Name: cochlear implantation in the guinea pig
Uploaded: 2018-06-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implantation in the Guinea Pig at JoVE.com

저자는 글을 의료에 대 한 동물 및 Noelani 피트의 관리에 대 한 산드라 Peiritsch를 감사 드립니다. 오스트리아 과학 기금 (FWF 그랜트 P 24260 B19)와 메 드 엘 오스트리아에 의해 재정 지원은 기꺼이 인정 했다.

모든 동물 실험은 과학, 연구 및 경제에 대 한 지역 동물 복지 위원회 및 오스트리아 연방 내각에 의해 승인 되었다.
1. 장비와 수술에 필요한 설치 준비
<ol><li>수술 현미경, 드릴, 난방 접시 놓고 펄스 속도도 간편 하 고 효율적인 수술 하는 동안 처리 수 있도록 합니다. 제조업체의 설명서에 따라 장치의 기능을 확인 하십시오. 저체온증에서 수술 하는 동안 동물을 보호 하기 위해가 열 플레이트 38 ° C에 설정 되어 있는지 확인 합니다.</li>
	<li>후드와 마스크에 넣어.</li>
	<li>외과 손 소독을 수행 합니다. 꼼꼼하게 비누로 손을 씻으십시오. 손 건조 하 고 알코올 손 소독 제를 사용 하 여 손을 소독. 손에 건조 후에 장갑에 넣어.</li>
	<li>멸 균된 수술 기구 및 인공 와우 이식에 필요한 장비를 준비 합니다. 수술 도구와 기니 피그 CI 주입이이 프로토콜에 사용 된 장비에 대 한 테이블의 자료 를 참조 하십시오.</li>
	<li>복합 활동 전위 (모자) 측정, 의도 하는 테 플 론 절연 금 와이어의 약 3.5 cm 긴 조각 (약 한쪽에서 3mm 및 5mm에서 마이크로 집게를 사용 하 여 양쪽에서 신중 하 게 단열재의 부분을 제거 하 여 준비 다른 끝)입니다. 알코올 이나 소독 제에 준비 된 와이어 소지가 끝의 약 5 m m. 장소 금 와이어 (약 2.5 c m)의 두 번째 작품을 준비 합니다.</li>
</ol>2. 마 취, 약물 치료 및 동물 준비
<ol><li>동물의 무게. 참고: 사용 하는 동물 들은 여성 Dunkin Hartley 흰둥이 기니 피그입니다. 이 약 4-6 주 오래 된, 사용, 동물의 무게 400 g 300에서 배열 한다.</li>
	<li>마 취약 및 동물의 무게에 따라 수술에 필요한 약물을 준비 합니다. 0.72 mL의 마 취, 0.12 mL midazolam (5 mg/mL)와 펜타닐 (50 µ g/mL) 400 g 기니 돼지에 수술의 0.36 mL 0.06 mL 케 타 민 (100mg/mL), 0.18 mL medetomidine (1 mg/mL), 구성 된 준비. 무게-기반 복용량은 마 취약의 표 1 을 참조 하십시오.</li>
	<li>주사 마 취 제, medetomidine, midazolam 27g 바늘을 사용 하 여 동물의 목에 지방 패드를 피하 펜타닐의 혼합. 표 1 무게는 마 취약의 기반을 참조 하십시오. 감 금 소를 커버 하 고 진행 하기 전에 10 분 동안 조용한 장소에 동물을 두고.</li>
	<li>동물의 눈에 기름칠 하 고 전체 절차 동안 윤 활 유지. 물집에 충분 한 수술 액세스할 수 있도록 retroauricular 지역에 초점을 맞추고, 동물의 머리를 면도.</li>
	<li>경향이 위치에서 난방 접시에 동물을 놓고는 동물 열 화상을 방지 하기 위해가 열 플레이트와 직접 접촉에서 되지 않습니다 있는지 확인 합니다. 동물의 발에 펄스 속도도 프로브를 놓습니다. 다음 신중 하 게 동물의 입 작은 후 두 경으로 열고 깨끗 한 음식에서 전체 구강 속 사용 하 여 달려있다.</li>
	<li>유지는 후 두 경으로 열 동물의 입. 신중 하 게 동물의 식도로 위 관을 삽입 하 고 천천히 저항을 느낄 때까지 복 부의 방향으로 밀어.<ol>
<li>O2를 모니터링-위장 튜브 아니다는 것을 기도에 다는 것을 확인 하는 동물의 채도. O2 채도 감소 경우 위장 튜브를 제거 하 고 동물 산소 완전 하 게 후 다시 시도 하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>23 G 바늘을 사용 하 여 동물의 목에 지방 패드에 생리 식 염 수, 5% 포도 당 및 enrofloxacin의 혼합물을 주사.</li>
	<li>알코올 손 소독 제를 사용 하 여 다시 손 소독. 새로운 깨끗 한 장갑에 넣어.</li>
	<li>Povidone 요오드와 70% 에탄올의 스크럽 교류 수술 분야를 준비 하 고 동물을 커버. 사용 자동 접착 커튼 또는 수술 필드에만 절차 동안 발견 유지 되도록 타월 클램프.</li>
	<li>피하 충분 한 국 소 마 취에 대 한 계획 된 절 개 지역에 2 %lidocaine 솔루션의 0.1 mL를 주사 하 고 옆으로 동물을 배치 합니다.</li>
	<li>다시 충분 한 마 취를 유지 하기 위해 첫 번째 주사 후 30 분 마다 마 취 혼합물의 초기 복용량의 ¼를 가진 동물을 복용량.</li>
</ol>3. 인공 와우 이식
<ol><li>수행는 약 2-3 cm의 피부 절 개 후부 pinna는 메스를 사용 하 여 3-5 m m. 바이 폴라로 때 출혈을 최소화 하는 데 필요한 사용 합니다. 참고: 마 취 깊이 첫 번째 절 개 전에 페달 철수의 부족에 의해 확인 되어야 한다. 이 테스트 모니터링 절차를 통해 마 취 깊이 15-20 분 마다 반복 한다.</li>
	<li>조심 스럽게 15 메스 나 수술가 위를 사용 하 여 청각 물집을 palpating 후 retroauricular 지역에 있는 근육을 잘라. 참고: 근육 아래 눈으로 청각 물집을 만져.</li>
	<li>밀어 부드럽게 옆으로 raspatory를 사용 하 여 또는 목화 꽃 봉 오리는 물집에서 근육 해 부. 트랙터를 사용 하 여 전체 길이의 절 개를 노출 하는 물집에 대 한 액세스를 unhindered.</li>
	<li>15 메스의 팁을 사용 하 여는 물집으로 구멍을 드릴. 조심 스럽게 돌려 메스 뼈 중간 귀 구조의 검사에 대 한 수 있도록 천공.</li>
	<li>있는지 확인 하는 달팽이 관의 기저 차례 필요한 경우는 bullostomy를 확대 하 고 둥근 창 틈새 적절 하 게 구상 될 수 있다. 이러한 구조를 액세스 하려면 모자 위치에 동물의 머리를 배치 합니다. 중간 귀에 실행에서 혈액과 세포 외 액을 방지 하기 위해 압축의 작은 조각으로 bullostomy의 영역을 커버. 참고: 머리의 모자 위치는 동물의 기도 방해 수 있습니다. 따라서, 동물의 산소 포화를 자주 체크 해야 합니다.</li>
	<li>경향이 위치에 동물을 배치 합니다. 직사각형 절 개를 수행 하 고 피부를 제거 하 여 동물의 꼭지점을 노출 합니다. 해 부는 하 고 메스를 사용 하 여 조직 또는 혈액의 다른 종류에서 뼈를 청소.</li>
	<li>모자 측정 예정 되는 때, 3 m m에 대 한 격리 된 철사의 끝에 마이크로 집게와 작은 고리를 형성 하 여 3.5 c m 테 플 론 절연 금 와이어의 준비를 완료 합니다.</li>
	<li>모자 측정 예정 되는 때, 5mm, 피하는 18 G 주변 정 맥 카 테 터 마이크로 집게를 사용 하 여 통해 버텍스에 대 한 절연 되었습니다 금 와이어의 끝을 안내. 다른 손으로 다른 마이크로 집게를 사용 하 여 신중 하 게에 와이어의 구부려 진된 끝을 안내 하는 중간 귀에.</li>
	<li>모자 측정, 의도 하는 경우는 bullostomy 통해 둥근 창 틈새의 영역을 시각화 하기 위해 동물의 머리를 어형 변화. 다른 손을 사용 하 여 마이크로 집게를 사용 하 여 둥근 창 틈새의 뼈 굴지에 골드 와이어를 연결.</li>
	<li>골드 와이어에 부드러운 긴장을 유지 하 고 27 G 바늘 1 mL 주사기를 사용 하 여 조직 접착제의 10-15 µ L로는 bullostomy의 두개골 직전에 수정. 중간 귀에 접착제의 변위를 하지 마십시오. 원래의 장소에 골드 와이어와 둥근 창 영역의 자가 그림 그림 1 을 참조 하십시오.</li>
	<li>모자 측정 것입니다 때 청각 잠재력을 측정 하 고 기준 모자 측정을 수행 하는 데 사용 하는 장비에 골드 와이어의 소지가 끝을 연결 합니다. Honeder 그 외 여러분, 2016, 자세한 설명에 대 한 정기적으로 우리의 실험실에서 수행 하는 모자 측정의 보기 12
</li>
	<li>경향이 위치에 동물을 배치 합니다. 경질 손상 없이 1 mm 버를 사용 하 여 람다 봉합 앞쪽 1 m m 2 구멍을 드릴 합니다. 2 스테인리스 나사 2mm 두개골에 이식. 참고: 나사 고정 포인트는 전극의 커넥터에 대 한 제공합니다. 커넥터의 크기에 관하여 나사 사이의 거리를 적응.</li>
	<li>18 G 주변 정 맥 카 테 터를 사용 하 여 가능한 두개골에 가까운 조직 계층에 물집 전극 커넥터에서 안내.</li>
	<li>치과 시멘트 분말 제조업체의 설명서에 따라 주걱을 사용 하 여 액체와 치과 시멘트 가루를 섞는다.</li>
	<li>장소 0.5-0.7 mL 주걱을 사용 하 여 나사 사이 semifluid 치과 시멘트의. 커넥터 나사 사이의 전극의 위치입니다.</li>
	<li>치과 시멘트 경화 될 때까지 커넥터를 위치에 유지. 나사 커넥터의 안정적인 고정을 위한 수 있도록 시멘트로 쌌 다는 다는 것을 확인 하십시오.</li>
	<li>동물을 옆으로 놓습니다. 신중 하 게 cochleostomy 5000 라운드 분당의 회전 속도 0.5 m m 다이아몬드 버를 사용 하 여 둥근 창 틈새에서 1 m m 드릴.</li>
	<li>신중 하 게 4 m m의 깊이에 scala tympani에 있는 전극을 삽입 합니다. 전극을 철회 하 고 삽입을 반복 합니다. 기니 피그 달팽이 관 이식에 사용 되는 전극에 대 한 그림 2 를 참조 하십시오.</li>
	<li>똑 바른 바늘을 사용 하 여, 근육의 작은 조각으로 cochleostomy 지역 물개. 조직 접착제의 10 µ L로는 bullostomy의 두개골 직전에 전극 27g 바늘 1 mL 주사기를 사용 하 여 수정.</li>
	<li>3.14에서 설명 했 듯이 치과 시멘트를 준비 합니다. 조심 스럽게 주걱을 사용 하 여 치과 시멘트의 약 0.3 mL와 함께 bullostomy를 닫습니다. Retroauricular 절 개를 5-0 흡수 봉합을 사용 하 여 닫습니다.</li>
	<li>경향이 위치에 동물을 켜십시오.</li>
	<li>모자 측정, 의도 하는 경우 조직 집게를 사용 하 여 동물의 정점에서 사각형 절 개의 후부 가장자리를 잡아. 다른 한편으로는 시저를 사용 하 여 동물의 목에 약 2 cm 길이의 피하 터널을 만들.</li>
	<li>모자 측정 예정 되는 때, 피하는 집게를 사용 하 여 동물의 목에 2.5 cm 골드 와이어를 이식. 동물의 꼭지점에 있는 커넥터의 지정 된 핀에 더 짧은 소지가 끝을 땜 납.</li>
	<li>모자 측정 것입니다 때 동물의 꼭지점에서 커넥터의 적절 한 핀에 둥근 창 틈새 전극 (골드 와이어) 땜 납.</li>
	<li>완전히 절연된 핀 전극 커버 커넥터 위에 치과 시멘트의 추가 금액을 적용 합니다.</li>
	<li>모자 측정, 의도 하는 때 연구 프로토콜에 따라 수술 후 측정을 수행 합니다.</li>
</ol>4. 수술 후 관리
<ol><li>Atipamezole 및 적용 flumazenil 피하 측정 하 고 수술 후 마 취를 반대 하기 위하여.</li>
	<li>생리 식 염 수 유체 대체 수술에서 동물의 복구를 지원 하기 위해 적용 됩니다.</li>
	<li>장소는 완전히 마 취에서 회복 하 고 케이지 내에서 이동 하기 시작 때까지 열 램프에서 동물.<ol>
<li>고 열 방지 또는 열 램프를 배치 하 여 구울 동물 약 50cm. 동물의 체온은 37.5 ° C와 39 ° C 사이 항상 다는 것을 확인합니다</li>
	</ol>
</li>
	<li>Nystagmus, 돌고 또는 롤링 같은 vestibular 부상의 증상에 대 한 동물을 확인 하십시오. 13 , 14
</li>
	<li>진통에 대 한 buprenorphine 두 일 후 수술을 위해 하루에 두 번 적용 합니다. 참고: buprenorphine 수술 후의 첫 번째 응용 프로그램 전에 동물 완전히 회복 하 고 안정 된 호흡을가지고 있는지 확인 합니다. 동물 마 취 여전히 중인 동안이 약의 응용 호흡 발생할 수 있습니다.</li>
	<li>이 시간 동안 조 난의 대리 감 적으로 가능한 체중 감소를 감지 하 첫 3 일 후 수술 하는 동안 동물을 무게. 참고: 수술 후 첫 3 일 동안 약 10%의 체중 감소 예상 될 수 있다 및 일반적인 고려 되어야 한다. 이 체중 감소는 일시적 이며 몇 일 이내에 회복 됩니다.</li>
</ol>

<ol>
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크리스토프 Arnoldner와 클레멘스 Honeder는 클럽 메 드 엘 오스트리아에서 연구 그랜트의 소유자. 이 발행물에 사용 되는 전극 MED 엘 오스트리아에 의해 제공 되었다. 나머지 작가 공개 없다.

제시 프로토콜 기니 돼지 모델에서 인공 와우이 식을 수행 하는 방법을 설명 합니다. 이 프로토콜은 잔여 청각 및 CI 전극에 이물질 반응에 미치는 영향에 대 한 다른 개입 평가 하 사용할 수 있습니다. 높은 재현성 및 실험의 정확도 달성 하기 위해 몇 가지 예방 조치를 취해야 한다.
모든 기니 피그의 초기 심리 임계값 preoperatively 예: 청각 brainstem 응답을 사용 하 여 측정 되어야 한다. 일부 상용 기니 피그 관련 청력 손실을 전시 하 고 그러므로 포함 되 면 안 실험 일대에. 수술 중 수술 또는 인공 와우 이식 전에 몇 일 전에 즉시이 평가 수행할 수 있습니다 프로토콜의 길이 따라 마 취에서 회복 하기 위해 동물 충분 한 시간을 주는.
자발적 호흡에서 전신 마 취하에 수술을 수행할 때 동물, 속도가 중요 하다. 따라서, 수술 전에 세심 한 준비, 필수적 이다 마 취 프로토콜의 선택 이다. 케 타 민, medetomidine, midazolam 및 충분 한 마 취 및 진통, 동시에 동물 자연스럽 게 호흡을 계속 하면서 취 결과 함께 조합에 펜타닐의 사용. 종종 설명 사용 마 취 제 및 xylazine에 비해,이 처방 결과 더 나은 진통 및 감소 수술 사망률 그리고 사망. 모든 악기와 약물 (를 포함 하 여는 마 취약의 부스터)를가지고 하는 것이 중요 하다 자 동물을 두기 전에 쉽게 사용할 수 있습니다.
(측면 위치 및 다시 경향이 위치에서 변경) 수술 하는 동안 동물의 위치 변경, 폐에 콘텐츠 위장의 열망의 위험이 있다. 이러한 이유로, 프로토콜은 또한 포부에서 동물을 보호 하 고 수술 사망률 감소 하는 빠르고 쉬운 방법 위 튜브의 응용 프로그램을 포함 한다.
다시 위치, 영역 중 불 임을 유지 하기 위해 동물은 온전히 무 균 커튼, 장갑에 의해 보호 될 필요가 변경할 필요가 그 후 또는 다시 포지셔닝 해야 살 균 하지 않은 다른 개인에 의해.
O2-채도 모니터링은 또한 수술 하는 동안 매우 중요. 머리의 위치는 미사 키의 시각화를 위한 고 둥근 창 틈새 일찍 식별에 쉽게 처리할 수 있는 기도의 방해를 일으킬 수 있습니다.
일반적으로 동물 수술 동안 체액 (예: 혈액, 여분의 세포 액, 소변)의 큰 금액을 잃게됩니다. 따라서,이 원고에 도입 된 유체 대체 프로토콜 잘 용납된 메서드는 동물의 hemodynamics 안정화를 나타내고 마 취에서 그들의 빠른 복구를 지원 합니다.
Audiometrical 측정을 수행할 때 실수를 피하기 위해 각 수술 하는 동안 특정 전극에는 커넥터의 핀을 연결 하는 것이 좋습니다.
이 방법의 한 가지 한계는 종종 외과 의사의 인식으로 잘 연결 되지 않습니다 수술 후 청력 임계값 교대에서 상대적으로 높은 가변성. 결과에이 가변성 유사한 잔여 청각 인간의 CI 받는 사람의 상황, 비록 그것은 완전히 이해 되지 변수 결과의 원인은 무엇입니까. 16 , 17 , 18 일반적으로, 다양성 감소 시간과 의사의 경험. 그것은 느린 삽입 속도 의해 달성 될 수 있다 전극 삽입할 때 과도 한 힘을 방지 해야 합니다. 때문에 매우 제한 된 청력 손실, 제시 프로토콜 설명 하면 높은 전극 보다 예측 가능한 청력 상실의 반복된 삽입만 CI 전극의 주의 삽입 될 수 있습니다. 이 난청은 16 및 32 kHz 사이의 높은 주파수 영역에서 가장 뚜렷하다. Intracochlear 외상 삽입 깊이에 따라 달라 집니다, 달팽이 관 및 접근 (둥근 창 삽입 대 cochleostomy)의 형태 고려 될 필요가 있다. 둥근 창 막, 일반적으로 인간의 청력 보존 인공 와우 이식, 수행을 통해 CI 전극의 삽입도 기니 돼지 모델에서 사용 되었습니다. 19 라운드 창 막 기니 돼지와 불리 한 삽입 각도에 둥근 창 막 결과 통해 전극 삽입에 숨겨져 있기 때문에 보다 예측 가능한 청각 임계값 교대 리드는 cochleostomy 드릴링. 이 이식 될 귀의 감소 소음에 노출에서 발생 하기 때문에이 프로토콜 귀 물집의 개방에 대 한 드릴 대신 메스를 사용 하 여를 제안 합니다. 전극 구조에 외상 뿐만 아니라 세포와 나선형 신경 절 세포의 양에 이물질 반응 해결 안 귀의 조직학 평가 처럼 뼈가 있는 나선형 lamina 및 전극 전 요금을 수행 한다 모든 이러한 결과 촉진 기능 결과 측정의 더 나은 이해로 귀를 이식 합니다. 12 , 20

전세계 500 백만 이상의 사람들이 청력 손실에서 고통. 1 장애인 청각 우울증, 낮은 자기 존중 감 및 자기, 이어질 모든 삶의 질 감소 낮은 감정의 높은 속도에 연결 되어있다. 2 보청기는 온건한 청력 손실의 경우에 감각 기능을 복원 하는 적절 한 방법은, 깊은 청력 손실이 고통 받는 환자에 대 한 가장 효과적인 치료 양식 적임은 인공 와우 (CI). 때문에 음성 인식에 관하여 우수한 결과, 후보 기준 인공 와우 이식에 대 한 지금 또한 상당한 잔여 낮은 주파수 영역에서 듣고<s>s</s> 환자를 포함 하지만 보청기에서 혜택을 받지 않습니다. 3 이러한 환자 수 이후 사용 결합 이식된 귀에 전기 및 음향 자극, 청력 보존 CI 외과 대 한 주요 문제가 되 고 있습니다. 인공 와우 이식, 동안 전극 배열이 달팽이 관, 어디 그것은 전기 청각 신경 자극의 scala tympani에 삽입 됩니다. 4 전극 삽입 외상 잔여 청각에 위험이 고 전극 임피던스와 플 배터리 소비를 증가 하는 섬유 증을 유도 한다. 따라서, 청력 상실 및 전극의 삽입에 의해 발생 하는 섬유 증을 줄일 수 있는 제약 개입 연구 모델 필수적입니다.
기니 피그는 쉽게 때문에 CIs, 대 한 적합 하 고 편리한 동물 모델 및 gerbils, 쥐 또는 쥐에 비해 내 귀에 더 많은 재현할 수 외과 접근 이다. 5 , 6 , 7 , 8 또한,이 종족의 심리 범위는 인간의 청각을 상대적으로 비교. 9 더 큰 종 고양이 또는 원숭이, 구체적인 연구 질문 CIs 관련 주소로 사용 된 대부분의 CI 연구 윤리 및 재정적 고려 사항 때문에 대 한 합리적인 선택을 대표 하지 않습니다. 10 , 11
요약 하자면, 기니 돼지 인공 와우 이식의 설정에서 약리학 내정간섭의 효과 평가 하기 위해 안정적이 고 상대적으로 비용 효율적인 모델 이다.

<table><tbody><tr><td>Scale</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Oxygen insufflator</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Shaver</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sucker</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine Solution</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alcohol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Laryngoscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stomach tube&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Fr 06, Lg 80 cm</td></tr><tr><td>Surgical binocular microscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Drill</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.5 mm diamond burr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mm diamond burr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heating plate</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pulse oximeter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue glue</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dental cement powder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fluid for dental cement powder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bipolar cautery</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gauze compress</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cotton bud</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cement mixing bowl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Teflon insulated gold wire</td><td></td><td></td><td>99.99 % gold, diameter: 0.125 mm, isolation: 0,016 mm, PTFE (Polytetrafluoroethylen)&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Scalpel with blade No. 10</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scalpel with blade No. 15</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scissors</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mosquito forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dressing forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Delicate dressing forceps 2X</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Screw driver</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stainless steel screws</td><td></td><td></td><td>diameter: 1 mm</td></tr><tr><td>Retractor</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle probe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spatula</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle holder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5-0 absorbable sutures&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle 23G</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle 27G</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medetomidine 1 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.36 mg/kg</td></tr><tr><td>Midazolam g mg/mL</td><td></td><td></td><td>1.2 mg/kg</td></tr><tr><td>Fentanyl 50 &amp;micro;g/mL</td><td></td><td></td><td>0.036 mg/kg</td></tr><tr><td>Ketamine 100 mg/mL</td><td></td><td></td><td>12 mg/kg</td></tr><tr><td>Lidocaine (local anesthesia)</td><td></td><td></td><td>4 mg/kg</td></tr><tr><td>Atipamezole 5 mg/mL</td><td></td><td></td><td>1 mg/kg</td></tr><tr><td>Flumazenil 0.1 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.1 mg/kg</td></tr><tr><td>Enrofloxacin 100 mg/mL</td><td></td><td></td><td>7 mg/kg</td></tr><tr><td>Buprenorphin&amp;nbsp; 0.3 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.05 mg/kg&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Physiological Saline (at body temperature)</td><td></td><td></td><td>12.5 mL/Kg (pre-surgery)</td></tr><tr><td>Glucose 5 % (preoperative, at body temperature)</td><td></td><td></td><td>12.5 mL/Kg</td></tr><tr><td>Physiological Saline (at body temperature)</td><td></td><td></td><td>25 mL/kg (post-surgery)</td></tr></tbody></table>

cochlear implantation in the guinea pig

달팽이 관 임 플 란 트는 과목 깊은 청력 손실 청력을 복원할 수 있는 고효율 장치입니다. 향상 된 음성 인식 결과 때문 후보 기준 지난 몇 년간 확대 되었습니다. 이 상당한 잔여 청각과 같은 귀, 중요 한 문제 중 인공 와우 이식 청각 보존 하 게 전기 및 음향 자극 으로부터 혜택을 받을 환자를 포함 한다. 이 지역에서 진행 수 있는 길을 완전히 이식 청각 무생물으로 전극 임피던스와 에너지 소비의 관련된 문제 다른 주요 연구 분야입니다. 체계적인 방법으로 이러한 문제를 해결 하려면 적절 한 동물 모델 필수적입니다. 따라서,이 프로토콜의 목표는 다양 한 연구 질문을 해결 하기 위해 사용 될 수 있는 인공 와우 이식의 동물 모델을 제공입니다. 때문에 상대적으로 인간의 청각 범위와 유사한 그것의 청각 범위 뿐 아니라 내가 쉽게 수술 액세스할 수, 그것의 큰 귀 물집 기니 피그는 청각 연구에 일반적으로 사용 되 종. 기니 피그 달팽이 관 이식 retroauricular 접근을 통해 수행 됩니다. bullostomy을 통해 한 cochleostomy는 교 련된 하 고 인공 와우 이식 전극 scala tympani에 삽입 됩니다. 이 전극은 전기 자극, 전극 임피던스의 결정 및 청각 신경의 복합 활동 전위의 측정을 위한 다음 사용할 수 있습니다. 이러한 응용 프로그램 뿐만 아니라 인공 와우 이식 전극도 사용할 수 있습니다 약물 전달 장치, 경우 셀에 제약 에이전트의 국 소 전달 또는 내가 유체.

일반적으로 빠르고 기니 돼지 모델에서 합병증 없이 수술 상처 치유 하 고 수술 후 electrophysiological 측정에 대 한 연락처 (그림 3) 동물의 정점에서 쉽게 액세스할 수 남아 있다. 그림 4 는 대표적인 동물의 전 및 수술 후 클릭 모자 측정. 전극 삽입 16 데시벨 (dB) (그림 4A 및 4B)의 임계값 교대 귀착되는. 그림 4 C 같은 동물의 전 및 수술 후 주파수 전용 모자 임계값을 보여 줍니다. 약 25 ~ 30 dB의 임계값 교대 8 kHz에서 시작 높은 주파수 영역에서 달성 하는 반면 캡 임계값 낮은 주파수에서 거의 변경 되지 않습니다.
전극 삽입 내가 외상을 일으킬 수 있습니다. 급성 외과 외상 뿐만 아니라 전극에 이물질 반응이 부정적인 耳 성능 영향을 미칩니다. 그림 5 에서는 CI 삽입 및 다른 조직학 절차 후 기니 피그의 cochleae를 보여 줍니다. 그림 5A 는 scala tympani에 올바르게 배치, 전극에에서 남아 있지 않았다 제자리에서반면 그림 5B 전극 조직학 검사 결과 전에 제거 되었습니다. 그림 5A 에 이물질 반응이 거의 그림 5B scala tympani의 넓은 지역에서에서 거리 조직으로 채워집니다 반면에, 표시 됩니다. 그림 5 C CI 전극 삽입, 또한이 동물에 나선 신경 절 세포의 손실 발생으로 인해 뼈가 있는 나선형 lamina의 골절을 묘사 한다. 이러한 골절은 어떤 동물의 변화에 예상된 임계값 보다 높은 설명할 수 있습니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig1.jpg"> 그림 1 : 창 지역 현장에서 골드 와이어 라운드. 별표 표시 둥근 창, x는 기저는 달팽이 관의. 골드 와이어 화살표에 의해 표시 된다. 확장 바 2. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig2.jpg"> 그림 2 : 기니 피그 달팽이 관 이식 전극. 두 개의 연락처와 전극 4 m m에 삽입 됩니다. 전극의 지름 테이퍼 팁을 0.5 m m.에 0.3 m m에서 라인 나타냅니다 0.5 m m. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig3.jpg"> 그림 3 : 기니 돼지 인공 와우 이식 후 약 2 주. CI 전극 제자리에 이며 electrophysiological 측정에 대 한 연락처는 동물의 정점에서 쉽게 액세스할 수 있습니다. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig4.jpg"> 그림 4 : 대표적인 모자 임계값 (A) 수술 전 클릭 대표 동물의 모자 임계값입니다. (B) Postoperative 16 dB의 임계값 변화 전시 같은 동물의 모자 임계값을 클릭 합니다. 줄 10 dB를 나타냅니다. (C) 사전 및 수술 후 주파수 전용 모자 임계값. 낮은 주파수는 거의 변경 되지 않습니다, 하는 동안 8 ~ 32 kHz의 주파수 범위에서 25-30 dB의 임계값 변화를 관찰할 수 있습니다. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig5.jpg"> 그림 5 : CI 전극 삽입의 잠재적인 지역 결과. (A) CI 전극 현장에서 (#)와 최소한의 이물질 반응만 기니 피그 달팽이 관의 기저 회전의 현미경 사진. 사용 하는 연 삭 및 수 지 포함 후 Giemsa 얼룩 기법을 연마 조직학 분석 수행 되었다. 15 Scalebar 100 µ m는 기저의 귀 덕트의 현미경 사진 (B) CI 전극의 제거 후 운하를 떠나 보이는 조직 응답 달팽이 관의 설정 (#). Scalebar 100 µ m (C) 낮은 기저 사건의 달팽이 관 골절된 뼈가 있는 나선형 lamina (굵은 화살표)와 인접 한 조직 응답: 나선형 ganglion 셀 (화살표) 로젠 탈의 운하 (ii) 섬유 증 vestibular 덕트 (●), 및 (osteoneogenesis의 손실 (i) iii) 장기의 Corti (*)의 손실. 시추-인접 한 osteoneogenesis와 CI (○)의 삽입을 위한 구멍. Scalebar 500 µ m. 그림 5B 및 5c 했다 스테인드 되며 (파란색)와 오신 (빨간색). <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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Cochlear Implantation in the Guinea Pig

이 프로토콜의 목표는 다양 한 연구 질문을 해결 하기 위해 사용 될 수 있는 인공 와우 이식의 동물 모델을 제공 하는입니다. 잠재적인 응용 프로그램 제약 개입 또는 청각 임계값 또는 전극 임피던스에 유익한 효과 대 한 전기 자극의 평가 포함합니다.

기니 피그 달팽이 관 이식

Cochlear implants are highly efficient devices that can restore hearing in subjects with profound hearing loss. Due to improved speech perception ...

Research

JoVE Journal

Medicine

11.1K 조회수.  Medical University of Vienna. 이 프로토콜의 목표는 다양 한 연구 질문을 해결 하기 위해 사용 될 수 있는 인공 와우 이식의 동물 모델을 제공 하는입니다. 잠재적인 응용 프로그램 제약 개입 또는 청각 임계값 또는 전극 임피던스에 유익한 효과 대 한 전기 자극의 평가 포함합니다.

비디오: Cochlear Implantation in the Guinea Pig

Surgical Induction of Endolymphatic Hydrops by Obliteration of the Endolymphatic Duct

Surgical induction of endolymphatic hydrops (ELH) in the guinea pig by obliteration and obstruction of the endolymphatic duct is a well-accepted animal model of the condition and an important correlate for human Meniere's disease. In 1965, Robert Kimura and Harold Schuknecht first described an intradural approach for obstruction of the endolymphatic duct (Kimura 1965). Although effective, this technique, which requires penetration of the brain's protective covering, incurred an undesirable level of morbidity and mortality in the animal subjects. Consequently, Andrews and Bohmer developed an extradural approach, which predictably produces fewer of the complications associated with central nervous system (CNS) penetration.(Andrews and Bohmer 1989) 
The extradural approach described here first requires a midline incision in the region of the occiput to expose the underlying muscular layer. We operate only on the right side. After appropriate retraction of the overlying tissue, a horizontal incision is made into the musculature of the right occiput to expose the right temporo-occipital suture line. The bone immediately inferio-lateral the suture line (Fig 1) is then drilled with an otologic drill until the sigmoid sinus becomes visible. Medial retraction of the sigmoid sinus reveals the operculum of the endolymphatic duct, which houses the endolymphatic sac. Drilling medial to the operculum into the area of the endolymphatic sac reveals the endolymphatic duct, which is then packed with bone wax to produce obstruction and ultimately ELH. 
In the following weeks, the animal will demonstrate the progressive, fluctuating hearing loss and histologic evidence of ELH.

This video shows how to surgically obstruct the guinea pig's endolymphatic duct to produce endolymphatic hydrops.

Endolymphatic 덕트의 말살로 Endolymphatic의 Hydrops의 외과 유도

Surgical induction of endolymphatic hydrops (ELH) in the guinea pig by obliteration and obstruction of the endolymphatic duct is a well-accepted animal ...

연구

생물학

Cochlear Implant Surgery and Electrically-evoked Auditory Brainstem Response Recordings in C57BL/6 Mice

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of hearing. Improvement of the implant technology is needed if CI users are to perceive music and perform in more natural environments, such as hearing out a voice with competing talkers, reflections, and other sounds. Such improvement requires experimental animals to better understand the mechanisms of electric stimulation in the cochlea and its responses in the whole auditory system. The mouse is an increasingly attractive model due to the many genetic models available. However, the limited use of this species as a CI model is mainly due to the difficulty of implanting small electrode arrays. More details about the surgical procedure are therefore of great interest to expand the use of mice in CI research.
In this report, we describe in detail the protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in the C57BL/6 mouse strain. We demonstrate the functional efficacy of this procedure with electrically-evoked auditory brainstem response (eABR) and show examples of facial nerve stimulation. Finally, we also discuss the importance of including a deafening procedure when using a normally hearing animal. This mouse model provides a powerful opportunity to study genetic and neurobiological mechanisms that would be of relevance for CI users.

Animal models of cochlear implants can advance knowledge of the technological bases of treating permanent sensorineural hearing loss with electrical stimulation. This study presents a surgical protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in mice as well as the functional assessment with auditory brainstem response.

인공 와우 수술 및 C57BL/6 마우스에 전기 evoked 청각 Brainstem 응답 기록

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of ...

신경과학

Subretinal Implantation of RPE on a Carrier in Minipigs: Guidelines for Preoperative Preparations, Surgical Techniques, and Postoperative Care

Degenerative disorders of the retina (including age-related macular degeneration), which originate primarily at or within the retinal pigmented epithelial (RPE) layer, lead to a progressive disorganization of the retinal anatomy and the deterioration of visual function. The substitution of damaged RPE cells (RPEs) with in vitro cultured RPE cells using a subretinal cell carrier has shown potential for re-establishing the anatomical structure of the outer retinal layers and is, therefore, being further studied. Here, we present the principles of a surgical technique that allows for the effective subretinal transplantation of a cell carrier with cultivated RPEs into minipigs. The surgeries were performed under general anesthesia and included a standard lens-sparing three-port pars plana vitrectomy (PPV), subretinal application of a balanced salt solution (BSS), a 2.7 mm retinotomy, implantation of a nanofibrous cell carrier into the subretinal space through an additional 3.0 mm sclerotomy, fluid-air exchange (FAX), silicone oil tamponade, and closure of all the sclerotomies. This surgical approach was used in 29 surgeries (18 animals) over the past 8 years with a success rate of 93.1%. Anatomic verification of the surgical placement was carried out using in vivo fundus imaging (fundus photography and optical coherence tomography). The recommended surgical steps for the subretinal implantation of RPEs on a carrier in minipig eyes can be used in future preclinical studies using large-eye animal models.

The subretinal implantation of retinal pigmented epithelium (RPE) is one of the most promising approaches for the treatment of degenerative retinal diseases. However, the performance of preclinical studies on large-eye animal models remains challenging. This report presents guidelines for the subretinal transplantation of RPE on a cell carrier into minipigs.

Minipigs의 캐리어에 RPE의 망막하 이식: 수술 전 준비, 수술 기술 및 수술 후 관리에 대한 지침

Degenerative disorders of the retina (including age-related macular degeneration), which originate primarily at or within the retinal pigmented epithelial ...

생체공학

Subdural Soft Electrocorticography (ECoG) Array Implantation and Long-Term Cortical Recording in Minipigs

Neurological impairments and diseases can be diagnosed or treated using electrocorticography (ECoG) arrays. In drug-resistant epilepsy, these help delineate the epileptic region to resect. In long-term applications such as brain-computer interfaces, these epicortical electrodes are used to record the movement intention of the brain, to control the robotic limbs of paralyzed patients. However, current stiff electrode grids do not answer the need for high-resolution brain recordings and long-term biointegration. Recently, conformable electrode arrays have been proposed to achieve long-term implant stability with high performance. However, preclinical studies for these new implant technologies are needed to validate their long-term functionality and safety profile for their translation to human patients. In this context, porcine models are routinely employed in developing medical devices due to their large organ sizes and easy animal handling. However, only a few brain applications are described in the literature, mostly due to surgery limitations and integration of the implant system on a living animal.
Here, we report the method for long-term implantation (6 months) and evaluation of soft ECoG arrays in the minipig model. The study first presents the implant system, consisting of a soft microfabricated electrode array integrated with a magnetic resonance imaging (MRI)-compatible polymeric transdermal port that houses instrumentation connectors for electrophysiology recordings. Then, the study describes the surgical procedure, from subdural implantation to animal recovery. We focus on the auditory cortex as an example target area where evoked potentials are induced by acoustic stimulation. We finally describe a data acquisition sequence that includes MRI of the whole brain, implant electrochemical characterization, intraoperative and freely moving electrophysiology, and immunohistochemistry staining of the extracted brains.
This model can be used to investigate the safety and function of novel design of cortical prostheses; mandatory preclinical study to envision translation to human patients.

Subdural Soft Electrocorticography ECoG Array Implantation and Long-Term Cortical Recording in Minipigs

Here, we present a method for the long-term performance and safety assessment of soft subdural electrode arrays in a minipig model, describing surgical method and tools, postoperative magnetic resonance imaging, electrophysiology of the auditory cortex, electrochemical properties of the implant, and postmortem immunochemistry.

경막하 연피질검사(ECoG) 어레이 이식 및 Minipig의 장기 피질 기록

Neurological impairments and diseases can be diagnosed or treated using electrocorticography (ECoG) arrays. In drug-resistant epilepsy, these help ...

A Revised Surgical Approach to Induce Endolymphatic Hydrops in the Guinea Pig

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) remain unclear. In order to adequately study the attributes of endolymphatic hydrops, such as the origins of low-frequency hearing loss, a reliable model is needed. The guinea pig is a&#160;good model because it hears in the low-frequency regions that are putatively affected by endolymphatic hydrops. Previous research has demonstrated that endolymphatic hydrops can be induced surgically via intradural or extradural approaches that involve drilling on the endolymphatic duct and sac. However, whether it was possible to create an endolymphatic hydrops model using an extradural approach that avoided dangerous drilling on the endolymphatic duct and sac was unknown. The objective of this study was to demonstrate a revised extradural approach to induce experimental endolymphatic hydrops at 30 days post-operatively by obliterating the endolymphatic sac and injuring the endolymphatic duct with a fine pick. The sample size consisted of seven guinea pigs. Functional measurements of hearing were made and temporal bones were subsequently harvested for histologic analysis. The approach had a success rate of 86% in achieving endolymphatic hydrops. The risk of cerebrospinal fluid leak was minimal. No perioperative deaths or injuries to the posterior semicircular canal occurred in the sample. The presented method demonstrates a safe and reliable way to induce endolymphatic hydrops at a relatively quick time point of 30 days. The clinical implications are that the presented method provides a reliable model to further explore the origins of low-frequency hearing loss that can be associated endolymphatic hydrops.

This article demonstrates an extradural approach to obliterate the guinea pig endolymphatic sac and injure the endolymphatic duct with a fine pick in order to induce experimental endolymphatic hydrops.

기니 피그에서 내인성 수압을 유도하는 개정 된 외과 접근 법

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) ...

Implantation of hiPSC-derived Cardiac-muscle Patches after Myocardial Injury in a Guinea Pig Model

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss of relevant amounts of heart muscle mass can lead to the heart failure. Besides heart transplantation, there is no curative treatment option for the end-stage heart failure. In times of organ donor shortage, organ independent treatment modalities are needed. Left-ventricular assist devices are a promising therapy option, however, especially as destination therapy, limited by its side-effects like stroke, infections and bleedings. In recent years, several cardiac repair strategies including stem cell injection, cardiac progenitors or myocardial tissue engineering have been investigated. Recent improvements in cell biology allow for the differentiation of large amounts of cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells (iPSC). One of the cardiac repair strategies currently under evaluation is to transplant artificial heart tissue. Engineered heart tissue (EHT) is a three-dimensional in vitro created cardiomyocyte network, with functional properties of native heart tissue. We have created EHT-patches from hiPSC derived cardiomyocytes. Here we present a protocol for the induction of left ventricular myocardial cryoinjury in a guinea pig, followed by implantation of hiPSC derived EHT on the left ventricular wall.

Here we present a protocol for the induction of left ventricular cryoinjury followed by the implantation of a cardiac muscle patch, derived from human iPS-cell cardiomyocytes in a guinea pig model.

기니 돼지 모델에서 심근 손상 후 심장 근육 패치 hiPSC 파생의 이식

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss ...

의학

Pupillometry to Assess Auditory Sensation in Guinea Pigs

Noise exposure is a leading cause of sensorineural hearing loss. Animal models of noise-induced hearing loss have generated mechanistic insight into the underlying anatomical and physiological pathologies of hearing loss. However, relating behavioral deficits observed in humans with hearing loss to behavioral deficits in animal models remains challenging. Here, pupillometry is proposed as a method that will enable the direct comparison of animal and human behavioral data. The method is based on a modified oddball paradigm - habituating the subject to the repeated presentation of a stimulus and intermittently presenting a deviant stimulus that varies in some parametric fashion from the repeated stimulus. The fundamental premise is that if the change between the repeated and deviant stimulus is detected by the subject, it will trigger a pupil dilation response that is larger than that elicited by the repeated stimulus. This approach is demonstrated using a vocalization categorization task in guinea pigs, an animal model widely used in auditory research, including in hearing loss studies. By presenting vocalizations from one vocalization category as standard stimuli and a second category as oddball stimuli embedded in noise at various signal-to-noise ratios, it is demonstrated that the magnitude of pupil dilation in response to the oddball category varies monotonically with the signal-to-noise ratio. Growth curve analyses can then be used to characterize the time course and statistical significance of these pupil dilation responses. In this protocol, detailed procedures for acclimating guinea pigs to the setup, conducting pupillometry, and evaluating/analyzing data are described. Although this technique is demonstrated in normal-hearing guinea pigs in this protocol, the method may be used to assess the sensory effects of various forms of hearing loss within each subject. These effects may then be correlated with concurrent electrophysiological measures and post-hoc anatomical observations.

Pupillometry, a simple and non-invasive technique, is proposed as a method to determine hearing-in-noise thresholds in normal hearing animals and animal models of various auditory pathologies.

기니피그의 청각 감각을 평가하기 위한 동공 측정

Noise exposure is a leading cause of sensorineural hearing loss. Animal models of noise-induced hearing loss have generated mechanistic insight into the ...

The Miniature Pig: A Large Animal Model for Cochlear Implant Research

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, no standard model exists for investigating the electrophysiology and histopathology in patients or animal models with a CI or for evaluating new models of electrode arrays. A large animal model with cochlea characteristics similar to those of humans may provide a research and evaluation platform for advanced and modified arrays before their use in humans. 
To this end, we established standard CI methods with Bama mini-pigs, whose inner ear anatomy is highly similar to that of humans. Arrays designed for human use were implanted into the mini pig cochlea through a round window membrane, and a surgical approach followed that was similar to that used for human CI recipients. Array insertion was followed by evoked compound action potential (ECAP) measurements to evaluate the function of the auditory nerve. This study describes the preparation of the animal, surgical steps, array insertion, and intraoperative electrophysiological measurements. 
The results indicated that the same CI used for humans could be easily implanted in mini-pigs via a standardized surgical approach and yielded similar electrophysiological outcomes as measured in human CI recipients. Mini-pigs could be a valuable animal model to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches before applying them to human beings.

Miniature pigs (mini-pigs) are an ideal large animal model for research into cochlear implants. Cochlear implantation surgery in mini-pigs can be utilized to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches in a living system similar to human beings.

미니어처 돼지: 인공와우 연구를 위한 대형 동물 모델

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, ...

Endoscopic Balloon Dilatation of the Eustachian Tube via the Soft Palate Approach in Miniature Pigs

The eustachian tube (ET) is one of the most complex organs in the human body, and its dysfunction may lead to a variety of diseases. In recent years, an increasing number of scholars have opted to conduct ET-related studies using large experimental animals such as miniature pigs or sheep, yielding promising results. Typically, conventional endoscopic procedures are performed through the nasal approach for large experimental animals. However, due to the elongated and narrow nasal cavity in these animals, transnasal surgeries are challenging. 
To address this issue, we explored an ET surgery approach via the soft palate. The animal was placed in a supine position. After endotracheal intubation under general anesthesia, a mouth opener was used to fully expose the upper palate. Local infiltration with diluted adrenal fluid was performed for anesthesia of the area. A sickle knife was then used to make a longitudinal soft palate incision at the junction of the soft and hard palates. After hemostasis, an endoscope was inserted into the nasopharynx cavity, allowing the visualization of the pharyngeal opening of the ET on the posterior lateral wall of the nasal cavity. 
Subsequently, a specialized pusher was used to insert a balloon into ET. The balloon was inflated, maintained at 10 bar for 2 min, and then removed. The incision in the soft palate was then sutured to ensure proper alignment. The soft palate healed well after the operation. This surgical approach is suitable for ET-related procedures in large experimental animals (e.g., miniature pigs, sheep, and dogs). The surgical procedure is simple, with a short surgical time, and wound healing is rapid. Under endoscopy, the pharyngeal opening of the ET is visible, and it is thus a good choice for procedures such as balloon dilation of the ET.

In this study, we present a protocol to explore an eustachian tube surgery approach via the soft palate in miniature pigs. The surgical procedure is simple, with short surgical time, and wound healing is rapid; it is thus a good choice for procedures such as balloon dilation of the eustachian tube.

The eustachian tube (ET) is one of the most complex organs in the human body, and its dysfunction may lead to a variety of diseases. In recent years, an ...

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Guinea Pig Round Window Membrane Explantation for Ex Vivo Studies

Efficient and minimally invasive drug delivery to the inner ear is a significant challenge. The round window membrane (RWM), being one of the few entry points to the inner ear, has become a vital focus of investigation. However, due to the complexities of isolating the RWM, our understanding of its pharmacokinetics remains limited. The RWM comprises three distinct layers: the outer epithelium, the middle connective tissue layer, and the inner epithelial layer, each potentially possessing unique delivery properties.
Current models for investigating transport across the RWM utilize in vivo animal models or ex vivo RWM models which rely on cell cultures or membrane fragments. Guinea pigs serve as a validated preclinical model for the investigation of drug pharmacokinetics within the inner ear and are an important animal model for the translational development of delivery vehicles to the cochlea. In this study, we describe an approach for explantation of a guinea pig RWM with surrounding cochlear bone for benchtop drug delivery experiments. This method allows for preservation of native RWM architecture and may provide a more realistic representation of barriers to transport than current benchtop models.

저자 스포트라이트: 내이 약물 전달 연구를 촉진하기 위한 기니피그 원형 창막 추출

This protocol outlines a method for the explantation of the round window membrane from guinea pig temporal bones, providing a valuable resource for ex vivo studies.

Ex Vivo 연구를 위한 기니피그 원형 창 멤브레인 이식

Efficient and minimally invasive drug delivery to the inner ear is a significant challenge. The round window membrane (RWM), being one of the few entry ...