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요약

진드기 혈 림프의 분석은 몇몇 병원 체가 질병을 일으키는 원인이 되는 방법에 대 한 정보의 중요 한 근원 및 어떻게 진드기 면역 학적으로이 감염에 반응 하는지 나타냅니다. 본 연구는 곰 팡이 propagules 접종 하 고 rhipicephalus 마이크로 플러스 튀 여성에서 혈 림프를 수집 하는 방법을 보여줍니다.

초록

진드기는이 빈 혈, 체중 감량, 동물의 감가 상각을 유발 하 고 또한 여러 병원 체의 벡터로 작용할 수 있기 때문에, 적 혈 기생충 및 Rhipicephalus 마이크로 플러스 는 수의학에서 매우 중요 하다. 이러한 기생충을 제어 하는 엄청난 비용으로 인해, 화학 살 비제 부적절 하 게 사용 하 여 발생 하는 환경에 대 한 손상, 전통적인 parasiticides에 대 한 저항성 증가, 진드기의 대체 제어, 사용 병원 성 진 균은 예를 들어, 흥미로운 접근법으로 간주 되어 왔다. 그럼에도 불구 하 고, 진드기의 면역 체계가이 병원 균을 싸우는 것을 어떻게 작용 하는지 몇몇 연구 결과는 보여주었습니다. 따라서,이 프로토콜은 혈 림프 수집 및 혈 세포 채취에 사용 되는 두 가지 기술, 튀 여성에 게 토모 병원 균 접종에 사용 되는 두 가지 방법을 보여줍니다. 진드기 여성의 몸에서 다리 삽입 시 병원 균의 접종은 종종 제의 기관을 손상 시키는 스 쿠 툼과 카피 수 사이의 접종과는 달리 여성 생물학 매개 변수를 평가할 수 있습니다. 등 쪽 혈 림프 컬렉션은 다리를 통해 수집 보다 더 높은 볼륨 복구를 산출. 진드기 혈 림프 수집 및 처리의 몇 가지 제한 포함 i) 혈 세포의 붕괴의 높은 속도, ii) 혈 림프 오염 된 미드 창 및 iii) 낮은 혈 림프 볼륨 복구. 혈 림프이 다리 절단을 통해 수집 될 때, 혈 림프는 다리 개 구 부에 축적 되어 응고 과정을 선호 하는 데 시간이 걸립니다. 또한, 첫 번째 방법이 수행 되기 쉬운 것으로 간주 되더라도, 등 쪽 컬렉션에 비해 다리를 통해 수집에서 얻어진 혈 세포 수가 적습니다. En토모 병원 성 에이전트에 의해 매개 된 진드기에 있는 면역 반응을 이해 하는 것은 그들의 병 인을 공개 하 고 진드기 통제를 위한 새로운 표적을 개발 하는 것을 돕습니다. 여기에 설명 된 접종 과정은 매우 낮은 기술 자원이 필요 하며 병원 성 미생물에 진드기를 노출 시키는 데에만 사용할 수 있습니다. 유사 하 게, 틱 혈 림프의 수집은 많은 생리 적 연구를 위한 첫 번째 단계를 나타낼 수 있다.

서문

가축 진드기, Rhipicephalus 마이크로 플러스, 열 대 지역에서 가축에 엄청난 부정적인 영향을 미치는 적혈구. 이 진드기는 직접적인 혈액 공급 손상과 결합 하 여 우유와 육류 생산을 감소 시키고, 빈 혈을 일으키고 궁극적으로 사망을 유발할 수 있는 babesia 우 황, babesia비에 미 나, 그리고 anaplasma 마르지 오와 같은 병원 성 대리인의 벡터입니다. 이 ectoparasite에 기인한 손실은 브라질1에 있는 32억4000만 달러에서 해마다 추정 되었습니다. 지속 가능한 방법은 요구 되 고,도 토모 병원 성 대리인의 사용은 화학 살 비제의 사용을 감소 시키기 위하여 유망한 대 안으로 고려 됩니다2,3,4.

곤충 병원 성 진 균, 예컨대 Metarhizium 의 미생물은 진드기를 포함 한 절지동물의 자연 적 이며, 일부 분리는 바이오 컨트롤러로 서 사용 될 수 있다. 이 병원 체는 표 피를 통해 호스트를 활발 하 게 감염 시키고 그들의 바디2,5,6를 식민지 화 합니다. 감염이 발달 함에 따라, 세포 및 체액 반응은 진드기 면역 계통에 의해 중재 됩니다. 진드기 혈 림프의 분석은 병원 균7,8에 도전 한 후 면역 반응을 평가 하는 유용한 도구로 보고 된다.

절지동물의 면역 반응은 체액 성 및 세포 반응으로 나뉩니다. 체액 성 반응은 hemagglutination 과정 및 항균 단백질/펩 티 드의 생산을 포함 하는 반면, 세포 면역 반응은 혈액 세포를 통해 수행 됩니다. 이 세포는 모든 절지동물에서 혈 림프에 존재 하며 식 균 작용 및 캡슐화 과정과 직접적으로 관련 되어 있기 때문에 타고 난 면역 반응9를 포함 하는 연구에서 표현 역할을 개발 하는 것으로 보고 됩니다. 따라서, 혈 세포에 대 한 연구는 죽음 통로를 조사 하 고 자동 포식, 세포 사 멸 및 괴 사와 같은 과정을 이해 하는 것을 도울 수 있습니다. 이중 밸브로 서 일부 무척 추 동물에서, 혈 세포의 수집은 세포 파괴, 낮은 혈 림프 부피 및 회복 된 세포의 낮은 농도와 같은 한계를 직면 하 게 된다10. 매우 자주 적용 되는 방법론에 따라 세포의 농도가 감소 하 여 세포 정량화 및 분석에 직접적으로 영향을 미칩니다.

혈 림프에서 순환 하는 혈 세포의 수는 다른 절지동물 들 사이에서 가변적 이며 성, 나이 및 절지동물의 발달 단계11과 같은 상이한 생리 적 단계 들로 인해 동일한 종에서 변할 수 있다. 혈 세포는 또한 몇몇 기관에 고착 하 고 감염 과정11직후에 회람으로 풀어 놓을 수 있습니다. 그럼에도 불구 하 고, 대부분의 연구 보고 사용 곤충, 진드기 남아 그들의 생리학 및 병리학에 대 한 탐구. 진드기에 있는 병원 체 접종 그리고 혈 림프 수집은 적게 사용 된 기술에도 불구 하 고, 표준 방법을 확립 하는 것은 더 정확한 연구의 발달을 돕습니다.

본 연구의 목적은 병원 균의 혈 림프 수집 및 접종을 위한 가장 많이 사용 되는 방법을 r. 마이크로 플러스 틱에 비교 하 여 혈 림프 획득 및 혈 세포 농도에서의 효능을 평가 하는 것 이었습니다.

프로토콜

본 연구에서 사용 되는 진드기는 척추 동물 동물 (CEUA/UFRRJ #037/2014)의 사용에 대 한 윤리 위원회에 의해 승인 된 리오 데 자네이로의 연방 농촌 대학에서, 인공 식민지 로부터 얻어 졌다.

1. 진드기를 안은 여성

  1. 진드기 채집 후, 수돗물을 사용 하 여 암컷을 세척 하 고 500 mL 유리 비 커 수용자에 3 분 동안 0.5%의 차 아 염소 산 나트륨 용액에 담가 두고, 큐티 클 위생을 위해 (그림 1) 멸 균 페이퍼 타월을 사용 하 여 모든 여성을 건조 시키십시오 (그림 2).
  2. 여성을 동종의가 중 그룹 (각각 20 여 명의 여성)으로 나눕니다: 1 개의 대조 군에는 아무런 처리도 없이, 0.1%의 폴 리 옥 시 에틸렌 소 르 비 탄 모노로 에이트 수 용액 (v/v)을 5 µ로 접종 하 고, 1.0 x 10에서 5 µ L을 접종 하 고 1 개 감염 기 7로 투 포자 mL-1
    참고: 치료 되지 않은 진드기만 부피 및 혈액 세포 농도에 사용 되었다. 각 그룹에 대 한 3 개의 반복이 수행 되었습니다.

2. 흠집과 카피의 병원 균 접종

참고: 본 연구에서는,도 토모 병원 성 진 균 현 탁 액을 일례로 사용 하였다.

  1. 0.1% 폴 리 옥 시 에틸렌 소 르 비 탄 모노로 에이트 수 용액 (v/v)의 1 mL에 곰 팡이 발 포 포자를 일시 중단 하 고 최종 농도의 1.0 × 107 배도 포자 mL-1로 조절 한다. 5 µ L Metarhizium 의 배 반 포자를 추가 합니다 (그림 3) 플라스틱 파라핀 필름의 표면에 현 탁 액을 첨가 한다.
    참고: 노이 바 우 어 ´ s 챔버를 사용 하 여 조정 된 발 포 포자 현 탁 액. 접종 과정을 가속화 하기 위해, 다중 버블은 5 µ L에 대응 하는 각 버블, 플라스틱 파라핀 막 표면에 첨가 될 수 있다.
  2. 1 mL 초 미세 인슐린 주사기와 0.3 mm 바늘을 사용 하 여 현 탁 액을 당기고 진드기에 접종 하십시오. 사용 하기 전에 주사기에서 모든 공기를 꺼내 잊지 마십시오.
  3. 스 쿠 툼과 카피 자리 사이의 진드기 암컷으로 진 균 현 탁 액의 5 µ L 접종. 균 류 없이 0.1%의 폴 리 옥 시 에틸렌 소 르 비 탄 수 용액 (v/v)을 5 µ L의 대조 군 으로부터 암컷 접종.
    참고: 바늘을 삽입 한 후에 혈 림프 작은 양이 있을 수 있습니다. 공기를 접종 하지 않도록 주의 하십시오.

3. 다리 허벅지와 진드기 여성의 몸 사이에 토모 병원 성 진 균의 접종

  1. 암컷은 0.3 mm 바늘에 결합 된 1 mL 초 미세 인슐린 주사기 를 사용 하 여 다리 tigh와 여성의 몸 사이에 곰 팡이 현 탁 액 (5 µ l 1.0에서 107blasto포자 mL-1)으로 여성을 접종 합니다. 0.1% 폴 리 옥 시 에틸렌 소 르 비 탄 모노 롤 레이트 수 용액 (v/v)의 5 µ L을 사용 하 여 대조 군 으로부터 암컷을 접종 한다.
    참고: 다리 tigh와 진드기 여성의 신체 사이에서 수행 되는 양 발 포 포자 접종 시, 소량의 혈 림프 바늘 삽입 후 tigh에 존재할 수 있다. 공기를 접종 하지 않도록 주의 하십시오.

4. 등 쪽 혈 림프 컬렉션

  1. 날개 달린 주입 세트의 고무 부분, 0.3 mm 모 세관 튜브 및 필터링 된 팁을 사용 하 여 혈 림프 컬렉션을 수행 하십시오.
  2. 0.3 mm 바늘을 사용 하 여 여성 등 쪽 큐티 클을 파괴 하십시오.
  3. 중단 후, 진드기 몸체의 앞쪽 부분에 완만 한 압력을가 하십시오. 붕괴 부위를 잡아당기면 서 거의 투명 한 액체가 관찰 됩니다. 날개 달린 주입 세트의 고무 부분에 결합 된 필터 팁과 0.3 mm 모 세관을 통해 액체를 흡입 하 여 혈 림프를 수집 한다.
    주:이 중간 장을 방해 하 고 혈 림프을 오염 시킬 수 있기 때문에 진드기의 몸을 고정 하는 동안 거의 누르지 마십시오. 부드러운 압력이 오염 없이 유체를 추방 할 수 있을 때까지 기다리십시오.

5. 진드기의 다리에서 혈 림프 컬렉션

  1. 진드기를 움직이지 않게 하 고, 앞 다리의 한 조각을가 위 한 쌍으로 자릅니다.
    주: 하나 이상의 다리를 절단 할 수 있을 뿐만 아니라 동일한 다리를 한 번 이상 절단할 수 있습니다.
  2. 진드기의 후부 몸통 부분에 부드러운 압력을가 합니다. 4.3 단계에서 설명한 바와 같이 절단 부 위에 표시 되는 투명 한 액체 버블을 관찰 하 고 모 세관 튜브로 수집 합니다.
    주:이 중간 장을 방해 하 고 혈 림프을 오염 시킬 수 있기 때문에 진드기의 몸을 고정 하는 동안 거의 누르지 마십시오. 부드러운 압력이 오염 없이 유체를 추방 할 수 있을 때까지 기다리십시오.

6. 혈 림프 처리

  1. 혈 림프 수집 후, 이전에 30 µ L 프로 테아 제 칵테일 및 82 µ L 염 수 완충 액으로 채워진 1.5 mL 마이크로 튜브에 보관 하십시오. 혈 림프 컬렉션 전체에 마이크로 튜브를 얼음 위에 보관 하십시오.
  2. 원심 분리기 샘플 (4 ° c에서 3 분 500 x g ). 혈 림프 원심 분리 후에 혈 세포의 부드러운 펠 렛이 형성 됩니다.
    주: 혈 림프 정량화의 경우, 마이크로 튜브 내부의 총 부피를 세어 얻은 혈 림프 부피를 정량화 하 고 프로 테아 제 칵테일 및 염 분 완충 액의 부피를 할인 합니다.
  3. 상 등 액 (무 세포 혈 림프)을 조심 스럽게 제거 하십시오. 예를 들어, 라이 보 비 츠의 L-15 배양 액을 pH 7.0-7.2로 조정 하 여 세포를 부드럽게 소생 시켰다. 재현 탁 혈 세포의 10 µ L을 노이 바 우 어 챔버에 배치 하 여 혈 세포를 정량화 합니다.

7. 혈액 모 세포 샘플링 슬라이드 준비

  1. 한 쌍의가 위를 사용 하 여 진드기의 앞쪽 다리를 자릅니다.
  2. 진드기의 후부 몸통 부분에 부드러운 압력을가 합니다. 절단 부 위에 나타나는 투명 한 액체 버블을 관찰 하십시오.
  3. 깨끗 한 현미경 슬라이드에 직접 혈 림프 방울을 바르 십시오, 그 후에, 세포를 염색 하기 위하여 충당 된 방법을 사용 하십시오.
    1. Giemsa를 사용 하 여 혈 색을 염색 하기 위해, 슬라이드 상에 서 혈 림프를 30 분간 공기 건조 하 고, 상 온에서 3 분간 메탄올을 이용 하 여 실 온에서 30 분간, Giemsa 용액 (1:9의 완충 용액, pH 7.2)에서 얼룩을 고정 시켰다. 과량의 염료를 제거 하 고, 슬라이드를 공기 건조 하 고, 광학 현미경으로 400x에서 세포를 평가 하기 위해 흐르는 물로 슬라이드를 씻으십시오.

결과

이 문서에서는 틱에 적용 된 접종 및 혈 림프 수집 방법에 접근 합니다. 다리 허벅지와 진드기 여성의 몸 사이에 접종 후, 일부 유체 (혈 림프) 과정 동안 분 비 될 수 있다; 그러나 접종이 완료 되 면 바늘 끝 이나 접종 현장에 액체 나 조직이 존재 하지 않아 곰 팡이 현 탁 액이 완전히 접종 되었는지 확인 하는 것이 중요 합니다. 접종 과정이 올바르게 수행 되 면, 바늘 삽입?...

토론

병원 균의 접종은 병원 균이 숙주 내에 있다는 것을 보장 하기 때문에 실험에 있어서 미생물의 생체 내 작용을 조사 하는 것을 목적으로 연구를 하는 것이 유용 하다. 이 기술은 또한 RNA 간섭 (RNAi)과 같은 예방 접종 분자에 적용 될 수 있다. 스 쿠 툼과 카피 수 사이에 접종 하는 것은 수행 하기가 더 쉽지만, 종종 계란 생존 율12저해 하는 게 나의 기관?...

공개

저자는 공개 할 것이 없습니다.

감사의 말

이 연구는 브라질, 금융 코드 001에서 Coordenacão 드 아 페로 멘토 드 Pessoal 드 Nível 우수한 (망 토)에 의해 부분적으로 재정 되었다. 케이프는 A.F. 마 르 치아 노에 대 한 박사 학위 장학금을 제공 했습니다. J. 피 오 로티에 대 한 박사 학위 장학금을 제공 하기 위해 브라질의 과학 기술 개발 (CNPq)에 대 한 국가 협의회에 감사 드립니다. 이 연구는 또한 리오 데 자네이로 (F공포증) 및 CNPq의 국가의 연구를 위한 카를로스 샤 가스 Filho 재단의 보조금에 의해 지원 되었다. V.R.E.P. 비 텐 코트는 CNPq 연구원 이다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
Alkaline Hypochlorite solutionSigma-AldrichA1727
D-(+)-GlucoseSigma-AldrichG8270-1KG
EDTASynth2706
Fetal Bovine SerumGibco16000036
Flexible rubberBD
Giemsa stainSigma-Aldrich48900-500ML-F
Glass capillaryCTechGlassCT95-02
Insulin syringe (needle)BDSKU: 324910
KH2PO4Vetec60REAVET014512
Leibovitz's L-15 culture medium Gibco11415-064
MethanolSigma-Aldrich34860-1L-R
Microscope slidesKasviK5-7105
MicrotubesBRANDZ336769-1PAK
Na2HPO4Vetec60REAVET014593
NaClSigma-AldrichS7653-1KG
Neubauer chamber KasviK5-0111
PenicillinGibco15140163
Protease inhibitor cocktailSigma-AldrichP2714
Tween 80Vetec60REAVET003662

참고문헌

  1. Grisi, L., et al. Reassessment of the potencial economic impact of cattle parasites in Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 23 (2), 150-156 (2014).
  2. Schrank, A., Vainstein, M. H. Metarhizium anisopliae enzymes and toxins. Toxicon. 56 (7), 1267-1274 (2010).
  3. Camargo, M. G., et al. Metarhizium anisopliae for controlling Rhipicephalus microplus ticks under field conditions. Veterinary Parasitology. 223, 38-42 (2016).
  4. Perinotto, W. M. S., et al. In vitro pathogenicity of different Metarhizium anisopliae s.l. isolates in oil formulations against Rhipicephalus microplus. Biocontrol Science and Technology. 27 (3), 338-347 (2017).
  5. Pedrini, N., Crespo, R., Juarez, M. P. Biochemistry of insect epicuticle degradation by entomopathogenic fungi. Comparative Biochemistry and Physiology. Part C: Toxicology and Pharmacolpgy. 146 (1-2), 124-137 (2007).
  6. Ortiz-Urquiza, A., Keyhani, N. O. Action on the surface: Entomopathogenic fungi versus the insect cuticle. Insects. 4 (3), 357-374 (2013).
  7. Angelo, I. C., et al. Detection of serpins involved in cellular immune response of Rhipicephalus microplus challenged with fungi. Biocontrol Science and Technology. 24 (3), 351-360 (2014).
  8. De Paulo, J. F., et al. Rhipicephalus microplus infected by Metarhizium: unveiling hemocyte quantification, GFP-fungi virulence, and ovary infection. Parasitology Research. 117, 1847-1856 (2018).
  9. Marmaras, V. J., Lampropoulou, M. Regulators and signalling in insect haemocyte immunity. Cell Signal. 21, 186-195 (2009).
  10. Hinzmann, M. F., Lopes-Lima, M., Gonçalves, J., Machado, J. Antiaggregant and toxic properties of different solutions on hemocytes of three freshwater bivalves. Toxicological & Environmental Chemistry. 95, 790-805 (2013).
  11. Nation, J. L. . Insect Physiology and Biochemistry. , (2016).
  12. Gene, J. Mémoires de l'Académie royale des sciences. Torino. 9, 751 (1848).
  13. Lees, A. D., Beament, J. W. L. An organ waxing in ticks. The Quarterly Journal of the Mythic Society. 7, 291-332 (1948).
  14. Sonenshine, D. E., Roe, R. M. . Biology of ticks. , (2014).
  15. Tan, J., et al. Characterization of hemocytes proliferation in larval silkworm Bombyx mori. Journal of Insect Physiology. 59 (6), 595-603 (2013).
  16. Bowden, T. J. The humoral immune systems of the American lobster (Homarus americanus) and the European lobster (Homarus gammarus). Fish Research. 186, 367-371 (2017).
  17. Sonenshine, D. E., Hynes, W. L. Molecular characterization and related aspects of the innate immune response in ticks. Frontiers in Bioscience. 13, 7046-7063 (2008).
  18. Tsakas, S., Marmaras, V. Insect immunity and its signaling: an overview. Invertebrate Survival Journal. 7, 228-238 (2010).
  19. Burgdorfer, W. Hemolymph Test. A technique for detection of Rickettsiae in ticks. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 19, 1010-1014 (1970).
  20. Dunham-Ems, S. M., et al. Live imaging reveals a biphasic mode of dissemination of Borrelia burgdorferi within ticks. Journal of Clinical Investigation. 119, 3652-3665 (2009).
  21. Patton, T. G., et al. Saliva, salivary gland, and hemolymph collection from Ixodes scapularis ticks. Journal of Visualized Experiments. 60, e3894 (2012).

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