The present study was supported by grants from Kidney Research UK (ST4/2011), the Cunningham Trust (CT11/14) and the Mrs EA Hogg's Charitable Trust.

참고 :. 동물 실험 동물 (과학적인 절차) 법 1986에 의해 부과 된 지침과 규정에 따라 수행되었다 절차가 살균 (멸균) 수술기구 및 소모품을 사용하여 수행 하였다. 최적의 연령 존재로, 15 주 - 신장 IRI의 쥐 모델은 여기에 제시하는 동안은 8 주 된 남성이 재현 일반적으로 7 세 사이의 남녀 하나의 쥐의 변종의 다양한 수행 할 수 있습니다을 Balb / C 마우스에서 수행되었다 팔주. 대표적인 결과 섹션에 제시된 데이터의 Balb / C 및 FVB 마우스 모두에서 얻었다. 따뜻하게 식염수의 응용 프로그램이 촉촉한 장 및 수술 영역을 유지하는 데 사용하지만,주의 깊게 모니터링 및 유체의 과도한 응용 프로그램으로 최소한으로 유지해야하는 것은 중요하다 혈청 또는 혈장 크레아티닌 수준의 저하 인공적으로 이어질 수 있습니다 실험 판독. 1. 동물 준비 및 개복술 &lt;올&gt; <li> 복강 케타민을 하이드로 클로라이드 (70 ㎎ / ㎏)과 medetomidine 염산염 (1 ㎎ / ㎏)와 마우스를 마취 및 반사 예를 들면 발가락 핀치의 손실에 의해 마취의 깊이를 확인합니다. 얻어진 마취 평면의 재생 시간을 4 시간이다. 이것은 전체 수술 절차를 수행하기에 충분하며, 제공된 보충 마취가 필요하지 않다. </li><li> , 절개 주변 지역 머리카락을 제거 영역이 느슨한 머리 무료입니다 있는지 확인하고 희석 클로르헥시딘 용액을 사용하여 복부의 피부를 소독. </li><li> 앙와위에서 가열 된 수술 패드에 마우스를 놓고 낮은 압정 접착 테이프를 사용하여 패드에 상부 및 하부 사지를 고정합니다. 상지는 폐의 압축을 방지하기 위해 정상 위치에서 유지되어 있는지 확인합니다. 절차 전반에 걸쳐 열 화상에 대한 마우스를 모니터링 할 수 있습니다. 가능한 경우가 아닌 전기 열원을 사용하는 것이 좋습니다. </li><li> 진통 부 프레 노르 핀 염산염 관리 (0.06 ㎎ / ㎏)피하 및 각막 건조를 막기 위해 눈에 눈 윤활제를 적용. 진통제는 수술 후 회복을 돕기 위해 사전에 작동 관리됩니다. </li><li> 조직 가위를 분리 또는 메스 블레이드를 사용하여 중간 선 개복술의 절개를하고 퉁명스럽게 복막으로부터 피부를 구분합니다. 이는 피부와 복막 상처 폐쇄 중에 별도로 봉합 할 수있다. 무 혈관의 리네아 알바의 절개 복강에 대한 액세스를 제공한다. </li><li> 외과 영역의 명확한 뷰를 만들려면 트랙터를 삽입하고 마우스를 주름 잡아 드리운다. </li></ol> 2. 요관 부문과 오른쪽 신장 절제술 <ol><li> 오른쪽으로 천천히 신장과 요관을 노출하는 생리 식염수에 적신 멸균 멸균 면봉을 사용하여 복강의 왼쪽으로 내장을 밀어 넣습니다. 건조를 막기 위해, 습 커튼과 내장을 커버. </li><li> 각도 집게로 오른쪽 요관를 들어 올립니다. 두 번 6 / 0 SIL을 사용하여 올바른 요관을 결찰K-꼰 봉합. 장기 실험을 위해, 모든 복부 수술에 대한 흡수성 봉합사를 사용합니다. </li><li> 봉합 사이의 요관을 나눈다. vesico-ureteric 접합 방광 복막으로 새는 소변을 방지해야한다 반면 요관 장기적인 실험을하는 동안 수술 후 누출에 대한 보호로 결찰한다. </li><li> 오른쪽 신장 절제술을 수행 할 때 쉽게 액세스 할 수 있도록하기 위해, 가볍게 적신 면봉을 사용하여 간 오른쪽 위로 밀어 오른쪽 신장 동맥과 정맥을 노출 적신 거즈를 사용하는 장소에서 개최. </li><li> 퉁명스럽게까지 오른쪽 신장 동맥과 정맥으로 오른쪽 신장의 안쪽면을 따라 결합 조직과 지방을 해부하다. </li><li> 조심스럽게 혈관 아래 각진 집게를 밀어 신장 동맥과 정맥 아래 채널을 만듭니다. 팁 폐쇄 부드럽게 채널의 형성을 촉진하기 위해 오픈 팁을 제거와 함께 아래의 집게를 안내합니다.</li><li> 집게의 끝이 바로 신장 동맥과 정맥 위의 결합 조직을 통해 볼 수 있습니다 때까지 단계 2.6를 반복합니다. 일단 볼을 부드럽게 부드럽게 결합 조직을 깰 각도 집게의 또 다른 세트의 팁에 대해 포셉의 팁을 문질러. </li><li> 신장 동맥과 정맥을 명확하게 접근으로 그들은 지금 폐색 할 수있다. 조심스럽게 신장 동맥 아래 각도 집게를 밀어 팁 닫힌 정맥. 일단 자리에 집게의 끝을 열고 끝 사이의 지혈 클립 도포 구를 안내하고 단단히 신장 동맥에 지혈 클립을 적용하고 가까운 신장에 정맥. 또는 신장 동맥과 정맥 6 / 0 실크 꼰 봉합사를 이용하여 결찰 할 수 있습니다. </li><li> 지금 남아있는 접착 결합 조직으로 제거 할 수있는 폐색 신장 동맥과 신장에 가까운 정맥을 나눕니다. </li><li> 간을 잡고 면봉 내장을 대체하기 위해 사용되는 거즈를 제거합니다. </li></ol><ol><li> 부드럽게 왼쪽 신장과 요관을 노출하고 습 커튼 커버하기 위해 면봉과 복강의 오른쪽으로 내장을 밀어 넣습니다. 필요한 경우 췌장은 더 쉽게 액세스 할 수 있도록 습윤 가제로 편향 될 수있다. </li><li> 부드럽게 결합 조직이 왼쪽 신장 동맥과 정맥에 전방 및 후방 휴식 무딘 절개를 사용하고 2.4이 요관 부문과 오른쪽 신장 절제술의 단계를 설명하는 것과 유사한 방식으로 혈관 아래에 채널을 만듭니다. </li><li> 신장 동맥과 정맥에 마이크로 serrafine 클립을 적용하여 왼쪽 신장의 허혈을 유도한다. 성공적인 허혈 외형 신장의 점진적인 균일 검은 얼룩에 의해 확인 될 수있다. 좌측 신장 동맥 및 정맥 이외에 혈관 때때로 신장을 공급할 수있다. 존재하는 경우, 이러한 추가 혈관도 성공적으로 위해 마이크로 serrafine 클립을 사용하여 폐색해야합니다전체 신장의 허혈을 유도한다. </li><li> 창자를 교체하고 신중하게 장 허혈의 타협의 결과로 이어질 수 있습니다 갑작스런 왜곡이 없는지 확인합니다. 일시적으로 하나의 봉합과 복막을 닫습니다. </li><li> 허혈의 유도에 따라 즉시 허혈 필요한 기간 동안 37 ° C의 체온을 유지하는 제어 장치에 부착 된 직장 서미스터와 homeothermic 담요에 마우스를 놓습니다. 신 손상 및 신부전의 원하는 정도를 유도 할 필요가 허혈의 적절한 길이를 정의하려면 그것은 적정 각각의 변형 및 수술 운영자 수행하는 것이 좋습니다. </li><li> 곧 허혈성 기간이 종료되기 전에 복막을 다시 열고 조심스럽게 클램프에 대한 액세스를 허용하고 신장을 보려면 내장을 배치합니다. 권취 장치의 삽입은, 영상에 도시 된 바와 같이, 필요가없고 오직 표상적인 목적으로 수행되었다. </li><li> CL을 제거허혈의 기간이 지난 후 앰프는 결론을 내렸다. 즉시 제거 후 신장이 빠르게 재관류를 나타내는 건강한 진한 핑크에 어두운 적갈색의 색상을 변경합니다. </li><li> 다시 장내는 이전 6 / 0 꼰 실크 봉합사를 사용하여 담요 스티치 복막을 닫기에 트위스트되지 않도록. 그런 금속 피부 클립을 사용하여 피부를 닫는다. </li><li> , 수술 후 감염의 위험을 최소화하는 등의 외과 영역에 요오드 / 알코올 용액으로 소독을 적용합니다. </li></ol> 4. 수술 후 회복 및 관리 <ol><li> atipamezole 염산염 부분적으로 역 마취 (2 ㎎ / ㎏) 피하 및 1 ㎖의 피하 주사와 유체 관리는 수술 후 탈수를 방지하기 위해 식염수를 따뜻하게. </li><li> 그들은 의식을 회복 할 때까지 조심스럽게 마우스를 모니터링, 경고 표시와 스스로를 잘 할 수 있습니다. </li><li> 가열 상자에 복구 할 수있는 마우스는 29 ° C에서, LOC로 유지 허용24 시간 동안, 조용한 환경에서 ated. 쥐 때문에 마취에 온도 조절하는 장애인 능력을 가질 것이고 그것은 그들이 효과적인 복구를 가능하게 상승 된 온도에서 보관하는 것이 때문에 매우 중요하다. 적신 음식은 유체 및 영양 섭취를 장려하기 위해 제공 될 수있다. </li><li> 장기 복구 실험 진행 진통제를 제공하고 수술 후 칠일 피부 클립을 제거 들어. </li></ol> 5. 기능과 구조 신장 손상과 재생을 평가 <ol><li> 혈액은 실험의 끝에 안락사시 실험 도중 또는 심장 천자에 의해 꼬리 정맥으로부터 수집 될 수있다. 앞서 설명한 바와 같이 7 원심 생화학 분석기 creatinase 기반 방법, 및 혈액 요소 질소 (BUN)를 사용하여, 혈청 크레아티닌으로 신장 기능을 측정한다. 정상적인 건강한 쥐의 신장 기능이 같이 신부전 모델이 확립되기 전에 결정되어야하는 dependi 현격히 다를 수제피 반응과 크레아티닌을 측정하기위한 creatinase 기반 방법 예를 들어, 사용 된 분석 방법에 NG가 다른 결과를 제공합니다. </li><li> 헤 마톡 실린 및 에오신 (H &amp; E) 또는 요오드 산 쉬프 (PAS) 염색 파라핀 신장 조직 섹션에 조직 병리학 신장의 구조를 검사합니다. 각 마우스의 외부 수질 (OSOM)의 외부 스트라이프 내에서 200 배 확대 한 이미지가 10 - 5 사이를 캡처합니다. 이 지역이 모델에서 부상으로 저산소증에 매우 취약하기 때문에 OSOM 부상의 수준을 평가합니다. </li><li> 급성 관 괴사 (ATN) 또는 재생을 측정하기 위해 아래 설명 된 두 채점 시스템 중 하나를 사용합니다. 이러한 시스템에 사용되는 분류의 대표적인 형태는도 1에 도시되어있다. </li><li> ATN 점​​수 간단한 이진 시스템을 사용합니다. 셀룰러 무결성 및 형태학 마크에 기초하여 실행 가능한 (손상 세포 형태) 또는 괴사 (손상 세포 INTE 하나로서 세뇨관 카운트grity 비정상적인 세포 형태 또는 세포의 손실). <ol><li> 세관의 총 수 (괴사 세관의 %)의 비율로 괴사 세관의 수를 표현한다. </li></ol></li><li> 셀 무결성, 형태학 및 핵 수에 기반 다른 시스템을 사용하여 재생을 분류. 마크와 계산 세관 등, 건강한 괴사, 부상 또는 다음 단계에 나열된 기준에 따라 복구. <ol><li> (단계 5.4에서 설명) ATN 채점 시스템으로 손상된 세포의 무결성을 보여주는 세관 동안 건강한 그대로 정상 세포와 마크 세관은 비정상적인 세포 형태 또는 명백한 세포의 손실은 괴사로 득점해야한다. </li><li> 부상으로 그들은 몇 가지 핵을 포함하는 박형의 세포질이있는 경우 세관을 분류합니다. 대조적으로, 회수로보다 정상 세포 형태와 더 핵을 함유 세뇨관 지정. </li><li> 총 세관의 수의 비율로 각 세관 분류를 표현한다. </li></ol></li></ol>

<ol>
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L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+body+temperature+in+a+rat+model+of+renal+ischemia-reperfusion+injury.">The effect of body temperature in a rat model of renal ischemia-reperfusion injury.</a> Transplant Proc. 39, 2983-2985 (2007).</li></ol>

The authors have no competing or conflicting interests to disclose.

신장 IRI는 사용할 수없는 특정 치료 AKI의 중요한 원인이다. 신장 IRI의 실험 연구는 대 식세포, 수지상 세포, 림프구, 규제 T 세포뿐만 아니라 다른 세포와 급성 손상 및 위상 5,8 치유 모두의 유도에 중재자의 역할을 보여주는 이전의 연구와 매우 유익했습니다 - 16. 또, 실험 신장 IRI 여러가지 치료제 4,17-19의 효과를 평가하기 위해 사용되었다. 여기에 ?...

허혈 재관류 손상 (IRI)는 신장, 심장, 뇌 등의 여러 장기에 대한 손상의 일반적인 모드입니다. 신장 IRI는 환자에서 급성 신장 손상 (AKI)으로 이어질 수 있으며, 특정 치료는 사용할 수 없습니다. IRI의 결과로 AKI는 타고난 및 적응 면역 반응 한 모두를 포함하는 복잡한 기전을 가지고 있습니다. 신장 IRI의 실험 모델은 키 세포와 AKI의 발병 기전뿐만 아니라 이후의 일 동안 계속된다 후속 신 재생에 관여 매개체를 해부 할 수있는 가능성을 제공합니다. 또한 질병 프로세스에 따라 새로운 치료제의 효과가 평가 될 수있다. 신장 IRI의 실험 모델의 전반적인 목표는 여기에 설명이 급성 구조와 기능 신장 손상을 유발하는 것입니다. 일부 연구자들은 양자 IRI 2의 유도를 포함하는 모델을 사용했다. 양측 신장 IRI 모델은 사용의 일방적 인 르네이지만앨라배마 IRI 모델은 수술시에 수행되는 오른쪽 신장 절제술의 이점을 갖는다. 오른쪽 신장 절제 조직 중 하나를 유도하거나 유전자 또는 단백질의 발현을 억제하는 전처리 단계를 포함하는 연구에서와 같이 중요한 제어 조직을 제공합니다. 예를 들어, 우리는 24 시간 신장 IRI 3 전 헴 알긴산의 사전 조정 효과 (HA) 주입을 평가하기 위해이 모델을 사용하고 있습니다. IRI 전에 HA에 의한 세포 보호 효소 헴 시게나 제 -1 (HO-1)의 성공적인 유도는 오른쪽 신장 절제술 제어 티슈 4에서 확인되었다. HA는 HO-1에 의존 메커니즘을 통해 부분에 세 생쥐의 신장 IRI를 감소. 마찬가지로, 우리는 신장 IRI 5 대 식세포의 역할을 검토하는 대식 세포 고갈 연구 모델을 사용했다. 오른쪽 신장 절제술 조직의 면역 조직 화학적 분석은 절제 방법의 효능을 확인하기 위하여 사용될 수있다. 오른쪽 신장 절제 조직 따라서 확인에 모두 사용하고 난의 수준을 정량화 할 수있다nduction 또는 각각의 실험 동물에 대한 관심의 분자의 억제. 이 모델은 사전 신장 IRI 유도하는 유전자 나 단백질 등의 발현을 조절하는 약물 또는 다른 화합물을 사용하는 연구자가 관심을 가질 것이다. 다른 연구는 신장에 액세스하는 측면 절개를 사용했습니다. 여기에 설명 된 모델은 오른쪽 신장 절제술을 모두 수행하고 남은 신장 허혈 재관류를 유도하는 하나의 중간 선 복부 수술을 사용한다. 이 수술 방법은 신장 척추 경 클램핑을 따라 신장 pedicles 및 색상 변경을 포함하여 수술 분야의 뛰어난 시각화를 제공합니다. 모델 4-6 게재 된 경험이 마우스는 빨리 가까운 100 %의 생존율과 수술에서 회복을 나타냅니다. 마지막으로, 7 일의 기간 동안 모델의 운동 분석이 모델은 신장 기능과 관 양측 모두 복원을 나타내는 것을 나타냅니다로심각한 관상 세포 증식.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="676">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:125px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;"></td>
			<td style="width:125px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Tissue scissors</td>
			<td style="width:125px;">Fine Science Tools</td>
			<td>14072 - 10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Micro-Adson forceps (Rat toothed)</td>
			<td style="width:125px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:119px;">11019 - 12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">S&#38;T JFA-5bTC Forceps - SuperGrip Angled</td>
			<td style="width:125px;">Fine Science Tools</td>
			<td>00649-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Colibri retractor</td>
			<td style="width:125px;">Fine Science Tools</td>
			<td>17000 - 04</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Micro clip applicator</td>
			<td style="width:125px;">Fine Science Tools</td>
			<td>18057-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Micro serrafines&#160;</td>
			<td style="width:125px;">Fine Science Tools</td>
			<td>18055-04</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Olsen-Hegar needle holder</td>
			<td style="width:125px;">Fine Science Tools</td>
			<td>12002 - 12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;"></td>
			<td style="width:125px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;">Hemoclip Plus Ligating Clips Small</td>
			<td style="width:125px;">Weck</td>
			<td style="width:119px;">533837</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:265px;">Autoclip Wound Clip System, 9mm</td>
			<td style="width:125px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;">PY2 52-3748</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:265px;">Silk Black Braided Suture, Size 6-0</td>
			<td style="width:125px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;">723288</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;">Standard Heat Matt</td>
			<td style="width:125px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:265px;">Homeothermic Blanket &#38; Control Unit</td>
			<td style="width:125px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;"></td>
			<td style="width:125px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;">Lacri-Lube</td>
			<td style="width:125px;">Allergan</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:265px;">Vetasept Chlorhexidine&#160;&#160;</td>
			<td style="width:125px;">AnimalCare</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Vetalar : Ketamine hydrochloride</td>
			<td style="width:125px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>100mg/ml solution</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Domitor : medetomidine hydrochloride&#160;</td>
			<td style="width:125px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>1mg/ml</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="2" height="21" style="height:21px;">Vetergesic : Buprenorphine hydrochloride&#160;</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>0.3mg/ml</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Antisedan : Atipamezole hydrochoride</td>
			<td style="width:125px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>5mg/ml</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

renal ischaemia reperfusion injury: a mouse model of injury and regeneration

신장 허혈 재관류 손상 (IRI)가 환자와 신장 혈류의 폐쇄 급성 신장 손상 (AKI)의 일반적인 원인은 신장 이식 동안 피할 수 없다. 정확하고 재현성 신장 IRI 요점을 되풀이 실험 모델은 AKI의 병태 생리 및 새로운 치료제의 개발을 해부에서 매우 중요하다. 재현 AKI 결과 신장 IRI의 마우스 모델은 여기에 제시했다. 이것은 하나의 절개 제어 조직과 왼쪽 신장의 허혈을 유도하는 왼쪽 신장 작은 꽃자루의 클램핑을 제공하는 권리 신장 절제술을 모두 허용과 수술에 대한 중간 선 개복술 방법에 의해 달성된다. 허혈의 기간 동안 클램프 위치와 체온의주의 감시함으로써,이 모델은 재현성 기능적 및 구조적 손상을 달성한다. 마우스는 혈청 또는 혈장 크레아티닌 상승 등으로 신장 기능의 손실을 보여 수술 후 24 시간을 희생 구 조분명 급성 관 괴사 투랄 신장 손상. 신장 기능을 향상시키고 심각한 조직 손상이 모델은 신장 재생을 연구하는 데 사용 될 수 있도록 신장 IRI 다음 칠일의 과정에서 해결합니다. 신장 IRI의이 모델은 분자 및 세포 AKI의 병태 생리뿐만 아니라 이후의 신 재생 분석을 연구하기 위해 활용되고 있습니다.

관 손상 및 복구는 H &amp; E에 의해 평가 또는 신장 IRI 다음 조직 섹션의 PAS 염색 할 수있다. OSOM 내에있는 세관은 세포 형태, 무결성 및 핵 번호 (그림 1)에 따라, 건강 손상, 괴사 또는 복구로 분류됩니다. 이 모델의 구조와 기능 손상은 허혈의 지속 시간에 따라 달라집니다. 허혈의 기간 (그림 2) 2 분 단위로 증가함에 따라 혈장 크레아티닌 및 BUN에 의해 평가 신장 기능 장애?...

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Renal Ischaemia Reperfusion Injury: A Mouse Model of Injury and Regeneration

The mouse model of renal ischaemia reperfusion injury described here comprises of a right nephrectomy that provides control tissue and clamping of the left renal pedicle to induce ischaemia that results in acute kidney injury. This model uses a midline laparotomy approach with all steps performed via one incision.

신장 허혈 재관류 상해 : 상해의 마우스 모델 및 재생

Renal ischaemia reperfusion injury (IRI) is a common cause of acute kidney injury (AKI) in patients and occlusion of renal blood flow is unavoidable ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

49.3K 조회수.  University of Edinburgh. The mouse model of renal ischaemia reperfusion injury described here comprises of a right nephrectomy that provides control tissue and clamping of the left renal pedicle to induce ischaemia that results in acute kidney injury. This model uses a midline laparotomy approach with all steps performed via one incision.

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Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

Normothermic 심장 마비와 심폐 소생술의 : 국소 빈혈 - Reperfusion 상해의 마우스 모델

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

연구

의학

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

마우스의 급성 신장 손상 및 사후 상해 섬유증의 허혈 - 재관류 모델

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

A Neonatal Mouse Spinal Cord Compression Injury Model

Spinal cord injury (SCI) typically causes devastating neurological deficits, particularly through damage to fibers descending from the brain to the spinal cord. A major current area of research is focused on the mechanisms of adaptive plasticity that underlie spontaneous or induced functional recovery following SCI. Spontaneous functional recovery is reported to be greater early in life, raising interesting questions about how adaptive plasticity changes as the spinal cord develops. To facilitate investigation of this dynamic, we have developed a SCI model in the neonatal mouse. The model has relevance for pediatric SCI, which is too little studied. Because neural plasticity in the adult involves some of the same mechanisms as neural plasticity in early life1, this model may potentially have some relevance also for adult SCI. Here we describe the entire procedure for generating a reproducible spinal cord compression (SCC) injury in the neonatal mouse as early as postnatal (P) day 1. SCC is achieved by performing a laminectomy at a given spinal level (here described at thoracic levels 9-11) and then using a modified Yasargil aneurysm mini-clip to rapidly compress and decompress the spinal cord. As previously described, the injured neonatal mice can be tested for behavioral deficits or sacrificed for ex vivo physiological analysis of synaptic connectivity using electrophysiological and high-throughput optical recording techniques1. Earlier and ongoing studies using behavioral and physiological assessment have demonstrated a dramatic, acute impairment of hindlimb motility followed by a complete functional recovery within 2 weeks, and the first evidence of changes in functional circuitry at the level of identified descending synaptic connections1.

This article describes a method for generating a reproducible spinal cord compression injury (SCI) in the neonatal mouse. The model provides an advantageous platform for studying mechanisms of adaptive plasticity that underlie spontaneous functional recovery.

신생아 마우스 척수 압축 부상 모델

Spinal cord injury (SCI) typically causes devastating neurological deficits, particularly through damage to fibers descending from the brain to the spinal ...

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

창자 허혈 - 재관류 손상의 쥐 모델

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

안압 상승을 통해 망막 허혈 - 재관류 손상의 마우스 모델

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

A Mouse Model of Single and Repetitive Mild Traumatic Brain Injury

Mild Traumatic Brain Injury (mTBI) can result in the acute loss of brain function, including a period of confusion, a loss of consciousness (LOC), focal neurological deficits and even amnesia. Athletes participating in contact sports are at high risk of exposure to large number of mTBIs. In terms of the level of injury in a sporting athlete, a mTBI is defined as a mild injury that does not cause gross pathological changes, but does cause short-term neurological deficits that are spontaneously resolved. Despite previous attempts to model mTBI in mice and rats, many have reported gross adverse effects including skull fractures, intracerebral bleeding, axonal injury and neuronal cell death. Herein, we describe our highly reproducible animal model of mTBI that reproduces clinically relevant symptoms. This model uses a custom made pneumatic impactor device to deliver a closed-head trauma. This impact is made under precise velocity and deformation parameters, creating a reliable and reproducible model to examine the mechanisms that contribute to effects of single or repetitive concussive mTBI.

Athletes absorb several hundred mild traumatic brain injuries (mTBI)/concussions every year; however, the consequence of these on the brain is poorly understood. Therefore, an animal model of single and repetitive mTBI that consistently replicates clinically relevant symptoms provides the means to advance the study of mTBI and concussion.

단일 및 반복적 인 경미한 외상성 뇌 손상의 마우스 모델

Mild Traumatic Brain Injury (mTBI) can result in the acute loss of brain function, including a period of confusion, a loss of consciousness (LOC), focal ...

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

쥐의 심근 허혈 재관류 후 관상 동맥 흐름 예비의 평가

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many areas of biomedical research due to its cost-effectiveness and its translation to humans. This protocol describes a method to create a preclinical free skin flap model in rats with ischemia-reperfusion injury. The described 3 cm x 6 cm rat free skin flap model is easily obtained after the placement of several vascular ligatures and the section of the vascular pedicle. Then, 8 h after the ischemic insult and completion of the microsurgical anastomosis, the free skin flap develops the tissue damage. These ischemia-reperfusion injury-related damages can be studied in this model, making it a suitable model for evaluating therapeutic agents to address this pathophysiological process. Furthermore, two main monitoring techniques are described in the protocol for the assessment of this animal model: transit-time ultrasound technology and laser speckle contrast analysis.

Here, we describe a pre-clinical animal model for studying the pathophysiology of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. This free skin flap model based on the superficial caudal epigastric vessels in the rat may also allow for the evaluation of different therapies and compounds to counteract ischemia-reperfusion injury-related damage.

재건 미세 수술에서 허혈 재관류 손상의 연구를위한 전 임상 쥐 모델

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, cardiac stem cell therapy is studied by delivering SCs concurrently with the induction of myocardial injury. However, this approach presents two significant limitations: the early hostile pro-inflammatory ischemic environment may affect the survival of transplanted SCs, and it does not represent the subacute infarction scenario where SCs will likely be used. Here we describe a two-part series of surgical procedures for the induction of ischemia-reperfusion injury and delivery of mesenchymal stem cells (MSCs). This method of stem cell administration may allow for the longer viability and retention around damaged tissue by circumventing the initial immune response. A model of ischemia reperfusion injury was induced in mice accompanied by the delivery of mesenchymal stem cells (3.0 x 105), stably expressing the reporter gene firefly luciferase under the constitutively expressed CMV promoter, intramyocardially 7 days later. The animals were imaged via ultrasound and bioluminescent imaging for confirmation of injury and injection of cells, respectively. Importantly, there was no added complication rate when performing this two-procedure approach for SC delivery. This method of stem cell administration, collectively with the utilization of state-of-the-art reporter genes, may allow for the in vivo study of viability and retention of transplanted SCs in a situation of chronic ischemia commonly seen clinically, while also circumventing the initial pro-inflammatory response. In summary, we established a protocol for the delayed delivery of stem cells into the myocardium, which can be used as a potential new approach in promoting regeneration of the damaged tissue.

Stems cells are continuously investigated as potential treatments for individuals with myocardial damage, however, their decreased viability and retention within injured tissue can impact their long-term efficacy. In this manuscript we describe an alternative method for stem cell delivery in a murine model of ischemia reperfusion injury.

뮤린 모델에서 허혈혈 재관류 부상 후 줄기 세포의 지연 된 자궁 내 납품

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...

A Rat Lung Transplantation Model of Warm Ischemia/Reperfusion Injury: Optimizations to Improve Outcomes

From our experience with rat lung transplantation, we have found several areas for improvement. Information in the existing literature regarding methods for choosing appropriate cuff sizes for the pulmonary vein (PV), pulmonary artery (PA), or bronchus (Br) are varied, thus making the determination of proper cuff size during rat lung transplantation an exercise of trial and error. By standardizing the cuffing technique to use the smallest effective cuff appropriate for the size of the vessel or bronchus, one can make the transplantation procedure safer, faster, and more successful. Since diameters of the PV, PA, and Br are related to the body weight of the rat, we present a strategy to choosing an appropriate size using a weight-based guide. Since lung volume is also related to body weight, we recommend that this relationship should also be considered when choosing the proper volume of air for donor lung inflation during warm ischemia as well as for the proper volume of PBS to be instilled during bronchoalveolar lavage (BAL) fluid collection. We also describe methods for 4th intercostal space dissection, wound closure, and sample collection from both the native and transplanted lobes.

Here, we present optimizations to a rat lung transplantation model that serve to improve outcomes. We provide a size guide for cuffs based on body weight, a measurement strategy to ascertain the 4th intercostal space, and methods of wound closure and BAL (bronchoalveolar lavage) fluid and tissue collection.

온난 허혈/재관류 손상의 쥐 폐 이식 모델: 결과 개선을 위한 최적화

From our experience with rat lung transplantation, we have found several areas for improvement. Information in the existing literature regarding methods ...