD)를 측정한다 () 바로 분광 광도계.
9. (1) 정광에서의 바이오 매스의 양을 결정하는 방정식을 사용한다.
   식 (1) (N)에 대한 (G / ^L-1에) 총 부유 물질 대 사이의 선형 회귀로부터 얻은 : 참고 살리나 (R = 0.9995 ^2). 수학 식 1은 spectr 위해 개발 된다른 분광 광도계 모델을 사용하는 경우 자재 표 모델 ophotometer, 새로운 교정을 생성한다.
   1. 식을 이용하여 (2) (L)에 미세 조류 농축 물의 체적을 계산 (L)에 PBR 1.1 L의 부피 4g / L ^-1 배양 밀도를 얻기 위해 필요한.

10. 멸균 기법을 이용하여, 미세 조류의 부피가 4g / ^L-1의 초기 배양 밀도에 도달하기까지 멸균 된 PBR 단계 5.9에서 발견 농축액 추가. 6 PBRS이 접종 될 때까지 1.1 L. 중간과 PBR을 입력하면이 단계를 반복합니다. 접종 물을 욕조에 PBRS를 놓습니다.
11. PBRS에서 미세 조류 8 일 동안 성장하자 다음 (반복 단계 5.6-5.7로) 바이오 매스를 수확. 단계를 반복 5.8은 초기을 계산1g /의 ^L-1의 초기 문화 밀도 접종 볼륨.

6. 실험 원자로

1. 사용 멸균 기술은 12 산 세척 멸균 PBRS의 각 단계 3에서 제조 된 매체의 약 1 패를 추가합니다. 실험 성장 시스템의 수조에 PBRS를 놓습니다. ^-1 인 min 1.5 L에에 살포 공기를 돌립니다.
2. 70 % 에탄올로 세정하여 보정 된 pH 측정기를 소독. PBR 매질의 pH를 측정하여 pH가 약 7.0 인 보장; 하지 않을 경우, 2 단계를 반복은 산 세척 단계에서 걸러 산을 제거합니다.
3. 에탄올 (70 %)를 사용하여 프로브를 소독 한 다음 PBRS 뚜껑에 삽입, 완충액 pH 7을 이용하여 각각의 pH를 보정 컨트롤러.
4. (제어 PBRS 제외) 각 PBR에 오염 물질이 완전히 PBR에 혼합하자 4 단계에서 제조 된 멸균 무기 오염 물질의 주식 각 1 ㎖를 추가합니다. PBRS의 무기 오염 물질의 최종 농도는 쇼 아르N 표 4의 마지막 열에서와 석탄 화력 발전소 통합에서 추정 된 최대 농도를 것으로 예상된다.
5. 제어 PBRS에 멸균 DW의 14 ML을 추가합니다.
6. 1g / L의 ^-1의 초기 배양 밀도를 획득하기 위해 PBRS 실험을 5.11 단계에서 얻은 농축 된 미세 조류를 접종 추가. 철저 바이오 매스 믹스를 보자.
7. 높은 광 강도 등 (984 μmol m ^-2 초 ^-1)과의 산도 컨트롤러의 전원을 켜고 30 CC 최소 ¹ CO _2를 조정합니다. 50 공통 분에 _{이산화탄소} 흐름 ^-1 후 3 일에서을 높입니다. 초기 낮은 CO ₂ 유량으로 인해 가스 / 액체 전달 및 pH를 측정하여 pH 지연의 큰 변화를 피하기 위해 중요하다.
8. 측정하고 필요에 따라 샘플을 채취. 샘플링 후 수위를 표시해야합니다. (주의 : PBR의 일부 무기 오염 물질, 발암 성 기형 및 돌연변이이다; 사용 장갑과 CAPPED 용기) 샘플을 처리 할 때.
9. 증발로 인한 손실을 보상하기 위해 PBRS 매일 멸균 DW를 추가합니다.
10. 성장 7 일 후, 9,936 × g에서 원심 분리하여 바이오 매스 수확 및 -80 ° C에서, 둘, 바이오 매스 및 상층 액 매체를 보존 할 수 있습니다.
11. 0.1 밀리바 및 -50 ° 주식 / N에서 바이오 매스 건조 동결. 분말 바이오 매스 (원심 관 내부 분말 바이오 매스에 주걱을 사용). -80 ℃에서 동결 건조 바이오 매스를 보존합니다.

샘플의 소화 보조 7. 마이크로 웨이브

바이오 시료의 소화는 ICP-MS 분석을위한 전처리 단계로서 필요하다.
참고 :이 단계는 제어 압력 완화와 밀폐 용기 전자 레인지의 소화 시스템을 사용합니다. (주의 : 높은 압력, 산 소화 동안 개발 소화 용기 및 방패의 물리적 무결성을 검사하고 모든 사용하기 전에 마이크로파 분해 용기의 뚜껑을 바꿀).

1. 비누와 물로 씻을 것 테프론 전자 소화 선박, DW 씻어 선박을 건조 공기를 보자. 다음 단계에서 설명하는 바와 같이 용기에 미량의 금속 오염을 제거하기 위해서는 산 다이제스트.
2. 마이크로파 분해 용기의 뚜껑을 바꿀 단단히 병을 닫습니다.
3. 각각에 질산 10 ㎖를 추가합니다.
4. 안전 실드에서 선박을 소개합니다. 어떠한 미생물, 물이나 시약 안전 실드의 손상을 방지하기 위해 안전 실드의 벽에 또는 소화 용기 외벽에 남아 있지 않는지 확인. 안전 밸브는 유리 병에 봄이 높이가 확인한와 안전 실드를 모자. 캡 통풍구가 외부 행과 안쪽 내부 행에 바깥쪽으로 가리키는 회 전자의 방패를 찾습니다.
5. 선박 번호 하나에, 세라믹 보호관 및 온도 센서를 삽입합니다. 이 온도계 바이알에서 실내 온도를 모니터링하고 소화 PROGR을 실행 제어 매개 역할입니다. 유리 병 숫자 하나가 다른 유리 병 같은 시료와 시약 양이 포함되어 있는지 확인합니다.
6. 입력 소화 파라미터를 표 5에 도시되고 소화를 시작한다. 프로그램이 완료되면 그들은 실온에 도달 할 때까지, 공기는​​ 튜브를 냉각.

단계	세척 유리 병			샘플 소화
	온도 (℃)	시간 (분)	최대. 전력 (W)	온도 (℃)	시간 (분)	최대. 전력 (W)
1	RT 190	(25)	1,000	RT 180	(15)	1,000
(2)	(190)	(10)	1,000	(180)	(15)	1,000
배기	-	(20)	-	-	(20)	-

표 5 : 마이크로파 분해 과정에서 사용되는 변수.

7. 흄 후드 내부 캡 통풍구와 실드 캡의 압력 릴리프 도구를 사용하면 멀리 가리 삽입합니다. (: 바이오 매스 소화가 산을 사용 이후 흄 후드 내부에 항상 열려 소화 병이 유독 가스를 발생주의) 압력이 뚜껑을 열기 출시되면.
8. 산 폐기하십시오. DW는 3 회와 테프론 용기를 씻어. 건조 공기 튜브 보자.
9. 바이오 매스를 소화 전자 소화 용기에 동결 건조 바이오 매스의 50 mg의 추가합니다. 품질 관리 (QC)는 다음 유리 병을 준비 내용 : 추가 두 개의 서로 다른 유리 병에를 어느 레벨 7 ICPMS 5 ml의 또는 단계 9.1이 유리 병에서 10.1 (소화 솔루션에서 제조 레벨 7 수은 CVAAS 표준의 5 ml를 강화 실험실라고 빈 (LFB))는, 다른 유리 병 빈 (소화 솔루션을 떠나이 유리 병에서 실험실 시약라고 빈 (LRB)).
10. 중간 다이제스트 10 ml의에게 산 세척 전자 소화 선박을 건조 뜨는 매체를 추가합니다. 품질 관리 (QC)는 다음 바이알을 준비 두 가지 바이알 (10)을 추가 다른 바이알에 단계 9.1 및 10.1 (LFB이라고이 바이알로부터 분해 용액)에서 제조 된 레벨 7 ICPMS 또는 CVAAS 금속 표준 5 mL를 추가 DW의 ㎖ (이 바이알로부터 분해 된 용액 LRB라고 함)를.
11. 마이크로파 분해 용기의 뚜껑을 바꿀 단단히 병을 닫습니다.
12. 농축 트레이스 금속 등급 질산 7 mL를 각 바이알에 3 ㎖ 과산화수소를 추가한다. 부드럽게 용액 소용돌이에 의해 내용 균질화. (표 5에서 시료 소화 마이크로파 분해 파라미터를 사용) 7.7 단계 7.4를 반복함으로써, 바이알의 내용물 다이제스트.
13. 증가 복구를 위해 DW와 혈관을 세척, 25 mL의 용량 플라스크에 소화 샘플을 추가합니다. DW와 부피 플라스크를 채우마크.
14. 전송 덮인 용기에 샘플을 소화. 분석이 완료 될 때까지 4 ° C에서 샘플을 보존합니다. 이 연구 분석을 위해 수은과 다른 요소에 대한 3 일 이내에 같은 날에 이루어집니다.

8. 품질 관리 (QC) 샘플

참고 : 실험 샘플의 결과의 신뢰성을 보장하기 위해 품질 관리 샘플을 분석 할 수 있습니다.

1. 부분적으로 DW와 1 L 부피 플라스크 세척 산을 입력합니다. (이 솔루션은 또한 빈 솔루션이라고합니다) 집중 추적 금속 학년 질산의 280 ML을 추가하고 철저하게 혼합 (주의 : 항상 발열 반응이 폭력이 될 수있는 산에 물을 넣어 물에 산을 결코 추가하지 않음). 실온으로 냉각 솔루션을 보자.
2. 단계 7.9 및 7.10에서 제조 QC 샘플 외에 다음 QC 샘플을 준비한다.
   1. 계속 교정 확인 (CCV)은 다음을 참조 준비를위한 교정 표준 폴리스티렌 튜브 (채우기단계 9.2 및 10.1). CVAAS 랙 및 ICPMS ICPMS의 자동 시료 주입기의 표준 용액에 수은 표준 용액을 넣어.
   2. 계속 교정 빈 (CCB)의 경우 : 빈 (8.1 단계에서 제조 된 용액)와 두 폴리스티렌 튜브 (16 ml)에 입력합니다. 하나 CVAAS 랙에 샘플과 ICPMS의 자동 시료 주입기의 다른 샘플을 놓습니다.
   3. 실험실 강화 매트릭스 (LFM)의 경우 : 무작위로 샘플의 각 유형 (즉, 바이오 매스 또는 매체)에 대한 매 12 샘플 1 샘플을 선택하고 LFM을 준비하는 데 사용합니다. ICPMS 들어 폴리스티렌 튜브에 ICPMS 기준치 (7) 및 (또는 바이오 매스 매체 중 하나에서) 분해 시험 물질 3ml를 0.5ml를 추가.
   4. 내용을 혼합하고 ICPMS의 자동 시료 주입기에 튜브를 배치합니다. CVAAS 들어 폴리스티렌 튜브에 2 ㎖의 수은 기준치 (7) 및 (또는 바이오 매스 매체 중 하나에서) 분해 실험 예 6를 가하여. CVAAS 랙에 내용과 장소 튜브를 섞는다.
   5. 중복 된 샘플의 경우 : 무작위 적 1 샘플을 선택행렬의 각각의 유형에 대한 샘플 (12), Y (예를 들면, 바이오 매스, 중간 LFM 또는 희석 매트릭스)와 바이알 중복. ICPMS 오토 샘플러 또는 CVAAS 랙에 반복 튜브를 놓습니다.
   6. 중복 된 샘플의 경우 : 무작위로 매트릭스 (예를 들면, 바이오 매스, 중간, LFM 또는 희석 매트릭스)의 각 유형에 대해 매 12 샘플 1 샘플을 선택하고 병을 복제. ICPMS 오토 샘플러 또는 CVAAS 랙에 반복 튜브를 놓습니다.
3. 연구를위한 데이터 품질 기준을 정의합니다. 본 연구를 위해 이튼, Clesceri, 쌀과 그린버그 ^(25)에 의해 설립 된 품질 기준을 중복. 품질 관리를 위해 설립 매개 변수는 다음과 같습니다 ± 10 % ²⁵ ± 70-130% ⁽²⁵⁾ 내에서, LFB의 회수율 (%의 R) (납 및 Sb로, 설명을 참조하십시오의 제외), LFM 퍼센트 내에서 CCV에 대한 퍼센트의 차이 (% d 개) 회수 (%의 R) 75~125% ²⁵ 이내, 및 상대 퍼센트 차이 (RPD) ²⁵ ± 20 % 이내, 그리고 계속 CA방법보고 제한 (MRL) ²⁵ 이하 libration의 빈 (CCB). 단계 9.7에서 계산 방정식을 참조하십시오.

플라즈마 질량 분석 유도 결합 9. 정량화 (ICPMS)

1. 분석의 날, 폴리스티렌 튜브에 약 5 ml의 소화 샘플을 전송하고 ICPMS의 자동 시료 주입기에 배치합니다. 폴리스티렌 튜브에 소화 샘플의 약 15 ML을 추가하고 CVAAS 랙에 배치합니다.
2. 분석의 같은 날 교정 표준을 준비합니다. 구입 ICPMS에게 표준 용액을 추가하고 표 6에 설명 된대로 빈 (8.1 단계에서 제조 된 용액)와 리필 산 세척 용량 플라스크에 (재료 표에 표준 용액 설명을 참조).

매개 변수	레벨 1	레벨 2	레벨 3	레벨 4	레벨 5	레벨 6	레벨 7
구매 표준을 추가 할 (ML)	-	-	-	-	-	-	10.0
레벨 7을 추가 할 (ML)	0.0	1.0	2.5	5.0	20.0	25.0	-
최종 볼륨 * (㎖)	-	50.0	50.0	50.0	100.0	50.0	100.0
최종 농도 (μg의 / L)
75	0.0	2.0	5.0	10.0	20.0	50.0	(100)0.0
(111) 카드뮴	0.0	1.0	2.5	5.0	10.0	25.0	50.0
59 공동	0.0	10.0	25.0	50.0	100.0	250.0	500.0
52 CR	0.0	2.0	5.0	10.0	20.0	50.0	100.0
(63) 구리	0.0	5.0	12.5	25.0	50.0	125.0	250.0
55 망간	0.0	3.0	7.5	15.0	30.0	75.0	150.0
60 니켈	0.0	8.0	20.0	40.0	80.0	200.0	400.0
208 납	0.0	1.0	2.5	5.0	10.0	25.0	50.0
(121)의 Sb	0.0	12.0	30.0	60.0	120.0	300.0	600.0
51 V	0.0	10.0	25.0	50.0	100.0	250.0	500.0
(66) 아연	0.0	4.0	10.0	20.0	40.0	100.0	200.0
* 단계 8.1에서 제조 한 용액을 첨가하여 볼륨을 달성

표 6 : 교정 표준의 농도 7 레벨 1..

3. ICPMS에서 콘을 제거하고 DW 1 분을 초음파 처리. 콘을 건조하고 악기를 다시 넣습니다.
4. 물 냉각 장치를 켜고, 가스 (AR, H _2, 그는), ICPMS, 내부 표준 플러그 라인 및 자동 샘플러 린스 용기 작성 (DW, 10 % 질산을 1 % 질산 + 0.5 % 염산) .
5. 표 7에 매개 변수를 설정하는 방법을 서비스 MassHunter 워크 스테이션 소프트웨어를 열고 플라즈마, 조정 ICPMS 켜고로드합니다.

매개 변수	값
내부 표준	72 창, 115
RF 전력	1,500 W
플라즈마 가스 유량	14.98
분무기 가스 유량	1.1 L / 분 (캐리어와 희석 가스는 결합 - 0.6 + 0.5 L / 분)
샘플링 콘	X 렌즈 니켈
스키머 콘	니켈
샘플 흡수율	0.3 RPS
분무기 펌프	0.1 RPS
S / C의 온도	2 ° C
검색 조건	시간 1 초, 복제 3의 수를 드웰
H 2 가스 유동	N / A
그는 가스 유동	4.3 ㎖ / 분

도표 7 : ICPMS 작동 조건.

6. 자동 시료 주입기에 교정 표준, 품질 관리 샘플 및 실험 샘플을 놓습니다. ICPMS 소프트웨어의 분석 순서를 추가하고 샘플을 분석 할 수 있습니다. 소자가 이온화되어 플라즈마 기기 내부 샘플 대기음. 그런 다음 진공 카운터 이온을 철회. 가벼운 이온으로부터 무거운 그들의 원자량에 따라 구분된다.
   주의 : 위험한 봉쇄에 ICPMS 폐기물 수집 및 처리를 위해 적절하게 처리 할 수​​ 있습니다.
7. 각각의 금속 또는 메탈 로이드 용 검량선의 상관 계수 (R)의 값은 0.995 ^(24)보다 큰 것으로 확인.
8. 6 ^(26)에 식 (3)에 설명 된 바와 같이 샘플 분석시 %의 R, %의 D 및 RPD를 계산하여 8.3 프로젝트 데이터 품질 기준에 대한 결과를 비교한다.
   1. 회수율 (%의 R) 실험실 강화 즐에서 획득 / 손실을 결정하기 위해 계산실험실 강화 매트릭스 (LFM)에서 NK (LFB)와 매트릭스 간섭.

2. CCV 샘플을 실행할 때 시간 기기 성능의 변화를 결정하는 퍼센트 차이 (%의 D)을 계산한다.

3. 실험 샘플을 실행하는 경우에있어서의 시간 정밀도에서의 변화를 결정하는 상대 퍼센트 차이 (RPD)를 계산.

9. 3 (샘플 : DW) 매트릭스 간섭 (허용 범위를 벗어 %의 R)을 줄이기 위해 비율을 1 % 가난한 연구를위한 샘플을 희석.

10. 콜드 증기 원자 흡수 분광 광도계에 의한 수은 정량 (CVAAS)

1. 교정 표준 분석의 같은 날을 준비합니다. 100ml의 메스 플라스크에 구입 수은 표준 용액 1 ㎖를 첨가하여 구입 수은 표준 희석하고, 단계 8.1에서 제조 한 용액으로 채운다.
   1. (이 새로운 솔루션은 레벨 7 수은 표준) 100 ㎖ 용량 플라스크에이 용액 2.5 ML을 추가하고 단계 8.1에서 제조 된 용액을 입력합니다. 부피 플라스크에 희석 레벨 7 수은 표준을 추가하고 공백 채우기 (8.1 단계에서 제조 된 솔루션을 제공합니다.) 표 8 (재료 표 구입 수은 표준 용액의 설명 참조)에 설명 된대로.

매개 변수	레벨 1	레벨 2	레벨 3	레벨 4	레벨 5	레벨 6
L7 수은 표준 추가 할 (ML)	0	1	2.5	(5)	(20)	(25)
최종 볼륨 * (㎖)	-	(50)	(50)	(50)	(100)	(50)
최종 농도 (μg의 / L)	0	0.5	1.25	2.5	(5)	12.5
* 단계 8.1에서 제조 한 용액을 첨가하여 볼륨을 달성

도표 8 : 수은 표준 용액의 농도 6 레벨 1..

2. Ar 가스와 공기 밸브를 열고, 원자 Absorp를 켭니다기 분광 광도계와 흐름 주입 원자 분광학 (FIAS). , CVAAS Winlab 소프트웨어를 열고 수은 램프를 켜고 소프트웨어의 에너지 매개 변수가 79로드 표 9의 매개 변수와 수은 분석을위한 프로그램에 도달 할 때까지 따뜻하게 할 수 있습니다. 최대 투과율을 제공하는 기기에서 빛의 경로를 조정합니다.

매개 변수	값
캐리어 가스	아르곤, 100 ㎖ / 분
램프	수은 무 전극 방전 램프, 185mA에서 설치
파장	253.7 nm의
슬릿	0.7 nm의
셀 온도	100 ° C
샘플 볼륨	500 μL
반송파	3 % 염산, 9.23 ㎖ / 분
환원제	10 % SnCl 2, 5.31 ㎖ / 분
측정	피크 높이
복제 읽기	3

도표 9 : CVAAS 작동 조건.

3. 3 %의 미량 금속 등급 염산으로 만든 캐리어 솔루션 라인을 연결합니다.
4. 3 %의 미량 금속 등급 염산 (수은 분석에 적합) 10 % 염화 주석 이루어지는 환원제 용액에 선을 연결. 이 대기 중 산화하는 경향으로이 솔루션을 분석 같은 날을 준비 (주의 : 주석 염화물은 매우 위험합니다, 그것은 작업을 할 때 보호 마모를 사용 위험 봉쇄에 CVAAS 폐기물을 수집하고 적절하게 폐기하십시오.).
5. CVAAS Winlab 소프트웨어의 CVAAS 랙 및 입력 순서에 따라 수은 표준, 품질 관리 샘플 및 실험 샘플을 놓습니다. 표준 실행하고 교정 방정식을 생성합니다.
6. 실행 품질 관리 샘PLES 실험 샘플. CVAAS 악기로 샘플의 약 5 mL를 그립니다, 원소 수은 (수은 ⁰⁾ 가스 시료의 수은 선물을 줄이고 폐쇄 시스템의 캐리어 가스 (AR)과 솔루션에서 가스를 제거합니다. 수은 증기 램프는 수은 광로의 셀을 통과한다. 검출기는 253.7 nm에서 흡수되는 빛의 농도를 결정하고 그것을 연관. (주의 : 수은 증기는 독성, 악기 배기 후드가 제자리에 있는지 확인).
7. 분석 기간 동안 단계 9.7 %의 R % D와 RPD를 계산하고, 프로젝트 데이터 품질 기준과 결과를 비교.

결과

바이오 매스 수율

N의 생산 살리나 본 연구에 사용한 PBR 시스템에서 8.5까지 1g / L ^-1에서 ± 0.19 g / ^L-1 (N = 12) 대조군 반응기 및 4.0 ± 0.3 g / ℓ ^-1 (N = 12)을 성장 다중 금속은 7 일 오염. 실험은 세중 원자로 및 여러 배치에 걸쳐 반복 데이터를 생산. 그림 2A는 3 개의 독립적 인 PBRS에서 샘플링을 기반으로 매우 작은 표준 오차와 평?...

토론

식염수 미세 조류의 N. 살리나 성공적으로 반복 가능한 결과와 높은 바이오 매스 수율 설계 성장 시스템에서 재배 할 수있다. 공수는 7 일 성장 기간 동안 최소한의 정착 또는의 생물 연료와 잘 혼합 중지 문화 허용 혼합. 형광등 은행에서 최소한의 빛의 변화는 성장에 눈에 띄는 차이를 생산하지 표시됩니다.

이 연구는 중금속 석탄 연소 가스에 부정적인 영향을 바이오...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Chemicals
Sodium chloride	Fisher Scientific	S271-3
Calcium chloride dihydrate	Fisher Scientific	C79-500
Potassium chloride	Fisher Scientific	P217-500
Sodium meta silicate nonahydrate	Fisher Scientific	S408-500
Magnesium sulfate heptahydrate	Fisher Scientific	M63-500
Potassium nitrate	EMD Chemical	PX1520-5
Potassium phosphate monobasic	Fisher Scientific	P285-500
Ammonium ferric citrate	Fisher Scientific	I72-500
Boric acid	Fisher Scientific	A73-500
Sodium molybdate, dihydrate	EMD Chemical	SX0650-2
Manganese chloride tetrahydrate	Fisher Scientific	M87-500
Zinc sulfate heptahydrate	Fisher Scientific	Z68-500
Cupric sulfate pentahydrate	Fisher Scientific	C489-500
Biotin	Acros Organics	230090010
Thiamine	Acros Organics	148990100
Vitamin B12	Acros Organics	405920010
Copper (II) chloride dihydrate	Sigma-Aldrich	221783-100G	Irritant, Dangerous to the Environment
Lead (II) chloride	Sigma-Aldrich	268690-250G	Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium dichromate dihydrate	Sigma-Aldrich	398063-100G	Oxidizing, Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Cobalt (II) chloride hexahydrate	Sigma-Aldrich	255599-100G	Toxic, Dangerous to the Environment
Nickel (II) chloride hexahydrate	Sigma-Aldrich	223387-500G	Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium (meta) arsenite	Sigma-Aldrich	71287	Toxic, Dangerous to the Environment
Cadmium chloride	Sigma-Aldrich	202908-10G	Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Mercury (II) chloride	Sigma-Aldrich	215465-100G	Toxic, Dangerous to the Environment
Tin (II) chloride dihydrate	Fisher Scientific	T142-500	Corrosive. Suitable for Hg analysis. Very hazardous.
Manganese chloride tetrahydrate	Fisher Scientific	M87-500
Vanadium (V) oxide	Acros Organics	206422500	Dangerous to the Environment
Carbon dioxide	Air Liquide	I2301S-1	Compressed
Hydrogen peroxide	H325-500	Fisher Scientific	30% in water
ICP-MS standard	ICP-MS-6020	High Purity Standards
Mercury standard	CGHG1-1	Inorganic Ventures	1000±6 µg/mL in 5% nitric acid
Argon	Air Liquide		Compressed
Helium	Air Liquide		Compressed, ultra high purity
Hydrogen	Air Liquide		Compressed, ultra high purity
Nitric acid	Fisher Scientific	A509-P212	67-70% nitric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Hydrochloric acid	Fisher Scientific	A508-P212	35% hydrochloric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Equipment
Scientific prevacuum sterilizer	Steris	31626A	SV-120
Centrifuge	Thermo Fisher	46910	RC-6 Plus
Spectrophotometer	Shimadzu	1867	UV-1800
pH controller	Hanna	BL981411	X4
Rotometer, X5	Dwyer	RMA-151-SSV	T31Y
Rotometer, X5	Dwyer	RMA-26-SSV	T35Y
Water bath circulator	Fisher Scientific	13-873-45A
Compact chiller	VWR	13270-120
Freeze dryer	Labconco	7752020
Stir plate	Fisher Scientific	11-100-49S
pH lab electrode	Phidgets Inc	3550
Inductively coupled plasma mass spectrometer	Agilent Technologies	7700 Series ICP-MS	Attached to autosampler CETAC ASX-520
FIAS 100	Perkin Elmer Instruments	B0506520
Atomic absorption spectrometer	Perkin Elmer Instruments	AAnalyst 800
Cell heater (quartz)	Perkin Elmer Instruments	B3120397
Microwave	Milestone		Programmable, maximum power 1,200 W
Microwave rotor	Milestone		Rotor with 24-75 ml Teflon vessels for closed-vessel microwave assisted digestion.
Materials
0.2 μm syringe filter	Whatman	6713-0425
0.2 μm syringe filter	Whatman	6713-1650
0.45 μm syringe filter	Thermo Fisher	F2500-3
Polystyrene tubes	Evergreen	222-2094-050	17 x 100 mm w/cap, 16 ml, polysteryne
Octogonal magnetic stir bars	Fisher scientific	14-513-60	Magnets encased in PTFE fluoropolymer