이 연구는 국립 암 연구소 (Swanson 생명 공학 센터)의 Koch Institute 지원 보조금 번호 P30-CA14051, 국립 환경 보건 과학 연구소의 핵심 센터 보조금 P30-ES002109, Koch Institute의 Marble Center for Cancer Nanomedicine, Kathy and Curt Marble Cancer Research Fund를 통한 Koch Institute Frontier Research Program의 지원을 받았습니다. Virginia and D. K. Ludwig Fund for Cancer Research(암 연구를 위한 버지니아 및 D. K. 루드비히 기금)를 설립했습니다. A.E.V.H.는 NIH가 지원하는 박사전 과정 교육 펠로우십(T32GM130546)의 지원을 받습니다. S.N.B.는 하워드 휴즈 의학 연구소 연구원입니다. L.H.는 미국 국립 암 연구소(National Cancer Institute)의 K99/R00 Pathway to Independence Award와 보스턴 대학교(Boston University)의 스타트업 펀딩을 지원받고 있습니다.

모든 동물 연구는 저자 소속 기관의 IACUC(Institutional Animal Care and Use Committee)의 승인을 받습니다. 이러한 실험을 적절하게 수행하기 위해서는 사육실, 멸균 후드, 마취 및 윤리적 종말점 안락사를 포함한 표준 동물 관리 시설이 필요합니다. 모든 실험은 기관 및 국가 지침에 따라 수행되며 기관의 수의사 직원이 감독합니다. 실험에 사용된 암컷 BALB/c 마우스는 상업적 출처( 재료 표 참조)에서 얻었으며 연구 시작 시 연령이 6주에서 8주 사이였습니다. 맞춤형 합성 DNA, crRNA, FRET 기반 펩타이드 기판 프로브 및 센서 펩타이드의 염기서열은 보충 표 1에 나와 있습니다.
1. 프로테아제 활성화 펩타이드 기질 선택
<ol><li>이전에 발표된 보고서에 따라 종양 결절이 있는 건강한 폐 또는 폐 조직에서 조직 샘플을 수집하고 준비합니다13.<ol><li>조직을 단일 세포 현탁액으로 자동 해리하기 위해 조직 해리 튜브를 사용하여 사전 냉각된 인산염 완충 식염수(PBS, pH 7.4)(200mg tissue/mL PBS)에서 조직을 균질화합니다.</li>
		<li>원심분리기 조직은 6,000 x g 에서 4°C에서 5분 동안 균질화합니다. 상층액을 새 튜브에 보관하십시오.</li>
		<li>상층액을 14,000 x g 에서 4°C에서 25분 동안 원심분리합니다.</li>
		<li>비신코닌산(BCA) 단백질 분석 키트를 사용하여 단백질 농도를 측정합니다( 재료 표 참조).</li>
		<li>샘플에 PBS를 추가하여 0.33mg/mL 용액을 준비합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>아래 단계에 따라 단백질 분해 활성을 평가합니다.<ol><li>384웰 플레이트에서 5μL, 6μM FRET 기반 펩타이드 기판 프로브를 각 웰에 추가합니다. 각 프로브에 대해 반응을 세 번 수행합니다. 참고: FRET 기반 펩타이드 기판 프로브에는 형광단 및 소광체 쌍으로 종결된 짧은 펩타이드 서열(표적 프로테아제 또는 프로테아제 그룹에 특이적으로 설계된 6-8개의 아미노산)이 포함되어 있습니다. 2개의 FRET 프로브가 보충 표 1 에 예로 설명되어 있습니다. 프로브의 전체 라이브러리는 Hao et al.에서 찾을 수 있습니다.13.</li>
		<li>프로브가 플레이트 바닥에 있는지 확인하기 위해 180 x g 의 실온에서 10초 동안 웰 플레이트를 원심분리합니다.</li>
		<li>각 웰에 25μL 0.33mg/mL 조직 샘플 또는 40μM 재조합 프로테아제13 을 추가합니다. 참고: 조직 샘플 또는 재조합 프로테아제의 최종 농도는 고유한 단백질 분해 활성에 따라 최적화해야 할 수 있습니다. 예를 들어, 장과 같은 고도의 단백질 분해 조직은 초기 효소 절단을 모니터링하기 위해 더 높은 희석 인자를 필요로 할 수 있습니다.</li>
		<li>웰 플레이트를 180 x g (실온)에서 잠시 원심분리하여 프로브와 조직 용해물을 혼합합니다.</li>
		<li>플레이트 리더로 37°C에서 1시간 동안 2분마다 형광을 측정하여 절단을 즉시 감지하기 시작합니다(λex: 485nm, λem: 535nm). NOTE: 특정 fluorophore 및 quencher 쌍에 대해 적절한 excitation 및 emission 파장을 사용하십시오. 이 연구의 경우 FAM 형광단에 대한 매개변수(λex: 485nm 및 λem: 535nm)가 설정됩니다.</li>
		<li>형광 측정 데이터를 분석하려면 https://github.com/nharzallah/NNanotech-Kinetic 에서 제공하는 효소 역학 분석을 위한 Python( 재료 표 참조) 패키지를 활용하십시오. 이 스크립트는 처음 8-10개의 초기 시간 지점의 선형 피팅 기울기를 사용하여 초기 반응 속도(V0)를 계산합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 센서 배합 및 특성화
<ol><li>DNA와 프로테아제 활성화 펩타이드(PAP)의 접합체를 합성합니다.<ol><li>20-mer 인산화 DNA 리포터를 3'-DBCO 그룹(1.1 eq., 재료 표 참조)과 함께 C-말단 시스테인 말단이 있는 아지드 종결 PAP를 실온에서 >4시간 동안 100mM 인산염 완충액(pH 7.0)에 배양합니다. 하룻밤 동안 방치할 경우 4 °C에서 배양합니다.</li>
		<li>생체 분자에 이상적인 컬럼이 장착된 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 시스템에서 제품을 정제합니다( 재료 표 참조). HPLC 그래디언트를 5% A 완충액(H2O의 0.05% TFA)에서 시작하도록 설정하고, 20분 동안 등용매를 유지하고, 0.3mL min-1의 유속으로 65분에 80% B 완충액(0.05% TFA, 99.95% 아세토니트릴)에 도달하고, ~31분에 머무름 시간으로 접합체 산물을 수집합니다.</li>
		<li>매트릭스14로 α-시아노-4-하이드록시신남산을 사용하여 매트릭스 보조 레이저 탈착/이온화 비행 시간(MALDI-TOF) 질량 분석법으로 정제된 접합체를 검증합니다( 재료 표 참조).</li>
	</ol></li>
	<li>DNA로 인코딩된 활성 기반 나노센서를 합성합니다.<ol><li>2mg의 다가 PEG(40kDa, 8-arm, 재료 표 참조)를 1mL의 100mM 인산염 완충액(pH 7.0) 및 필터(컷오프: 0.2μm)에 말레이미드 반응성 그룹과 함께 용해시킵니다.</li>
		<li>시스테인 말단 DNA-펩타이드 접합체(2 eq., 재료 표 참조)를 PEG에 첨가하고 실온에서 >4시간 동안 반응시킵니다. 하룻밤 동안 방치할 경우 4 °C에서 배양합니다.</li>
		<li>고속 단백질 액체 크로마토그래피(FPLC)에서 시판되는 덱스트란-아가로스 복합 매트릭스 컬럼과 함께 크기 배제 크로마토그래피를 사용하여 비접합 물질을 제거합니다( 재료 표 참조). PBS에서 시료를 실행하고 DNA의 경우 260nm, 펩타이드의 경우 280nm에서 흡광도를 모니터링합니다.</li>
		<li>합성된 나노센서를 원심 필터 튜브(MWCO = 10kDa)로 제조업체의 권장 속도에 따라 농축합니다( 재료 표 참조).</li>
		<li>λex: 485 nm 및 λem: 535 nm에서 ssDNA 분석 키트(재료 표 참조)와 플레이트 리더를 사용하여 DNA 농도를 정량화합니다. 나노센서를 4°C에서 보관합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>DNA로 인코딩된 활성 기반 나노센서의 특성을 분석합니다.<ol><li>동적 광산란(DLS)으로 DNA로 인코딩된 나노센서의 유체역학적 입자 크기를 측정합니다. 알림: 나노 센서의 예상 크기 범위는 15-50nm이며 평균 크기는 20-30nm입니다. 제한된 크기 범위가 필요한 경우 FPLC(2.3단계)를 사용하여 분자량이 다른 더 좁은 분획을 분리할 수 있습니다.</li>
		<li>원심 필터 튜브(MWCO = 10kDa)를 사용하여 나노센서를 0.5mg/mL(DNA 농도 기준)로 농축하고 극저온 홀더에 장착된 탄소 필름으로 코팅된 구리 그리드에 샘플을 로드합니다. 극저온 투과 전자 현미경(200kV, 배율 10,000-60,000)을 사용하여 형태를 관찰합니다.14.</li>
	</ol></li>
</ol>3. 센서 주입 및 소변 채취
<ol><li>기준선 측정을 위해 소변을 수집합니다.<ol><li>마우스를 베이스로 96웰 플레이트가 있는 맞춤형 하우징 챔버( 보충 그림 1 참조)에 놓습니다.</li>
		<li>마우스를 제지하고 방광에 부드러운 압력을 가하여 접시에 남아 있는 소변을 제거합니다.</li>
		<li>마우스를 일반 하우징으로 교체한 후 96웰 플레이트에서 수집된 소변(~100-200μL)을 1.5mL 튜브에 피펫팅합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>전임상 쥐 종양 모델을 확립합니다.<ol><li>6-8주 된 BALB/c 암컷 마우스에 루시페라아제 발현 MC26-Fluc 세포주(100k 세포/마우스)를 정맥 주사하여 접종합니다( 자료표 참조). in vivo 형광 이미징 시스템을 사용하여 매주 종양 진행을 모니터링합니다. 참고: 발광 신호로 표시되는 가시적 종양 부담은 이 특정 세포주를 주입한 후 대략 2주차에 발생합니다. 종양이 진행되는 동안 종양이 있는 동물을 정기적으로 주의 깊게 확인하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>종양 이식 후 다른 시점에 나노 센서를 주입합니다.<ol><li>멸균 PBS에서 DNA 바코드로 1nmol 농도의 나노 센서를 포함하는 주입 용액(최대 부피 200μL)을 준비합니다.</li>
		<li>PBS의 200μL 센서 용액을 각 실험용 마우스에 정맥 주사합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>1.1-1.3단계에 설명된 대로 센서 주입 후 1시간에 건강한 대조군 및 종양이 있는 마우스에서 소변 샘플을 수집합니다. 참고: 신선한 소변 샘플은 DNA 바코드 분석으로 직접 처리하거나 얼음 위에서 즉시 냉동할 수 있습니다.</li>
</ol>4. DNA 바코드의 CRISPR 검출: 형광 기반
<ol><li>신선한 소변 샘플을 사용하거나 냉동 샘플을 얼음 위에서 해동하십시오. 소변 샘플을 실온에서 800 x g 에서 5분 동안 원심분리합니다.</li>
	<li>보충 표 2의 시약을 결합하고 Cas12a 효소(재료 표 참조)를 마지막으로 첨가하고 피펫팅하여 반응을 위아래로 부드럽게 혼합합니다. 37°C에서 30분 동안 반응을 배양합니다.</li>
	<li>보충 표 3에 나타낸 바와 같이, 2단계의 곱을 이용하여 3회에 걸쳐 리포터 반응을 실행한다. 마지막으로 2단계의 반응을 추가하고 플레이트 리더로 빠르게 가져옵니다.</li>
	<li>3시간 동안 2분마다 37°C에서 플레이트 리더로 형광을 측정하여 LbaCas12a 활성화를 검출합니다(λex: 485nm 및 λem: 535nm).</li>
	<li>형광 측정 데이터를 분석하려면 https://github.com/nharzallah/NNanotech-Kinetic 에서 제공되는 효소 역학 분석을 위한 Python 패키지를 활용하십시오. 이 스크립트는 처음 8-10개의 초기 시간 지점의 선형 피팅 기울기를 사용하여 초기 반응 속도(V0)를 계산합니다.</li>
</ol>5. DNA 바코드의 CRISPR 검출: 종이 기반
<ol><li>소변 샘플을 실온에서 800 x g 에서 5분 동안 원심분리합니다. 참고: 형광 기반 및 종이 기반 CRISPR 검출을 위해 소변 샘플을 병렬로 실행합니다.</li>
	<li>보충 표 2의 시약을 결합합니다. 37°C에서 30분 동안 배양합니다. 참고: 이 배양 단계는 형광 기반 CRISPR 검출의 배양 단계와 동일합니다.</li>
	<li>종이 스트립에서 측면 유동 분석을 위해 FAM-비오틴 표지된 DNA 리포터를 사용하여 리포터 반응을 실행합니다( 재료 표 참조). 보충 표 4 의 시약을 단계 2의 생성물을 사용하여 96웰 플레이트에 결합합니다. 알루미늄 호일로 덮고 37°C에서 1시간 동안 배양합니다. NOTE: 위에서 설명한 형광 기반 CRISPR 검출 분석에서 실시간 kinetics 모니터링에 따라 최적의 배양 시간을 선택합니다.</li>
	<li>96웰 플레이트의 새 웰에 80μL의 PBS를 추가합니다. 3단계에서 채취한 샘플 20μL를 이 웰에 추가합니다.</li>
	<li>각 웰에 하나의 측면 흐름 종이 스트립을 놓고 액체가 스트립 상단에 도달할 때까지 기다립니다(<5분). 대조군 및/또는 s의 모양을 찾으십시오.amp종이 스트립의 밴드.</li>
	<li>측면 유동 스트립의 사진을 찍고 ImageJ를 사용하여 밴드 강도를 정량화합니다.</li>
</ol>

암 진단을 위한 CRISPR-Cas 합성 소변 바이오마커 검사

<ol>
	<li>Soleimany, A. P., Bhatia, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-based+diagnostics:+an+emerging+paradigm+for+disease+detection+and+monitoring.">Activity-based diagnostics: an emerging paradigm for disease detection and monitoring.</a> Trends Mol Med. 26 (5), 450-468 (2020).</li><li>Muir, R. K., Guerra, M., Bogyo, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-based+diagnostics:+recent+advances+in+the+development+of+probes+for+use+with+diverse+detection+modalities.">Activity-based diagnostics: recent advances in the development of probes for use with diverse detection modalities.</a> ACS Chem Biol. 17 (2), 281-291 (2022).</li><li>Heitzer, E., Haque, I. S., Roberts, C. E. S., Speicher, M. 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S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Renal+clearance+of+quantum+dots.">Renal clearance of quantum dots.</a> Nat Biotechnol. 25 (10), 1165-1170 (2007).</li><li>Hao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CRISPR-Cas-amplified+urinary+biomarkers+for+multiplexed+and+portable+cancer+diagnostics.">CRISPR-Cas-amplified urinary biomarkers for multiplexed and portable cancer diagnostics.</a> Nat Nanotechnol. 18 (7), 798-807 (2023).</li><li>Hao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microenvironment-triggered+multimodal+precision+diagnostics.">Microenvironment-triggered multimodal precision diagnostics.</a> Nat Mater. 20 (10), 1440-1448 (2021).</li><li>Ghanta, K. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=5'-Modifications+improve+potency+and+efficacy+of+DNA+donors+for+precision+genome+editing.">5'-Modifications improve potency and efficacy of DNA donors for precision genome editing.</a> Elife. 10, e72216 (2021).</li><li>Bekkevold, C. M., Robertson, K. L., Reinhard, M. K., Battles, A. H., Rowland, N. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dehydration+parameters+and+standards+for+laboratory+mice.">Dehydration parameters and standards for laboratory mice.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 52 (3), 233-239 (2013).</li></ol>

S.N.B., L.H. 및 R.T.Z.는 본 저작물의 내용과 관련된 특허 출원에 발명자로 기재되어 있습니다. S.N.B.는 Glympse Bio, Satellite Bio, Lisata Therapeutics, Port Therapeutics, Intergalactic Therapeutics, Matrisome Bio의 지분을 보유하고 있으며 Vertex의 이사입니다. Moderna에 대한 컨설팅을 제공하고 Johnson & Johnson, Revitope 및 Owlstone으로부터 후원 연구 자금을 받습니다.

여기에 제시된 것은 최소 침습 주입 센서를 사용하여 질병 관련 단백질 분해 활성을 평가하는 휴대용 소변 검사를 통한 다중 암 검출을 위한 고도로 맞춤화된 플랫폼입니다. 종양 프로테아제에 의해 활성화되면 펩타이드 기질 절단은 DNA 바코드 방출 을 통해 소변으로 증폭됩니다. 소변 샘플의 합성 DNA 리포터는 형광 검출 또는 간단한 종이 기반 테스트를 사용하여 2차 CRISPR-Cas 매개 효소 증?...

흘린 단백질 및 DNA와 같은 종양 바이오마커를 식별하기 위한 상당한 노력에도 불구하고, 암 진단 분야는 혈액 순환 시 존재량이 적거나 급격한 저하로 인해 압박을 받고 있다1. 보완 전략으로, 질병 특징에 선택적으로 반응하여 증폭된 신호를 생성하는 생체공학적 합성 바이오마커는 정확하고 접근 가능한 진단을 향한 새로운 길을 제시합니다 2,3. 검출을 돕기 위해 이러한 합성 바이오마커는 효소 증폭과 같은 종양 의존적 활성화 메커니즘을 활용하여 신호 대 잡음비가 개선된 분석물을 생성합니다4. 본원에서, 암 관련 효소인 프로테아제의 한 종류가 혈액 또는 소변과 같은 생체액으로부터 검출 가능한 질병 보고자를 방출하기 위해 주사 가능한 나노스케일 센서를 활성화시키는데 활용된다(5,6). 종양 이질성에 비추어 볼 때, 프로테아제 활성화 센서 패널을 개발하면 다양한 프로테아제 절단 이벤트를 '질병 시그니처'로 결합하여 암 발생률과 진행을 보다 구체적이고 다중화된 방식으로 평가하는 다중 분석물 검사가 가능합니다.
프로테아제-활성화 합성 바이오마커는 불활성 담체(7)의 표면에 접합된 펩티드 기질을 포함하는 것으로 개발되었다. in vivo에 주입될 때, 이 펩타이드는 종양으로 운반되고, 종양 프로테아제에 의한 효소 절단은 검출을 위해 리포터를 혈액 또는 소변으로 방출합니다. 프로테아제 활성화 합성 바이오마커를 사용한 다중 검출은 칵테일 내의 각 합성 바이오마커에 고유한 분자 바코드로 라벨링해야 합니다. 이를 위해 대량 바코드 및 리간드 인코딩 리포터(8,9,10)를 포함한 다양한 접근법이 개발되었다. 몇 가지 다른 신호 가능성으로 제한될 수 있는 이러한 멀티플렉싱 방법과 달리 DNA 바코드는 인간 질병 상태의 높은 복잡성과 이질성에 따라 더 많은 조합을 제공합니다. 합성 바이오마커의 다중성을 확장하기 위해 센서는 생체 유체 신호를 생체 외 증폭하기 위해 CRISPR-Cas 뉴클레아제를 통해 검출할 수 있도록 각 리포터에 고유한 DNA 염기서열을 라벨링하여 바코드를 부착합니다. 이 단일 가닥 DNA(ssDNA) 바코드는 상보적인 CRISPR 가이드 RNA(crRNA)에 결합하여 CRISPR-Cas12a11의 표적 트리거 측부 뉴클레아제 활성을 활성화하도록 설계되었습니다. 이 뉴클레아제 활성은 형광 역학을 통해 또는 종이 스트립을 사용하여 검출된 리포터 DNA 가닥을 절단하는 데 사용할 수 있습니다.
프로테아제(in vivo) 및 CRISPR-Cas(ex vivo)를 통한 분자 증폭 외에도, 프로테아제 활성화 합성 바이오마커의 또 다른 주요 설계 특징은 나노물질 약동학을 활용하여 생체 유체의 진단 신호 농도를 증가시키는 것입니다10. 한 가지 접근법은 나노 입자 담체를 사용하여 표면 복합 펩타이드 기판의 순환 시간을 늘리는 것입니다. 폴리에틸렌 글리콜(PEG) 덴드리머는 종양에 대한 전달을 증가시키기 위해 상대적으로 작은 유체역학적 직경과 다원자가를 가진 나노캐리어로 선택됩니다. 종양 전달을 촉진하기에 충분히 작지만, PEG 담체의 크기는 신장 사구체 여과 장벽의 ~5nm 크기 컷오프보다 커서 절단된 펩티드 기질만이 신장에 의한 크기 여과를 이용하여 소변으로 제거될 수 있다12. 이 프로토콜에서는 전임상 쥐 모델에서 DNA 바코드 활성 기반 나노센서의 합성 및 적용을 위한 다단계 워크플로우가 요약되어 있으며, 여러 암 유형13의 쥐 모델에서 질병 상태를 분류하기 위해 이 그룹이 사용한 CRISPR-Cas 매개 다중 분석 물질 합성 소변 바이오마커 테스트의 설정을 강조합니다. 다재다능한 설계 원리로 인해 나노센서의 세 가지 기능적 구성 요소인 나노캐리어(PEG 폴리머), 자극 반응 모듈(프로테아제 활성화 기질) 및 생체 유체 리포터(DNA 바코드)는 모두 응용 분야별 요구 사항에 따라 정밀하게 교환할 수 있으므로 표적 및 방출 특이성을 맞춤화하여 모듈화가 가능합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>10x NEB Buffer 2.1</td>
			<td>New England Biolabs</td>
			<td>B6002SVIAL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20-mer phosphorothioated DNA reporters with 3&#8217;-DBCO group</td>
			<td>IDT</td>
			<td></td>
			<td>Custom DNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agilent 1100 High Performance Liquid Chromatography system with Vydac 214TP510 C4 column</td>
			<td>&#160;Agilent</td>
			<td></td>
			<td>HPLC</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#196;KTA fast protein liquid chromatography (FPLC)</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td></td>
			<td>FPLC</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amicon ultracentrifuge tubes (MWCO = 10 kDa)</td>
			<td>EMD millipore</td>
			<td></td>
			<td>Various volumes available</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Azide-terminated PAPs with C-terminus cysteine</td>
			<td>CPC Scientific</td>
			<td></td>
			<td>Custom peptide</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>crRNAs&#160;</td>
			<td>IDT</td>
			<td></td>
			<td>See Supplementary Table 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cryogenic transmission electron microscopy</td>
			<td>JEM-2100F</td>
			<td>JEOL</td>
			<td>cyroTEM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cysteine terminated DNA-peptide conjugates</td>
			<td>CPC Scientific</td>
			<td></td>
			<td>Custom peptide</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dynamic light scattering (DLS)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>DLS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EnGen LbaCas12a (Cpf1), 100 &#181;M</td>
			<td>New England Biolabs</td>
			<td>M0653T</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Experimental animals</td>
			<td>Taconic Biosciences</td>
			<td>BALB/cAnNTac</td>
			<td>6&#8211;8&#8201;weeks of age</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>gentleMACS C tubes</td>
			<td>Miltenyi Biotec</td>
			<td>130-093-237</td>
			<td>tissue homogenization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HybriDetect Universal Lateral Flow Assay Kit</td>
			<td>Miltenyi Biotec</td>
			<td>MGHD 1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matrix-assisted laser desorption/ionization&#8211;time of flight (MALDI&#8211;TOF) mass spectrometry&#160;</td>
			<td>Bruker</td>
			<td></td>
			<td>Microflex MALDI&#8211;TOF</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MC26-Fluc cell line</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Kenneth K. Tanabe Laboratory, Massachusetts General Hospital</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>multivalent PEG (40 kDA, 8-arm) with maleimide-reactive group</td>
			<td>JenKem</td>
			<td>A10020-1 / 8ARM(TP)-MAL-40K,1 g</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Python, Version 3.9</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>https://www.python.org/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quant-iT OliGreen ssDNA Assay Kit and Quant-iT OliGreen ssDNA Reagent</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>O11492</td>
			<td>ssDNA assay kit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ssDNA FAM-T10-Quencher and&#160; FAM-T10-Biotin reporter substrates</td>
			<td>IDT</td>
			<td></td>
			<td>Custom DNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Superdex 200 Increase 10/300 GL column</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>GE28-9909-44</td>
			<td>For FPLC</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tecan Infinite Pro M200 plate reader</td>
			<td>Tecan</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ThermoFisher Pierce BCA Protein Assay Kit</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>23225</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

crispr-cas-mediated multianalyte synthetic urine biomarker test for portable diagnostics

정밀 진단 개발을 위한 합성 바이오마커를 개발하면 기존의 생체 유체 측정에 사용되는 것 이상의 경로를 통해 질병을 검출할 수 있습니다. 합성 바이오마커는 일반적으로 질병 발생 및 진행 중 국소 질병 미세환경의 생화학적 변화를 반영하기 위해 생체액에서 읽을 수 있는 신호를 제공하는 리포터를 사용합니다. 리포터의 약동학적 농도와 질병 신호의 생화학적 증폭은 진단 검사에서 높은 민감도와 특이도를 달성하는 데 가장 중요합니다. 여기에서 암 진단 플랫폼은 종양 미세환경에서 비정상적인 단백질 분해 서명에 의해 방출될 수 있는 화학적으로 안정화된 DNA 리포터를 운반하는 활성 기반 나노센서라는 합성 바이오마커의 한 가지 형식을 사용하여 구축됩니다. 질병 리포터로서의 합성 DNA는 바코드로 사용함으로써 멀티플렉싱 기능을 제공하여 한 번에 여러 단백질 분해 서명을 판독할 수 있습니다. 소변으로 방출된 DNA 리포터는 CRISPR RNA와의 교잡을 통해 CRISPR 뉴클레아제를 사용하여 검출되며, 이는 효소 활성화 시 형광 또는 비색 신호를 생성합니다. 이 프로토콜에서는 DNA 바코드, 활성 기반 나노 센서가 구성되고 전이성 결장직장암의 전임상 마우스 모델에서 응용이 예시됩니다. 이 시스템은 질병 생물학에 따라 고도로 수정이 가능하며 여러 질병 신호를 동시에 생성하므로 나노 센서 투여, 소변 수집 및 현장 진단을 가능하게 하는 종이 검사만 필요한 최소 침습 프로세스를 통해 질병 특성을 포괄적으로 이해할 수 있습니다.

Despite the significant effort to identify tumor biomarkers such as shed proteins and DNA, the cancer diagnostic field has been strained by their low abundance or rapid degradation in circulation1. As a complementary strategy, bioengineered synthetic biomarkers that selectively respond to disease features to generate amplified signals represent new avenues towards accurate and accessible diagnostics2,3. To aid detection, these synthetic biomarkers harness tumor-dependent activation mechanisms such as enzymatic amplification to produce analytes with improved signal-to-noise ratio4. Herein, a class of cancer-associated enzymes, proteases, are leveraged to activate injectable nanoscale sensors to release disease reporters detectable from the biofluids such as blood or urine5,6. In light of tumor heterogeneity, developing a panel of protease-activated sensors allows for multianalyte tests that combine different protease cleavage events into a &#39;disease signature&#39; to assess cancer incidence and progression in a more specific, multiplexed manner.
Protease-activated synthetic biomarkers have been developed that comprise peptide substrates conjugated to the surface of an inert carrier7. When injected in vivo, these peptides are carried to the tumor whereupon enzymatic cleavage by tumor proteases release reporters into blood or urine for detection. Multiplexed detection with protease-activated synthetic biomarkers requires each synthetic biomarker within a cocktail to be labeled with a unique molecular barcode. To this end, various approaches have been developed, including mass barcodes and ligand-encoded reporters8,9,10. As opposed to these methods of multiplexing which may be limited to a few different signal possibilities, DNA barcoding affords many more combinations in accordance with the high complexity and heterogeneity of human disease states. To expand the multiplexity of synthetic biomarkers, the sensors are barcoded by labeling each reporter with a unique DNA sequence for detection via CRISPR-Cas nuclease to amplify the biofluidic signal ex vivo. These single-stranded DNA (ssDNA) barcodes are designed to bind to complementary CRISPR guide RNAs (crRNAs), activating the target-triggered collateral nuclease activity of CRISPR-Cas12a11. This nuclease activity can be employed to cleave a reporter DNA strand detected through fluorescence kinetics or using paper strips.
In addition to molecular amplification via proteases (in vivo) and CRISPR-Cas (ex vivo), another key design feature of protease-activated synthetic biomarkers involves harnessing nanomaterial pharmacokinetics to increase diagnostic signal concentration in biofluids10. One approach is the use of a nanoparticle carrier to increase the circulation time of surface-conjugated peptide substrates. A polyethylene glycol (PEG) dendrimer is selected as a nanocarrier with relatively small hydrodynamic diameter and multivalency to increase delivery to tumors. While small enough to promote tumor delivery, the size of the PEG carrier is larger than the ~5 nm size cut-off of the kidney glomerular filtration barrier so that only cleaved peptide substrates can be cleared into the urine, taking advantage of size filtration by the kidneys12. In this protocol, the multiple-step workflow is outlined for the synthesis and application of DNA-barcoded activity-based nanosensors in a preclinical murine model, highlighting the setup of the CRISPR-Cas-mediated, multianalyte synthetic urine biomarker test, which has been employed by this group to classify disease status in murine models of multiple cancer types13. Owing to the versatile design principle, all three functional components of the nanosensor - the nanocarrier (PEG polymer), the stimuli-responsive module (protease-activated substrate), and the biofluidic reporter (DNA barcode) - can be precisely interchanged according to application-specific needs, allowing for modularity by tailoring the target and release specificities.

저자 스포트라이트: Engineering Molecular Tools for Disease Detection and Imaging(질병 검출 및 이미징을 위한 분자 도구 엔지니어링)

휴대용 진단을 위한 CRISPR-Cas 매개 다중분석물 합성 소변 바이오마커 검사

프로테아제 활성화 펩타이드 기질 지명 조직의 단백질 분해 활성의 변화를 반영하는 센서를 설계하기 위해, 조직 내의 프로테아제 활성은 먼저 펩타이드 프로브라이브러리(13 )를 사용하여 특성화됩니다(그림 1). 신선 및 냉동 조직 샘플은 조직 샘플과 기질 절단을 감지하도록 설계된 FRET 프로브를 결합하여 종양 미세환경의 단백질 분해 활성...

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이 프로토콜은 종양 관련 단백질 분해 효소 활성의 생체 외 분석을 통해 현장 암 진단을 가능하게 하는 CRISPR-Cas 매개 다중 분석물 합성 소변 바이오마커 검사에 대해 설명합니다.

Creating synthetic biomarkers for the development of precision diagnostics has enabled detection of disease through pathways beyond those used for ...

Heart Lab은 질병 생물학을 정확하게 추적하고 제어하기 위해 분자 및 세포 도구를 엔지니어링하고 있습니다. 우리는 병든 조직에 대한 특수 정보를 사용하여 이종 질환에 대한 반응형 감지, 이미징 및 치료 도구의 설계를 알립니다. 생체유체는 질병 검출 및 평가를 위한 편리한 기회를 제공하지만, 관련 분석물질의 양이 적기 때문에 제한되는 경우가 많습니다.그 결과, 이 분야의 많은 분야가 BCR 및 공명에 대한 표면 플라즈마와 같은 진단 테스트의 민감도를 개선하기 위해 질병 관련 신호를 증폭하는 전략을 추구하고 있습니다. 순환 중인 내인성 질병 바이오마커에 의존하는 대신, 당사의 접근 방식은 합성 바이오마커를 사용하여 주입된 나노센서에서 방출될 때 질병 활성을 보고합니다. 당사의 합성 바이오마커는 화학적으로 안정화된 DNA 바코드로, 여러 질병 미세환경 신호를 한 번에 감지하고 해당 바코드를 사용하여 식별할 수 있습니다.

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

CRISPR-Cas-mediated Multianalyte Synthetic Urine Biomarker Test for Portable Diagnostics

670 조회수.  Boston University. Heart Lab은 질병 생물학을 정확하게 추적하고 제어하기 위해 분자 및 세포 도구를 엔지니어링하고 있습니다. 우리는 병든 조직에 대한 특수 정보를 사용하여 이종 질환에 대한 반응형 감지, 이미징 및 치료 도구의 설계를 알립니다. 생체유체는 질병 검출 및 평가를 위한 편리한 기회를 제공하지만, 관련 분석물질의 양이 적기 때문에 제한되는 경우가 많습니다.그 결과, 이...

비디오: 저자 스포트라이트: Engineering Molecular Tools for Disease Detection and Imaging(질병 검출 및 이미징을 위한 분자 도구 엔지니어링)

Creating synthetic biomarkers for the development of precision diagnostics has enabled detection of disease through pathways beyond those used for traditional biofluid measurements. Synthetic biomarkers generally make use of reporters that provide readable signals in the biofluid to reflect the biochemical alterations in the local disease microenvironment during disease incidence and progression. The pharmacokinetic concentration of the reporters and biochemical amplification of the disease signal are paramount to achieving high sensitivity and specificity in a diagnostic test. Here, a cancer diagnostic platform is built using one format of synthetic biomarkers: activity-based nanosensors carrying chemically stabilized DNA reporters that can be liberated by aberrant proteolytic signatures in the tumor microenvironment. Synthetic DNA as a disease reporter affords multiplexing capability through its use as a barcode, allowing for the readout of multiple proteolytic signatures at once. DNA reporters released into the urine are detected using CRISPR nucleases via hybridization with CRISPR RNAs, which in turn produce a fluorescent or colorimetric signal upon enzyme activation. In this protocol, DNA-barcoded, activity-based nanosensors are constructed and their application is exemplified in a preclinical mouse model of metastatic colorectal cancer. This system is highly modifiable according to disease biology and generates multiple disease signals simultaneously, affording a comprehensive understanding of the disease characteristics through a minimally invasive process requiring only nanosensor administration, urine collection, and a paper test which enables point-of-care diagnostics.

This protocol describes a CRISPR-Cas-mediated, multianalyte synthetic urine biomarker test that enables point-of-care cancer diagnostics through the ex vivo analysis of tumor-associated protease activities.