우리는 원고를 읽는 C. 공원 감사합니다. 이 작품은 상 수 K01AR061434 및 DP에 백혈병과 림프종 사회 원정대 수상 (5127-09)에서 NIAMS에 의해 지원 내용은 CPL 및 DTS에 건강의 국립 연구소의 보조금을하지 전적으로 저자의 책임이며 않는 한 반드시 건강의 국립 연구소의 공식 견해를 나타냅니다.

1. 마우스 및 전처리 참고 : 모든 마우스는 무균 상태로 유지하고, 모든 프로토콜은 매사 추세 츠 종합 병원에서 기관 동물 케어 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었다. 모든 수술은 오토 클레이브 멸균 장비를 사용하여 무균 조건 하에서 수행되어야한다. MX1-크레 15 Rosa26는 -에 loxP 스톱에 loxP - EYFP (로사 - YFP), 및 Rosa26 -에 loxP는 스톱에 loxP-tdTomato (로사 토마토)이었다 잭슨 연구소에서 구입. 오스테오칼신-GFP 마우스 박사 헨리 KRONENBERG에 의해 제공되었다. 생체 내에서 OSPC의 이동과 증식의 정량적 분석을 위해, MX1-크레 + 로사 - YFP + (단일 색상 기자) 마우스를 사용 하였다. 오스테오칼신 + 성숙한 조골 세포로 분화의 자세한 추적을 위해, 우리는 사용 trigenic MX1-크레 + 로사 - 토마토 + OCN-GFP +마우스. <ol><li> , 생체 내에서 MX1 + 세포에 라벨을 멸균 PBS 용액에 polyinosinic-polycytidylic 산 (PIPC, 2.5 ㎎ / ㎖)을 준비하고 20 MX1-크레 + 기자 마우스의 G 복강 한 번 10 일 동안 매일 200 μl를 주입합니다. </li><li> 주민 MX1 + 조혈 세포를 제거하기 위해, 9.5 Gy의 단일 용량으로 쥐를 조사. 정맥 16 조사, 이식 야생형 골수 세포 (1 × 10 6 세포 / 마우스)의 24 시간 후. 주 : MX1 - 유도 세포가 조혈 세포 및 조혈 유래 파골, MX1 + 조혈 세포의 제거 MX1 + 조골 세포의 이미징 품질 및 정량을 개선을 포함하기 때문이다. </li><li> 골수 이식 후 공여자 골수 세포의 성공적인 다시 채우기를 달성하기 위해 4-6주위한 동물을 모니터링한다. </li></ol> 2. 모준비에게 사용 <ol><li> IACUC 승인 절차를 사용하여 케타민 / 자일 라진 (100 ㎎ / ㎏, 자일 라진 12 ㎎ / ㎏ 체중)의 50 μL의 복강 내 주사로 마우스를 마취. 참고 : 효과 지속 시간이 케타민 / 자일 라진의 추가 투여에 의해 연장 될 수있다. </li><li> 마우스가 완전히 발가락 및 / 또는 꼬리 핀치에 대한 응답의 부족에 의해 마취되어 있는지 확인합니다. 마우스를 마취하는 경우 (선택), 테이핑하여 코를 통해 이소 플루 란 가스 마스크를 고정합니다. 동물이 완전히 진정되어 있는지 확인하기 위해 이소 플루 란의 레벨을 조정합니다. </li><li> 전기 트리머 또는 작은 가위를 사용하여 두피 머리를 클립. 머리 조각을 제거하고 70 % 알코올 면봉으로 노출 된 피부를 소독. 각막 탈수를 방지하기 위해 눈물 젤을 적용합니다. </li></ol> 3. 미세 균열 부상 <ol><li> 동물이 완전히 진정되고 확인한 후, 두피의 피부를 열 수있는 하나의 역 L 자형 절개를합니다. 요약하면, 제 1의 가로 절개 (1cm 미만) starti을다른 귀 하나 귀에서 겨. 60 ° ~ 켜고 ~ 멀리 코에서 2-3mm 때까지 코를 향해 절개를 계속합니다. 주 :이 절개 묘화되는 영역 위에 흉터 조직의 형성을 최소화한다. </li><li> 집게로 양쪽으로 잡아 당겨 피부 플랩을 분리합니다. 모두 정면 뼈와 시상 및 관상 봉합의 교차점 명확하게 노출되어야합니다. </li><li> 모든 잔여 머리카락이 제거 될 때까지 멸균 PBS 및 멸균 거즈 또는 면봉과 부드러운 닦아로 세척하여 열린 표면을 청소합니다. </li><li> 개관에 미세 균열을 생성하려면, 한 손으로 마우스의 머리와 다른 손으로 30 G 바늘을 개최합니다. 부드러운 압력으로 30 G 바늘의 끝 부분을 삽입하고 운동을 왜곡하여 시상 ​​및 관상 봉합의 교차점 왼쪽 정면 뼈의 미세 구멍 (&lt;1 mm 깊이와 ~ 0.2 mm 직경의 상처)를 확인합니다. 주의 :함으로써 bleedi 최소화 뇌로 관통 바늘을 피하기 위해 중요NG 및 조직 손상. </li><li> 큰 바늘 (20 또는 25 G)로 전환하고 바늘 (~ 0.5 mm 직경)을 왜곡하여 구멍 구멍을 넓혀. </li><li> 반대측 정면 뼈에 두 번째 구멍을 생성하는 단계 3.3-3.5를 반복합니다. </li><li> 출혈이 멈출 때까지 PBS의 연속 낙하에 의한 부상 반점을 닦습니다. 주 : 골절 사이트에 출혈이 적절한 영상을 방해하고 흉터 형성을 유도 할 것이다. </li><li> 건조를 방지하기 위해 두개골에 멸균 생리 식염수 또는 2 % 토셀의 드롭을 적용합니다. 참고 : 이미지 선명도를 줄일 수있는 두개골 표면이 건조하지 않도록하십시오. 이 영역을 커버하는 젤 또는 식염수의 충분한 양을 사용하는 것이 중요하다. </li></ol> 4.의 intravital 이미징 <ol><li> (선택 사항) 촬영하기 전에 일부 마우스는 혈관을 시각화하는 혈관 염료로 주입된다. 비 대상 Qtracker 705 80m에 희석 (50 mM의 붕산 버퍼에 2 μM 용액) 20 ㎕와 함께 복고풍 궤도 주입PBS의 L. 시약의 낭비를 최소화하기 위해 인슐린 주사기를 사용합니다. 신호가 충분히 밝지 않은 경우, 추가적인 양이 요구 될 수있다. </li><li> 스캐너의 전원을 켭니다. 참고 : 다각형 기반의 레이저 스캐너 비디오 속도로 동시 다중 채널 이미지 수집 (초당 30 프레임)을 할 수 있습니다. 비디오 속도 스캐닝 라이브 동물 이미징을위한 매우 중요합니다. </li><li> (: 사파이어 레이저 펨토초 티타늄) 다 광자 레이저의 전원을 켭니다. 880 nm의 파장을 설정하고 뼈의 두 번째 고조파 발생의 영상 (440 NM)의 전원을 조정합니다. GFP 및 tdTomato 여기를 들어, 491 ㎚, 561 nm의 고체 레이저의 전원을 켭니다. </li><li> PMT 각 신호 (광전자 증 배관) 검출기를 켭니다 (두 번째 고조파 발생에 대한 435 ± 20 nm의 대역 통과 필터, GFP의 528 ± 19 nm의 대역 통과 필터 및 tdTomato 590 ± 20). (선택 사항) Qtracker보기 (705)의 신호를 검출하도록 695 ± 27.5 nm의 대역 통과 필터와 638 nm의 헬륨 - 네온 레이저 및 PMT를 사용한다. </li><li> PLACXYZ 축 동력 현미경의 무대에서 동물을 전자. (이것은 동물 손실의 위험을 감소시킨다)의 체온을 유지할 수 있도록 전기 가열 패드를 가장 편안한 위치에 마우스를 유지한다. 촬영하는 동안 움직임을 최소화하기 위해 가능한 한 수평으로 몇 군데 지역을 유지하기 위해 마우스를 잡고 테이프를 사용합니다. </li><li> 건조를 방지하기 위해 두개골에 따뜻한 2 % 메틸 셀룰로오즈 겔 또는 생리 식염수 용액의 방울을 적용한다. 이미징 영역에 커버 글래스를 넣어. 덮개 뼈를 스캔 (0.9 NA로 30 배 물 침지 목적) 낮은 배율의 렌즈를 사용합니다. </li><li> XYZ 축 제어기를 사용하여 뼈 SHG 신호를 검출함으로써 덮개 뼈의 표면을 발견하고 시상 봉합과 관상 봉합의 교점으로서 중요한 랜드 마크의 위치를​​ 식별한다. 이미지를 획득하고 XYZ 좌표를 기록한다. </li><li> SHG 형광 신호를 관찰하여 손상의 위치를​​ 검색하기 위해 계속합니다. </li><li> 부상 사이트 또는 지역 오 때F 관심이 발견되어, 그 세포로부터 SHG 형광 신호를 포함하는 최적 초점 평면의 이미지를 획득. 저장 XYZ 좌표와 시상 및 관상 봉합의 교차점까지의 거리 이미징의 다음 라운드를 위해 자신의 정확한 위치를 정의 할 수 있습니다. </li><li> 골절 부상의 3D 세포 및 뼈 구조를 수집, Z-스택으로 이미지를 기록 - 내막 뼈 표면에서 ~ 100 μm의 깊이 (5 μm의 간격). 부상의 한쪽의 촬상 종료 후, 다음 부상 사이트에 대한 촬영 처리를 반복한다. </li></ol> 5. 포스트 운전 설정 <ol><li> 촬상 후, 두개골에서 메틸 셀룰로오스 겔을 제거 멸균 식염수로 촬상 사이트를 헹군다. 멸균 면봉을 사용하여 표면에 트리플 항생제 연고 묻혀. 피부 플랩 커버 및 수술 봉합하여 두피를 다시 닫습니다. 이것은 저자 극성 봉합사 (흡수 polyglactin 스와 함께 할 수있는진짜야)와 5-0 크기 봉합 바늘. 주의 : 좋은 봉합 기술은 흉터 형성을 최소화한다. </li><li> / kg 부 프레 노르 핀 48 시간마다 12 시간이 수술 후 0.05 ~ 0.1 밀리그램의 IP 주입과 모든 동물을 치료. 그들은 충분한 의식을 되 찾을 때까지 따뜻한 복구 실에서 동물이 오지 않게하십시오. 3~5일 후 봉합을 다시 및 골절 치료시 세포의 변화를 추적 할의 intravital 이미징 단계를 반복합니다. </li></ol>

<ol>
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R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Micro-computed+tomography+assessment+of+the+progression+of+fracture+healing+in+mice.">Micro-computed tomography assessment of the progression of fracture healing in mice.</a> Bone. 50, 1357-1367 (2012).</li><li>Kovar, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Near-infrared-labeled+tetracycline+derivative+is+an+effective+marker+of+bone+deposition+in+mice.">Near-infrared-labeled tetracycline derivative is an effective marker of bone deposition in mice.</a> Anal Biochem. 416, 167-173 (2011).</li><li>Mayer-Kuckuk, P., Boskey, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+imaging+promotes+progress+in+orthopedic+research.">Molecular imaging promotes progress in orthopedic research.</a> Bone. 39, 965-977 (2006).</li><li>Lo Celso, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live-animal+tracking+of+individual+haematopoietic+stem/progenitor+cells+in+their+niche.">Live-animal tracking of individual haematopoietic stem/progenitor cells in their niche.</a> Nature. 457, 92-96 (2009).</li><li>Kuhn, R., Schwenk, F., Aguet, M., Rajewsky, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inducible+gene+targeting+in+mice.">Inducible gene targeting in mice.</a> Science. 269, 1427-1429 (1995).</li><li>Duran-Struuck, R., Dysko, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Principles+of+bone+marrow+transplantation+(BMT):+providing+optimal+veterinary+and+husbandry+care+to+irradiated+mice+in+BMT+studies.">Principles of bone marrow transplantation (BMT): providing optimal veterinary and husbandry care to irradiated mice in BMT studies.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science: JAALAS. 48, 11-22 (2009).</li><li>Tu, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Osterix+overexpression+in+mesenchymal+stem+cells+stimulates+healing+of+critical-sized+defects+in+murine+calvarial+bone.">Osterix overexpression in mesenchymal stem cells stimulates healing of critical-sized defects in murine calvarial bone.</a> Tissue Eng. 13, 2431-2440 (2007).</li></ol>

저자는 더 경쟁 금융 관심이 없다는 것을 선언합니다.

골격 줄기 세포의 조절은 골 재생을 달성하기 위해 더 나은 방법을 정의하기 위해 매우 중요 할 수있다. 세포 수준에서 정량 및 연속 촬영은 기술적으로 도전하고있다. 마우스 긴 뼈의 골절 모델이 널리 사용되는 생체 역학적 연구 (17)에 적합하였으나, 그 깊은 조직의 위치, 고르지 골절의 크기, 연부 조직 손상, 및 안정화 fixators의 응용 프로그램이 순차의 intravital 이미징을 제한했다. 여기...

퇴행성 뼈 질환 및 골다공증 성 골절의 위험이 높은 선도 연령과 관련된 뼈 손실은 공중 보건의 1의 주요 과제가되고있다. 뼈의 유지 보수는 뼈가 형성 조골 세포와 뼈 resorbing 파골 세포에 의해 제어된다. 뼈 형성 세포의 결함은 연령과 관련된 뼈 손실 및 퇴행성 뼈 질환 2,3의 주요 원인입니다. 광범위한 연구는 골절 치료의 개선에 집중되었지만, 안정적인 약물의 발견은 뼈 퇴행성 질병을 치료 및 골다공증 성 골절의 약점을 취소하는 것은 중요한 문제가 남는다. 따라서, 골 재생 및 수리의 골 형성 세포 및 그 제어 메커니즘의 근원을 연구하면 골격 재생을 높이고 골 손실 질환을 반전하는 신규 한 통찰력을 제공한다. 골수에있는 다 능성 간엽 세포의 존재는 클론 원성 개체군의 식별에 기초하여 제안되었다 수 있었고 상이한골 형성에 늦었, 지방 형성과 연골 계보는 생체 4. 최근, 여러 연구는 골격 / 중간 엽 줄기 세포 (SSC가 / 엽 줄기 세포)는 조골 세포의 자연적인 원천 및 골 교체, 개조, 및 파괴 수리 5,6에 중요한 것으로보고있다 . 또한, 우리의 혈통 추적 연구는 성숙한 조골 세포가 예기치 않게 짧은 반감기 (~ 60 일)이 지속적으로 정상 항상성과 골절 수리 조건 6 모두 자신의 줄기 / 전구 세포에 의해 보충되는 것으로 나타났다. 그러나, 생체 내 줄기 세포의 정체성과 어떻게 이러한 세포는 부상 골절과 뼈 형성 세포가 불분명 공급하는 반응. 따라서, 생리적 상황에서 이주, 증식 및 내인성 개의 SSC / 엽 줄기 세포의 분화를 분석 할 수있는 방법을 개발하는 것이 중요하다. 골절 수리 복잡한의 배열에 의해 규제 다세포과 역동적 인 과정이다사이토 카인과 성장 7 요인. 골절 연구에 가장 인기있는 방법은 긴 뼈 골절 동물 모델을 사용하여 뼈 절편 및 면역 형광 기법 8-10로 뼈를 분석하는 것이다. 이 복구 프로세스는 마이크로 - CT (11), 근적외선 형광 (12) 및 화학 발광 영상 (13)을 포함하여 다수의 영상 기술로 모니터링 할 수있다. 그러나 각 기술은 특정 제한 사항이 생체 내에서 세포 수준에서 SSC가 / MSC 기능을 모니터링하는 효과적인 방법이 없었다. 최근에, 공 초점 / 이광자의 intravital 현미경이 개발 및 동물에게 14 리빙 심지어 단일 셀 해상도 그들의 골수 미세 환경의 컨텍스트에서 이식 된 암세포 및 조혈 줄기 세포를 검출하기 위해 사용되어왔다. 계보 추적 모델 시리즈 기술을 결합함으로써, 우리는 골 형성 줄기 / 전구 세포는 유전자 변이 (AC)에 의해 표시 될 수 있음을 정의 할 수 있었다믹소 바이러스 저항 -1 (MX1) 발기인 및 MX1 유도 조상의 tivation 시간이 지남에 성숙한 조골 세포의 대부분을 유지할 수 있지만, 성인 마우스 (6)에 연골 세포의 생성에 참여하지 않습니다. 또, MX1-표지 OSPCs은 골절 치료 6 새로운 골아 세포의 대부분을 공급하는 것을 보여 주었다. 여기에, osteo-혈통 추적 모델과의 intravital 현미경을 사용하여, 프로토콜은 골절 수리 MX1 + 골 형성 줄기 / 전구 세포의 생체 역학을 정의하기 위해 제공됩니다. 이 프로토콜은 골절 사이트에 골 형성 줄기 / 전구 세포의 이전 및 초기 수리 과정에서 osteoprogenitor 확장의 정량적 측정을 추적하기 위해 순차적으로 영상을 제공합니다. 이 접근법은 골 수선을 향상시키는 치료 후보의 평가를 포함한 여러 상황에서 유용 할 수있다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="829">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">C57BL/6J (H-2b)</td>
			<td style="width:140px;">Jackson Laboratories (Bar Harbor, ME)</td>
			<td style="width:195px;">000664</td>
			<td style="width:279px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Ketamine Hydrochloride Injection</td>
			<td style="width:140px;">Bionichepharma</td>
			<td style="width:195px;">67457-001-10</td>
			<td>&#160;Vial size: 10 ml (50 mg/ml)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Xylazine Sterile Solution</td>
			<td style="width:140px;">Lloyd Inc.</td>
			<td style="width:195px;">NADA# 139-236</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Buprenorphine Hl</td>
			<td style="width:140px;">BEDFORD LAB</td>
			<td style="width:195px;">NDC 55390-100-10</td>
			<td>Vial: 0.3 mg/ml, Doses: 0.05-0.1 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">DPBS, 1X</td>
			<td style="width:140px;">CORNING cellgro</td>
			<td style="width:195px;">21-031-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Alcohol Prep Pads (70% Isopropyl alcohol)</td>
			<td style="width:140px;">Kendall WEBCOL</td>
			<td style="width:195px;">5110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Fine Surgical Scissor</td>
			<td style="width:140px;">F.S.T</td>
			<td style="width:195px;">14568-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Extra fine Forceps</td>
			<td style="width:140px;">F.S.T</td>
			<td style="width:195px;">11150-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">VICRYL*Plus Suture</td>
			<td style="width:140px;">Ethicon</td>
			<td style="width:195px;">VCP490G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Qtracker 705 non-targeted quantum dot</td>
			<td style="width:140px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:195px;">Q21061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Methocel 2%</td>
			<td style="width:140px;">OmmiVision</td>
			<td style="width:195px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">pIpC (Polyinosinic-polycytidylic acid)&#160;&#160;</td>
			<td style="width:140px;">Sigma</td>
			<td style="width:195px;">P0913-50MG</td>
			<td>100 &#956;l (2.5 mg/ml in PBS) for 10 g of mouse</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Mai Tai Tunable Ultrafast Lasers</td>
			<td style="width:140px;">Spectra Physics</td>
			<td style="width:195px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Dual Calypso 491 + 532 nm DPSS laser</td>
			<td style="width:140px;">Cobolt AB</td>
			<td style="width:195px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Radius-635 HeNe laser</td>
			<td style="width:140px;">Coherent</td>
			<td style="width:195px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
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sequential in vivo imaging of osteogenic stem/progenitor cells during fracture repair

뼈는 지속적으로 반전 높은 재생 부상을 따르고있다. 골 형성 줄기 / 전구 세포가 오랫동안 존재하는 가설이 있지만, 이러한 세포의 생체 내 데모 최근에 달성되었습니다. 여기에, 생체 이미징 기술 내생 골 형성 줄기 / 전구 세포의 역할 (OSPCs)과 뼈 수리에 자신의 자손을 조사하기 위해 제공됩니다. 모델과 두 개관 뼈 유도 미세 균열의의 intravital 이미징을 추적 osteo-계보 세포를 사용하여, OSPCs 직접 초기 수리 과정에서 중요한 이벤트가 발생하는 부상 후 처음 몇 일 동안 관찰 할 수있다. 상해 사이트는 순차적으로 OSPCs가 부상으로 옮겨 놓을 수가 증가하고 뼈 형성하는 조골 세포로 분화 드러내는 이미지가 될 수있다. 이러한 방법은 뼈 재생 및 수리를위한 줄기 세포의 내장과 외부의 분자 규제의 역할을 조사하는 수단을 제공합니다.

<html> 안정화 된 긴 뼈의 골절 모델은 골절 연구에 인기가있다. 그러나, 긴 뼈의 골절 또는 큰 모델은 여러 조직의 손상을 야기하기 때문에, 뼈 세포 기능의 양적 측정에 제한이있다. 우리는 바늘 드릴링 (그림 1A-1C)와 두 개관 정면 뼈에 최소 침습 부상 (경막에없이 또는 최소한의 침윤 미만 mm 직경)를 개발했다. 이 뼈는 (다른 조직의 간섭없이 맑은 부상 뼈의 영상, 뼈 세포 및 혈관을 허?...

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Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

골절 치료에 뼈 전구 기능의 정량적 측정은 고해상도 시리얼 이미징 기술을 필요로한다. 여기에, 프로토콜은 이미지를 순차적으로 골절을 수리하는 과정에서 내생 골 형성 줄기 / 전구 세포의 이동, 증식과 분화를 정량화의 intravital 현미경과 osteo-혈통 추적을 사용하여 제공됩니다.

순차<em&gt; 생체 내</em&gt; 골절 치료시 골 형성 줄기 / 전구 세포의 이미징

Bone turns over continuously and is highly regenerative following injury. Osteogenic stem/progenitor cells have long been hypothesized to exist, but in ...

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Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

10.4K 조회수.  Harvard Stem Cell Institute.  골절 치료에 뼈 전구 기능의 정량적 측정은 고해상도 시리얼 이미징 기술을 필요로한다. 여기에, 프로토콜은 이미지를 순차적으로 골절을 수리하는 과정에서 내생 골 형성 줄기 / 전구 세포의 이동, 증식과 분화를 정량화의 intravital 현미경과 osteo-혈통 추적을 사용하여 제공됩니다. 