우리는 영어 편집 닥터 사이먼 바 틀을 감사합니다. 이 연구는 Instituto de에서 교부 금에 의해 지원 되었다 건배 카를로스 3 세 (ISCIII) (PI14/00526; PI17/01395; CP11/00145; CPII16/00022), 미겔 세르 프로그램과 Fundación 라몬 Areces; 함께 Fondo Europeo 드 개발 지역 (페더)에서 공동 자금. CNIC 경제 산업성, 산업 및 경쟁력 (MEIC), 그리고 프로 CNIC 재단에서 지원 하 고는 세 베로 오 초아 센터의 우수 (SEV-2015-0505). RTF Fundación 라몬 Areces CNIC, VZG ISCIII, BHF Instituto de에 의해 의해 의해 설립 Investigación Sanitaria 병원 12 드 Octubre (imas12)와 ISCIII 미겔 세르 프로그램 및 imas12에 의해 JMG-G.

실험 절차 Fundación 센트 나시오날 드에 의해 승인 되었다 Investigaciones Cardiovasculares 카를로스 3 세 (CNIC)와 스페인과 유럽 지침에 따라 지방의 Autónoma 드 마드리드. 마우스는 특정 병원 체 자유롭게 (SPF) 조건에서 자란 했다 그리고 이산화탄소 (CO2) 흡입에 의해 안락사 되었다.
1. 절연 Tibias 화관에서 마우스 골 수 세포의
참고: C57BL/6 congenic 마우스 스트레인 운반 차동 백혈구 마커는 Ptprc는는, 야생-타입 C57BL 긴장 Ptprcb 대립 유전자, CD45.2 또는 Ly5.2로 알려진, 수행 하는 반면에, CD45.1 또는 Ly5.1로 일반적으로 인식 합니다. CD45.1 및 CD45.2 변종 cytometry 항 체를 사용 하 여 구분할 수 있습니다. CD45.1, CD45.2, 및 CD45.1/CD45.2 쥐 입양 전송, cytometry에 의해 뚜렷한 세포 인구의 추적을 허용에 대 한 셀 소스 또는 받는 사람으로 사용할 수 있습니다. 나이 우선적으로 사용-및 나이의 12 주 아래 섹스 일치 하는 남성 또는 여성 쥐.
<ol><li>
화관과 Tibias의 준비
	<ol>
<li>제도 동물 보호 위원회에 의해 승인 된 프로토콜을 사용 하 여 마우스를 안락사</li>
		<li>70% 에탄올과 동물 표면에 분사 하 여 뒷 다리 사지를 소독.</li>
		<li>살 균가 위, 집게와 scalpels 사용 합니다. 메스로 피부에 상처를 만들고 후부 사지를 포함 하는 피부를 포함 하 여 마우스의 원심 부분에서 피부를 제거. 낮은 종 아리 근육 주위 피부 껍질과 다리에서 피부를 완전히 제거 (그림 2A, 2B).</li>
		<li>메스를 사용 하 여 대 퇴 골에서 quadriceps 근육을 구분 합니다. 고관절 대 퇴 골 머리 깨지 않고 disarticulate. 메스 (그림 2C, 2D)를 사용 하 여 경골에서 근육을 제거 합니다. 뼈 끝을 깨지 않고 경골에서 대 퇴 골을 구분 합니다.</li>
		<li>10% 태아 둔감 한 혈 청 (FBS) 및 1% 페니실린/스 얼음 1 x 로스웰 파크 기념 연구소 (RPMI) 1640 매체에 포함 된 배양 접시에서 뼈를 유지.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
세포 격리 참고: 모든 후속 단계는 문화 후드와 오염을 피하기 위하여 살 균 물자로 수행 되어야 합니다.<ol>
<li>멸 균 페 트리 접시에 메스와 각 뼈의 인접 하 고 원심 끝을 잘라 신중 하 게.</li>
		<li>완전 따뜻한 RPMI 매체 (RPMI + 10 %FBS, 2 mM EDTA, 1% 페니실린/스, 20 mM HEPES, 55 μ M 2-mercaptoethanol, 1mm 나트륨 pyruvate 및 2 m m L-글루타민)의 10 ml 전체 볼륨으로 반복적으로 뼈를 플러시. 1 mL 주사기에 부착 된 25g 바늘을 사용 하 여 양쪽에서 뼈를 플러시.</li>
		<li>50 mL 원뿔 튜브 70 µ m 나일론 웹 필터 장착 하는 effluate를 전송 합니다. 신중 하 게 부드러운 교 반 및 pipetting 파편 및 셀 대기업을 분리 하십시오.</li>
		<li>셀 서 스 펜 션 (RT) 실 온에서 10 분 동안 250 x g 에서 원심</li>
		<li>감기-적혈구 세포의 용 해 버퍼 (0.15 M NH4Cl + 1 m m KHCO3 + 0.1 m m EDTA, 1 N HCl, 0.4 µ m 살 균 필터링, 및 4 ° C에서 저장과 7.2에 조정된 산도)의 1 mL에 셀 펠 릿을 resuspend. 떨고 수동 5 분 동안 얼음에 유지 합니다.</li>
		<li>비활성화 하 고 붉은 혈액 세포 세포의 용 해 버퍼 씻어 감기 버퍼 (버퍼링 하는 인산 염 (PBS) + 2 mM EDTA + 2% 소 혈 청 알 부 민 (BSA) x 1) 10 mL를 추가 합니다.</li>
		<li>4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심</li>
		<li>완전 한 RPMI 매체 및 4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g 에서 원심 분리기 25 mL로 세포 세척</li>
		<li>완전 한 RPMI 매체의 5 mL에 셀 resuspend 세포 현 탁 액 trypan 블루와 함께 1: 1의 혼합 50 µ L. 현미경으로 세 실에 휴대폰 번호를 확인 합니다. 수식을 사용 하 여 셀 수를 계산: 셀/mL = [(비-얼룩진 셀 수/4) 2 x 10000 x]12. 참고:이 방법은 수율 40 x 106 60 x 106 12 주 된 C57BL/6 마우스에 감염 되지 않은 8 당 골 수 세포 뼈.</li>
		<li>4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. DC 분화, 성숙 및 항 원 로드
<ol><li>
BM 셀 수확
	<ol>
<li>6 잘 초 저-첨부 매체, 일반적으로 잘 당 5 mL의 mL 당 106 세포 표면 접시에 완전 한 문화 씨앗 차별화 된 대 식 세포는 문화 판에 연결 됩니다. 후 12 h, 주로 포함 monocytes, 6 잘 플레이트, 준수 대 식 세포와 오래 된 6 잘 플레이트를 폐기 시키려면 상쾌한 전송.</li>
		<li>세포 분화를 촉진 하는 비 부착 한 세포 상업적으로 재조합 murine GM-CSF 37 ° C와 5% 이산화탄소 (CO2)에서 얻은 20 ng/mL를 포함 하는 완전 한 RPMI 매체의 당 일반적으로 5 mL에 mL 당 5 x 105 셀에서 문화 및 매일 관찰 합니다.</li>
		<li>3 일 마다 중단된 셀 아래로 회전 5 mm EDTA PBS에 부착 세포를 수집 하 고 스핀 다운. 결합 하 고 5 × 105 셀/mL 신선한 매체 20 ng/mL rm-GM-CSF를 포함에서 resuspend.</li>
		<li>8 일에 위와 같이 부착 및 분리 된 세포를 수집 하 고 조직 문화 치료 비 멸 균 페 트리 접시, 유도 높은 MHC-II에에서 24 h에 대 한 중간 포함 20 ng/mL GM-CSF에서에서 5 x 105 셀/mL와 20 ng/mL lipopolysaccharide (LPS) resuspend CD80 그리고 CD86 식.</li>
		<li>Cytometry 단계 2.2에에서 표시 된에 의해 확인 DC 차별화.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Cytometry 분화 및 성숙 분석 흐름.
	<ol>
<li>4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심 이 단계를 두 번 반복 합니다.</li>
		<li>마우스 Fc 수용 체 차단 (안티 마우스 CD16/CD32 IgG2b 항 체 순화) 제조업체의 지침에 따라 4 ° C에서 15 분에서 resuspended 셀 펠 릿을 배양 하 여 블록 Fc 수용 체.</li>
		<li>4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심</li>
		<li>각 프로브에 대 한 흐름 cytometry 버퍼 (PBS + 2 mM EDTA + 2% BSA x 1) 4 ° c.의 300 µ L 250000 셀 resuspend</li>
		<li>96 잘 접시에 잘 당 셀 솔루션의 30 µ L를 전송 합니다.</li>
		<li>4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심</li>
		<li>상쾌한 삭제 하 고 포함 하는 항 체의 30 µ L 추가 버퍼를 각 제조업체의 표시를 따라 잘. 4 ° c.에 20 분에 대 한 항 체와 세포를 품 어 참고: 일반적으로 고용 마커 Dc, monocytes, 대 식 세포는 CD11b, CD64, CD115, CD11c, MHCII, CD80 그리고 CD86 (그림 3).</li>
		<li>4 ° C에서 5 분 동안 250 x g 에서 샘플 원심 및 죽은 세포 (예를 들어, propidium 요오드 화물, 4, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) 또는 아민 반응성 염료를 제외 마커를 포함 하는 흐름 cytometry 버퍼의 당 200 µ L에서 resuspend ) 제조 업체의 권장된 농도13에.</li>
		<li>교류 cytometry 튜브 샘플을 전송 하 고 죽은 세포를 제외 하 고 0, 3, 6, 9 일에 교류 cytometry 분석을 수행 하 여 세포 분화를 모니터링 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
DC 항 로드 합니다.
	<ol>
<li>8 일에 4 ° C에서 5 분 동안 250 x g 에서 샘플 원심 및 200 µ L 매체에 산 탄을 resuspend (RPMI + 10 %FBS 항생제 없이). 이 단계를 두 번 반복 합니다.</li>
		<li>10 µ g/mL OVAp (323-339;와 Dc를 품 어 ISQAVHAAHAEINEAGR) 1 x 107 Dc에서에서 매체의 1 mL 당 (RMPI + 1 %FBS) 37 ° c.에 적어도 30 분 동안 플라스틱 튜브에 OVAp 로드 Dc를 사용 하 여 부정적인 제어 조건으로.</li>
		<li>4 ° C에서 5 분 동안 250 x g 에서 샘플 원심 고 200 µ L 완전 한 RPMI 매체에 산 탄을 resuspend. 이 단계를 두 번 반복 합니다.</li>
		<li>4 ° C에서 5 분 동안 250 x g 에서 샘플 원심 및 200 µ L 매체에 산 탄을 resuspend (RPMI + 10 %FBS) 2 x 106 셀/mL에.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. OTII 마우스에서 순진한 CD4 T 세포의 고립
참고:이 방법은 12 주 된 C57BL/6 마우스에 감염 되지 않은 8 당 약 100 x 106 spleenocytes를 생성합니다. 남성과 여성 모두 사용할 수 있습니다. CD4 T 세포는 비장 또는 림프절;에서 고립 될 수 있다 CD4 T 세포는 각각 대략 25% 및이 기관에 있는 세포의 50%를 위한 계정. 무 균 조건에서 다음 단계를 수행 합니다.
<ol><li>사 타 구니, 겨드랑이, 상 완, 자 궁 경부, 그리고 mesenteric 림프절과 비장 OTII 유전자 변형 마우스 (그림 4)에서 분리 하 고 플라스틱 페 트리 접시 포함 하는 완전 한 RPMI 매체의 10 mL 그들을 전송.</li>
	<li>완전 한 RPMI 매체의 2 mL와 함께 셀 여과기를 헹 구 고 50 mL 튜브에서 제거. 전송 림프절과 비장 70 µ m 셀 스 트레이너를 50ml 튜브에 배치. (그림 5) 주사기 플런저를 사용 하 여 균질 하 고 매체 추가 최대 15 mL.</li>
	<li>4 ° C에서 5 분 동안 250 x g 에서 샘플 원심 하 고 완전 한 RPMI 매체의 15 mL에 펠 릿을 resuspend. 이 단계를 두 번 반복 합니다.</li>
	<li>비장 세포 현 탁 액 셀 펠 릿 resuspend 및 단계 1.2.5에서 붉은 혈액 세포를 lyse.</li>
	<li>4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g 에 세포 현 탁 액을 원심</li>
	<li>완전 한 RPMI 매체와 실시간에 5 분 동안 250 x g 에서 원심 분리기 25 mL로 세포 세척</li>
	<li>중간의 5 mL에 셀 resuspend Trypan 파랑 세포 현 탁 액 1: 1의 50 µ L를 혼합. 현미경 아래 세 챔버를 사용 하 여 셀 수를 결정 합니다. 수식을 사용 하 여 셀 수를 계산: 셀/mL = [(비-얼룩진 셀 수/4) 2 x 10000 x]12.</li>
	<li>2.2.2 단계를 반복 합니다.</li>
	<li>제조업체의 지침에 따라 셀 CD4 T 세포의 부정적인 선택 나중에 얼음에 30 분을 CD8α, IgM, B220, CD19, MHCII (난 Ab), CD11b, CD11c, CD44, CD25, DX5 biotinylated 항 체의 1:800 희석을 품 어.</li>
	<li>제조업체의 지침에 따라와 streptavidin 입히는 자기 microbeads의 필요한 금액을 계산 하 고 CD4 T 세포는 자기 세포 구분 및 적절 한 사용 하 여 격리 셀 수와 구슬의 용량에 따라, 분리의 열 있습니다.</li>
	<li>완전 한 RPMI 매체의 5 mL에 셀 resuspend 고 단계 3.7에서에서 설명한 대로 라이브 셀을 계산 하는 동안 얼음에 그들을 유지.</li>
	<li>2 x 105 셀을 추출 하 고 수집 된 셀 사용 하 여 안티 CD4, CD3, B220, CD8 항 체 희석 제조 업체 추천을 사용 하 여 교류 cytometer에서 형광 항 체의 순도 확인 하십시오.</li>
	<li>격리 된 순진한 CD4/OTII T 세포 얼룩, 500 µ L 버퍼 (PBS + 2 mM EDTA + 2% BSA x 1) 106 셀 resuspend. 준비 하는 500 µ L 버퍼 (PBS + 2 mM EDTA + 2% BSA x 1) 포함 된 중요 한 셀 추적 염료의 최종 제조업체 권장 농도 더블. 천천히 세포 현 탁 액을 세포 추적 솔루션을 추가 하 여 두 솔루션을 혼합. 37 ° c.에 5 분에 대 한 셀을 품 어</li>
	<li>완전 한 RPMI 매체와 4 ° c.에서 5 분 동안 250 x g에서 원심 분리기의 5 mL로 세포 세척 이 단계를 두 번 반복 합니다. 1 x 107셀/mL에서 완전 한 RPMI 매체의 1 mL에 셀 resuspend</li>
</ol>4. Vivo에서 활성화, 확산 및 Th1 차별화 분석 결과
참고: 중요 한 셀 추적 염료 carboxyfluorescein diacetate succinimidyl 에스테 르 (CFSE) 및 다른 succinimidyl 에스테 르 기반 염료, 기쁘게 생각 하 고 다른 파장에서 형광을 방출, 널리 이용 된다 림프 톨 확산을 평가 하기 위해 흐름에 의해 그들의 높은 형광 강도, 긴 수명, 낮은 다양성, 및 낮은 독성14cytometry.
<ol><li>Adoptively 정 맥 (i.v.) 1 x 106 라이브 중요 한 셀 추적 염료 얼룩이 순진한 CD4/OTII T 셀 마우스 당 PBS의 100 µ L에 전송 합니다. 레이블이 T 세포 adoptively 꼬리 정 맥 또는 복고풍 궤도 주입15;으로 옮겨질 수 있다 두 경우 모두에서 세포 림프 기관 (그림 6A)에 홈 것입니다.</li>
	<li>도전 받는 사람 마우스 1 일 후 adoptively 100000 LPS 성숙 OVAp 로드 Dc 올리십시오 (그림 6B)에 피하 주사 (s.i.)로 전송 하 여.</li>
	<li>받는 사람 마우스에서 오 금 림프절을 수확 하 고 이전 3.1 및 3.2에 설명 된 동일한 단계를 수행 하는 단일 셀 정지의 획득까지 그들을 처리 합니다. 이렇게 하루 2 사후 예방 접종 CD4/OTII T 세포 활성화를 측정 하 고 확산 플러스 Th1 차별화를 측정 하는 5 일에.</li>
	<li>하루에 2 T 세포 활성화를 분석 하려면 얼룩 CD4, CD69와 CD25 형광 항 체와 세포 (선택적으로 CD45.1와 CD45.2) C69의 비율을 결정 하 고+CD25+ T 세포 CD4 인구. Cytometry (그림 7)에 의해 분석.</li>
	<li>5 일에 T 세포 증식을 확인 하려면 셀 c d 4와 선택적으로 CD45.1와 CD45.2에 대 한 적절 한 형광 항 체를 사용 하 여 얼룩. CD4 인구에서 중요 한 셀 추적 염료 신호 감퇴 cytometry (그림 8) 분석. 중요 한 셀 추적 염료와 각 형광 피크에 나누어 세포의 비율, 총 셀에 나누어 세포의 백분율을 표시 하는 세포에 의해 받은 셀 분할 수 등이 연구에 여러 매개 변수를 확인할 수 있습니다. 인구입니다.</li>
	<li>하루 5, Th1 차별화 플레이트 1 µ M ionomycin과 10 ng/mL phorbol 12 myristate 13 아세테이트 (PMA) 인큐베이터에서 37 ° C에서 6 시간을 포함 하는 완전 한 RPMI 매체의 200 µ L에서 96 잘 접시의 당 400000 셀을 결정 합니다. 마지막 4 h 3-10 µ g/mL brefeldin 매체에 cytokine 분 비를 차단 하는 추가 합니다.</li>
	<li>250 x g 4 ° c.에 5 분에 대 한 번호판을 원심 96 잘 접시의 급속 한 반전으로는 상쾌한을 삭제 합니다.</li>
	<li>2.2.2 단계를 반복 합니다.</li>
	<li>버퍼 (PBS + 2 mM EDTA + 2% BSA x 1) 포함 된 항 체의 CD4 하 고 CD45.1 및 CD45.2 제조 업체 권장 희석에서 30 µ L에 4 ° C에서 15 분 동안 배양 하 여 세포 막 얼룩. 버퍼 (PBS + 2 mM EDTA + 2% BSA x 1)의 150 µ L을 추가 하 여 셀을 세척 하 고 250 x g 4 ° C에서 5 분에 대 한 번호판을 원심 상쾌한 삭제.</li>
	<li>1000 x g 5 분 및 4 ° c.에 대 한 번호판 실시간 원심 분리기에서 20 분 동안 2 %paraformaldehyde/1% 자당의 100 µ L을 추가 하 여 셀을 수정 폐기는 상쾌한.</li>
	<li>세포내 permeabilization 버퍼 (1 x PBS + 0.1 %BSA, 0.01 M HEPES, 0.3% 사포닌)의 50 µ L을 추가 하 여 세포를 permeabilize, 4 ° c.에 30 분 동안 품 어</li>
	<li>실시간 삭제는 상쾌한에서 1000 x g 에서 PBS와 5 분 동안 원심 분리기의 150 µ L를 추가 합니다.</li>
	<li>버퍼 (PBS + 0.1% 사포닌)에서 IFNγ 항 체 안티 fluorophore 활용의 30 µ L을 추가 하 여 세포내 cytokines 얼룩이 실시간에서 30 분 동안 품 어</li>
	<li>버퍼 (PBS + 0.1% 사포닌)의 150 µ L을 추가 하 여 셀을 씻어. RT에서 1000 x g 에 5 분 동안 접시를 원심 및 삭제는 상쾌한. 이 단계를 두 번 반복 합니다.</li>
	<li>Cytometry (그림 8)에 의해 세포 인구를 분석 합니다.</li>
</ol>

<ol>
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D., Huizing, M., Hoogstraten-Miller, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retro-orbital+injections+in+mice.">Retro-orbital injections in mice.</a> Lab Animals (NY). 40 (5), 155-160 (2011).</li><li>Warth, S. C., Heissmeyer, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adenoviral+transduction+of+naive+CD4+T+cells+to+study+Treg+differentiation.">Adenoviral transduction of naive CD4 T cells to study Treg differentiation.</a> Journal of Visualized Experiments. (78), (2013).</li><li>Liou, H. L., Myers, J. T., Barkauskas, D. S., Huang, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intravital+imaging+of+the+mouse+popliteal+lymph+node.">Intravital imaging of the mouse popliteal lymph node.</a> Journal of Visualized Experiments. (60), (2012).</li></ol>

저자 공개할 게 없다

이 프로토콜은 활성화, 확산, 그리고 순진한 CD4 T 세포의 분화를 조절 하는 BM 파생 된 Dc의 용량 특성에 대 한 수 있습니다. 또한, 그것은 또한 사용할 수 있습니다 변조 CD4 T 세포의 민감성을 평가 하기 위해 BM 파생 DCs에 의해. 이 프로토콜 측정 vivo에서이러한 이벤트에는 변경 될 수 있습니다.
조사 가설에 따라 T 세포와 Dc의 여러 가지 조합은 사용할 수 있습니다. 예를 들...

CD4 T 세포와 항 원 제시 세포 (Apc) Dc 같은 미생물 병원 체1,2면제의 필요한 중재자는. 주변 림프 기관에 CD4 T 세포 APCs3,,45에 의해 제시 하는 특정 항 원 인식에 따라 활성화 됩니다. 활성화 된 CD4 T 세포 증식 하 고 올바른 적합 한 면역 반응6,7의 개발에 필요한 별개 특정 효과 기 Th 세포로 분화. 이러한 프로세스의 제어는 유해한 조직 손상8을 생산 하지 않고는 병원 체를 죽이 적절 한 적응형 방어를 생산을 위한 중요 한. Th 셀 식 또는 표면 분자, 녹음 방송 요인과 이펙터 cytokines의 생산에 따라 정의 되 고 병원 체1응답에 필수이 고 정확한 기능을 수행. Th1 세포 부분 집합의 세포 전사 인자 T 내기와 사이토카인 인터페론 γ (IFNγ) 표현 하 고 세포내 병원 체1에 대 한 호스트 방어에 참여. 순진한 CD4 T 세포 활성화, 확산, 및 Th1 차별화의 정량화는 T 세포 재생의 역할 면역 반응을 평가 하는 유용한 수단입니다.
이 프로토콜 활성화에 비보 분석의 체 외-용량 생성 BM 파생 Dc 활성화, 확산, 및 Th1 순진한 CD4 T 세포의 분화를 조절 하. 프로토콜 또한 순진한 CD4 T 세포 활성화, 격 증, 유도의 용량을 평가 하 고 Th1 분화 (그림 1). 이 다양 한 프로토콜을 특별히 조작 하거나 순전히 프로토콜 vivo에서 공부 셀 채우기 선택 못하는 circumvents. 다양 한 분자와 Dc에 치료의 효과 BM 유전자 변형된 쥐5 에서 사용 하거나 치료 또는 격리 된 BM 셀9유전자 조작에 의해 공부 될 수 있다. 마찬가지로, T 세포 응답 서로 다른 소스에서 또는 여러 가지 조작을3,,810후 입양 전송에 대 한 T 세포를 획득 하 여 탐험 수 있습니다.
이 프로토콜의 주요 장점은 두 가지입니다. T 세포 활성화, 확산, 및 Th1 차별화 흐름 cytometry 접근;와 분석 그리고이 vivo에서 학문, 따라서 averting 체 외에서 발생할 수 있는 변경 및 세포 유형 및 기타 요인에만 그대로 장기11에서 발견을 포함 하 여 결합.
중요 한 염료의 사용 방사능의 사용을 피하고 있는 동안 세포의 확산을 추적 하는 널리 사용 되는 기술입니다. 이 시 약으로 확산의 측정 세포 분열 후 염료 희석을 기반으로 합니다. 또한, 이러한 염료 여러 파장에서 검출 될 수 있다 그리고 쉽게 여러 형광 항 체 또는 표식 함께 cytometry에 의해 분석 된다. 우리는 어떻게 T 세포 활성화, 확산, 및 Th1 차별화 cytometry에 의해 분석 될 수 있다 표시 하 여이 프로토콜의 유틸리티를 강조 표시 합니다.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>VWR Chemicals</td>
			<td>20,824,365</td>
			<td>5 L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools (F.S.T.)</td>
			<td>14001-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools (F.S.T.)</td>
			<td>11000-13</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools (F.S.T.)</td>
			<td>11253-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td>Fine Science Tools (F.S.T.)</td>
			<td>10020-00</td>
			<td>Box of 100 blades</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>F7524</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/streptomycin</td>
			<td>LONZA</td>
			<td>DE17-602E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Roswell Park Memorial Institute medium (RPMI)</td>
			<td>GIBCO</td>
			<td>21875-034</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Petri dishes</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>25-gauge needle</td>
			<td>BD Microlance 3</td>
			<td>300600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 ml syringe</td>
			<td>Novico</td>
			<td>N15663</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 ml conical tubes</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>352096</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml conical tubes</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>352098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>70 &#956;m nylon web filter</td>
			<td>BD Falcon</td>
			<td>352350</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Red blood lysis buffer</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>R7757</td>
			<td>100 Ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>ED2SS-250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>A7906</td>
			<td>100 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan blue</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>302643-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Culture-plates</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES)</td>
			<td>Cambrex</td>
			<td>BE17-737E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Beta-mercaptoethanol</td>
			<td>Merck</td>
			<td>8-05740-0250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium pyruvate</td>
			<td>LONZA</td>
			<td>BE13-115E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>LONZA</td>
			<td>BE17-605E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombinant murine Granulocyte Macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF)</td>
			<td>Prepotech</td>
			<td>315-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lipopolysaccharide (LPS)</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH</td>
			<td>L2018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well-plate</td>
			<td>Costar</td>
			<td>3799</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>v450 anti-mouse CD11b antibody</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>560455</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE anti-mouse CD64 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>139303</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE anti-mouse CD115 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>135505</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC anti-mouse CD11c antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>117305</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC anti-mouse MHCII antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>125507</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC anti-mouse CD86 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>105011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC anti-mouse CD80 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>104713</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flow Cytometry tubes</td>
			<td>Zelian</td>
			<td>300800-1</td>
			<td>PS 12X75 5mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OTII Ovoalbumine peptide</td>
			<td>InvivoGen</td>
			<td>323-339</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated CD8&#945; antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>30-0081-U500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated IgM antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>406503</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated B220 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>30-0452-U500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated CD19 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>30-0193-U500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated MHCII (I-Ab) antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>115302</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated CD11b antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>30-0112-U500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated CD11c antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>117303</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated CD44 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>103003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated CD25 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>30-0251-U100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse biotinylated DX5 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>108903</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>streptavidin-coated magnetic microbeads</td>
			<td>MACS Miltenyi Biotec</td>
			<td>130-048-101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetic cell separator</td>
			<td>MACS Miltenyi Biotec</td>
			<td>130-090-976</td>
			<td>QuadroMACS Separator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Separation columns</td>
			<td>MACS Miltenyi Biotec</td>
			<td>130-042-401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE anti-mouse CD4 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>100408</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC anti-mouse CD3 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>100235</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC anti-mouse CD8 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>35-0081-U025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Violet Tracer</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>C34557</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC anti-mouse CD25 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>20-0251-U100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa647 anti-mouse CD69 antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>104518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PerCPCY5.5 anti-mouse CD45.1 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>65-0453</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC anti-mouse CD45.1 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>20-0453</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PECY7 anti-mouse CD45.1 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>60-0453</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC anti-mouse CD45.2 antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>35-0454</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ionomycin</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH</td>
			<td>I0634</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phorbol 12 Myristate 13 Acetate (PMA)</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>P8139</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Brefeldin A (BD GolgiPlug)</td>
			<td>BD</td>
			<td>555029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>8-18715-02100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intracellular permeabilization buffer</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>00-8333</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC anti-mouse IFNg antibody</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>20-7311-U100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fc-block (anti-mouse CD16/CD32)</td>
			<td>Tonbo Biosciences</td>
			<td>70-0161-U100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>B6.SJL CD45.1 mice</td>
			<td>The Jackson Laboratory</td>
			<td>002014</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD LSRFortessa&#8482; Cell Analyzer</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>649225</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI Solution</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>62248</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

an in vivo mouse model to measure na&#239;ve cd4 t cell activation, proliferation and th1 differentiation induced by bone marrow-derived dendritic cells

순진한 CD4 T 세포 활성화, 확산, 그리고 T 도우미 1 차별화의 정량화 (Th1) 세포 면역 반응에서 T 세포의 역할을 평가 하는 유용한 방법입니다. 이 프로토콜 granulocyte macrophage 식민지 자극 요소 (GM-CSF) 파생 된 모 수석 세포 (DCs)를 골 (BM) 창시자의 체 외에서 분화를 설명 합니다. Ovalbumin 펩 티 드 (OVAp)의 입양 전송 프로토콜에 대해서도 설명 합니다-로드 GM-CSF 파생 Dc 순진한 CD4 T 세포 OTII 유전자 변형 쥐에서 vivo에서 활성화, 확산, 및 Th1 분화를 분석 하기 위하여는 전송 된 CD4 T 세포입니다. 이 프로토콜 메서드의 순전히 vivo에서 특별히 조작 하거나 공부 셀 채우기를 선택 하는 무 능력에 의해 부과 된 제한 circumvents. 또한,이 프로토콜 변경 체 외에서 발생할 수 있는 기능적 요소와 세포 유형 및만 그대로 장기에 있는 다른 요인의 영향을 포함 하 여 피할 vivo에서 환경에서 연구를 수 있습니다. 프로토콜은 DCs에 변화를 생성 하기 위한 유용한 도구와 T 세포는 적응 면역 반응, 잠재적으로 제공 하는 원본 또는 수많은 면역 관련된 질병의 개발을 이해 하는 중요 한 결과 수정.

그림 1 에서는이 프로토콜에서 설명 하는 단계를 보여 줍니다. 그림 2 에서는 분리와 마우스 BM 세포의 문화를 보여 줍니다. 이러한 문화에 GM-CSF와 LPS의 추가 허용 한다 생체 외에서 생성 하 고 Dc. 그림 3 의 성숙 분화의 흐름 cytometry 분석과 취득된 Dc OVAp 로드 GM-CSF BM 파생 된 Dc의 성숙 보여 줍니다. 그...

Watch this Scientific Journal Video about An In Vivo Mouse Model to Measure NaÃƒÂ¯ve CD4 T Cell Activation, Proliferation and Th1 Differentiation Induced by Bone Marrow-derived Dendritic Cells at JoVE

An In Vivo Mouse Model to Measure Na&#239;ve CD4 T Cell Activation, Proliferation and Th1 Differentiation Induced by Bone Marrow-derived Dendritic Cells

여기, 우리가 순진한 CD4 T 세포 (T 세포) 활성화, 확산, 그리고 GM-CSF 골 (BM)에 의해 유도 된 Th1 차별화의 비보에 결정에 대 한 프로토콜을 제시-파생 된 모 수석 세포 (DCs). 또한,이 프로토콜 BM 및 T-세포 절연, DC 생성, 및 DC 및 T-세포 입양 전송을 설명합니다.

Vivo에서 마우스 모델을 측정 순진한 CD4 T 세포 활성화, 확산 및 골 수 유래 수지상 세포에 의해 유도 된 Th1 차별화

Quantification of na&#239;ve CD4 T cell activation, proliferation, and differentiation to T helper 1 (Th1) cells is a useful way to assess the role played ...

an-vivo-mouse-model-to-measure-nave-cd4-t-cell-activation

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

19.3K 조회수.  Centro Nacional de Investigaciones Cardiovasculares Carlos III (CNIC). 여기, 우리가 순진한 CD4 T 세포 (T 세포) 활성화, 확산, 그리고 GM-CSF 골 (BM)에 의해 유도 된 Th1 차별화의 비보에 결정에 대 한 프로토콜을 제시-파생 된 모 수석 세포 (DCs). 또한,이 프로토콜 BM 및 T-세포 절연, DC 생성, 및 DC 및 T-세포 입양 전송을 설명합니다.

비디오: An In Vivo Mouse Model to Measure Naïve CD4 T Cell Activation, Proliferation and Th1 Differentiation Induced by Bone Marrow-derived Dendritic Cells

Retroviral Transduction of T-cell Receptors in Mouse T-cells

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen presenting cells (APCs)1. This recognition leads to the activation of T-cells and a series of functional outcomes (e.g. cytokine production, killing of the target cells). Understanding the functional role of TCRs is critical to harness the power of the immune system to treat a variety of immunology related diseases (e.g. cancer or autoimmunity).
It is convenient to study TCRs in mouse models, which can be accomplished in several ways. Making TCR transgenic mouse models is costly and time-consuming and currently there are only a limited number of them available2-4. Alternatively, mice with antigen-specific T-cells can be generated by bone marrow chimera. This method also takes several weeks and requires expertise5. Retroviral transduction of TCRs into in vitro activated mouse T-cells is a quick and relatively easy method to obtain T-cells of desired peptide-MHC specificity. Antigen-specific T-cells can be generated in one week and used in any downstream applications. Studying transduced T-cells also has direct application to human immunotherapy, as adoptive transfer of human T-cells transduced with antigen-specific TCRs is an emerging strategy for cancer treatment6.
Here we present a protocol to retrovirally transduce TCRs into in vitro activated mouse T-cells. Both human and mouse TCR genes can be used. Retroviruses carrying specific TCR genes are generated and used to infect mouse T-cells activated with anti-CD3 and anti-CD28 antibodies. After in vitro expansion, transduced T-cells are analyzed by flow cytometry.

We present a protocol to produce antigen-specific mouse T-cells using retroviral transduction

마우스 T - 세포에서 T - 세포 수용체의 Retroviral 전달

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen ...

연구

면역학 및 감염병학

Generation and Labeling of Murine Bone Marrow-derived Dendritic Cells with Qdot Nanocrystals for Tracking Studies

Dendritic cells (DCs) are professional antigen presenting cells (APCs) found in peripheral tissues and in immunological organs such as thymus, bone marrow, spleen, lymph nodes and Peyer's patches 1-3. DCs present in peripheral tissues sample the organism for the presence of antigens, which they take up, process and present in their surface in the context of major histocompatibility molecules (MHC). Then, antigen-loaded DCs migrate to immunological organs where they present the processed antigen to T lymphocytes triggering specific immune responses. One way to evaluate the migratory capabilities of DCs is to label them with fluorescent dyes 4.
Herewith we demonstrate the use of Qdot fluorescent nanocrystals to label murine bone marrow-derived DC. The advantage of this labeling is that Qdot nanocrystals possess stable and long lasting fluorescence that make them ideal for detecting labeled cells in recovered tissues. To accomplish this, first cells will be recovered from murine bone marrows and cultured for 8 days in the presence of granulocyte macrophage-colony stimulating factor in order to induce DC differentiation. These cells will be then labeled with fluorescent Qdots by short in vitro incubation. Stained cells can be visualized with a fluorescent microscopy. Cells can be injected into experimental animals at this point or can be into mature cells upon in vitro incubation with inflammatory stimuli. In our hands, DC maturation did not determine loss of fluorescent signal nor does Qdot staining affect the biological properties of DCs. Upon injection, these cells can be identified in immune organs by fluorescent microscopy following typical dissection and fixation procedures.

Dendritic cells uptake antigens and migrate towards immune organs to present processed antigens to T cells. Qdot nanocrystal labeling provides a long-lasting and stable fluorescent signal. This allows tracking of dendritic cells to different organs by fluorescent microscopy.

추적 연구 Qdot Nanocrystals와 Murine 골수 파생 돌기 세포의 생성 및 라벨링

Dendritic cells (DCs) are professional antigen presenting cells (APCs) found in peripheral tissues and in immunological organs such as thymus, bone ...

Adenoviral Transduction of Naive CD4 T Cells to Study Treg Differentiation

Regulatory T cells (Tregs) are essential to provide immune tolerance to self as well as to certain foreign antigens. Tregs can be generated from naive CD4 T cells in vitro with TCR- and co-stimulation in the presence of TGF&beta; and IL-2. This bears enormous potential for future therapies, however, the molecules and signaling pathways that control differentiation are largely unknown.
Primary T cells can be manipulated through ectopic gene expression, but common methods fail to target the most important naive state of the T cell prior to primary antigen recognition. Here, we provide a protocol to express ectopic genes in naive CD4 T cells in vitro before inducing Treg differentiation. It applies transduction with the replication-deficient adenovirus and explains its generation and production. The adenovirus can take up large inserts (up to 7 kb) and can be equipped with promoters to achieve high and transient overexpression in T cells. It effectively transduces naive mouse T cells if they express a transgenic Coxsackie adenovirus receptor (CAR). Importantly, after infection the T cells remain naive (CD44low, CD62Lhigh) and resting (CD25-, CD69-) and can be activated and differentiated into Tregs similar to non-infected cells. Thus, this method enables manipulation of CD4 T cell differentiation from its very beginning. It ensures that ectopic gene expression is already in place when early signaling events of the initial TCR stimulation induces cellular changes that eventually lead into Treg differentiation.

Adenoviral gene transfer into naive CD4 T cells with transgenic expression of the Coxsackie adenovirus receptor enables the molecular analysis of regulatory T cell differentiation in vitro.

나이브 CD4의 아데노 바이러스 형질은 Treg의 분화를 연구하는 세포를 T

Regulatory T cells (Tregs) are essential to provide immune tolerance to self as well as to certain foreign antigens. Tregs can be generated from naive CD4 ...

Isolation and Th17 Differentiation of Na&iuml;ve CD4 T Lymphocytes

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets including Th1, Th2, and regulatory T cells. Th17 cells have emerged as a central culprit in overzealous inflammatory immune responses associated with many autoimmune disorders. In this method we purify T lymphocytes from the spleen and lymph nodes of C57BL/6 mice, and stimulate purified CD4+ T cells under control and Th17-inducing environments. The Th17-inducing environment includes stimulation in the presence of anti-CD3 and anti-CD28 antibodies, IL-6, and TGF-&#946;. After incubation for at least 72 hours and for up to five days at 37 &#176;C, cells are subsequently analyzed for the capability to produce IL-17 through flow cytometry, qPCR, and ELISAs. Th17 differentiated CD4+CD25- T cells can be utilized to further elucidate the role that Th17 cells play in the onset and progression of autoimmunity and host defense. Moreover, Th17 differentiation of CD4+CD25- lymphocytes from distinct murine knockout/disease models can contribute to our understanding of cell fate plasticity.

Isolation and Th17 Differentiation of Na&#239;ve CD4 T Lymphocytes

With effector functions distinct from other T cell subsets, Th17 cells have been centrally implicated in inflammatory autoimmunity. This in vitro Th17 differentiation protocol provides a means to determine whether na&#239;ve CD4+ T lymphocytes can differentiate into Th17 cells, and to further examine their role in autoimmunity and host response.

분리 및 나이브 CD4 T 림프구의 TH17 분화

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets ...

Bone Marrow-derived Macrophage Production

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because of their powerful microbicidal activities. Macrophages are widely distributed throughout the body and are present in the lymphoid organs, liver, lungs, gastrointestinal tract, central nervous system, bone, and skin. Because of their repartition, they participate in a wide range of physiological and pathological processes. Macrophages are highly versatile cells that are able to recognize microenvironmental alterations and to maintain tissue homeostasis. Numerous pathogens have evolved mechanisms to use macrophages as Trojan horses to survive, replicate in, and infect both humans and animals and to propagate throughout the body. The recent explosion of interest in evolutionary, genetic, and biochemical aspects of host-pathogen interactions has renewed scientific attention regarding macrophages. Here, we describe a procedure to isolate and cultivate macrophages from murine bone marrow that will provide large numbers of macrophages for studying host-pathogen interactions as well as other processes.

Macrophages have long been recognized as a critical component of the innate and adaptive immune responses. The recent explosion of knowledge pertaining to evolutionary, genetic, and biochemical aspects of the interaction between macrophages and microbes has renewed scientific attention to macrophages. This article describes a method to differentiate macrophages from mouse bone marrow.

뼈 대식 세포 생산에게 골수 유래

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because ...

Assessing the Innate Sensing of HIV-1 Infected CD4+ T Cells by Plasmacytoid Dendritic Cells Using an Ex vivo Co-culture System.

HIV-1 innate sensing requires direct contact of infected CD4+ T cells with plasmacytoid dendritic cells (pDCs). In order to study this process, the protocols described here use freshly isolated human peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) or plasmacytoid dendritic cells (pDCs) to sense infections in either T cell line (MT4) or heterologous primary CD4+ T cells. In order to ensure proper sensing, it is essential that PBMC are isolated immediately after blood collection and that optimal percentage of infected T cells are used. Furthermore, multi-parametric flow cytometric staining can be used to confirm that PBMC samples contain the different cell lineages at physiological ratios. A number of controls can also be included to evaluate viability and functionality of pDCs. These include, the presence of specific surface markers, assessing cellular responses to known agonist of Toll-Like Receptors (TLR) pathways, and confirming a lack of spontaneous type-I interferon (IFN) production. In this system, freshly isolated PBMCs or pDCs are co-cultured with HIV-1 infected cells in 96 well plates for 18-22 hr. Supernatants from these co-cultures are then used to determine the levels of bioactive type-I IFNs by monitoring the activation of the ISGF3 pathway in HEK-Blue IFN-&#945;/&#946; cells. Prior and during co-culture conditions, target cells can be subjected to flow cytometric analysis to determine a number of parameters, including the percentage of infected cells, levels of specific surface markers, and differential killing of infected cells. Although, these protocols were initially developed to follow type-I IFN production, they could potentially be used to study other imuno-modulatory molecules released from pDCs and to gain further insight into the molecular mechanisms governing HIV-1 innate sensing.

Assessing the Innate Sensing of HIV-1 Infected CD4+ T Cells by Plasmacytoid Dendritic Cells Using an Ex vivo Co-culture System.

Unlike cell-free HIV-1 particles, infected CD4+ T cells are effectively sensed by plasmacytoid dendritic cells (pDCs). This manuscript describes a method where peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) or isolated pDCs are co-cultured with HIV-1 infected T cells to evaluate innate sensing by pDCs as assessed by release of type-I IFN.

HIV-1 감염 CD4의 타고난 감지 평가<sup&gt; +</sup&gt;를 사용하여 형질 수지상 세포에 의한 T 세포<em&gt; 예 생체 내</em&gt; 공동 문화 시스템.

HIV-1 innate sensing requires direct contact of infected CD4+ T cells with plasmacytoid dendritic cells (pDCs). In order to study this process, the ...

Isolation and Intravenous Injection of Murine Bone Marrow Derived Monocytes

As a subtype of leukocytes and progenitors of macrophages, monocytes are involved in many important processes of organisms and are often the subject of various fields in biomedical science. The method described below is a simple and effective way to isolate murine monocytes from heterogeneous bone marrow.
Bone marrow from the femur and tibia of Balb/c mice is harvested by flushing with phosphate buffered saline (PBS). Cell suspension is supplemented with macrophage-colony stimulating factor (M-CSF) and cultured on ultra-low attachment surfaces to avoid adhesion-triggered differentiation of monocytes. The properties and differentiation of monocytes are characterized at various intervals. Fluorescence activated cell sorting (FACS), with markers like CD11b, CD115, and F4/80, is used for phenotyping. At the end of cultivation, the suspension consists of 45%&#177; 12% monocytes. By removing adhesive macrophages, the purity can be raised up to 86%&#177; 6%. After the isolation, monocytes can be utilized in various ways, and one of the most effective and common methods for in vivo delivery is intravenous tail vein injection. 
This technique of isolation and application is important for mouse model studies, especially in the fields of inflammation or immunology. Monocytes can also be used therapeutically in mouse disease models.

Here we present a protocol that generates large amounts of murine monocytes from heterogeneous bone marrow for translational applications. In comparison to others, this new method helps reduce the number of sacrificed animals and lowers costs by avoiding expensive methods such as high gradient magnetic cell separation (MACS).

분리 및 설치류 골수의 정맥 주사 유래 단핵구

As a subtype of leukocytes and progenitors of macrophages, monocytes are involved in many important processes of organisms and are often the subject of ...

Mouse Na&#239;ve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets

Antigen inexperienced (na&#239;ve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition of cognate antigen presented on MHC class II. The cytokine signals present in the environment at the time of TCR activation are a major factor in determining the effector fate of a na&#239;ve CD4+ T cell. Although the cytokine environment during na&#239;ve T cell activation may be complex and involve both redundant and opposing signals in vivo, the addition of various cytokine combinations during naive CD4+ T cell activation in vitro can readily promote the establishment of effector T helper lineages with hallmark cytokine and transcription factor expression. Such differentiation experiments are commonly used as a first step for the evaluation of targets believed to promote or inhibit the development of certain CD4+ T helper subsets. The addition of mediators, such as signaling agonists, antagonists, or other cytokines, during the differentiation process can also be used to study the influence of a particular target on T cell differentiation. Here, we describe a basic protocol for the isolation of na&#239;ve T cells from mouse and the subsequent steps necessary for polarizing na&#239;ve cells to various T helper effector lineages in vitro.

Mouse Na&#239;ve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets

Na&#239;ve CD4+ T cells polarize to various subsets depending on the environment at the time of activation. The differentiation of na&#239;ve CD4+ T cells to various effector subsets can be achieved in vitro through the addition of T cell receptor stimuli and specific cytokine signals.

마우스 나이브 CD4<sup&gt; +</sup&gt; T 세포의 분리 및<em&gt; 시험관</em&gt; T 세포 하위 집합으로 차별화

Antigen inexperienced (na&#239;ve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition ...

T Cells Capture Bacteria by Transinfection from Dendritic Cells

Recently, we have shown, contrary to what is described, that CD4+ T cells, the paradigm of adaptive immune cells, capture bacteria from infected dendritic cells (DCs) by a process called transinfection. Here, we describe the analysis of the transinfection process, which occurs during the course of antigen presentation. This process was unveiled by using CD4+ T cells from transgenic OTII mice, which bear a T cell receptor (TCR) specific for a peptide of ovoalbumin (OVAp), which therefore can form stable immune complexes with infected dendritic cells loaded with this specific OVAp. The dynamics of green fluorescent protein (GFP)-expressing bacteria during DC-T cell transmission can be monitored by live-cell imaging and the quantification of bacterial transinfection can be performed by flow cytometry. In addition, transinfection can be quantified by a more sensitive method based in the use of gentamicin, a non-permeable aminoglycoside antibiotic killing extracellular bacteria but not intracellular ones. This classical method has been used previously in microbiology to study the efficiency of bacterial infections. We hereby explain the protocol of the complete process, from the isolation of the primary cells to the quantification of transinfection.

Here a protocol is presented to measure bacterial capture by CD4+ T cells which occurs during antigen presentation via transinfection from pre-infected dendritic cells (DC). We show how to perform the necessary steps: isolation of primary cells, infection of DC, DC/T cell conjugate formation, and measurement of bacterial T cell transfection.

T 세포는 수지상 세포에서 Transinfection에 의해 박테리아를 캡처

Recently, we have shown, contrary to what is described, that CD4+ T cells, the paradigm of adaptive immune cells, capture bacteria from infected dendritic ...

Isolation and Ex Vivo Culture of V&#948;1+CD4+&#947;&#948; T Cells, an Extrathymic &#945;&#946;T-cell Progenitor

The thymus, the primary organ for the generation of &#945;&#946; T cells and backbone of the adaptive immune system in vertebrates, has long been considered as the only source of &#945;&#946;T cells. Yet, thymic involution begins early in life leading to a drastically reduced output of na&#239;ve &#945;&#946;T cells into the periphery. Nevertheless, even centenarians can build immunity against newly acquired pathogens. Recent research suggests extrathymic &#945;&#946;T cell development, however our understanding of pathways that may compensate for thymic loss of function are still rudimental. &#947;&#948; T cells are innate lymphocytes that constitute the main T-cell subset in the tissues. We recently ascribed a so far unappreciated outstanding function to a &#947;&#948; T cell subset by showing that the scarce entity of CD4+ V&#948;1+&#947;&#948; T cells can transdifferentiate into &#945;&#946;T cells in inflammatory conditions. Here, we provide the protocol for the isolation of this progenitor from peripheral blood and its subsequent cultivation. V&#948;1 cells are positively enriched from PBMCs of healthy human donors using magnetic beads, followed by a second step wherein we target the scarce fraction of CD4+ cells with a further magnetic labeling technique. The magnetic force of the second labeling exceeds the one of the first magnetic label, and thus allows the efficient, quantitative and specific positive isolation of the population of interest. We then introduce the technique and culture condition required for cloning and efficiently expanding the cells and for identification of the generated clones by FACS analysis. Thus, we provide a detailed protocol for the purification, culture and ex vivo expansion of CD4+ V&#948;1+&#947;&#948; T cells. This knowledge is prerequisite for studies that relate to this &#945;&#946;T cell progenitor`s biology and for those who aim to identify the molecular triggers that are involved in its transdifferentiation.

Isolation and Ex Vivo Culture of V&#948;1+CD4+&#947;&#948; T Cells, an Extrathymic &#945;&#946;T-cell Progenitor

Here, we provide an optimized protocol for the isolation and cloning of the scarce T-cell entity of peripheral V&#948;1+CD4+ T cells that is, as we showed recently, an extrathymic &#945;&#946; T-cell progenitor. This technique allows to quantitatively isolate, clone and efficiently expand these cells in ex vivo culture.