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Validação com rendimento elevado de candidatos a biomarcadores múltiplos pode ser realizada por meio de ELISA sequencial de modo a minimizar de congelamento / descongelamento e utilização de amostras de plasma preciosos. Aqui, nós demonstrar como executar sequencialmente ELISAs para seis diferentes biomarcadores de plasma validados 1-3 De enxerto-versus-hospedeiro (GVHD) 4 Na amostra de plasma mesmo.
Proteômica estratégias de descoberta imparciais têm o potencial para identificar um grande número de novos biomarcadores que podem melhorar os testes de diagnóstico e prognóstico em um ambiente clínico e pode ajudar a guiar intervenções terapêuticas. Quando um grande número de proteínas candidatas são identificadas, pode ser difícil validar biomarcadores candidatos em tempo hábil e eficiente a partir de amostras de plasma de pacientes que são orientados a eventos, de volume finito e insubstituível, como no início da aguda do enxerto-versus- doença do hospedeiro (GVHD), uma complicação potencialmente fatal de alogênico de células tronco hematopoiéticas (TCTH).
Aqui descrevemos o processo de execução de testes ELISA comercialmente disponíveis para seis proteínas validados GVHD: IL-2Ra 5, TNFR1 6, HGF 7, IL-8 8, elafin 2, e REG3α 3 (também conhecido como PAP1) de uma forma sequencial para minimizar ciclos de congelamento e descongelamento, Tempo de plasma descongelado e uso de plasma. Para esse procedimento foi realizar os testes ELISA em ordem sequencial, conforme determinado pelo fator de diluição da amostra, conforme estabelecido em nosso laboratório utilizando kits ELISA fabricante e protocolos com pequenos ajustes para facilitar ótimo desempenho ELISA sequencial. As concentrações plasmáticas de biomarcadores resultantes podem então ser compilados e analisados para resultados significativos dentro de um grupo de pacientes. Embora esses biomarcadores são atualmente apenas para pesquisa, sua incorporação cuidados clínicos está sendo investigado em ensaios clínicos.
Esta técnica pode ser aplicada para realizar os testes ELISA para múltiplas proteínas / citocinas de interesse na mesma amostra (s) desde que as amostras não necessitam de ser misturadas com outros reagentes. Se kits ELISA não vêm com pré-revestidas, as placas de 96 cavidades de meia assim chapas ou placas de 384 poços pode ser usado para reduzir ainda mais o uso de amostras / reagentes.
Doença do enxerto-versus-hospedeiro aguda (GVHD), uma das principais causas de mortalidade não-recaída (NRM) após alogénico transplante de células hematopoiéticas (HSCT), mede-se por uma disfunção em três sistemas de órgãos: a pele, fígado e gastrointestinal (GI) trato 4. GVHD aguda geralmente ocorre entre duas e oito semanas após o transplante, mas podem ocorrer mais tarde, e muitas vezes é clinicamente indistinguível da de outros pós-TCTH complicações, tais como a toxicidade regime de condicionamento, infecção ou efeitos colaterais. Através da utilização de estratégias de proteômica e de alto rendimento de validação usando ELISA sequencial, foram identificados seis proteínas cujas concentrações são elevadas no início das manifestações clínicas da DECH. IL-2Ra, TNFR1, HGF e IL-8, quando combinados em um painel 4 biomarcador pode diagnosticar-GVHD no início dos sintomas clínicos e pode prever a sobrevivência pós-transplante, independentemente da gravidade da GVHD 1. Elafin, um biomarcador para GVHD do skem, pode discriminar entre erupção GVHD e erupção de outras causas, como erupções de drogas e pode prever a sobrevida do transplante 2. Nós recentemente identificado REG3α como um biomarcador de DECH do trato gastrointestinal, o órgão alvo mais associado com NRM. A concentração plasmática de REG3α pode identificar com segurança DECH como a causa para o pós-TCTH diarréia e correlacionar com a gravidade histológica da DECH em diagnóstico biópsias intestinais. As concentrações no GI REG3α início GVHD também pode prever a capacidade de resposta a terapia com GVHD e NRM 3. A incorporação desses biomarcadores validados GVHD em atendimento clínico está sendo investigado em ensaios clínicos.
Estas experiências foram realizadas em pequenas alíquotas de plasma colhidas a partir de pacientes que receberam transplante entre 2000 e 2010 no momento do início GVHD que são insubstituíveis e de quantidade limitada. Devido à natureza precioso destas amostras, temos desenvolvido um metgico da medição das concentrações de proteína de plasma em múltiplos de forma eficiente e reprodutível para eliminar o excesso de ciclos de congelamento e descongelamento, o tempo de descongelamento e utilização de plasma. Esta técnica pode ser aplicada para realizar os testes ELISA para múltiplas proteínas / citocinas de interesse na mesma amostra (s) desde que as amostras não necessitam de ser misturadas com outros reagentes. Se kits ELISA não vêm com pré-revestidas, as placas de 96 cavidades de meia assim chapas ou placas de 384 poços pode ser usado para reduzir ainda mais o uso de amostras / reagentes. Este manuscrito incide sobre os aspectos tecnológicos da medição biomarcadores GVHD.
1. Dia experimento 0: Preparação de amostras e ELISA Revestimento placa de teste com anticorpo de captura para a IL-2Ra, e HGF REG3α
2. Dia Experiência 1: IL-2Ra ELISA (Figura 1)
3. Dia Experiência 1: REG3α ELISA (Figura 1)
4. Dia Experimento 1: Elafin e TNFR1 Revestimento placa de teste com anticorpo de captura
5. Experiment Dia 1-2: HGF ELISA (Figura 1)
6. Dia Experimento 2: Elafin ELISA
7. Da experiênciay 2: TNFR1 ELISA
8. Dia Experiência 2: IL-8 ELISA
Uma vez que todos os testes ELISA foram concluídas, sem usod estoque plasma será substituído nas alíquotas descongelados e congelado para utilização futura.
O fluxo de trabalho de biomarcadores e cronograma estão detalhados na Tabela 1 e Tabela 2, respectivamente. Depois de concluído, as concentrações de 6 proteínas diferentes foram agora quantificada na mesma amostra de plasma usando um total de 150 uL de plasma. Plaqueamento das amostras em duplicado por teste permite a garantia de qualidade interna, com CV% de menos de 10 sendo ótima. Se realizar o teste ELISA sequencial em placas múltiplas, consistentes densidades ópticas do padrão elevado são preferidos e permitir a fiabilidade inter-chapa melhorada das medições; curva padrão ODs podem ser comparados entre as placas de olhar para avaliar o desempenho inconsistência em ELISA (Figura 2). Os tempos de desenvolvimento, utilizando o substrato tetrametilbenzidina colorimétrica e alta concentração de ODs observada para cada biomarcador no nosso laboratório estão listados na Tabela 3.
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Figura 1. Fluxo de trabalho para a IL-2Ra, e ELISAs REG3α HGF. Após as amostras de plasma foram semeadas em placas de IL-2Ra placas de ensaio de ELISA que é recuperada para fazer placas de diluição de fonte para os testes ELISA outros. Para o ELISA de HGF, o plasma é recuperado para preparar a placa de diluição de 1:6 de IL-8. clique aqui para maior figura .
Figura 2. Densidades Ópticas para a curva padrão de 7 placas de ELISA que medem diferentes concentrações REG3α correspondentes aos 1.084 pacientes testados para o GI REG3α relatório inicial biomarcador GVHD 3. ODs consistente entre as placas garantir as proteínas consistentes de concentração entre as placas. As concentrações de proteínasem amostras de plasma são calculadas comparando as densidades ópticas de amostras para as densidades ópticas da curva padrão.
Dia experiência 0 | 1. Preparar amostras |
2. IL-2Ra, HGF e REG3α captura Ab | |
Dia experimento 1 | 1. IL-2RαELISA |
2. REG3αELISA | |
3. HGF ELISA (por exemplo revestimento) | |
4. Elafin e TNFR captura Ab | |
Dia experimento 2 | 1. HGF conclusão ELISA |
2. Elafin ELISA | |
3. TNFR1 ELISA | |
4. IL-8 ELISA | |
5. Recongelar não utilizadoplasma |
Tabela 1. GVHD Visão geral de fluxo de trabalho Biomarker
Dia 0 | A preparação da amostra e a incubação durante a noite o corpo de captura | ||||||
ELISA | IL-2Ra | REG3α | HGF | Elafin | TNFR1 | IL-8 | |
Tempo (h) | 0,0 | Bloqueio | |||||
1,0 | Amostras banhados | ||||||
3,0 | Recuperar as amostras de plasma; Detecção Ab | Amostras de bloqueio; preparar (diluição 1:10) | |||||
4,0 | Amostras banhados (1:10) | ||||||
5 | Estreptavidina-HRP | Detecção de Ab | |||||
5,5 | TMB | Estreptavidina-HRP | |||||
6 | Leitura placa | TMB | Bloqueadores; amostras preparar (diluição 1:2) | ||||
6,5 | Leitura placa | ||||||
7 | Amostras banhados (1:2) | Capturar Ab (incubação durante a noite) | Capturar Ab (incubação durante a noite) | ||||
Dia 2 | |||||||
Tempo (h) | 0,0 | Reclaim plasma, Detecção de Ab | Bloqueio; amostras de preparar (1:20) | ||||
1,0 | Chapeamento amostra (1:2) | Bloqueio; nova diluição de 1:20 para a diluição de amostras 01:25 | |||||
2,0 | HRP | Chapeamento amostra (1:25) | |||||
2,5 | TMB | ||||||
3,0 | Leitura placa | Detecção de Ab | |||||
3,5 | Preparar as amostras (1:6 diluição) | ||||||
4,0 | Detecção de Ab | Chapeamento de amostra (1:6) | |||||
5 | HRP | ||||||
5,5 | TMB | ||||||
6 | Leitura placa | HRP | Detecção de Ab | ||||
TMB | |||||||
7 | Leitura placa | TMB | |||||
7,5 | Leitura da placa | ||||||
Após a conclusão | Substituir fonte de plasma em alíquotas e congelar para uso posterior |
Tabela 2. Cronograma para a realização de testes ELISA.
Factor de diluição do plasma | Concentração Alto Padrão | Tempo substrato Desenvolvimento (min) | Alta OD | Curva | |
IL-2Ra | 01:01 | 2000 pg / ml | 5 | 1 | Linear |
HGF | 01:02 | 4000 pg / ml | 22 | 2,1 | 4 parâmetros |
IL-8 | 01:06 | 200 pg / ml | 12 | 2,7 | 4 parâmetros |
REG3α | 01:10 | 100 ng / ml | 12 | 1,7 | 4 parâmetros |
Elafin | 01:20 | 2000 pg / ml | 20 | 1,9 | 4 parâmetros |
TNFR1 | 01:25 | 800 pg / ml | 8 | 2,7 | Linear |
Detalhes Tabela 3. ELISA para 6 Biomarkers GVHD.
O método ELISA sequencial aqui apresentada permite a medição de várias proteínas do plasma em pequenos volumes de plasma que podem ser difíceis de obter e / ou insubstituível tais como amostras de indivíduos humanos com doenças raras ou de amostras de plasma obtidas a partir de ratinhos 9,10. Os ELISAs sequenciais são tipicamente realizadas na ordem do factor de diluição de plasma crescente, com testes ELISA requerem plasma diluído ≥ 1:10, normalmente, não necessitam de ser recuperado, embora isso possa ser feito se desejado. A capacidade de realizar ELISA sequencial é limitada por kits ELISA / protocolos em que o plasma é misturada com os restantes reagentes, ou para os quais tampões de diluição diferentes são requeridas para o plasma, o que se opõe à ablility de reutilizar uma amostra devido a preocupações de que um incompatíveis tampão / reagente irá interferir com o desempenho de um teste particular. Com um planeamento cuidado, de 10 ou mais ELISAs pode ser efectuado com a mesma amostra de plasma.
ent "> Laboratórios individuais podem precisar de ajustar diluições de plasma, a fim de obter resultados interpretáveis baseadas em concentrações plasmáticas esperados da proteína de interesse em amostras dos sujeitos de teste. Diferenças no equipamento de laboratório pode resultar na necessidade de optimizar a incubação e desenvolvimento colorimétrico vezes, o número de lavagens e / ou lavar tempos de imersão, de modo a optimizar qualquer dado ELISA.Para aumentar a taxa de transferência de alta capacidade e precisão e para realizar análises de forma rentável, a utilização de uma plataforma de manuseamento robotizado líquido capaz de análise em 384 placas de poços e um lavador de placas automático com a unidade de empilhamento são recomendados. Este equipamento pode aumentar a precisão e precisão das análises realizadas por vários usuários, e ajudar a fornecer consistência de análise para reduzir variação inter e intra-ensaio.
Usamos ELISA sequencial em plataformas multiplex disponíveis por dois motivos: 1) A maior parte dapares de anticorpos para novas proteínas não podem ser facilmente conjugados com pérolas ou outro material, bem como demorada e cara, 2) ensaios de ELISA individuais são mais precisos do que microarray multiplex ou grânulos, secundária a uma ausência de reactividade cruzada 11. Se um método de confiança é estabelecida para executar multiplexados, grânulo com base em microarrays, pode ser capaz de substituir o processo de ELISA sequencial, mas pode ser limitada pela capacidade para conjugar os anticorpos de grânulos e / ou pelo número de proteínas desejadas de ser analisados.
Não há conflitos de interesse declarados.
Suportado pelo NIH RC1-HL-101102, P01-CA039542, T32-HL007622, a Fundação Hartwell, e Doris Duke Charitable Foundation. Dr. Paczesny é um investigador do Hartwell Eric fundo ea Amy Strelzer Programa de Pesquisa Manasevit.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Nome do reagente | Companhia | Número de catálogo | Comentários |
Human IL-2 R alfa DuoSet | R & D Systems | DY223 | |
HGF humano DuoSet | R & D Systems | DY294 | |
IL-8 humana OptEIA KIT II | Becton Dickinson | 550999 | |
Ab-Match ASSEMBLEIA Humanos PAP1 (REG3α) Kit | MBL International | 5323 | |
Ab-Match UNIVERSAL Kit | MBL International | 5310 | |
Humana sTNFRI/TNFRSF1A DuoSet | R & D Systems | DY225 | |
Humana Trappin-2/Elafin DuoSet | R & D Syderiva | DY1747 | |
De 96 cavidades de polistireno de fundo cónico placas | Thermo Scientific | 249570 | Usado para placas de fonte de plasma |
Costar meio bem alta de ligação de 96 poços | Corning | 3690 | Para a IL-2Ra, HGF, TNFR1 e ELISAs elafin |
Nunc 384 poços Maxisorp | Nunc | 464718 | Para REG3α Elisa |
HyClone Tampão fosfato salino, 1x | Thermo Scientific | SH30256.02 | |
Albumina de Soro Bovino, Fracção V, choque térmico Tratada | Fisher Scientific | BP1600-100 | |
Bloqueador de BLOTTO em TBS | Thermo Scientific | 37530 | Agente de bloqueio de IL-2Ra e HGF ELISAs TNFR1 |
DulbeccoSalina tamponada com fosfato | Gibco | 21600-069 | O tampão de lavagem para a IL-2Ra, HGF, Elafin e ELISAs TNFR1 |
Susbtrate Peróxido de TMB | Kirkegaard and Perry Laboratories | 50-76-00 | |
Tween 20 | Acros Organics | 233362500 | O tampão de lavagem para a IL-2Ra, HGF, Elafin e ELISAs TNFR1 |
Ácido sulfúrico | Sigma-Aldrich | 84720 | (Diluída a 2N) para solução de parada |
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