우리는 샘플 준비에 대한 도움말 미세 유체 및 알레 Tempestini에 대한 도움말 Gijs Wuite, 어윈 JG 피터 맨, 피터 그로스 감사합니다. 이 연구는 N 284464을 °와 Ricerca 2013 RBFR13V4M2 교육, 대학 및 연구 FIRB 2011 RBAP11X42L006, FUTURO의 이탈리아어 자원부에서, 그리고 프레임 워크에 부여 계약에 따라 유럽 연합 (EU) 일곱 번째 프레임 워크 프로그램 (FP7 / 2,007에서 2,013 사이)에 의해 투자되었다 주요 프로젝트 NANOMAX.

나노 안정성과 1 광학 족집게 설정 실험 장치는 1 % 아래 트래핑 레이저의 나노 미터 수준과 강도 변화에 안정성을 가리키는 2 개의 광 핀셋을 제공해야합니다. 이들 조건의 조합이 전형적인 장력 아령 나노 안정성을 보장한다 (일 PN - 몇 PN 수만), 트랩 강성 (0.1 PN / 나노 미터)와 측정 대역폭 (이미지 수집 속도 20 초 -1). 실험 장치의 구조는 그림 1에 묘사되어있다. <ol><li> 광 핀셋 설계 및 시공 15,17 : <ol><li> 기계적 진동을 줄이기 위해 활성 절연체와 광학 테이블에 실험 장치를 탑재합니다. 소음 및 현미경 구조의 기계식 공진을 흡수하는 탄성 절연체에 현미경 구조를 탑재. </li><li> R로, 레이저 소스에 가까운 트래핑 레이저의 경로 내에 광학 아이솔레이터를 삽입광학 피드백으로 인해 랜덤 진폭 변동을 끌어 내고. </li><li> 가급적 트래핑 레이저의 경로 길이를 줄이고 공기 흐름과 난류에 의한 레이저 포인팅 변동을 줄이기 위해 밀폐 상자에 전체 경로를 묶. </li><li> 직교 편파 두 개의 빔으로 (YAG 레이저, 1,064 nm 파장의 Nd) 하나의 근적외선 레이저 소스를 분할하여 두 번 광 핀셋을 만듭니다. 그들은 긴장 12에서 아령의 진동의 원인이 있기 때문에 시간 공유 트랩을 사용하지 마십시오. </li><li> (적어도) 한 트랩 및 DNA 장력을 정밀하게 조절의 미세한 움직임을 할 수 있도록 직접 디지털 합성기 (DDSS)에 의해 구동 음향 광학 편 향기 (AODs)를 사용합니다. DDSS는 전압 제어 발진기 (VCO)보다 더 나은 트랩 안정성을 할 수 있습니다. </li><li> 서브 - 나노 미터 정밀도로 포획 구슬의 위치를​​ 감지하는 응축기의 후면 초점면에서 두 개의 사분면 검출기 포토 다이오드 (QDPs)를 삽입한다. </li></ol></li><li> 그 강도 F 확인현미경 입구 트래핑 레이저 luctuations는 화상 취득의 레이트보다 더 큰 대역폭을 가진 포토 다이오드를 사용하여 1 % 이하이다. </li><li> 이 트래핑 레이저 포인팅 안정성 확인 <ol><li> 인산염 완충액에 실리카 비드를 준비 : 실리카 비드의 20 μl를 희석 (1.54 μm의 10 % 고체)을 아세톤 1 ㎖에 짧게 30 초, 소용돌이 초음파 처리하고 원심 분리기 2 분에서 19,000 × g으로. 1 ml의 아세톤 및 반복 세척에 재현 탁. 50 mM의 인산염 완충액 1 ㎖에 재현 탁은 두 번 세척하고, 마지막으로 50 mM의 인산염 완충액 100 ㎕에 재현 탁. </li><li> 실리카 비드와 광 핀셋 교정 : (약 60 μm의 두께)을 두 번 끈끈이 테이프를 사용하여 현미경 슬라이드에 커버 슬립을 부착하여 흐름 세포를 준비합니다. 1 ㎎ / ㎖의 BSA 흐름과 3 분을 기다립니다. 실리카 비드가 인산염 완충액에 1 / 1000로 희석 흐름 및 실리콘 그리스 유량 용기를 밀봉. 트랩 한 각 트랩의 비드 및 전력 스펙트럼을 사용하는 방법 (18)을 보정 트랩. </l난&gt; <li> 펜틸 아세테이트 및 니트로 셀룰로오스의 실리카 비드를 제조 : 실리카 비드 20 ㎕의 희석 (1.54 μM, 10 % 고형분) 아세톤 1 ㎖ 중에, 짧게 30 초, 와류를 초음파 처리하고, 원심 분리로 2 분에서 19000 × g으로. 1 ml의 아세톤 및 반복 세척에 재현 탁. 및 펜틸 아세테이트 1 ㎖에 재현 탁은 2 회 반복한다. 마지막 펜틸 아세테이트에 용해 0.1 % 니트로 셀룰로스로 펜틸 아세테이트에이를 재현 탁. </li><li> 제 커버 슬립 (24 X 60mm)를 사용하여 커버 슬립 (24 X 24mm)의 표면 상 펜틸 아세테이트 + 0.1 % 니트로 셀룰로스에 용해하고 1.54 μm의 직경의 실리카 비드의 2 μl를 확산. 플로우 셀을 만들기 위해 양면 테이프의 두 가지를 사용하여 현미경 슬라이드에 커버 슬립을 부착. 50 mM의 인산 버퍼 플로우 셀을 채우고 실리콘 그리스를 밀봉하십시오. </li><li> 2,000X 배율의 시야 현미경의 이미지 한 실리카 비드. 비드 (190)는 화상 (P)의 직경을 갖도록 시야는 768 X 576 픽셀에서 취득한 7 × 5 μM이어야ixels. REF. 17에있어서, 회절 고리로부터의 화상 및 z 중심으로부터의 XY 위치를 산출하고 nm의 정확도 또는 그 이상을 가진 피에조 스테이지를 이동 감도를 수정, 피드백 소프트웨어 열적 드리프트를 보상. </li><li> 비드 중앙과 좌측 트랩의 중심과 중첩 (QDP부터 XY 신호 레벨은 교정시 측정 같아야) 및 위치 노이즈 QDP로부터 표준 편차를 측정한다. 오른쪽 트랩에 대한 측정을 반복합니다. </li></ol></li></ol> 나노 미터의 정확도와 2 단일 분자 현지화 <ol><li> 형광 현미경 설계 및 건설 15,19 <ol><li> 나노 파악 정확성을 위해 필요한 높은 신호대 잡음비를 달성하도록 높은 양자 효율과 전자 승산 CCD를 사용한다. </li><li> 화상 픽셀 크기 ~ 80nm의 것을 알고 광학를 선택 (예를 들면, 16 μM의 카메라 픽셀 크기의 이미지 배율 ~ 200X). 이 suffi입니다픽셀 화 8로 인해 현지화 오류를 무시하는 ciently 작지만 충분히 큰 픽셀 당 광자의 상당한 수를 수집합니다. </li><li> 여기 원으로서, 방향에 관계없이, 하나의 발색단의 여진을 최대화하기 위해, 레이저 (비 편파 유지 광파이버를 통과하여) 비 편광 인 광 또는 원 (λ / 4 파장 판을 통과하여) 편광을 사용한다. </li><li> 효율적으로 차단 모두 여기 및 트래핑 레이저 조명, 발광 대역 통과 필터를 선택합니다. 참고 : 우리의 실험에서 우리는 Atto532 염료로 우리의 단백질을 표지 및 100 nm의 대역폭을 600 nm에서 중심 대역 통과 방출 필터를 사용합니다. </li></ol></li></ol> 3 미세 유체 버퍼 교환 및 &#39;아령&#39;조립, 즉,이 광학적으로 포획 된 마이크로 사이에 단일 DNA 분자의 정박, 주문 제작 층류 채널 흐름의 정확한 제어를 달성하려면시스템이 개발되어야한다. 이는 유동 챔버, 압력 저장조 및 압력 제어 시스템 (도 2)에 의해 구성된다. <ol><li> 플로우 셀 준비 참고 : 단백질-DNA 상호 작용에 단일 분자 실험에 사용 유량 용기는 4 병렬 버퍼 플로우를 허용하는, 바람직하게는 4 입구와 콘센트 1 개를 가지고, 다른 실험에 필요한 구성 요소 중 하나를 포함하는 각 일 : 구슬, DNA를, 단백질, 및 이미지 버퍼를 형광 - 표지. 유동 채널의 구성 요소의 분리는 아령의 효율적인 조립을 할 수 있습니다. 더욱이, 이미징 채널은 몇 나노 미터 정도의 정밀도를 가진 DNA-결합 단백질의 위치 파악에 필요한 높은 신호 대 잡음비를 확산 단백질로부터 배경 형광을 방지하고 달성하는 것이 유용하다. <ol><li> 유입구 (4)와 하나의 출구를 만들기 위해 다이아몬드 팁 현미경 슬라이드 (76 X 76 X 1mm)에서 드릴 직경이 1mm 구멍. </li><li> 청소 일전자 현미경은 에탄올로 슬라이드 삽입 O-링 및 액세스 홀을 둘러싸는 슬라이드에 접착 링 포트 중앙. 이 접착 과정을 방해 할 지문을 방지하기 위해이 단계에서 장갑을 착용하는 것이 필수적입니다. </li><li> 슬라이드에 NanoPorts 클램프, 완전 부착 할 수 있도록 한 시간 동안 180 ° C로 예열 된 오븐에 넣습니다. </li><li> 종이에 플로우 셀의 윤곽 패턴을 그린다. 채널 ~ 3mm 폭하고 현미경 슬라이드의 구멍의 위치와 일치한다. </li><li> 파라 필름의 두 조각의 상단에있는 그림을 놓고 메스로 그린 윤곽선을 따라 선명하고 연속 가공을합니다. 형성하는 돌기를 제거합니다. 단지 깨끗한 지원을 보장하는 데 사용되는 하부 파라 필름 층을 버린다. </li><li> 거꾸로 금속 지원에 첨부 된 NanoPorts를 포함하는 현미경 슬라이드를 놓습니다. </li><li> 조심스럽게 확인 일을, 구멍 파라 필름 챔버 개요를 정렬파라 필름에서 챔버의 입구와 출구를 obtrude하지 않습니다. </li><li> 청소 현미경 커버 슬립 (62 X 56 X 0.15 mm)로 커버 조심스럽게 실을 둘러싼 과잉 파라 필름을 제거합니다. </li><li> 거기에 일정한 압력을 적용하는 흐름 셀의 상단에 이전에 120 ° C로 가열이 열 블록을, 놓습니다. 파라 필름은 약 25 분 동안 녹여 보자. </li></ol></li><li> 압력 탱크 및 버퍼 용기 압력 탱크는 플렉시 글라스 (또는 이와 유사한 것)로 만든 여섯 버퍼 용기의 숙박 시설을 허용해야합니다. 적어도 두 개의 여분의 버퍼를 갖는 용기의 가능성은 기기의 유연성을 향상시킨다. 갇힌 공기 방울의 투명 용기 상당히 흐름 시스템 처리에 도움이 튜브 및 문제 해결을합니다. 플런저는 이전에 제거 된 멸균 일회용 팁 루어 로크 시린지 (2.5 ml)을, 좋은 버퍼 컨테이너와 입구 튜빙과 쉽게 연결할 수있다. 있는지 확인전체 유체 부피는 압력 탱크, 부드럽고 안정한 유동을 얻는 것이 필수 조건 내부 공기량에 비해 작다. <ol><li> 실험 중 또는 해제 버퍼 흐름을 선회에 대한 버퍼 용기의 출구에 차단 밸브를 연결합니다. </li><li> 현미경 무대에 흐름 전지를 탑재합니다. 폴리 에테르 에테르 케톤 튜브 (내경 ~ 150 μm의)와 플랜지가 피팅 유량 용기 입구에 차단 밸브를 연결합니다. 튜브 및 흐름 셀의 NanoPort 어셈블리 사이의 연결로 플루오르 에틸렌 프로필렌 튜브 ~ 3cm (내경 ~ 500 μm의)를 추가합니다. 이 단계는 유리 플로우 셀 또는 NanoPort 박리의 파손을 방지하기 위해 상기 챔버 입구 버퍼 유량을 감소하는 것이 필수적이다. 큰 내경 튜브의 사용은 단독으로, 다른 한편, 생물학적 시료의 큰 볼륨을 필요로한다. </li><li> 대기압에서 열린 팔콘 튜브에 유량 용기 콘센트를 연결합니다. 이튜브는 유동 챔버로부터 유출을위한 버퍼 역할을 폐기. </li></ol></li><li> 압력 제어 시스템 <ol><li> 미세 압력 저장조 내부의 공기압을 조정할 수있는 압력 제어 시스템을 구축. 이것은이 컴퓨터 제어 솔레노이드 밸브 번 +0.5 기압 압력 원에 연결 (압축기) 및 대기압 제를 사용하여 수행 할 수있다. 솔레노이드 밸브는 반복적으로 증가 또는 원하는 값에 도달 할 때까지 라인 내의 압력을 감소시키기 위해 약 7 밀리 개방된다. 참고 :이 방법은 카를로스 부스타 20에서 적응하고 스테핑 모터 주사기 펌프 (21)를 사용하는 것보다 더 부드러운 흐름을 산출 하였다. </li><li> 압력 탱크에 가해지는 유효 압력을 모니터링하는 사용자 지정 작성 소프트웨어에 의해 제어되는 압력 변환기를 추가합니다. 전형적인 작동 압력은 아령 조립체 및 유동 시스템 부품을 세척 200 밀리바 20 밀리바의 순서이다. </li></ol></리&gt; </ol> 바이오틴 데 옥시 시티 딘 3 인산과 4 DNA 미행 (비오틴-dCTP) DNA 분자는 이상 1 μm의이 갇혀 구슬에 대한 흐름과 고정에서의 확장을 용이하게해야한다. 또한, 긴 DNA는 DNA 결합 단백질을 조명으로부터 IR 트래핑 광을 방지 할 수 있습니다. 이는 IR 광의 흡수를 증가 광표백에 흥분된 발색단 결과에서 특별한 관련성이있다. 참고 : 본 연구에서는 DNA 분자가 3.7 μm의 긴이었다. 분자는 기본 연산자 O1의 세 사본이 보조 사업자 O2와 O3의 각 사본이 포함되어 있습니다. 이러한 서열은 이렇게 포획 구슬과 IR 레이저 빔로부터 등거리 결과, 분자의 중간에 삽입되어있다. <ol><li> 비오틴-14-dCTP의 60 pmol의 5 배 터미널 deoxynucleotidyl 트랜스퍼 라 (TDT) 버퍼의 4 μL (1 M 칼륨 캘리포니아와 선형 DNA 3&#39;-말단의 1 pmol의 혼합codylate, 125 mM 트리스, 0.05 % (v / v)로 트리톤 X-100, 5 mM의 CoCl2를 20 μL의 총 볼륨) 및 TDT의 1.5 μL 및 DDH 2 O (25 ° C에서의 pH 7.2). 15 분 동안 37 ° C의 혼합물을 품어. 이 DNA 말단 당 최대 60 개의 뉴클레오티드를 추가하면된다. 3&#39;-돌출이 오목 또는 평활 말단보다 더 높은 효율로 꼬리되는 DNA를합니다. </li><li> TDT 반응 버퍼에서의 CoCl2를 제거하는 스핀 열 또는 페놀 / 클로로포름 추출 및 후속 에탄올 침전와 꼬리 DNA를 정화. </li><li> 정제 한 후, DNA는 몇 주 동안 이상 기간 동안 -20 ° C에서 4 ° C에 보관하지만, 반복 해동과 재 냉동을 방지 할 수 있습니다. </li></ol> 5 표지 단백질 ATTO532와 티올 그룹 시스테인 잔기의 수정을 통해 레이블링 단백질의 활동을 변경하지 말아야합니다. 이러한 문제를 극복하기 위해, 우리는 돌연변이의 lacI, LacIQ231C, whic 사용H는 단백질의 안정성을 방해하지 22 것으로 나타났다 위치 231이 돌연변이는 위치 231에 야생형 및 화학적 변형의 동일한 특성을 보존시 단량체 당 하나의 시스테인을 운반. 참고 : 우리는 ATTO532 말레이 미드와 단백질을 표시. <ol><li> 단백질이 7.0-7.5 2에서 10 ㎎ / ㎖ 농도 범위와 pH 범위와 버퍼에 용해되어 있는지 확인합니다. NOTE :이 실험에서의 lacI가 인산 칼륨 0.3 M, 5 % 포도당, pH가 7.5 (A 버퍼)에 용해시켰다. </li><li> 디졸브 트리스 - (2 - 카르복시 에틸) H 2 O.의 100 ㎎ / ㎖의 최종 농도로 포스 핀 히드로 클로라이드 (TCEP) TCEP 솔루션은 사용하기 신선한 전에 준비를해야합니다. </li><li> 조심스럽게 3 μL의 TCEP와 소용돌이와 단백질의 100 μl를 섞는다. </li><li> 낮은 광 조건에서 작동하는 10 ㎎ / ㎖의 최종 농도로 N, N 디메틸 포름 아미드 (DMF)에 색소를 용해. 와동까지 완전히 용해. </li><li> 반응 마일X :주의 깊게 단백질 + TCEP와 소용돌이에 염료의 33 μl를 추가합니다. 패스트 스핀 최대한 용액을 수집한다. </li><li> 20 ° C에서 진탕 (8000 RPM)에서 2 시간 동안 반응 믹스를 품어 (또는 4 ° CO / N에) 빛으로부터 보호. </li><li> L-글루타티온 O. H 2에서 100 ㎎ / ㎖의 최종 농도 (GSH) 환원 용해 반응 혼합물에 3 μl를 첨가하고 15 분 동안 8,000 rpm에서 진탕 배양한다. GSH는 티올 그룹의 반응성을 차단하여 반응을 중지합니다. </li><li> 표준 겔 여과 컬럼, 투석 또는 회전 농축기를 이용하여 표지 된 단백질을 정제 하였다. 참고 :이 실험에서, 표시 Laci 팀이 10 kDa의 컷오프 스핀 집중 장치를 사용하여 정제 하였다. <ol><li> 8000 XG, 1 시간, 4 ° C에서 그것을 버퍼의 최대 12 ml의 반응 혼합물을 희석 집중 장치에 적용, 원심 분리기. 표지의 lacI 따라서 약 500 μL의 최종 부피로 농축시키고, 과량의 염료는 플로로 막을 통과한다w-통해. 플로우 스루 (flow-through) 단계를 반복 5.8.1 최소 세 번 이상 폐기하십시오. </li></ol></li><li> -80 ° C에서 작은 분취 및 저장소로 표시된 단백질을 나눈다. 반복되는 동결 융해을 피하십시오. </li></ol> (6) 복합 광학 트랩 및 단일 분자 형광 이미징 실험 <ol><li> 버퍼 컨테이너에 버퍼의 1 ML을 추가하고, 연결 튜브를 씻어 셀 흐름에 200 mbar의 압력을 적용합니다. DNA, 여기에서 다음과 같은 단계에 결합 된 단백질의 확산을 극대화하기 위해,이 낮은 이온 세기 완충액으로 대체 될 수있다 버퍼. 참고 :이 실험에서 우리는 TBE의 0.5 배를 사용했다. </li><li> 흐름의 매끄러움을 방해 할 수있는 공기 거품의 존재를 확인합니다. 배출 튜브에 부드러운 영화는 남아있는 거품을 제거하는 데 도움이 될 것입니다. </li><li> 20 밀리바에 압력을 낮추고 모든 채널 및 튜브 기포가 분명하고 버퍼가 모든 채널에서 비슷한 속도로 흐르고 있는지 확인합니다. </li><li>300 μL의 최종 볼륨으로 샘플을 준비합니다 스트렙 타비 딘 - 코팅 된 폴리스티렌 비즈 1.87 μm의; 4 절에 따라 모두 사지에 비오틴 선형 DNA의 20 μM의; Laci 팀의 사량의 300 오후 5 절에 따라 ATTO532으로 표시. </li><li> 다음 순서 주사기 용기 중 하나에 각각의 샘플을 추가 구슬 촬상 버퍼 만 (완충액 + 탈산 소제 시스템) 및 제 채널 표지 단백질과 두 번째, 세 번째 채널의 첫 번째 채널, DNA에. </li><li> 3 분 동안 200 밀리바에서 흐름을 켜하면 샘플 유동 채널 내에 도착 할 수 있습니다. 그런 다음 20 밀리바에 압력을 줄일 수 있습니다. </li><li> 명 시야 조명하에 제 채널을 이미징하는 동안, 2 개의 광 핀셋 켜고 각 트랩의 폴리스티렌 비드 타기. </li><li> 다른 구슬이 함정에 빠질 것을 방지하기 위해 상기 제 2 채널로 빠르게 이동합니다. DNA 채널에서 도착 비드 유동의 단부에 의해 쉽게 눈에 띄게되어 있습니다. </li><li> O를 사용하여AOD (NE)는,이 광학적으로 갇혀 비드 사이에서 유동하게 연장 된 DNA의 부착을 허용하도록 앞뒤로 다른 비드에 근접하여 하나의 트랩 (비드)를 이동. DNA 아령 형성 할 때에, 정전기 비드 적극적 앞뒤로 트랩에 의해 이동되는 비드의 움직임을 따라 시작한다. </li><li> 버퍼 채널로 빠르게 이동하고 버​​퍼 흐름을 끕니다. 하나의 DNA 분자의 존재를 확인하기 위해 강제로 확장 곡선 분석 4,23-25을 수행합니다. 두 개 이상의 분자가 존재하는 경우, 덤벨을 폐기하고, 단계 6.7에서 다시 시작하는 (즉, 힘 - 신장 곡선의 위상을 올리는 enthalpic는 DNA 윤곽 길이보다 짧은 길이에서 발생한다). </li><li> 하나의 DNA 아령 구한 후, 다시 흐름을 켜고 단백질 채널에 아령을 이동합니다. DNA와 표지-​​의 lacI의 상호 작용을 모니터링하는 넓은 필드 형광 현미경으로 전환. 흐름을 끄고 수집을 시작합니다. </li></ol>

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	<li>Monico, C., Capitanio, M., Belcastro, G., Vanzi, F., Pavone, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+Methods+to+Study+Protein-DNA+Interactions+in+Vitro+and+in+Living+Cells+at+the+Single-Molecule+Level.">Optical Methods to Study Protein-DNA Interactions in Vitro and in Living Cells at the Single-Molecule Level.</a> International journal of molecular sciences. 14, 3961-3992 (2013).</li><li>Tinoco, I., Gonzalez, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biological+mechanisms,+one+molecule+at+a+time.">Biological mechanisms, one molecule at a time.</a> Genes &amp; development. 25, 1205-1231 (2011).</li><li>Capitanio, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exploring+molecular+motors+and+switches+at+the+single-molecule+level.">Exploring molecular motors and switches at the single-molecule level.</a> Micr. Res. Tech. 65, 194-204 (2004).</li><li>Smith, S. B., Finzi, L., Bustamante, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+mechanical+measurements+of+the+elasticity+of+single+DNA+molecules+by+using+magnetic+beads.">Direct mechanical measurements of the elasticity of single DNA molecules by using magnetic beads.</a> Science. 258, 1122-1126 (1992).</li><li>Block, S. M., Goldstein, L. S., Schnapp, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bead+movement+by+single+kinesin+molecules+studied+with+optical+tweezers.">Bead movement by single kinesin molecules studied with optical tweezers.</a> Nature. 348, 348-352 (1990).</li><li>Wang, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Force+and+velocity+measured+for+single+molecules+of+RNA+polymerase.">Force and velocity measured for single molecules of RNA polymerase.</a> Science. 282, 902-907 (1998).</li><li>Capitanio, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrafast+force-clamp+spectroscopy+of+single+molecules+reveals+load+dependence+of+myosin+working+stroke.">Ultrafast force-clamp spectroscopy of single molecules reveals load dependence of myosin working stroke.</a> Nat Methods. 9, 1013-1019 (2012).</li><li>Thompson, R. E., Larson, D. R., Webb, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Precise+nanometer+localization+analysis+for+individual+fluorescent+probes.">Precise nanometer localization analysis for individual fluorescent probes.</a> Biophys J. 82, 2775-2783 (2002).</li><li>Yildiz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myosin+V+walks+hand-over-hand:+single+fluorophore+imaging+with+1.5-nm+localization.">Myosin V walks hand-over-hand: single fluorophore imaging with 1.5-nm localization.</a> Science. 300, 2061-2065 (2003).</li><li>Biebricher, A., Wende, W., Escude, C., Pingoud, A., Desbiolles, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tracking+of+single+quantum+dot+labeled+EcoRV+sliding+along+DNA+manipulated+by+double+optical+tweezers.">Tracking of single quantum dot labeled EcoRV sliding along DNA manipulated by double optical tweezers.</a> Biophys J. 96, 50-52 (2009).</li><li>Candelli, A., Wuite, G. J., Peterman, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combining+optical+trapping,+fluorescence+microscopy+and+micro-fluidics+for+single+molecule+studies+of+DNA-protein+interactions.">Combining optical trapping, fluorescence microscopy and micro-fluidics for single molecule studies of DNA-protein interactions.</a> Physical chemistry chemical physics : PCCP. 13, 7263-7272 (2011).</li><li>Capitanio, M., Cicchi, R., Pavone, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Continuous+and+time-shared+multiple+optical+tweezers+for+the+study+of+single+motor+proteins.">Continuous and time-shared multiple optical tweezers for the study of single motor proteins.</a> Optics and Lasers in Engineering. 45, 450-457 (2007).</li><li>Harada, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-molecule+imaging+of+RNA+polymerase-DNA+interactions+in+real+time.">Single-molecule imaging of RNA polymerase-DNA interactions in real time.</a> Biophys J. 76, 709-715 (1999).</li><li>van Mameren, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Counting+RAD51+proteins+disassembling+from+nucleoprotein+filaments+under+tension.">Counting RAD51 proteins disassembling from nucleoprotein filaments under tension.</a> Nature. 457, 745-748 (2009).</li><li>Capitanio, M., Maggi, D., Vanzi, F., Pavone, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fiona+in+the+trap:+the+advantages+of+combining+optical+tweezers+and+fluorescence.">Fiona in the trap: the advantages of combining optical tweezers and fluorescence.</a> J Opt A: Pure Appl Opt. 9, s157 (2007).</li><li>Dijk, M. A., Kapitein, L. C., Mameren, J., Schmidt, C. F., Peterman, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combining+optical+trapping+and+single-molecule+fluorescence+spectroscopy:+enhanced+photobleaching+of+fluorophores.">Combining optical trapping and single-molecule fluorescence spectroscopy: enhanced photobleaching of fluorophores.</a> J Phys Chem B. 108, 6479-6484 (2004).</li><li>Capitanio, M., Cicchi, R., Pavone, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Position+control+and+optical+manipulation+for+nanotechnology+applications.">Position control and optical manipulation for nanotechnology applications.</a> European Physical Journal B. 46, 1-8 (2005).</li><li>Capitanio, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calibration+of+optical+tweezers+with+differential+interference+contrast+signals.">Calibration of optical tweezers with differential interference contrast signals.</a> Review of Scientific Instruments. 73, 1687-1696 (2002).</li><li>Elangovan, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+integrated+in+vitro+and+in+situ+study+of+kinetics+of+myosin+II+from+frog+skeletal+muscle.">An integrated in vitro and in situ study of kinetics of myosin II from frog skeletal muscle.</a> J Physiol. 590, 1227-1242 (2012).</li><li>Wuite, G. J. L., Davenport, R. J., Rappaport, A., Bustamante, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+integrated+laser+trap/flow+control+video+microscope+for+the+study+of+single+biomolecules.">An integrated laser trap/flow control video microscope for the study of single biomolecules.</a> Biophysical Journal. 79, 1155-1167 (2000).</li><li>Brewer, L. R., Bianco, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laminar+flow+cells+for+single-molecule+studies+of+DNA-protein+interactions.">Laminar flow cells for single-molecule studies of DNA-protein interactions.</a> Nat Methods. 5, 517-525 (2008).</li><li>Rutkauskas, D., Zhan, H. L., Matthews, K. S., Pavone, F. S., Vanzi, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tetramer+opening+in+LacI-mediated+DNA+looping.">Tetramer opening in LacI-mediated DNA looping.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 16627-16632 (2009).</li><li>Marko, J. F., Siggia, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stretching+DNA.">Stretching DNA.</a> Macromolecules. 28, 8759-8770 (1995).</li><li>van Mameren, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unraveling+the+structure+of+DNA+during+overstretching+by+using+multicolor,+single-molecule+fluorescence+imaging.">Unraveling the structure of DNA during overstretching by using multicolor, single-molecule fluorescence imaging.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 18231-18236 (2009).</li><li>Wang, M. D., Yin, H., Landick, R., Gelles, J., Block, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stretching+DNA+with+optical+tweezers.">Stretching DNA with optical tweezers.</a> Biophys J. 72, 1335-1346 (1997).</li><li>Ma, H., Long, F., Zeng, S., Huang, Z. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fast+and+precise+algorithm+based+on+maximum+radial+symmetry+for+single+molecule+localization.">Fast and precise algorithm based on maximum radial symmetry for single molecule localization.</a> Opt Lett. 37, 2481-2483 (2012).</li><li>Parthasarathy, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid,+accurate+particle+tracking+by+calculation+of+radial+symmetry+centers.">Rapid, accurate particle tracking by calculation of radial symmetry centers.</a> Nat Methods. 9, 724-726 (2012).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

지난 10 년 동안 단일 분자 조작 및 이미징 기술은 공간과 시간 해상도 측면에서 큰 진전을 보았다. 조작 및 이미징 기법의 조합은 지금 같은 DNA, RNA 또는 세포 골격의 필라멘트와 같은 하나의 생물학적 고분자의 기계적 상태의 제어를 가능하게 강력한 기기의베이스와 같은 중합체와 상호 작용하는 단일 단백질의 동시 위치 파악에 있어요 . 포획 된 중합체의 기계적 조건을 제어하는​​ 것이 특히...

단일 분자 (SM) 기술은 크게 전통적인 벌크 용액 측정 1-3의 한계 중 일부를 극복하는 요구에 응답하기 위해 지난 30 년에 걸쳐 개발했다. 단일 생체 분자의 조작은 생체 고분자 (4)의 기계적 특성을 측정하고 단백질 - 단백질 5 및 단백질-DNA 상호 작용의 6,7 기계적 매개 변수를 제어 할 수있는 기회를 만들었다. SM 형광 검출은, 반면에, 로컬 화 및 나노 미터 정밀도로 단일 분자의 추적 가능성 선도, 시험 관내 및 생체 내에서의 단백질의 활성을 연구하는데 대단히 다용도 공구를 나타낸다. SM 이미지에 악기 점 - 확산 함수의 피팅을 통하여, 실제로, 한 정밀도가 신호 대 잡음비 (SNR)에 주로 의존 약 1 나노 미터 8,9의 한계에 도달하여 지역화를 달성 할 수있다. 이 방법은 강력한 찾기모터 단백질의 역학 연구에서 애플리케이션과의 DNA-결합 단백질의 검색 대상을 기초 확산 과정. 대상의 DNA 서열의 기능, 체류 시간으로 확산 상수를 결정하고 정확하게 일차원 확산 이벤트 동안 탐구 DNA 길이를 측정하는 기능, 단백질-DNA 상호 작용의 역학 연구 및 조사를위한 강력한 도구를 대표 특정 대상 검색의 메커니즘. 최근, 이들 두 기술의 조합은 예를 들어 (예를 들어 액틴 필라멘트 또는 DNA 분자) 상호 작용 파트너 효소 및 검출 / 지역화 생물학적 기판의 동시 조작을 가능하게 실험 셋업 10-14의 새로운 세대 (만들어 내고 미오신 또는 DNA-결합 단백질). 이러한 기술의 이점은 주로 ENA 따라서, 포획 된 중합체 위에 기계적 제어를 발휘할 수있는 가능성에 휴식힘 또는 토크 대 상호 작용의 역학 연구를 블링. 또, 방법론은 고전 SM 방법, 즉, 표면에 연구중인 분자의 고정화를위한 필요성 (유리 슬라이드 또는 마이크로 스피어)의 주요 제한을 피하면서 표면으로부터 멀리 생화학 반응을 측정 할 수있다. 두 개의 단일 분자 기술의 조합은 주로 기계적 안정성 및 15 (특히 나노 미터 정밀도로 현지화를 요구하는) 적절한 SNR의 요구 사항에서 발생하는 여러 가지 기술적 인 어려움을 극복해야합니다. 광 핀셋, 노이즈 감소 SM 형광 검출을 결합하고 포착 적외선 레이저 (16) 및 생물학적 착체의 조립 및 실험적 측정 (11)의 성능에 대한 생화학 버퍼로부터 photobleaching에 제어 할 때 특히, 매우 중요하다. 여기서는 성공한 행하는 방법을 설명이중 트래핑 / SM 형광 지역화 설정에서 측정. 방법론은 특정의 lacI 결합 서열 (즉, 오퍼레이터)을 함유 유당 리프레 서 단백질 (의 lacI) 형광 (Atto532로) 분류하고 (2 개의 광 핀셋 사이에 갇혀) DNA 분자에 결합으로서 검출의 예와 함께 도시되어있다. 우리는 목표 탐색 과정에서의 형상을 따라 DNA 및 확산의 lacI의 결합 검출에있어서의 효과를 보여준다. 상기 방법은 DNA 서열 및 DNA-결합 단백질의 임의의 조합뿐만 아니라 다른 시스템 (미세 소관 또는 액틴 필라멘트 및 그들과 상호 작용하는 단백질 모터)에 적용 가능하다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="863">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:43px;width:203px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:141px;">Company</td>
			<td style="width:167px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:151px;">Comments/Description</td>
			<td style="width:203px;">Web Address</td>
		</tr>
		<tr height="114">
			<td height="114" style="height:115px;">elastomeric isolators</td>
			<td style="width:141px;">Newport</td>
			<td style="width:167px;">Newdamp</td>
			<td style="width:151px;">Choose the appropriate Newdamp elastomer depending on the microscope weight and resonance frequencies</td>
			<td><a href="http://www.newport.com/">http://www.newport.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">optical isolator</td>
			<td style="width:141px;">Optics for Research</td>
			<td style="width:167px;">IO-3-YAG-VHP</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.ofr.com/">http://www.ofr.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Nd:YAG laser, 1064 nm wavelength</td>
			<td style="width:141px;">Spectra-Physics</td>
			<td style="width:167px;">Millennia IR</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.newport.com/">http://www.newport.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">acousto-optic deflectors (AODs)</td>
			<td style="width:141px;">A&#38;A optoelectronic</td>
			<td style="width:167px;">DTS-XY 250</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.aaoptoelectronic.com/">http://www.aaoptoelectronic.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Direct Digital Synthesizers</td>
			<td style="width:141px;">Analog Devices</td>
			<td style="width:167px;"></td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.analog.com/">http://www.analog.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">quadrant detector photodiodes</td>
			<td style="width:141px;">OSI optoelectronics</td>
			<td style="width:167px;">SPOT-15-YAG</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.osioptoelectronics.com/">http://www.osioptoelectronics.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">DIO and FPGA board</td>
			<td style="width:141px;">National Instruments</td>
			<td style="width:167px;">NI-PCI-7830R</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.ni.com/">http://www.ni.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Halogen lamp</td>
			<td style="width:141px;">Schott</td>
			<td style="width:167px;">KL 1500 LCD</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.schott.com/">http://www.schott.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">Condenser</td>
			<td style="width:141px;">Olympus</td>
			<td style="width:167px;">U-AAC 1.4NA Aplanat Apchromat</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.olympus-global.com/en/">http://www.olympus-global.com/en/</a></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:203px;">Objective</td>
			<td style="width:141px;">Nikon</td>
			<td style="width:167px;">CFI Plan Apochromat 60x 1.2NA water immersion</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.nikoninstruments.com/">http://www.nikoninstruments.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">532 nm laser</td>
			<td style="width:141px;">Coherent</td>
			<td style="width:167px;">Sapphire</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.coherent.com/">http://www.coherent.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">CCD 200X and 2000X</td>
			<td style="width:141px;">Hamamatsu&#160;</td>
			<td style="width:167px;">XC-ST70 CE</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.hamamatsu.com/">http://www.hamamatsu.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">electron-multiplied CCD</td>
			<td style="width:141px;">Hamamatsu&#160;</td>
			<td style="width:167px;">C9100-13</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.hamamatsu.com/">http://www.hamamatsu.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">piezo stage with nm-accuracy</td>
			<td style="width:141px;">Physik Instrumente</td>
			<td style="width:167px;">P-527.2CL&#160;</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.physikinstrumente.com/">http://www.physikinstrumente.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">Emission Filter</td>
			<td style="width:141px;">Chroma Technologies</td>
			<td style="width:167px;">600/100m</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.chroma.com/">http://www.chroma.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">silica beads (1.54 mm)</td>
			<td style="width:141px;">Bangs Laboratories</td>
			<td style="width:167px;">SS04N/5303</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.bangslabs.com/">http://www.bangslabs.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Albumin from bovine serum (BSA)</td>
			<td style="width:141px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:167px;">B4287</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.sigmaaldrich.com/">http://www.sigmaaldrich.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;">pentyl acetate&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:167px;">46022</td>
			<td style="width:151px;">Flammable liquid and vapour (No 1272/2008)</td>
			<td><a href="http://www.sigmaaldrich.com/">http://www.sigmaaldrich.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">nitrocellulose</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:167px;">N8267-5EA</td>
			<td style="width:151px;">Flammable solid&#160; (No 1272/2008)</td>
			<td><a href="http://www.sigmaaldrich.com/">http://www.sigmaaldrich.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;">heat block</td>
			<td style="width:141px;">MPM Instruments Srl</td>
			<td style="width:167px;">M502-HBD</td>
			<td style="width:151px;">with 2 removable blocks; preheated at 120&#176; C</td>
			<td><a href="http://www.mpminstruments.com/">http://www.mpminstruments.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">NanoPort assemblies</td>
			<td style="width:141px;">Upchurch Scientific Inc.</td>
			<td style="width:167px;">N-333</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.upchurch.com/">http://www.upchurch.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">polyetheretherketone tubing&#160;</td>
			<td style="width:141px;">Upchurch Scientific Inc.</td>
			<td style="width:167px;">1535</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.upchurch.com/">http://www.upchurch.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:203px;">home-made metallic holder for the assembly of the flow-chamber pressure reservoir made of Plexiglass</td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">luer lock-tip syringes 2.5 mL</td>
			<td style="width:141px;">Terumo</td>
			<td style="width:167px;">SS 02LZ1</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.terumomedical.com/">http://www.terumomedical.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">shut-off valves&#160;</td>
			<td style="width:141px;">Upchurch Scientific, Inc.</td>
			<td style="width:167px;">P-732</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.upchurch.com/">http://www.upchurch.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">flangeless fittings&#160;</td>
			<td style="width:141px;">Upchurch Scientific, Inc.</td>
			<td style="width:167px;">LT-111</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.upchurch.com/">http://www.upchurch.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">fluorinated ethylene propylene tubing&#160;</td>
			<td style="width:141px;">Upchurch Scientific, Inc.</td>
			<td style="width:167px;">1549</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.upchurch.com/">http://www.upchurch.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:203px;">two computer-controlled solenoid valves</td>
			<td style="width:141px;">Clippard, Cincinnati, USA</td>
			<td style="width:167px;">ET-2-H-M5</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.clippard.com/">http://www.clippard.com</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pressure transducer</td>
			<td style="width:141px;">Druck LTD</td>
			<td style="width:167px;">PTX 1400</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">biotin-14-dCTP&#160;</td>
			<td style="width:141px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:167px;">19518-018</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.lifetechnologies.com/">http://www.lifetechnologies.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">Terminal deoxynucleotidyl Transferase (TdT)</td>
			<td style="width:141px;">Thermoscientific</td>
			<td style="width:167px;">EP0161</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.thermoscientificbio.com/">http://www.thermoscientificbio.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">ATTO532 maleimide</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:167px;">68499</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.sigmaaldrich.com/">http://www.sigmaaldrich.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="157">
			<td height="157" style="height:157px;width:203px;">N,N-dimethylformamide (DMF)&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:167px;">227056</td>
			<td style="width:151px;">Combustible Liquid, Harmful by skin absorption., Irritant, Teratogen. H226; H303; H312; H316; H319; H331; H360; P201; P261; P280;P305; P351; P338; P311</td>
			<td><a href="http://www.sigmaaldrich.com/">http://www.sigmaaldrich.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Tris-(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride (TCEP)&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:167px;">C4706</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.sigmaaldrich.com/">http://www.sigmaaldrich.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="45">
			<td height="45" style="height:45px;width:203px;">L-Glutathione reduced (GSH)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:167px;">G4251</td>
			<td style="width:151px;">Acute toxicity, Oral (Category 5), H303</td>
			<td><a href="http://www.sigmaaldrich.com/">http://www.sigmaaldrich.com/</a></td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:203px;">Amicon Ultra-15, PLQK Ultracel-PL Membrane, 10&#160;kDa cutoff spin concentrators</td>
			<td style="width:141px;">Merck Millipore</td>
			<td style="width:167px;">UFC901024</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.merckmillipore.it/">http://www.merckmillipore.it/</a></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">streptavidin-coated polystyrene beads 1,87 &#181;m</td>
			<td style="width:141px;">Spherotech, Inc.</td>
			<td style="width:167px;">SVP-15-5</td>
			<td></td>
			<td><a href="http://www.spherotech.com/">http://www.spherotech.com/</a></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

combining single-molecule manipulation and imaging for the study of protein-dna interactions

The paper describes the combination of optical tweezers and single molecule fluorescence detection for the study of protein-DNA interaction. The method offers the opportunity of investigating interactions occurring in solution (thus avoiding problems due to closeby surfaces as in other single molecule methods), controlling the DNA extension and tracking interaction dynamics as a function of both mechanical parameters and DNA sequence. The methods for establishing successful optical trapping and nanometer localization of single molecules are illustrated. We illustrate the experimental conditions allowing the study of interaction of lactose repressor (lacI), labeled with Atto532, with a DNA molecule containing specific target sequences (operators) for LacI binding. The method allows the observation of specific interactions at the operators, as well as one-dimensional diffusion of the protein during the process of target search. The method is broadly applicable to the study of protein-DNA interactions but also to molecular motors, where control of the tension applied to the partner track polymer (for example actin or microtubules) is desirable.

성공적인 실험에서, 하나 (또는 그 이상)의 표지 단백질은 DNA 분자 (도 3a)을 따라 / 바인딩 해제 및 / 또는 확산 monodimensional 바인딩 거친다. DNA 분자에 따라 단백질의 지역화는 DNA 서열의 함수로서 운동 매개 변수의 정량화를 허용한다. 1D 확산을 일으키는 버퍼 조건이 적용될 때, 확산 계수 D (1D), 예를 들어, 단백질의 궤적을 따르고, 결정하는 것이 가능하다. <p class="jove_content...

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Combining Single-molecule Manipulation and Imaging for the Study of Protein-DNA Interactions

여기에서 우리는이 광학적으로 포획 된 마이크로 스피어 사이 일시 중지 하나의 DNA 분자와 상호 작용하는 하나의 형광 표지 단백질 분자를 검출하기위한 장비 및 방법에 대해 설명합니다.

단백질-DNA 상호 작용의 연구에 대한 단일 분자 조작 및 이미지를 결합

The paper describes the combination of optical tweezers and single molecule fluorescence detection for the study of protein-DNA interaction. The method ...

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Research

JoVE Journal

Biology

11.5K 조회수.  University of Florence.  여기에서 우리는이 광학적으로 포획 된 마이크로 스피어 사이 일시 중지 하나의 DNA 분자와 상호 작용하는 하나의 형광 표지 단백질 분자를 검출하기위한 장비 및 방법에 대해 설명합니다. 

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Testing Visual Sensitivity to the Speed and Direction of Motion in Lizards

Testing visual sensitivity in any species provides basic information regarding behaviour, evolution, and ecology. However, testing specific features of the visual system provide more empirical evidence for functional applications. Investigation into the sensory system provides information about the sensory capacity, learning and memory ability, and establishes known baseline behaviour in which to gauge deviations (Burghardt, 1977). However, unlike mammalian or avian systems, testing for learning and memory in a reptile species is difficult. Furthermore, using an operant paradigm as a psychophysical measure of sensory ability is likewise as difficult. Historically, reptilian species have responded poorly to conditioning trials because of issues related to motivation, physiology, metabolism, and basic biological characteristics. Here, I demonstrate an operant paradigm used a novel model lizard species, the Jacky dragon (Amphibolurus muricatus) and describe how to test peripheral sensitivity to salient speed and motion characteristics. This method uses an innovative approach to assessing learning and sensory capacity in lizards. I employ the use of random-dot kinematograms (RDKs) to measure sensitivity to speed, and manipulate the level of signal strength by changing the proportion of dots moving in a coherent direction. RDKs do not represent a biologically meaningful stimulus, engages the visual system, and is a classic psychophysical tool used to measure sensitivity in humans and other animals. Here, RDKs are displayed to lizards using three video playback systems. Lizards are to select the direction (left or right) in which they perceive dots to be moving. Selection of the appropriate direction is reinforced by biologically important prey stimuli, simulated by computer-animated invertebrates.

Testing visual sensitivity in lizards using an operant conditioning paradigm that employs video playback of random-dot kinematograms and computer-generated invertebrates.

도마뱀의 운동의 속도와 방향에 시각 민감도 테스트

Testing visual sensitivity in any species provides basic information regarding behaviour, evolution, and ecology. However, testing specific features of ...

연구

생물학

Computer-Generated Animal Model Stimuli

Communication between animals is diverse and complex. Animals may communicate using auditory, seismic, chemosensory, electrical, or visual signals. In particular, understanding the constraints on visual signal design for communication has been of great interest. Traditional methods for investigating animal interactions have used basic observational techniques, staged encounters, or physical manipulation of morphology. Less intrusive methods have tried to simulate conspecifics using crude playback tools, such as mirrors, still images, or models. As technology has become more advanced, video playback has emerged as another tool in which to examine visual communication (Rosenthal, 2000). However, to move one step further, the application of computer-animation now allows researchers to specifically isolate critical components necessary to elicit social responses from conspecifics, and manipulate these features to control interactions. Here, I provide detail on how to create an animation using the Jacky dragon as a model, but this process may be adaptable for other species. In building the animation, I elected to use Lightwave  3D to alter object morphology, add texture, install bones, and provide comparable weight shading that prevents exaggerated movement. The animation is then matched to select motor patterns to replicate critical movement features. Finally, the sequence must rendered into an individual clip for presentation. Although there are other adaptable techniques, this particular method had been demonstrated to be effective in eliciting both conspicuous and social responses in staged interactions.

Computer-generated stimuli using the Jacky dragon as a model.

컴퓨터가 만든 동물 모델 자극

Communication between animals is diverse and complex. Animals may communicate using auditory, seismic, chemosensory, electrical, or visual signals. In ...

Isolation and Genetic Manipulation of Adult Cardiac Myocytes for Confocal Imaging

Cardiac myocytes isolated from adult hearts are widely accepted as a model somewhere half way between embryonic and neonatal muscle cells on one side and a working heart on the other. Thus, cardiomyocytes serve as good models for cardiac cellular physiology and pathophysiology, for pharmaceutical investigations as well as for the exploration of transgenic animal models. Here we describe a method of isolating the cells from the heart. Furthermore we show how a genetic manipulation on cardiac myocytes can be performed without breeding a transgenic animal: This is the combination of long term culture (1 week) and adenoviral gene transfer. The latter one is described from the construction of the virus to the transduction of the cells. It can be used for the expression of genetically encoded biosensors (GEBs), fluorescent fusion proteins, but also for protein over expression and down regulation, e.g. using RNAi. Here we provide an example for the expression of a fusion protein staining a subcellular structure (Golgi). Such protein expression can be visualized by confocal imaging of z-stacks for a 3D-reconstruction of subcellular structures. The protocol comprises state-of-the-art in cell culture, molecular biology and biophysics and thus provides an approach for exploring new horizons in cellular cardiology.

Adult cardiac myocytes are primary cells that can be isolated from animal hearts and cultured for several days. Within this culture period adenoviral gene transfer can be used to express genetically encoded biosensors (GEBs) or fluorescent fusion proteins. Both approaches allow cellular investigations by means of confocal microscopy.

공촛점 이미징에 대한 분리 및 성인 심장 Myocytes의 유전자 조작

Cardiac myocytes isolated from adult hearts are widely accepted as a model somewhere half way between embryonic and neonatal muscle cells on one side and ...

Single-Molecule Imaging of Nuclear Transport

The utility of single molecule fluorescence microscopy approaches has been proven to be of a great avail in understanding biological reactions over the last decade. The investigation of molecular interactions with high temporal and spatial resolutions deep within cells has remained challenging due to the inherently weak signals arising from individual molecules. Recent works by Yang et al. demonstrated that narrow-field epifluorescence microscopy allows visualization of nucleocytoplasmic transport at the single molecule level. By the single molecule approach, important kinetics, such as nuclear transport time and efficiency, for signal-dependent and independent cargo molecules have been obtained. Here we described a protocol for the methodological approach with an improved spatiotemporal resolution of 0.4 ms and 12 nm. The improved resolution enabled us to capture transient active transport and passive diffusion events through the nuclear pore complexes (NPC) in semi-intact cells. We expect this method to be used in elucidating other binding and trafficking events within cells.

Single molecule microscopy approch provided novel insights into nuclear transport.

원자력 교통 단일 분자 이미징

The utility of single molecule fluorescence microscopy approaches has been proven to be of a great avail in understanding biological reactions over the ...

Single-molecule Imaging of Gene Regulation In vivo Using Cotranslational Activation by Cleavage (CoTrAC)

We describe a fluorescence microscopy method, Co-Translational Activation by Cleavage (CoTrAC) to image the production of protein molecules in live cells with single-molecule precision without perturbing the protein's functionality. This method makes it possible to count the numbers of protein molecules produced in one cell during sequential, five-minute time windows. It requires a fluorescence microscope with laser excitation power density of ~0.5 to 1 kW/cm2, which is sufficiently sensitive to detect single fluorescent protein molecules in live cells. The fluorescent reporter used in this method consists of three parts: a membrane targeting sequence, a fast-maturing, yellow fluorescent protein and a protease recognition sequence. The reporter is translationally fused to the N-terminus of a protein of interest. Cells are grown on a temperature-controlled microscope stage. Every five minutes, fluorescent molecules within cells are imaged (and later counted by analyzing fluorescence images) and subsequently photobleached so that only newly translated proteins are counted in the next measurement.
Fluorescence images resulting from this method can be analyzed by detecting fluorescent spots in each image, assigning them to individual cells and then assigning cells to cell lineages. The number of proteins produced within a time window in a given cell is calculated by dividing the integrated fluorescence intensity of spots by the average intensity of single fluorescent molecules. We used this method to measure expression levels in the range of 0-45 molecules in single 5 min time windows. This method enabled us to measure noise in the expression of the &lambda; repressor CI, and has many other potential applications in systems biology.

Single-molecule Imaging of Gene Regulation In vivo Using Cotranslational Activation by Cleavage CoTrAC

We describe a fluorescence microscopy method, Co-Translational Activation by Cleavage (CoTrAC), to image the production of protein molecules in live cells with single-molecule precision without perturbing the protein's functionality. This method has been used to follow the stochastic expression dynamics of a transcription factor, the &lambda; repressor CI 1.

유전자 규정의 단일 분자 이미징<em&gt; 생체에</em&gt; 절단하여 Cotranslational 인증 (CoTrAC)를 사용

We describe a fluorescence microscopy method, Co-Translational Activation by Cleavage (CoTrAC) to image the production of protein molecules in live cells ...

Budding Yeast Protein Extraction and Purification for the Study of Function, Interactions, and Post-translational Modifications

Homogenization by bead beating is a fast and efficient way to release DNA, RNA, proteins, and metabolites from budding yeast cells, which are notoriously hard to disrupt. Here we describe the use of a bead mill homogenizer for the extraction of proteins into buffers optimized to maintain the functions, interactions and post-translational modifications of proteins. Logarithmically growing cells expressing the protein of interest are grown in a liquid growth media of choice. The growth media may be supplemented with reagents to induce protein expression from inducible promoters (e.g. galactose), synchronize cell cycle stage (e.g. nocodazole), or inhibit proteasome function (e.g. MG132). Cells are then pelleted and resuspended in a suitable buffer containing protease and/or phosphatase inhibitors and are either processed immediately or frozen in liquid nitrogen for later use. Homogenization is accomplished by six cycles of 20 sec&#160;bead-beating (5.5 m/sec), each followed by one minute incubation on ice. The resulting homogenate is cleared by centrifugation and small particulates can be removed by filtration. The resulting cleared whole cell extract (WCE) is precipitated using 20% TCA for direct analysis of total proteins by SDS-PAGE followed by Western blotting. Extracts are also suitable for affinity purification of specific proteins, the detection of post-translational modifications, or the analysis of co-purifying proteins. As is the case for most protein purification protocols, some enzymes and proteins may require unique conditions or buffer compositions for their purification and others may be unstable or insoluble under the conditions stated. In the latter case, the protocol presented may provide a useful starting point to empirically determine the best bead-beating strategy for protein extraction and purification. We show the extraction and purification of an epitope-tagged SUMO E3 ligase, Siz1, a cell cycle regulated protein that becomes both sumoylated and phosphorylated, as well as a SUMO-targeted ubiquitin ligase subunit, Slx5.

The preparation of high quality yeast cell extracts is a necessary first step in the analysis of individual proteins or entire proteomes. Here we describe a fast, efficient, and reliable homogenization protocol for budding yeast cells that has been optimized to preserve protein functions, interactions, and post-translational modifications.

함수의 연구, 상호 작용, 그리고 번역 후 수정을위한 신진 효모 단백질 추출 및 정제

Homogenization by bead beating is a fast and efficient way to release DNA, RNA, proteins, and metabolites from budding yeast cells, which are notoriously ...

Chromatin Immunoprecipitation Assay for the Identification of Arabidopsis Protein-DNA Interactions In Vivo

Intricate gene regulatory networks orchestrate biological processes and developmental transitions in plants. Selective transcriptional activation and silencing of genes mediate the response of plants to environmental signals and developmental cues. Therefore, insights into the mechanisms that control plant gene expression are essential to gain a deep understanding of how biological processes are regulated in plants. The chromatin immunoprecipitation (ChIP) technique described here is a procedure to identify the DNA-binding sites of proteins in genes or genomic regions of the model species Arabidopsis thaliana. The interactions with DNA of proteins of interest such as transcription factors, chromatin proteins or posttranslationally modified versions of histones can be efficiently analyzed with the ChIP protocol. This method is based on the fixation of protein-DNA interactions in vivo, random fragmentation of chromatin, immunoprecipitation of protein-DNA complexes with specific antibodies, and quantification of the DNA associated with the protein of interest by PCR techniques. The use of this methodology in Arabidopsis has contributed significantly to unveil transcriptional regulatory mechanisms that control a variety of plant biological processes. This approach allowed the identification of the binding sites of the Arabidopsis chromatin protein EBS to regulatory regions of the master gene of flowering FT. The impact of this protein in the accumulation of particular histone marks in the genomic region of FT was also revealed through ChIP analysis.

Chromatin Immunoprecipitation Assay for the Identification of Arabidopsis Protein-DNA Interactions In Vivo

Chromatin immunoprecipitation is a powerful technique for the identification of DNA binding sites of Arabidopsis proteins in vivo. This procedure includes chromatin cross-linking and fragmentation, immunoprecipitation with selective antibodies against the protein of interest, and qPCR analysis of bound DNA. We describe a simple ChIP assay optimized for Arabidopsis plants.

애기 장대 단백질 DNA 상호 작용의 식별을위한 염색질 면역 침전 분석<em&gt; 생체</em

Intricate gene regulatory networks orchestrate biological processes and developmental transitions in plants. Selective transcriptional activation and ...

The ChIP-exo Method: Identifying Protein-DNA Interactions with Near Base Pair Precision

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is an indispensable tool in the fields of epigenetics and gene regulation that isolates specific protein-DNA interactions. ChIP coupled to high throughput sequencing (ChIP-seq) is commonly used to determine the genomic location of proteins that interact with chromatin. However, ChIP-seq is hampered by relatively low mapping resolution of several hundred base pairs and high background signal. The ChIP-exo method is a refined version of ChIP-seq that substantially improves upon both resolution and noise. The key distinction of the ChIP-exo methodology is the incorporation of lambda exonuclease digestion in the library preparation workflow to effectively footprint the left and right 5&#39; DNA borders of the protein-DNA crosslink site. The ChIP-exo libraries are then subjected to high throughput sequencing. The resulting data can be leveraged to provide unique and ultra-high resolution insights into the functional organization of the genome. Here, we describe the ChIP-exo method that we have optimized and streamlined for mammalian systems and next-generation sequencing-by-synthesis platform.

Here, we present a protocol to achieve near base pair resolution of protein-DNA interactions. This is obtained by exonuclease treatment of DNA fragments selectively enriched by chromatin immunoprecipitation (ChIP-exo) followed by high throughput sequencing.

칩 엑소 방법 : 가까운 자료 쌍의 정밀과 단백질 DNA 상호 작용을 확인

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is an indispensable tool in the fields of epigenetics and gene regulation that isolates specific protein-DNA ...

Study of Protein-protein Interactions in Autophagy Research

Protein-protein interactions are important for understanding cellular signaling cascades and identifying novel pathway components and protein dynamics. The majority of cellular activities require physical interactions between proteins. To analyze and map these interactions, various experimental techniques as well as bioinformatics tools were developed. Autophagy is a cellular recycling mechanism that allows the cells to cope with different stressors, including nutrient deprivation, chemicals, and hypoxia. In order to better understand autophagy-related signaling events and to discover novel factors that regulate protein complexes in autophagy, we performed protein-protein interaction screens. Validation of these screening results requires the use of immunofluorescence and immunoprecipitation techniques. In this system, specific autophagy-related protein-protein interactions that we discovered were tested in Neuro2A (N2A) and HEK293T cell lines. Details of the technical procedures used are explained in this visualized experiment paper.

Presented here are two antibody-based protein-protein interaction research techniques: immunofluorescence and immunoprecipitation. These techniques are suitable for studying physical interactions between proteins for the discovery of novel components of cellular signaling pathways and for understanding protein dynamics.

단백질 단백질 상호 작용 Autophagy 연구에서의 연구

Protein-protein interactions are important for understanding cellular signaling cascades and identifying novel pathway components and protein dynamics. ...

Combining 3D Magnetic Force Actuator and Multi-Functional Fluorescence Imaging to Study Nucleus Mechanobiology

A fundamental question in mechanobiology is how living cells sense extracellular mechanical stimuli in the context of cell physiology and pathology. The cellular mechano-sensation of extracellular mechanical stimuli is believed to be through the membrane receptors, the associated protein complex, and the cytoskeleton. Recent advances in mechanobiology demonstrate that the cell nucleus in cytoplasm itself can independently sense mechanical stimuli simultaneously. However, a mechanistic understanding of how the cell nucleus senses, transduces, and responds to mechanical stimuli is lacking, mainly because of the technical challenges in accessing and quantifying the nucleus mechanics by conventional tools. This paper describes the design, fabrication, and implementation of a new magnetic force actuator that applies precise and non-invasive 3D mechanical stimuli to directly deform the cell nucleus. Using CRISPR/Cas9-engineered cells, this study demonstrates that this tool, combined with high-resolution confocal fluorescent imaging, enables the revelation of the real-time dynamics of a mechano-sensitive yes-associated protein (YAP) in single cells as a function of nucleus deformation. This simple method has the potential to bridge the current technology gap in the mechanobiology community and provide answers to the knowledge gap that exists in the relation between nucleus mechanotransduction and cell function.

This study presents a new protocol to directly apply mechanical force on the cell nucleus through magnetic microbeads delivered into the cytoplasm and to conduct simultaneous live-cell fluorescent imaging.

3D 자기력 액추에이터와 다기능 형광 이미징을 결합하여 핵 역학 연구

A fundamental question in mechanobiology is how living cells sense extracellular mechanical stimuli in the context of cell physiology and pathology. The ...