This work was supported by NIH R01 EY020533, WSU Startup Fund, and RPB grants.

윤리 문 : 동물 과목을 포함하는 절차는 웨인 주립 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었다. 실험 솔루션 1. 준비 <ol><li> 실제 실험 전에 해부 솔루션을 일일 1 주를 준비합니다. 때문에 낮은 온도 (16)에서 강력한 완충 능력 망막 박리에 대한 HEPES 완충 용액을 사용합니다. (mm 단위)으로는 다음과 모든 화학 물질을 혼합 : 115의 NaCl, 2.5의 KCl, 2.5 CaCl2를, 1.0의 MgCl 2, 10 HEPES, 28 포도당을. NaOH로 pH 7.4까지를 조정합니다. 일주에 냉장고까지의 솔루션을 유지합니다. </li><li> 기록 액 망막 17 제제 용으로 설계된 인공 뇌척수액 (ACSF)이다 에임스 &#39;매체이다. 실험의 날에 의해, 튜브에 복귀 돌연변이 분말 (500 ml의 용액 4.4 g)을 달아. 또한,의 NaHCO3 (500 ml의 솔루션을위한 0.95 g)을 달아 및 혼합MES &#39;분말. </li><li> 실험의 날에 의해 패치 클램프 레코딩을위한 세포 내 피펫 솔루션을 준비합니다. (mm 단위)으로는 다음과 모든 화학 물질을 혼합 : 111 K 글루코 네이트, 1.0 CaCl2를, 10 HEPES, 1.1 EGTA, 10의 NaCl, 1.0의 MgCl 2, 5 ATP-㎎, 1.0 GTP - 나. KOH으로 pH를 7.2로 조정합니다. 기존의 주사​​기 필터 피펫 솔루션을 필터링합니다. ~ 500 μL 씩을 확인하고 냉장고 나 냉동고에 보관합니다. </li></ol> 실험의 날 2. 준비 <ol><li> O / N 어두운 적응 어두운 공간에서 - (남, 8 주 오래 된 4, C57BL / 6J 또는 유사한 배경) 밤은 실험 전에, 새장에 마우스를 놓습니다. </li><li> 해부를위한 준비 : <ol><li> 적어도 10 분 동안 산소, 유리 비커에 - (200 ml의 100) 얼음에 배치, 거품 솔루션을 해부 입력합니다. </li><li> 망막 준비 저장 어둠 상자의 산소를 시작합니다. </li><li> 재에 대한 그리스 레일 플라스틱 커버 슬립을 준비tinal 슬라이스 제제는 35mm 플라스틱 접시에 이들 각각을 놓고. </li><li> 헬기 (조직 슬라이서)에 새로운 면도날을 연결합니다. </li><li> 두 반으로 여과막을 잘라. 이것은 망막 슬라이스입니다. </li><li> 해부 현미경 근처 해부 도구 및 전송 피펫을 맞 춥니 다. 각 도구를 쉽게 어두운 액세스 할 수 있도록 작업 영역은 잘 조직되어야한다. </li></ol></li><li> 패치 클램프 레코딩을위한 준비 : <ol><li> 에임스 &#39;가루와 증류수의 NaHCO3 (에임스 4.4 g 및 NaHCO3을 0.95g / 500㎖의 DDH 2 O)를 용해. 혼합 산소 버블 에임스 중형 (95 % O 2 및 5 % CO 2) 적어도 30 분 동안 기록 온도 레벨로 가열 (~ 35 ° C). 아직 버블 링 동안의 NaHCO3와 7.4 pH를 조정합니다. </li><li> 해부하는 동안 내부 피펫 솔루션을 녹여. 해동 후 세포 내 염색 0.01 %의 sulforhodamine의 B를 추가합니다. </li></ol></li></ol> 3. 망막 해부 <ol><li> 어두운 방에서, 이산화탄소를 이용하여 양측 기흉 마우스를 안락사. 2 - 후 이산화탄소를 사용하여 3 분간, 마우스가 의식을 잃게 될 것이다. </li><li> 마우스가 더 이상 꼬리 핀치에 응답 할 때, 신속하게 눈을 명백히하다 없으며 플라스틱 접시에 차가운 해부 솔루션에 배치합니다. 동물의 죽음을 확인하기 위해 양측 기흉을 수행합니다. 빨리 어둠 상자에 접시에 눈을 저장합니다. 어둠의 절차를 수행하기 위해 적외선 뷰어를 사용합니다. 참고 : 또는 이소 플루 란, 참수, 또는 자궁 경부 전위는 안락사에 사용할 수 있습니다. 안락사의 방법은 국립 보건 연구소 (NIH) 및 / 또는 기관 동물 관리 및 사용위원회의 지침을 따라야합니다. </li><li> 어두운 방에서, 해부 현미경 및 적외선 조명을 조정합니다. 현미경, 10cm 플라스틱 접시 w로 그 접시에서 눈을 전송냉각 해부 솔루션 i 번째. 지속적으로 튜브를 통해 거품 산소는 플라스틱 접시의 바닥에 배치. 너무 부족하지 않도록 유량을 조절하지만 절개를 방해 충분하지 있는지 확인합니다. </li><li> 각막과 렌즈 제거 : <ol><li> 마이크로 수술 칼 각막의 상단에 절개를합니다. 안구의 다른 쪽 끝에서 시신경을 잡고 이동하는 현상을 방지 할 수 있습니다. 수술 가위를 사용하여 절단을 확장합니다. 주위 몇 공막과 각막을 잘라. </li><li> 미세 집게로 렌즈를 잡고 천천히 렌즈를 빼냅니다. 유리체가 렌즈를 분리하기에 너무 끈적 경우 가위로 절단 유리체. </li><li> 눈 컵이 이루어지면, 부드럽게 작은 전송 피펫과 아이 컵에 차가운, 산소 해부 솔루션을 붓는다. 참고 : 절개가 각막을 한 후 안구가 빠르게 움 추러 들게합니다. 그것은이 프로시 변형 눈으로 눈의 형상을 유지하는 것이 중요시저는 망막이 손상되어 망막 박리의 원인이됩니다. </li></ol></li><li> 망막의 지느러미와 복부 측면을 확인 : 참고 : 녹색 및 자외선 (UV)의 불균일 한 분포가 특정 망막 영역을 식별, 18 콘 때문에 빛 응답 레코딩을위한 중요합니다. <ol><li> 시신경 유두 근처에 전달하는 망막 아이 컵을 가로 질러가는 라인을 확인합니다. 이 라인은 주로 시신경의 복부 측면을 가로 질러 통과; 다른 19 복부 동안 시신경 포함 측은 등쪽이다. 적외선 뷰어에서 명확 랜드 마크를 참조하십시오. </li><li> 실험의 목적에 따라, 불필요한 측을 잘라. 이것은 아이 컵으로부터 망막을 분리 후 유용 할 것이다. </li></ol></li><li> 유리체 제거 : <ol><li> 선택적으로, 15 분 동안 히알루로니다 제 (0.5 ㎎ / ㎖)와 눈 컵을 배양한다. </li><li> 여분의 미세 집게로 유리체를 제거합니다. 유리체는 주로바닥과 눈 컵의 바깥 쪽 가장자리에 연결합니다. 조심스럽게 만지거나 망막을 파고하지 않고 제거합니다. 유리체가 단단히 아이 컵에 부착 할 수 있듯이, 눈 컵에서 망막 박리를 방지하기 위해 조심스럽게 제거합니다. 더 긴장 느낌되지 않을 때까지 당겨 계속합니다. 주 :이 단계는 마우스를 해부 망막 특히 중요하다; 그러나, 이러한 쥐 또는 도마뱀 같은 다른 종의 망막에 대한 문제가 아니다. </li></ol></li><li> 눈 컵에서 망막을 분리합니다. 공막을 잡고 부드럽게 집게의 뒷면을 사용하여 망막을 벗겨. 참고 : 망막 준비를 전체 마운트는 분리 된 망막에서 할 수있다. 가장자리에서 3-4 컷을 확인하고 망막을 평평하게, 또는 여러 조각으로 망막을 잘라. </li><li> 망막 트림 및 망막의 불필요한 절반을 버리고 (단계 3.5). 같은 플라스틱 접시에 두 조각으로 남아있는 망막을 잘라. 망막의 각 부분의 경우, 수 있도록 가장자리를 잘라망막 슬래브 및 접는 자리를 떼어. </li><li> 큰 전송 피펫 (~ 2 ㎖)를 사용하여 유리 접시에 망막 슬래브를 전송합니다. 작은 피펫으로 용액을 과량 빨아 슬래브를 평탄화 여과지를 사용하고 빠르게 조직 위에 여과막의 조각을 배치. <ol><li> 작은 전송 피펫을 사용하여 필터 멤브레인 솔루션을 해부 한 방울을 배치합니다. 이 솔루션은 막 퍼져 때까지 ~ 15 초를 기다립니다. 이 시간 동안, 망막 조직 여과막 고집한다. </li><li> 아래의 필터 주위에 더 차가운 해부 솔루션을 붓는다. 여과막과 망막 조직이 뜬다. 집게로 필터 멤브레인을 잡고 슬라이스 챔버에 배치합니다. 조직을 통해 솔루션을 해부 붓고, 어두운 상자에 준비를 저장합니다. 참고 : 여기에 설명 된 절차는 매우 중요하다. 그것은 보장하기 위해 신속하게 다음 단계를 수행하는 것이 중요하다 필터 (MEM)에 망막 조직 스틱파괴 현상과 건조하지 않습니다. </li></ol></li><li> 헬기를 사용하여 조각으로 망막 조직을 잘라. 약 200 μm의 두께는 패치 클램프 연구 가능하다. </li><li> 슬라이스 챔버 그리스 레일 플라스틱 커버 슬립을 놓습니다. 플라스틱 커버 슬립에 그리스 레일 위에 망막 슬라이스를 전송합니다. 횡단면 볼 수 있도록 슬라이스를 90 ° 회전합니다. 다음, 커버 슬립에 내려 여과막을 눌러 그리스 여과지의 측면을 커버. <ol><li> 슬라이스가 플라스틱 커버 슬립 상에 고정화 된 후, 커버 슬립을 잡아 35mm 플라스틱 접시에 옮긴다. 망막 준비 위에 차가운 해부 솔루션을 붓고 준비 잠수함. 지속적으로 산소해야 어두운 상자에 각각의 접시를 저장합니다. 주 : 전체 절차는 여과막이 변형되지 않도록 조심스럽게 수행되어야한다. 그렇지 않으면, 슬라이스 망막 용이 여과막으로부터 분리한다. </li></ol></li></ol><ol><li> 준비 기록 : <ol><li> 에임스 &#39;매체와 총리는 관류 튜브. 튜브를 채울 때 모든 거품이 통과하도록 허용합니다. </li><li> 풀러와 패치 클램프 녹음 피펫을 확인합니다. 피펫 팁이 채워 때까지 1 분 동안 피펫의 뒷면에있는 피펫 솔루션, 딥 피펫을 작성합니다. 다음에, 마이크로 피펫을 이용하여 필러의 피펫 ~ 1 / 3의 채우기. 촉촉한 피펫 상자에 각각의 펫을 저장합니다. </li><li> 패치 클램프 녹음을위한 장비를 켜십시오; 컴퓨터, 앰프, CCD 카메라와 현미경을 포함. </li></ol></li><li> 실내 조명을 차단합니다. 적외선 뷰어를 사용하여 현미경 스테이지 챔버 상 망막 슬라이스 준비를 놓습니다. 이 고정화 된 후, 연속 관류를 시작한다. 33-37 ° C에서 재관류 온도를 설정합니다. </li><li> CCD 카메라로 슬라이스 표면을 볼 수 있습니다. 대상 위치에 초점 위치를 목표 CELL 유형이 존재합니다. 패치 클램프 녹음을위한 건강한 보이는 셀 선택 (즉, 그것의 자연스러운 표면과 좋은 세포 모양이 있어야합니다). </li><li> 피펫 홀더에 기록 피펫을 놓습니다. 슬라이스 준비에 피펫을 사전. 그것이 슬라이스 제제 (~ 2mm 위)에 가까운 경우에는, 현미경 피펫 팁을 찾기. 피펫 팁은 현미경으로 볼되면, 타겟 셀을 향해 끝이 아래로 이동. </li><li> 앰프를 설정합니다. (제로) 0 MV / 0 펜실베니아 피펫을 조정하고 10 Hz에서 ~에 ~ 5 MV의 연속 전기 펄스를 시작합니다. 피펫 저항을 확인; 이상적인 저항은 대부분의 망막 신경 세포에 대한 5 ~ 10 MΩ입니다. </li><li> 끝에서 불고 시작합니다. 마우스 피스를 사용하거나 피펫은 목욕 솔루션으로 떨어지면 긍정적 인 압력을 적용, 주사기를 사용합니다. 끝이 표적 세포의 표면에있는 동안 연속으로 내부 솔루션을 날려. <ol><li> 양압 차에 작은 딤플을하면전자의 세포 표면, 약간의 팁을 발전 불고 중지합니다. 증가 할 전망 피펫 저항을 확인합니다. 그림 계속 증가하면두고 그것을&gt; 1 GΩ (기가 시일)에 도달 할 때까지 저항을 모니터링한다. 저항이 자발적으로 증가하지 않는 경우가 될 때까지 기가 시일 부드럽게 부압을 적용한다. </li></ol></li><li> 기가 시일이 달성 된 후, MV를 -70 잡고 잠재력을 변경합니다. 그런 다음, 간헐적으로 피펫 팁 내부의 막을 파열 부정적인 압력을 적용합니다. 전체 셀 구성이 이루어지면, 피펫 저항이 500 MΩ 1 GΩ 및 용량 성 전류가 볼 사이 일 수있다. 때로는 자발적인 시냅스 후 전류를 관찰 할 수있다. </li><li> -80에서 +40 MV에 IV 관계를 기록한다. 전압 게이트 된 채널의 종류는 세포 종류에 따라 활성화된다. </li><li> 기록 시냅스 전류 또는 전압을 빛-유발. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

Good recordings can only be achieved with good retinal preparations and well-designed patch clamp setups. Although all the steps described above are important, the discussion highlights some critical steps both for the dissection and recordings. 
For dissection, two things are especially important: cooling and oxygenation. After enucleating the eye, quickly remove the front part of the eye in a dissecting chamber with oxygen-bubbled, cooled dissecting solution, and pour cold solution into the ...

The retina is one of the unique parts of the nervous system. As an accessible part of the brain, its synaptic architecture has been well characterized. In addition, the functions of this neural network can be examined with a physiological stimulus: light. If the retinal tissue is isolated in a dark room with appropriate procedures, neurons in the tissue will respond to light. This preparation has been used to study visual signal processing and elucidate various synaptic mechanisms and neural network functions, as well as disease mechanisms. 
Light responses in retinal neurons have been recorded for decades. Early studies used sharp electrodes to make intracellular recordings from mudpuppy retinal neurons1. In the 1980s, the patch clamp technique was invented2, and soon became a popular method among vision researchers3,4. Single cell recordings from lower vertebrates, including mudpuppy and fish retinal neurons, were popular methods that contributed to the elucidation of visual signal processing mechanisms5,6. 
After genetic mutation techniques were developed, the mouse retina became a more popular model for vision researchers7-9. The mammalian retina is more attractive than that of lower vertebrates because it is evolutionarily closer to the human retina, and there is an opportunity to use disease models. However, mouse retinal cells are small and fragile10, and making retinal preparations and conducting patch clamp recordings in a dark room is challenging. As technology has improved, diverse approaches have become available to study visual signaling mechanisms such as imaging studies11 and the electroretinogram (ERG)12. Nevertheless, single cell recording with the patch clamp method is still important because it is highly temporally and spatially sensitive compared to other methods. Therefore, we have continuously conducted patch clamp recordings and improved our methods to investigate visual signal processing in mouse retinal slice preparations13-15.
In this video tutorial, the protocols are presented with important tips. Good recordings can only be achieved with good preparation. Practicing animal dissection and building a sturdy patch clamp rig will enable most researchers to achieve successful recordings.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="886">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:145px;">Company</td>
			<td style="width:203px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:323px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">mice (28-60 days old, male)</td>
			<td style="width:145px;">Jackson laboratory</td>
			<td style="width:203px;">C57BL/6J strain</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Ames&#39; medium powder</td>
			<td style="width:145px;">Sigma</td>
			<td style="width:203px;">A1420</td>
			<td>excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Stereo microscope</td>
			<td style="width:145px;">Nikon</td>
			<td style="width:203px;">SMZ745</td>
			<td>excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">dissecting tool_forceps</td>
			<td style="width:145px;">Dumont</td>
			<td style="width:203px;">#4, #5, #55</td>
			<td>excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">dissecting tool_scissors</td>
			<td style="width:145px;">Roboz</td>
			<td style="width:203px;">RS-5605</td>
			<td>excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">dissecting tool_surgery knife</td>
			<td style="width:145px;">Surgistar</td>
			<td style="width:203px;">7514</td>
			<td>excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">razor blade (for chopper)</td>
			<td style="width:145px;">EMS</td>
			<td style="width:203px;">71970</td>
			<td>excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">chopper</td>
			<td style="width:145px;">handmade</td>
			<td style="width:203px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">infrared viewer</td>
			<td style="width:145px;">Night Owl Optics</td>
			<td style="width:203px;">NOBG1</td>
			<td>It shows bright view.&#160; Focusing small objects is an issue.</td>
		</tr>
		<tr height="27">
			<td height="27" style="height:27px;width:216px;">infrared pocket scopes</td>
			<td style="width:145px;">B.E. Meyers</td>
			<td style="width:203px;">OWL Gen 3 NV pocketscope</td>
			<td>excellent view</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">puller</td>
			<td style="width:145px;">Sutter</td>
			<td style="width:203px;">P-1000</td>
			<td>excellent.&#160; Make consistent size pipettes.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">dark box</td>
			<td style="width:145px;">Pelican</td>
			<td style="width:203px;">dark box</td>
			<td>excellent</td>
		</tr>
		<tr height="67">
			<td height="67" style="height:67px;width:216px;">patch clamp system</td>
			<td style="width:145px;">Scientifica</td>
			<td style="width:203px;">slice scope 2000</td>
			<td style="width:323px;">Excellent setup.&#160; Most key components are included in one package.&#160; Micromanipulators are excellent.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">amplifier</td>
			<td style="width:145px;">Molecular Devices</td>
			<td style="width:203px;">multiclamp 700B</td>
			<td>Excellent and easy control.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">acquiring software</td>
			<td style="width:145px;">Molecular Devices</td>
			<td style="width:203px;">pClamp software</td>
			<td>Excellent and easy control.</td>
		</tr>
		<tr height="28">
			<td height="28" style="height:28px;width:216px;">light source (LED)</td>
			<td style="width:145px;">Cool LED</td>
			<td style="width:203px;">pE-2 4 channel system</td>
			<td>Excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">CCD camera</td>
			<td style="width:145px;">Q-imaging</td>
			<td style="width:203px;">Retiga 2000</td>
			<td>Excellent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Faraday cage</td>
			<td style="width:145px;">handmade</td>
			<td style="width:203px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

recording light-evoked postsynaptic responses in neurons in dark-adapted, mouse retinal slice preparations using patch clamp techniques

망막은 시각 체계의 관문이다. 영상 신호 처리 메커니즘을 이해하기 위해 망막 신경 네트워크 기능을 조사. 네트워크의 망막 신경 세포는 다양한 아형 포함한다. 양극성 세포, 신경절 세포 및 무 축삭 세포의 10 개 이상의 아형은 형태 학적 연구에 의해 확인되었다. 망막 뉴런의 여러 아형 모션 및 컬러 같은 시각적 신호의 뚜렷한 기능을 인코딩 및 다중 신경 경로를 형성하는 것으로 생각된다. 그러나, 영상 신호 처리의 각 신경 세포의 기능적 역할은 완전히 이해되지 않습니다. 패치 클램프 방법이 근본적인 문제를 해결하는 데 유용합니다. 여기에, 프로토콜을 제공한다 어두운 적응 조건에서 패치 클램프 녹음을 사용하여 마우스 망막 신경 세포에서 빛 유발 시냅스 응답을 기록합니다. 마우스 눈 O / N 암순응이며, 망막 슬라이스 제제는 적외선 조명을 이용하여 시청자 암실에서 해부. 적외선하지 않습니다마우스의 광 수용체를 활성화하고, 따라서 그들의 빛 응답 성을 유지합니다. 패치 클램프 망막 뉴런의 광 유발 된 응답을 기록하는데 사용된다. 형광 염료는 신경 학적 아형의 특성을 기록하는 동안 분사된다. 이 절차는 마우스 망막에 각각의 신경 세포의 생리 학적 기능을 결정하기 위해 우리가 할 수 있습니다.

대표적인 제제는 슬라이스 슬라이스 제제 평면에서 신경절 세포를 나타내는 감광체, 직선 위치에있다.도 1에 도시하지 않고, 여과지로부터 박리된다. 슬라이스가 기울어 진 경우, 제제의 일부만 어려운 패치 클램프 적절한 셀을 식별 할 수있는 초점이다. 레코딩을위한, 일반적으로 빛나는 표면을 갖는 좋은 소마, 심지어 둥근 형상 및 가시적 어두운 플라크를 선택하는 것이 중요하다....

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Recording Light-evoked Postsynaptic Responses in Neurons in Dark-adapted, Mouse Retinal Slice Preparations Using Patch Clamp Techniques

We will demonstrate how to prepare retinal slices from the mouse eye and record light responses in retinal neurons. The entire procedure is conducted in dark-adapted conditions.

녹화 패치 클램프 기술을 사용하여 어두운 적응 마우스 망막 슬라이스 준비에 신경 세포의 시냅스 응답 빛-유발

The retina is the gateway to the visual system. To understand visual signal processing mechanisms, we investigate retinal neural network functions. ...

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JoVE Journal

Neuroscience

8.3K 조회수.  Wayne State University School of Medicine. We will demonstrate how to prepare retinal slices from the mouse eye and record light responses in retinal neurons. The entire procedure is conducted in dark-adapted conditions.