키토산 필름에 인간 치주 인대 세포 스페로이드의 형성

요약

여기에서, 우리는 키토산 필름에 의하여 인간 치주 인대 (PDL) 세포 스페로이드를 배양하는 프로토콜을 제시합니다. 3차원(3D) 세포 스페로이드의 배양은 기존의 조직 배양 폴리스티렌(TCPS) 배양 시스템에 대한 대안을 제공한다.

초록

치주 인대 (PDL) 세포는 치주 조직 재생에 대한 큰 약속을 보유하고. 종래, PDL 세포는 조직 배양 폴리스티렌(TCPS)과 같은 2차원(2D) 기판에 배양된다. 그러나, PDL 세포의 특징적인 변화는 시험관 내 배양 동안 관찰되었다. 이러한 현상은 아마도 2D TCPS가 생체 내 3차원(3D) 미세 환경과 다르기 때문일 것이다. 2D 기질에서 배양된 세포에 비해, 3D 미세환경에서 자란 세포는 생체내 세포와 더 유사성을 나타낸다. 따라서, 3D 세포 배양 모델은 기존의 2D 단층 세포 배양에 대한 유망한 대안을 제공한다. 기존의 PDL 세포 배양 모델을 개선하기 위해, 우리는 최근에 키토산 필름에 PDL 세포의 스페로이드 형성을 기반으로 하는 3D 세포 배양 방법을 개발했습니다. 여기에서, 우리는 키토산 필름에 근거를 둔 상세한 세포 스페로이드 배양 프로토콜을 제시합니다. PDL 세포 스페로이드의 3D 배양 시스템은 기존의 2D 단층 세포 배양과 관련된 몇 가지 한계를 극복하고, 따라서 향후 치주 조직 재생을 위한 향상된 치료 효능을 가진 PDL 세포를 생산하는데 적합할 수 있다.

서문

치주염은 주로 치석 1에의해 초기화되며 치주 인대 (PDL), 폐포 뼈 및 시멘트를 포함한 치주 조직의 손상을 특징으로합니다. 치주염에 대한 현재의 치료법은 일반적으로 활성 질환의 진행을 예방하는 데 성공적이지만 손실 된 치주 조직의 재생은 임상 적 과제로 남아 있습니다. 최근, 현재 치료2,^3,4의 단점을 극복하기 위해 치주조직 재생을 위한 세포기반 접근법에서 중요한 진전이 이루어지고 있다.

우리의 이전 체계적인 검토는 PDL 세포가 치주재생을 위한 중대한 잠재력을 보였다는 것을 밝혔습니다 5. 종래, PDL 세포는 조직 배양 폴리스티렌(TCPS)과 같은 2차원(2D) 기판에 배양된다. 그러나, PDL 세포의 특징적인 변화는 시험관내 배양 동안 관찰되었다 6. 이러한 현상은 아마도 2D TCPS가 생체 내 3차원(3D) 미세환경^7과다르기 때문일 것이다. 2D 기질에서 배양된 세포에 비해, 3D 미세환경에서 성장한 세포는생체내 세포8과 더 유사성을 나타낸다. 따라서, 3D 세포 배양 모델은 기존의 2D 단층 세포 배양에 대한 유망한 대안을 제공한다.

기존의 3D 배양 방법은 3D 생체 재료로 세포를 캡슐화하는 것입니다. 3D 생체 재료에 캡슐화 된 세포와 비교하여, 세포 스페로이드는 이물질이 없는 세포의 응집체이기 때문에 생체 내상황을 더 밀접하게 모방9,^{10,11, 12}. 세포 스페로이드는 섬유넥틴 및 라미닌(13)을 포함하는 세포외 매트릭스(ECM) 성분의보존을 통해 MSC 생체활동을 촉진한 것으로 보고된다. 종래의 PDL 세포 배양 모델을 개선하기 위해, 우리는 최근에 키토산^{필름(14)에}PDL 세포의 스페로이드 형성을 기반으로 하는 3D PDL 세포 배양 방법을 개발하였다. 스페로이드 형성은 PDL^{세포(14)의}자가 재생 및 골성 분화 용량을 증가시킵니다. 여기서, 키토산 필름에 기초한 상세한 PDL 세포 스페로이드 배양 프로토콜을 제시한다. PDL 세포 스페로이드의 3D 배양 시스템은 기존의 TCPS 세포 배양과 관련된 몇 가지 단점을 극복하고, 따라서 향후 치주 조직 재생을 위한 향상된 치료 효능을 가진 PDL 세포를 생산하는데 적합할 수 있다.

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프로토콜

연구 프로토콜은 동지대학교 학교및병원윤리위원회의 승인을 받았습니다. 모든 환자는 서면 에 입각한 동의를 제공했습니다.

1. PDL 세포 격리

1. PDL 세포 배양을 위한 증식 배지를 만드세요: α-MEM 배지에 10% FCS와 100 U/mL 펜/스트렙을 보충했습니다.
2. 얼음이 담긴 용기를 준비하여 고립된 세 번째 어금니를 옮김을 옮김을 옮김을 준비합니다.
3. 오토클레이브를 사용하여 수술 기구를 살균하십시오.
4. 일반 인체는 동지시대학교 치과병원 과 병원에서 성인(18-28세)으로부터 3번째 어금니를 추출합니다.
5. 세 번째 어금니를 증식 배지에 넣고 4 °C에서 실험실로 옮니다.
6. 추출된 치아를 멸균 된 100mm 페트리 접시에 놓고 생물학적 위험 층류 흐름 후드 내에서 작동합니다.
7. 추출된 치아를 세척하기 위해 10 mL의 PBS를 추가합니다. 세탁 단계를 두 번 반복합니다.
8. 멸균 메스를 사용하여 PDL을 뿌리에서 부드럽게 분리합니다.
   참고 : PDL은 치은 또는 정점 조직에서 오염을 방지하기 위해 뿌리의 중간 세 번째 부분에서 긁어해야합니다.
9. 멸균 된 메스 블레이드의 도움으로 1-2mm 조각으로 PDL을 다듬습니다.
10. PDL 단편을 3-4 mL의 증식 배지로 채워진 T-25 배양 플라스크에 놓습니다.
11. 가습공기와 함께 5% CO2에서 37°C에서 인큐베이터에서 샘플을 배양하였다.
12. PDL 세포의 자성장 후 배양 배지를 변화시큐어가 관찰하였다. 그것은 일반적으로 소요 1-2 PDL 세포의 파생주. 역상 대조 현미경을 통해 PDL 세포의 성장을 관찰하십시오.
13. 그 후 일주일에 두 번 배양 매체를 변경합니다.
14. PDL 세포가 합류에 도달했을 때, 1:4의 비율로 배양 된 세포 (대원 1).
15. 매일 세포 성장을 관찰하고 일주일에 두 번 배양 배지를 변경합니다.
16. 세포가 80 % 합류를 달성 한 후 1 :4의 비율로 각 후속 통로를 수행합니다. 세포 파종을 위해 3-5세대 PDL 세포를 사용한다.

2. 키토산 필름 준비

1. 1% (v/v) 아세트산 용액을 준비하려면 깨끗한 유리 비커에 이중 증류수 495 mL에 5 mL의 아세트산을 추가하십시오.
2. 1 % w / v 키토산 용액의 제조를 위해 5g의 키토산 분말 (평균 분자량 400 kDa, 85 % 아세틸화)을 측정하고 1 % (v / v) 아세트산 용액의 495 mL를 추가하십시오.
3. 60°C에서 교반 막대 및 자기 교반 플레이트로 준비된 용액을 24시간 동안 저어줍니다.
4. 키토산의 완전한 용해를 보장하기 위해 제조된 용액을 오토클레이브한다.
   참고: 이 단계에서 실험을 일시 중지할 수 있습니다.
5. 키토산 필름을 형성하려면 0.25 mL / cm 2에서 조직 배양 폴리스티렌 (TCPS)접시에 1 % w / v 키토산 용액을 추가하십시오. 예를 들어, 0.5 mL의 1% w/v 키토산 용액을 24 –well 플레이트 중 하나에 추가합니다.
6. TCPS 접시를 60°C에서 오븐에서 24시간 동안 건조하여 키토산 필름을 형성한다.
7. 0.5 N 수산화 나트륨 (NaOH)을 준비하십시오. 한 번에 조금씩 NaOH 10 g을 마그네틱 교반 막대를 사용하여 대량의 이중 증류수로 저은 다음 용액을 희석하여 0.5 L을 만듭니다.
   참고: 물에 NaOH를 추가하십시오- 단단한 NaOH에 물을 추가하지 마십시오. NaOH를 만지지 마십시오! 그것은 화학 화상을 일으킬 수 있습니다.
8. 0.5 N NaOH로 키토산 필름을 중화. 0.5 mL의 0.5 n NaOH 용액을 2시간 동안 24웰 플레이트의 한 웰에 추가합니다.
9. 이중 증류수로 키토산 필름을 세 번 씻으소서.
   참고: 이 단계에서 실험을 일시 중지할 수 있습니다.
10. 세포 파종 에 앞서, 실온에서 밤새 70 % 알코올에 키토산 코팅 24 웰 플레이트를 살균.
11. 실온에서 PBS로 키토산 코팅 플레이트를 3회 헹구어 줍니다.
12. 실온에서 밤새 자외선 하에서 처리하여 키토산 코팅 플레이트를 살균합니다.

3. 셀 시딩

1. 37°C에 예온 증식 배지 PBS 용액 및 트립신/EDTA 용액.
2. T-75 세포 배양 플라스크로부터 상급체를 버린다.
3. 10 mL의 PBS 용액으로 동수 PDL 세포를 세척하십시오.
4. PBS 솔루션을 폐기합니다.
5. T-75 세포 배양 플라스크에 트립신/EDTA 용액 1mL를 추가합니다.
6. 37 °C에서 3 분 동안 트립신 / EDTA 용액으로 세포를 배양하십시오.
7. T-75 세포 배양 플라스크에 3 mL의 증식 배지를 추가하여 트립신의 소화 과정을 종료합니다.
8. 제조된 세포 현탁액을 15 mL 원점 원심분리관으로 옮김.
9. 300 x g 및 실온에서 5 분 동안 현탁액을 원심 분리합니다.
10. 15 mL 원점 원심 분리관에서 상급자를 버리고 증식 배지의 500 μL에서 세포 펠릿을 다시 현탁시합니다.
11. 혈세포계로 PDL 세포를 세다.
12. 종자 PDL 세포는 0.5 x 10^4,1 x 10^4,3 x 10^4,및 6 x 10⁴ 세포 /cm2의 밀도에서.
13. 가습공기와 함께 5% CO2에서 37°C에서 인큐베이터에서 키토산 필름상에 PDL 세포를 배양하였다.
14. 그 후 일주일에 두 번 배양 매체를 변경합니다.
15. 1일, 2일, 3일, 4일 및 5일에는 역상 대조 현미경을 통해 세포 형태를 매일 관찰합니다.

4. 세포 생존

1. 배양 후 1, 3, 및 6일 후, 상업적 생존/세포 독성 키트를 사용하여 세포의 생존을 결정한다.
2. 15 mL 튜브에서, 5s에 대한 소용돌이에 의해 PBS에서 2 mM의 칼세인-AM 및 4 mM의 신선한 용액의 2 mL을 준비한다.
   참고 : 어둠 속에서 프로세스를 유지합니다.
3. 배양 배지를 제거하고 PBS에서 스페로이드를 세척합니다.
4. 2 mM calcein-AM 및 4 mM 에티듐 호모디머를 포함하는 PBS의 인큐베이트 스페로이드를 어둠 속에서 실온에서 30 분 동안 배양한다.
5. PBS에서 스페로이드를 두 번 헹구세요. 24웰 플레이트 중 한 우물에서 나온 스페로이드의 경우 매번 2 mL의 PBS를 사용하십시오.
6. 10x 또는 20배 배율을 사용하여 형광 현미경을 사용하여 샘플을 관찰합니다.

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결과

본 프로토콜을 사용하여, 생존 가능한 PDL 세포 스페로이드가 성공적으로 형성되었다. 도 1은 부착된 세포 대신에 부유세포 또는 스페로이드가 주로 키토산 막에서 관찰되었다는 것을 보여주었다. 0.5 x 10⁴ 세포/cm2의파종 밀도의 경우, 부착된 PDL 세포는 1일째와 3일에 때때로 발견되었고, PDL 세포 스페로이드는 거의 관찰되지 않았다. 반...

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토론

본 연구는 기존의 2D 단층 세포 배양과 관련된 몇 가지 한계를 극복하기 위해 3D 세포 배양 시스템을 도입하였다. 프로토콜에 따르면, PDL 세포 스페로이드는 키토산 필름상에 세포를 배양함으로써 성공적으로 형성되었다. 우리의 이전 연구는 스페로이드 형성이 PDL 세포의 자기 갱신 및 골성 분화 능력을 증가시키는 것을 보고했다^14. TCPS에서 세포를 수확하는 효소를 사용하는 대신...

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자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
α-MEM	Gibco	11900-073
acetic acid	Sigma-Aldrich	64197
Cell culture flask 25 cm2	Corning	430639
Cell culture flask 75 cm2	Corning	430641
Chitosan	Heppe Medical Chitosan GmbH	/	molecular weight 500 kDa, degree of deacetylation 85%
FCS	Gibco	26140-079
Live/Dead Viability/Cytotoxicity Kit	Molecular Probes	L3224
NaOH	Sigma-Aldrich	1310732
PBS	KeyGen Biotech	KGB5001
pen/strep	Gibco	15140-122
Trypsin/EDTA	KeyGen Biotech	KGM25200
15 mL conical centrifuge tube	Corning	430790
24-well plate	Corning	3524