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요약

여기, 우리 유도 대 한 프로토콜의 시리즈 및 경작된 한 세포에 세포 노화의 유효성 검사를 설명합니다. 우리는 다른 노화 유도 자극에 집중 하 고 일반적인 노화 관련 마커의 정량화를 설명. 우리 모델, 섬유 아 세포를 사용 하 여 기술 정보를 제공 하지만 프로토콜은 다양 한 휴대 전화 모델에 적용할 수 있습니다.

초록

세포 노화의 영구 세포 주기 검거 다른 손상 자극에 반응에서 활성화 상태입니다. 세포 노화의 활성화는 다양 한 병 태 생리 조건 종양 억제, 조직 리 모델링 및 노화 등의 특징입니다. Vivo에서 세포 노화의 inducers는 아직도 가난 하 게 특징 이다. 그러나, 자극의 수 ex vivo세포 노화 촉진 사용할 수 있습니다. 그 중 가장 일반적인 노화-inducers 일차 피로, 이온화 및 비 이온화 방사선, 차적인 약물, 산화 스트레스, 그리고 demethylating와 acetylating 대리인 있습니다. 여기, 우리가 노화에 섬유 아 세포를 유도 하는 것이 자극을 사용 하는 방법에 자세한 지침을 제공 합니다. 이 프로토콜은 쉽게 1 차 셀 및 셀 라인, 암 세포를 포함 하 여 다른 유형의 적용할 수 있습니다. 우리는 또한 노화 유도의 유효성 검사를 위해 다른 방법을 설명합니다. 특히, 우리는 lysosomal 효소 노화 관련 된 β-galactosidase (SA-β-gal), 5-ethynyl-2'-deoxyuridine (듀) 합동 분석 결과, 세포 주기 식의 레벨을 사용 하 여 DNA 합성의 속도의 활동을 측정에 초점 억제제 p16, p21, 식 그리고의 Senescence-Associated 분 비 형 (SASP)의 분 비. 마지막으로, 우리 예제에서는 결과 제공 하 고 이러한 프로토콜의 응용 프로그램을 추가 논의.

서문

1961 년, Hayflick와 무어 헤드 문화에 기본 fibroblasts 연속 구절1후 그들의 증식 잠재력을 잃고 보고. 이 프로세스는 각 세포 분열 후 telomeres의 순차 단축에 의해 발생 합니다. Telomeres 비판적으로 짧은 길이 도달, 그들은 활성화 확산의 돌이킬 수 없는 체포 하는 DNA 손상 응답 (DDR)에 의해 인식 됩니다-또한 일차 노 쇠로 정의. 일차 노화 현재 구분 mitogens와 apoptotic 신호2,3셀을 렌더링 하는 영구 세포 주기 검거의 상태를 유도 하는 것으로 알려져 있습니다 많은 자극 중 하나입니다. 노화 프로그램은 일반적으로 높은 lysosomal 활동, 미토 콘 드 리아 기능 장애, 핵 변화, chromatin 재배열, 바인딩과 그물 스트레스, DNA 손상 및 노화 관련을 포함 하 여 추가 기능 특징 분 비 형 (SASP)3,4. 노화 세포는 신체에 여러 기능을가지고: 개발, 상처 치유 및 종양 억제2. 똑같이, 그들은 노화와, 역설적으로, 종양 진행5에서 중요 한 역할을 알려져 있습니다. 노화의 부정, 그리고 부분적으로 모순 된 효과 종종 SASP6에 기인 된다.

최근에, 그것은 생쥐에서 노화 세포의 수명 연장 하 고 노화 기능7,,89,10,11, 의 많은 것의 제거에 지도 표시 했다 12. 같은 방식으로, 여러 약물 개발 되었습니다 하거나 노화 세포 (senolytics)를 제거 하거나 대상 SASP13,14. 안티 에이징 치료 잠재력 최근 분야에 더 많은 관심을 모으고 있다.

세포 노화에 관련 된 메커니즘의 연구 그리고 약리학 내정간섭에 대 한 검 진 무 겁 게 비보 전 모델, 특히 인간의 기본 fibroblasts에 의존. 노화 표현 형에 있는 큰 가변성 관찰 이며 셀 유형, 자극 및 시간 포인트3,15, 등 다양 한 요인에 따라 다양 한 노화 inducers에 의해 활성화 하는 몇 가지 일반적인 기능을 확인 하 고는, 16,17. 공부 및 노화 세포를 대상으로 고려 하는 것이 필수적입니다. 따라서,이 프로토콜 일련의 다른 치료를 사용 하 여 기본 섬유 아 세포에서 노화를 유도 하는 데 사용 하는 메서드를 제공 하는 것을 목표로. 로 설명 될 것입니다 방법을 쉽게 다른 셀 형식에 적용할 수 있습니다.

일차 노화 외에도 다른 5 노화 유도 치료 설명: 이온화 방사선, 자외선 (UV) 방사선, 독 소 루비, 산화 긴장 및 epigenetic 변화 (즉 histone acetylation 또는 DNA demethylation의 진흥) . 둘 다, 이온화 방사선 및 자외선 직접적인 DNA 손상 그리고, 적절 한 복용량에 트리거 노화18,19. 독 소 루비 또한 DNA 손상을 통해 주로 노화 DNA로 intercalating 하 여 원인과 topoisomerase II 기능을 방해 하 고 따라서 중단 DNA 수리 메커니즘20. 노화에 대 한 필수적인 유전자의 표현은 일반적으로 histone acetylation와 DNA 메 틸 화에 의해 제어 됩니다. 결과적으로, DNA demethylating (예를 들어, 5-아 자) 에이전트 및 히스톤 deacetylase 억제제 (예를 들면, 나트륨 낙 산 염 및 사 하) 그렇지 않으면 정상 세포21,22노화를 트리거합니다.

마지막으로, 노화 세포에 관련 된 가장 일반적인 마커의 4 설명 될 것 이다:는 노화 관련-β-galactosidase (SA-β-gal) 듀 합동 분석 결과, 세포 주기 규칙의 overexpression에 의해 DNA 종합의 비율의 활동 및  종속 kinase 억제제 p16, p21, 및 overexpression 멤버는 SASP의 분 비

프로토콜

1. 일반 준비

  1. D 10 매체를 준비 합니다. DMEM 매체-Glutamax 10 %FBS 1% 페니실린/스와 보충 (최종 농도: 100 U/mL).
  2. 살 균 PBS를 준비 합니다. 제조업체의 지침에 따라 물에 정제 분해. 압력솥에 의해 소독.
  3. 1 x 트립 신을 준비 합니다. 트립 신-Versene EDTA/10의 5 mL를 희석 1:10 살 균 PBS의 45 mL에 x.
    참고: 프로토콜을 통해 우리가 사용 하 여 가까이 있는 셀 문화 조건에 생리 적인 기본 fibroblasts에 대 한 조건. 이 의미는 우리가 품 어 37 ° C, 5% CO2 셀 5% O2 "표준" 20 %O 일반적으로 수행 하지만 사용은2.
  4. 층 류 흐름 후드, 실험실 코트와 장갑을 사용 하 여 메 마른 조건에서 모든 샘플을 처리 합니다. 처리 되는 동안에 20% O2 (룸 조건)에서 세포를 유지.

2입니다. 노화의 유도

  1. 일차 노화
    1. 셀 또는 그들과 접촉 될 모든 자료를 처리 하는 동안 (pipets, 플라스 크, 미디어, 등) 무 균 조건 하에서 층 류 후드, 실험실 코트와 장갑을 사용 하 여 작동. 처리 되는 동안에 20% O2 (룸 조건)에서 세포를 유지.
    2. 7 x 105 가능한 기본 섬유 아 세포 T75 플라스 크 (~9.3 x 103 셀/cm2) 포함 하는 d 10의 10 mL (PD)를 두 배로 낮은 인구에 씨앗
    3. 70-80% 합류 (낮은 PD에 문화 확산에 대 한 3-4 일)에 도달할 때까지 5% CO2 와 5% O2 37 ° C에서 셀 인큐베이터에서 세포를 성장 한다.
    4. 트립 신, 잠복기 ~ 5-7에 대 한 x 1의 3 mL를 사용 하 여 셀을 분리 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에서 분. 파견 프로세스를 확인 하려면 셀 문화 현미경으로 세포를 정기적으로 모니터링 합니다.
    5. 셀은 구형, d 10의 9 mL를 추가 하 여 트립 신 반응 하지. 마십시오 하지 품 어 10 분 이상.
    6. 파편과 작은 입자는 상쾌한에 남아 있을 것 이다 하는 동안 5 분 셀 튜브의 하단에 펠 릿 형성에 대 한 300 x g 에서 세포를 스핀.
    7. 제거는 상쾌한 고 셀 펠 릿 d 10의 1 mL에 녹이 고 수동 계산에 대 한 제조업체의 지침 또는 Neubauer 챔버 자동된 셀 카운터를 사용 하 여 셀 수를 수행. 하는 동안 (예를 들어, Trypan 블루 제외23) 세포의 생존 능력을 확인 하는 분석 결과 포함 합니다.
    8. 이 수식을 사용 하 여 누적 PD를 계산.
      새로운 PD = 3.32* (LOG(cell number total)-(로그 (휴대폰 번호 시드)) + PDold
      총 수를 셀 = 모든 셀 계산: 죽은 살아.
      시드 번호 셀 = 수 가능한 셀 시드 (8 × 105 ).
      오래 된 PD = 인구 뿌리기의 순간에 두 배로.
      새로운 PD = 인구 (부 화) 후 세의 순간에 두 배로.
      참고: 경우 7 x 105 기본 섬유 아 세포 (PD 35.2) 했다 T-75 플라스 크에 시드, 4 일 후 그들은 80% 합류를 도달 하 고 다시 분할 세 지금 1.3 x 106 총 세포 (죽은 + 살아있는).
      새로운 PD = 3.32* (LOG(1,300,000 cells)-LOG(700,000)) + 35.2
      새로운 PD = 36.1
    9. 8 × 105 셀 새로운 T75 2.1.2–2.1.8 단계를 반복을 다시 시드하십시오.
      참고: 여러 개의 연속 통행 후 문화 소요 됩니다 셀 분할 전혀 멈출 때까지 confluent 얻을 하는 데 시간이 오래. 일단 세포 분열을 중지, 노화 마커 및 다운스트림 응용 프로그램에 대 한 수확에 대 한 테스트.
    10. 노화 세포의 더 큰 크기 전체 표시 하 여 아직 낮은 셀 수가 문화를 발생할 수 있습니다는 것이 좋습니다. 따라서, 노화 PD 안정적 이며 다른 노화 마커 문화에 표시 하는 때 추측 될 수 있다 (참조 프로토콜 3.1-3.5).
      참고: 기본 섬유 아 세포 확산을 사용 하 여 제어.
  2. 이온화 방사선-유도 노화
    1. 셀 또는 그들 (pipets, 플라스 크, 미디어, 등)에 접촉 될 모든 자료 처리, 층 류 후드, 실험실 코트와 장갑을 사용 하 여 무 균 조건 하에서 작동 합니다. 처리 되는 동안에 20% O2 (룸 조건)에서 세포를 유지.
    2. 7 x 105 가능한 기본 fibroblasts T75 플라스 크 (~9.3 x 103 셀/cm2)에서 낮은 PD에서 d 10의 10 mL를 포함 된 씨앗
    3. 셀 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에 밤새 품 어.
    4. 사용 중인 컴퓨터의 지시에 따라 감마 방사선의 10 회색 셀을 표시 합니다.
    5. 세포에서 매체를 발음 하 고 d 10의 10 mL를 바꿉니다.
    6. 다른 매체를 정기적으로 교체 하는 10 일, 3 일 마다 약 5% CO2 와 5% O2 37 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에서 d 10의 10 mL에 셀을 품 어.
    7. 10 일 후 노화 표식에 대 한 테스트 하거나 다운스트림 응용 프로그램에 대 한 셀을 사용 합니다.
      참고: 제어로 확산 기본 섬유 아 세포 (조사) 하기 전에 같은 PD의를 사용 합니다.
  3. 자외선 (UV) 방사선-유도 된 노화
    1. 셀 또는 그들 (pipets, 플라스 크, 미디어, 등)에 접촉 될 모든 자료 처리, 층 류 후드, 실험실 코트와 장갑을 사용 하 여 무 균 조건 하에서 작동 합니다. 처리 되는 동안에 20% O2 (룸 조건)에서 세포를 유지.
    2. 105 가능한 기본 fibroblasts에 6 잘 플레이트 (1.5-2.0 x 104 셀/cm2)의 한 잘 낮은 PD에 x 씨 1.5-2 d 10 매체의 2 개 mL를 추가합니다.
    3. 5% CO2 와 5% O2 37 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에 셀을 배치 하 고 적어도 5 h에 대 한 플라스틱을 준수 하도록 허용.
    4. 세포에서 매체를 벗어. 자외선 챔버 중간 6-잘 접시를 놓고 플라스틱 뚜껑을 벗고. UVB, 20-30 mJ/cm2와 비추는.
    5. 잘 당 매체의 2 개 mL를 추가 합니다.
    6. 다른 매체를 정기적으로 교체 하는 7 일, 3 일 마다 약 5% CO2 와 5% O2 37 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에서 d 10의 2 mL에 셀을 품 어.
      참고: 7 일 후 세포 노화 마커 테스트 고 다운스트림 응용 프로그램에 사용. 확산 기본 섬유 아 세포 (조사) 하기 전에 같은 PD의를 사용 하 여 제어.
  4. 독 소 루비-유도 노화
    1. 독 소 루비 재고 솔루션 x 1000 준비: 1 x PBS에서 독 소 루비의 250 µ M 재고, 필터-솔루션 및 무 균 튜브 당 500 µ L에 약 수를 소독. 독 소 루비 재고-80 ° c.에서 저장
    2. 셀 또는 그들 (pipets, 플라스 크, 미디어, 등)에 접촉 될 모든 자료 처리, 층 류 후드, 실험실 코트와 장갑을 사용 하 여 무 균 조건 하에서 작동 합니다. 처리 되는 동안에 20% O2 (룸 조건)에서 세포를 유지.
    3. 7 x 105 가능한 기본 fibroblasts T75 플라스 크 (~9.3 x 103 셀/cm2)에서 낮은 PD에서 d 10의 10 mL를 포함 된 씨앗
    4. 셀 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에 밤새 품 어.
    5. 독 소 루비 재고 솔루션의 최종 농도에 d 10의 11 ml x 1000의 11 µ L를 희석 250 nM.
    6. 세포에서 매체를 발음 하 고 d 10 + 독 소 루비의 10 mL를 바꿉니다.
    7. 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에 정확히 24 h에 대 한 셀을 품 어.
    8. 세포에서 매체를 발음 하 고 신중 하 게 한 번 d 10의 10 mL로 씻어.
    9. 다른 매체를 정기적으로 교체 하는 6 일, 3 일 마다 약 10 mL D10 셀을 품 어.
    10. 7 일에 노화 표식에 대 한 테스트 및/또는 다운스트림 응용 프로그램에 대 한 사용.
      참고: 제어, 사용 차량 (PBS) 1:1,000 d 10에서 24 h에 대 한 치료 같은 PD의 기본 섬유 아 세포 확산으로.
  5. 산화 스트레스 유발 노화
    1. 셀 또는 그들과 접촉 될 모든 자료를 처리 하는 동안 (pipets, 플라스 크, 미디어, 등) 무 균 조건 하에서 층 류 후드, 실험실 코트와 장갑을 사용 하 여 작동. 처리 되는 동안에 20% O2 (룸 조건)에서 세포를 유지.
    2. 7 x 105 가능한 기본 fibroblasts T75 플라스 크 (~9.3 x 103 셀/cm2)에서 낮은 PD에서 d 10의 10 mL를 포함 된 씨앗
    3. 셀 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 인큐베이터에 밤새 품 어.
    4. 30%의 과산화 수소의 22.6 μ d 10의 11 mL에 추가 하 여 ~ 200 μ M의 d 10 매체에 과산화 수소 솔루션을 준비 합니다.
      참고: 독성 평가 곡선 복용량 응답 함으로써 관심의 세포 유형에 대 한 치료를 최적화 합니다.
    5. 세포에서 매체를 발음 하 고 갓된 D10 중간 + 과산화 수소의 10 mL를 추가 합니다. 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 2 시간에 대 한 품 어.
    6. 세포에서 매체를 발음 하 고 신선한 d 10 없이 과산화 수소와 함께 한 번 씻어.
    7. D 10 없이 과산화 수소의 10 mL를 추가 합니다.
    8. 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에서 48 h에 품 어.
    9. 3 치료의 총 단계 2.5.4–2.5.8를 두 번 더 반복 합니다.
    10. 노화 마커 또는 다운스트림 응용 프로그램에 대 한 수확에 대 한 확인 합니다.
      참고:로 제어, 2 h d 10에 살 균 물의 22.6 µ L로 치료 같은 PD의 사용 확산 셀.
  6. Epigenetically-유도 노화
    1. 재고 및 표 1에 따라 사용 하는 작은 molecule(s)에 대 한 작업 솔루션을 준비 합니다. 필터-소독 솔루션. 무 균 튜브에 약 수입니다. -20 ° c.에 게
    2. 셀 또는 그들과 접촉 될 모든 자료를 처리 하는 동안 (pipets, 플라스 크, 미디어, 등) 작동 살 균 조건 예를 들어, 층 류 후드, 실험실 코트와 장갑을 사용 하 여. 처리 되는 동안에 20% O2 (룸 조건)에서 세포를 유지.
    3. 7 x 105 가능한 기본 fibroblasts T75 플라스 크 (~9.3 x 103 셀/cm2)에서 낮은 PD에서 d 10의 10 mL를 포함 된 씨앗
    4. 셀 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에 밤새 품 어.
    5. 원하는 치료에 대 한 d 10 매체 + 작업 솔루션 11 mL를 준비 합니다. 치료 당 정확한 희석 표 1에서 볼 수 있습니다.
      1. 11 µ L d 10의 11 mL의 1 m m 사 작업 솔루션의 준비.
      2. 44 µ L d 10의 11 ml에서 1 M 나트륨 낙 산 염 작업 솔루션의 준비.
      3. 11 µ L d 10의 11 ml에서 10 m m 5-아 자 작업 솔루션의 준비.
        참고: 최적화, 관심의 셀 형식에 대 한 치료 예를 들어, 독성을 평가 하기 위해 곡선 복용량 응답을 만들기.
    6. 문화에 D10 매체 + 원하는 치료에 대 한 작업 솔루션을 추가 합니다.
    7. 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에서 24 h에 대 한 품 어.
    8. 3 치료의 총 단계 2.6.4–2.6.6를 두 번 더 반복 합니다.
    9. 약물 없이 간단한 d 10에 대 한 매체를 변경 합니다.
    10. 더 많은 3 일 후 세포 노화 및 노화 마커 및 다운스트림 응용 프로그램 테스트를 위해 준비 된다.
      참고: 컨트롤로 사용 같은 PD D10 중간 + 차량 3 일에 대 한 치료의 기본 섬유 아 세포 확산. D10 중간 + 차량 그 3 일 동안 모든 24 h 새로 고쳐야 할 필요가 있다. 차량 사용 하는 치료에 따라 달라 집니다: 1:1,000 DMSO 나트륨 낙 산 염에 대 한 사 하 고 5-아 자 1: 250 살 균 물.

3입니다. 노화의 표식

  1. 준비
    1. 20 mg/mL X gal 준비: 해산 dimethylformamide 또는 DMSO의 1 mL에 20mg의 X. 빛에서 보호 하는-20 ° C에서 저장 합니다.
    2. 0.1 M 구 연산 산 성 솔루션을 준비: 물 100 mL에 시트르산 일 수화물 2.1 g을 분해. 실내 온도에 상점.
    3. 0.2 M 나트륨 인산 염 해결책 준비: 염기 인산 나트륨의 분해 2.84 g 또는 염기 인산 나트륨의 3.56 g 물 100 mL에 탈수. 실내 온도에 상점.
    4. 0.2 M 구 연산/나트륨 인산 염 pH 6.0 준비: 36.85 mL의 0.1 M 구 연산 산 성 솔루션 및 0.2 M 나트륨 인산 염의 63.15 mL 해산. PH 6.0에 정확 하 게 조정. 실내 온도에 상점.
    5. 100 mM 칼륨 ferrocyanide 준비: 물 50 mL에 칼륨 ferrocyanide의 2.1 g을 분해. 빛에서 보호 하는 4 ° C에서 저장 합니다.
    6. 100 mM 칼륨 ferricyanide 준비: 1.7 g 물 50 mL에 칼륨 ferricyanide의 해산. 빛에서 보호 하는 4 ° C에서 저장 합니다.
    7. 염화 나트륨 5 M 준비: 14.6 g 물 50 mL에 염화 나트륨의 분해. 실내 온도에 상점.
    8. 1 M 염화 마그네슘 준비: 물 50ml에 염화 마그네슘의 4.8 g을 분해. 실내 온도에 상점.
    9. 2% 포름알데히드 + PBS에 0.2%도 준비: 25%도 및 PBS의 100 μ에 16% 포름알데히드의 12.5 µ L의 분해 800 µ L. 빛에서 보호 하는 실내 온도에 상점.
    10. 얼룩 솔루션 준비 신선한 에 따라 표 2.
  2. 노화 관련 된 β-galactosidase 얼룩
    1. 각 샘플에 대 한 셀은 스파스에 24-잘 접시 (5.2 x 103 셀/cm2) 포함 500 µ L d 10의의 하나 이상 잘 1 x 104 셀 씨. 이 접시에 직접 치료 (있는 경우)를 수행할 수 있습니다 하거나, 또는 이미 치료 셀 24-잘 접시에 다시 시드 수 있습니다.
    2. 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 하룻밤 셀을 품 어.
    3. 두 번 PBS의 500 μ를 가진 세포를 씻어.
    4. PBS에서 2% 포름알데히드 + 0.2%도 500 μ/잘을 사용 하 여 실 온에서 3-5 분을 수정.
    5. 두 번 PBS의 500 μ를 가진 세포를 씻어.
    6. 신선한 얼룩 얼룩 샘플 수에 따라 솔루션을 준비 합니다.
    7. 얼룩 솔루션 (500 µ L/잘)을 추가 하 고 증발을 피하기 위해 parafilm으로 접시를 봉인.
      참고: 증발 될 형태를 결정 하 고 현미경 관찰을 방해 수 있습니다.
    8. 12-16 h (CO2) 없이 건조 인큐베이터에서 37 ° C에서 셀 (예: 알루미늄 호 일에 커버) 어둠 속에서 품 어.
      참고: CO2 pH에 영향을 미칠 하 고 따라서 결과 수정할 수 있습니다. 일부 세포 유형 부 화 시간 단축을 요구할 수 있습니다.
    9. PBS의 500 μ 두 번 씻어.
    10. 결과 평가 합니다. 긍정적인 세포 현재는 블루 (주로) perinuclear 정상적인 가벼운 현미경 (그림 1A)에서 얼룩.
    11. 정량화에 대 한 샘플 당 적어도 100 셀을 관찰 하 고 긍정적인 세포의 수를 계산 합니다. 노화 세포 모양 변경, 그것은 종종 어려운 셀 경계를 정의 하 고는 셀입니다. DAPI 시각화 및 개별 셀 (그림 1B)의 정량화와 counterstain. 샘플 (긍정적인 세포 대 세포의 총 금액의 비율)을 계량 형광 현미경 (그림 1C)을 사용 하 여. 끝에 적어도 100 단일 셀 하 고 그들에 SA-β-gal 긍정적인 세포의 비율을 평가 수 있도록 동일한 샘플의 여러 그림을 가져가 라.
    12. 사용 하는 치료를 위해 그들의 적절 한 제어 대 노화 세포의 결과 비교 합니다.
      참고: 동일한 샘플에는 듀와 공동 얼룩 가능 하다. 셀 coverslips에 다음 시드 되어야 합니다 고려.
  3. 듀 합동 분석 결과
    1. 평가 샘플 수에 따라 24-잘 접시에 coverslip/잘 넣어.
    2. 씨앗 1 x 10 d 10의 500 µ L를 포함 하는 셀은 스파스 상태 당 24-잘 접시 (5.2 x 103 셀/cm2)의 하나 이상 잘4 셀. 이 접시에 직접 치료 (있는 경우)를 수행할 수 있습니다 하거나, 또는 이미 대우 셀 24-잘 접시에 다시 시드 수 있습니다.
    3. 5% CO2 와 5% O237 ° C에서 하룻밤 셀을 품 어.
    4. D 10에 듀의 20 µ M 솔루션 만들기 (1: 250) 샘플 (샘플 당 250 μ) 치료의 수에 따라.
    5. 치료 하 고 d 10 + 듀로 교체 각 우물에서 매체 (250 μ)의 절반을 제거 그냥 준비 된 솔루션. 최종 듀 농도 10 µ M입니다.
    6. 18-24 h 5% O2 5% CO2 와 37 ° C에서 셀 문화 인큐베이터에서 품 어. 제어 및 노화 세포에 동일한 부 화 시간을 사용 합니다.
    7. PBS의 500 μ 2 x 워시.
    8. PBS에서 4% 포름알데히드의 500 μ와 10 분에 대 한 셀을 수정 합니다.
    9. 100 mM Tris (pH 7.6)의 500 μ에 5 분을 품 어.
    10. 0.1%의 500 μ에 10 분 동안 세포를 permeabilize PBS에 트라이 톤 X-100.
    11. PBS로 3 회 세척.
    12. 다음과 같은 순서로 구성 요소를 추가 하는 각 coverslip 레이블 혼합의 50 μ 준비: 44.45 µ L의 PBS, 0.5 µ L의 Cu (II) 등4, sulfo Cy3 아 지 드의 0.05 µ L, 5 µ L의 나트륨 하는데.
    13. 레이블 혼합의 50 μ parafilm의 조각에 넣어. 한 쌍의 족집게와 바늘의 도움으로 coverslip 리프트 그리고 아래쪽으로 직면 하는 셀을 포함 하는 표면 위에 레이블 믹스 휴식. 아니 거품은 고는 coverslip의 전체 표면 라벨 믹스를 만지고 있다 확인 하십시오. 어둠 속에서 30 분 동안 품 어.
    14. 24-잘 접시의 우물에 다시 세포를 넣어 하 고 PBS를 가진 세 번 그들을 씻어.
    15. 유리 슬라이드에 (를 포함 하 여 핵을 시각화 DAPI) 미디어를 마운트 마운트 하 고 그들이 하룻밤 말리 면.
    16. 형광 현미경을 사용 하 여에 듀 설립을 시각화. Cy3에 대 한 적절 한 필터를 사용 하 여 (여기/방출: 552/570 nm).
    17. 조건 (Cy3와 DAPI) 당 적어도 100 셀의 나중 정량화에 대 한 셀의 여러 그림을 가져가 라.
    18. 다음 수식을 사용 하 여 듀를 통합 하는 셀의 비율 척도:
      듀 긍정적인 세포 (%) = (듀 긍정적인 세포 수 (Cy3) / 총 세포 수 (DAPI)) * 100
    19. 사용 하는 치료를 위해 그들의 적절 한 제어 대 노화 세포의 결과 비교 합니다.
      참고: 동일한 샘플에는 SA-β-gal 함께 공동 얼룩 가능 하다. 세포는 아직도 coverslips에 시드 합니다 것이 좋습니다.
  4. P16, p21, SASP의 유전자 발현
    1. 뇌관-유전자의 관심 (50 µ M 뇌관)의 세트를 준비 합니다.
      참고: p16, p21, 몇 가지 관련 SASP 요인의 정량 노화 상태의 유익한입니다. 프로토콜 설명 여기 게 실시간 PCR를 사용 하 여 상대 정량화에 대 한 범용 프로브 라이브러리 (그러지 마세요) 시스템의 사용. 표 3 CDK 억제제 p16, p21의와 가장 관련성이 높은 SASP 회원의 탐지는 물론 Tubulin와 말라, 참조 유전자 분석 결과 대 한 역할에 대 한 사용 하는 뇌관의 개요를 보여 줍니다. 표 3 의 마지막 열에는 각 분석 결과에 사용할 특정 그러지 마세요 프로브를 참여 시킵니다.
    2. 원하는 분석 실험에 대 한 별도 정량 Pcr 반응 혼합을 준비 합니다. 항상 또한 표 4에 따라 참조 유전자를 포함 합니다.
    3. 또는 3 중에서 모든 샘플을 실행 합니다.
    4. 로드 7.5 µ L/384-잘 접시에 정량 Pcr 반응 혼합의 음.
    5. ~ 5 추가 cDNA의 ng RNase 무료 물 2.5 µ L에 녹아.
      참고: 그것은 비교할 모든 샘플에 대 한 cDNA의 비슷한 금액을가지고 하는 것이 좋습니다. 이 반전 녹음 방송에 대 한 동일한 양의 RNA 사용 하 여 얻을 수 있습니다.
    6. 물개와 함께 접시를 커버 하 고 그것 스틱 제대로 접시에 균등 하 게 모든 우물을 덮고 있는지 확인 하십시오.
    7. 2000 x g 1 분 동안에 접시를 회전 합니다.
    8. 접시는 Lightcycler에서 40 주기 다음 프로토콜을 사용 하 여 실행:
      7 분 동안 95 ° C
      95 ° C의 40 주기 5 s와 30에 대 한 60 ° C에 대 한 s
      1 분 동안 37 ° C
    9. 결과의 분석을 위해 분석 정량 데이터24Livak와 동료에 대 한 제안 된 메서드를 사용 합니다. 또는 사용 하 여 Tubulin 걸 참조 유전자는 ΔCt 계산를 가치 고 적절 한 컨트롤을 사용 하 여 계산 하는 특정 노화 유도 하는 치료에 대 한 ΔΔCt 값에 대 한.
  5. 단백질 표정과 IL6의 분 비
    1. 씨 5-10에 하나 이상 잘 104 셀 x d 10의 2 개 mL를 포함 하는 조건 당 6 잘 플레이트 (5.2-10.5 x 103 셀/cm2)의. 이 접시에 직접 치료 (있는 경우)를 수행할 수 있습니다 하거나, 또는 이미 치료 셀 24-잘 접시에 다시 시드 수 있습니다. 시드 후 하룻밤 사이 서 보자.
    2. 매체를 제거 하 고 DMEM 매체 FBS 없이2 mL에 대 한 대체. 24 h에 대 한 정상적인 조건에서 품 어.
    3. 15 mL 튜브에 매체를 수집 합니다.
    4. 원심 분리기 샘플 x 300g에 5 분 매체에 대 한 처리 될 때까지-80 ° C에 저장할 수 있습니다.
    5. ELISA를 수행 하려면 제조업체의 지침을 따릅니다.
    6. 노화 세포 노화 유도 하는 특정 치료에 대 한 적절 한 제어 대의 결과 비교

결과

SA-β-gal 노화 섬유 아 세포에서 얼룩의 농축

Β-galactosidase (β-gal)는 모든 세포에 표현 되 고 4.025,26의 최적 pH는 lysosomal 효소 이다. 그러나, 노화, 동안 리소좀 크기가 증가 하 고, 따라서, 노화 세포 축적 β-gal. 이 효소의 증가 금액 차선 pH 6.025,27...

토론

여기 설명 하는 프로토콜은 인간의 기본 섬유 아 세포, 최적화 된 특히 BJ와 WI-38 셀. 일차 노화, 전리 방사선, 독 소 루비에 대 한 프로토콜을 성공적으로 다른 세포 유형 즉 신생아 melanocytes와 keratinocytes (iPSC 파생 cardiomyocytes)과 섬유 아 세포 (HCA2 및 IMR90)의 다른 종류에 적용 우리의 실험실. 그러나, 몇 가지 세부 사항을 시드 셀, 방법 및 플라스틱 지원에 연결/분리에 대 한 셀 수 있도록 화학 물질의 ...

공개

N/A

감사의 말

우리는 유익한 토론에 대 한 관리자 실험실 및 데이터와 UV-유도 노화에 프로토콜을 공유 하기 위한 Thijmen 밴 Vliet의 회원을 감사 합니다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
DMEM Media - GlutaMAXGibco31966-047
Fetal Bovine SerumHycloneSV30160.03
Penicillin-Streptomycin (P/S; 10,000 U/ml)LonzaDE17-602E
Dimethyl Sulfoxide (DMSO)Sigma-AldrichSC-202581
Nuclease-Free Water (not DEPC-Treated)AmbionAM9937
T75 flaskSarstedt833911002
Trypsin/EDTA SolutionLonzaCC-5012
PBS tabletsGibco18912-014
1.5 ml microcentrifuge tubesSigma-AldrichT9661-1000EA
Corning 15 mL centrifuge tubesSigma-AldrichCLS430791
6-well plateSarstedt83.3920
24-well plateSarstedt83.3922
13mm round coverslipsSarstedt83.1840.002
SteriflipMerck ChemicalsSCGP00525
Cesium137-sourceIBL 637 Cesium-137γ-ray machine
UV radiation chamberOpsytec, Dr. Göbel BS-02
Doxorubicin dihydrochloride BioAustralis Fine ChemicalsBIA-D1202-1
Hydrogen peroxide solutionSigma-Aldrich7722-84-1
5-aza-2’-deoxycytidineSigma-AldrichA3656
SAHASigma-AldrichSML0061
Sodium Butyrate Sigma-AldrichB5887
X-gal (5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside)Fisher Scientific7240-90-6
Citric acid monohydrateSigma-Aldrich5949-29-1
Sodium dibasic phosphateAcros organics7782-85-6
Potassium ferrocyanide Fisher Scientific14459-95-1
Potassium ferricyanideFisher Scientific13746-66-2
Sodium ChlorideMerck Millipore7647-14-5
Magnesium ChlorideFisher Chemicals7791-18-6
25% glutaraldehydeFisher Scientific111-30-8,7732-18-5
16% formaldehyde (w/v)Thermo-Fisher Scientific28908
EdU (5-ethynyl-2’-deoxyuridine)Lumiprobe10540
Sulfo-Cyanine3 azide (Sulfo-Cy3-Azide)LumiprobeD1330
Sodium ascorbateSigma-AldrichA4034
Copper(II) sulfate pentahydrate (Cu(II)SO4.5H2O)Sigma-Aldrich209198
Triton X-100Acros organics215682500
TRIS baseRoche11814273001
LightCycler 480 Multiwell Plate 384, white Roche4729749001
Lightcycler 480 sealing foil Roche4729757001
Sensifast Probe Lo-ROX kit BiolineBIO-84020
UPL Probe LibrarySigma-AldrichVarious
Human IL-6 DuoSet ELISAR&DD6050
Bio-Rad TC20Bio-Rad
Counting slidesBio-Rad145-0017
Dry incubatorThermo-Fisher ScientificHeratherm
DimethylformamideMerck Millipore1.10983
Parafilm 'M' laboratory filmBemis #PM992
Tweezers
Needles

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