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Resumo

Neste protocolo, descreveremos a síntese de vagens, phenyoxadiazolyl metil sulfona-baseado reagente para a ligação local-seletivo de cargas para os tióis de biomoléculas, especialmente de anticorpos. Além disso, descreveremos a síntese e caracterização de um quelante bifuncional PODS-rolamento e sua conjugação com um anticorpo de modelo.

Resumo

Maleimide-rolamento bifuncionais sondas têm sido empregadas há décadas para a modificação de local-seletiva de tióis em biomoléculas, especialmente de anticorpos. Ainda conjugados com base em maleimide exibem limitada estabilidade in vivo, porque a ligação Tioéter de grufo pode sofrer uma reação retrô-Michael. Isso, claro, pode levar à liberação de carga radioativa ou sua troca com biomoléculas thiol-rolamento em circulação. Ambos estes processos podem produzir concentrações elevadas de atividade em órgãos saudáveis bem como diminuíram a concentrações de actividade em tecidos-alvo, resultando em menor contraste de imagem e inferiores relações terapêuticas. Em 2018, informamos a criação de um modular, estável e facilmente acessível phenyloxadiazolyl metil sulfona reagente — apelidado de 'PODS' — como uma plataforma para bioconjugations tiol-baseado. Temos claramente demonstrado que bioconjugations local-seletiva baseada em vagens reproducibly e robustamente criar radioimmunoconjugates homogênea, bem definidas, altamente immunoreactive e altamente estável. Além disso, experimentos pré-clínicos em modelos murino de câncer colorretal demonstraram que estes site-seletivamente rotulado radioimmunoconjugates exposição muito superior desempenho in vivo em comparação com radiolabeled anticorpos sintetizados através de baseada em maleimide conjugações. Neste protocolo, descreveremos a síntese de quatro etapas de vagens, a criação de uma variante de vagens-rolamento bifuncional do quelante onipresente DOTA (PODS-DOTA) e a conjugação de vagens-DOTA para o direcionamento de HER2-anticorpo Trastuzumabe.

Introdução

Radiofarmacêuticos químicos têm explorado a seletividade e especificidade dos anticorpos para biomarcadores da doença para ambos imagem nuclear e direcionados a radioterapia1. Abordagem de longe o mais comum para o radioativos de anticorpos baseia-se a penhora indiscriminada de radiolabeled grupos prostético ou radiometal quelantes de aminoácidos — mais frequentemente lisinas — dentro da estrutura da imunoglobulina ( Figura 1A)2. Enquanto esta estratégia é certamente eficaz, sua natureza aleatória, não-local-específica pode criar problemas. Especificamente, bioconjugation tradicionais abordagens produzem mal definidos e immunoconjugates heterogêneo composto por misturas de milhares de regioisomers diferentes, cada um com seu próprio conjunto de propriedades biológicas e farmacológicas3. Além disso, bioconjugation aleatório pode impedir a imunorreatividade dos anticorpos se a carga é acrescentada aos domínios de antígeno-ligando a imunoglobulina.

Ao longo dos anos, uma variedade de estratégias de bioconjugation site-specific e local-seletiva foram desenvolvidos a fim de abordar estes problemas4,5. A mais comum dessas abordagens depende a ligadura de sondas de maleimide-rolamento aos grupos sulfidrila das cisteínas (figura 1B). Anticorpos IgG1 contêm naturalmente 4 pontes de dissulfeto inter cadeia, vínculos que podem ser seletivamente reduzidos para render capaz de sofrer reações de adição de Michael com maleimides para formar grufo Tioéter ligações grátis tióis. O uso de tióis e maleimides é, certamente, uma melhoria em relação a métodos tradicionais e uma grande variedade de synthons de maleimide-rolamento e quelantes bifuncionais estão atualmente disponíveis. No entanto, é importante notar que esta metodologia tem sérias limitações também. Immunoconjugates baseada em maleimide apresentam estabilidade limitada em vivo, pois a ligação Tioéter pode sofrer uma reação retrô-Michael (Figura 2),6,7,8,9, 10. isto, claro, pode levar à liberação de carga radioativa ou sua troca com biomoléculas thiol-rolamento em circulação (por exemplo, glutationa ou albumina). Ambos estes processos podem aumentar as concentrações de atividade em órgãos saudáveis bem como diminuir as concentrações de actividade em tecidos-alvo, resultando em menor contraste de imagem e inferiores relações terapêuticas. Vários reagentes thiol-reactivos alternativos foram desenvolvidos na tentativa de contornar esses problemas, incluindo tosylates, bromo e iodo-acetyls e vinil sulfonas11,12,13, 14 , 15 , 16 , 17. no entanto, todas essas abordagens têm limitações que têm dificultado a sua aplicação generalizada.

Há cinco anos, o laboratório do falecido Carlos Barbas III no Scripps Research Institute foi pioneira no uso de sulfonas de metil phenyloxadiazolyl como reagentes para a formação seletiva de ligações altamente estáveis com tióis (Figura 1 e Figura 3) 18 , 19. os autores empregou uma variante de sulfona-rolamento de metil phenyloxadiazolyl de fluoresceína para modificar diversos anticorpos projetados para conter resíduos de cisteína livre, em última análise, produzindo immunoconjugates com maior estabilidade do que o análogo construções criadas usando sondas baseadas em maleimide. Ao ver este trabalho promissor, ficamos um pouco surpresos que esta tecnologia só tinha sido usada raramente em radioquímica e não tinha ainda sido usada em tudo na síntese de quelantes bifuncionais ou radioimmunoconjugates20,21 . Esta escassez de aplicativos, no entanto, logo começou a fazer mais sentido: várias tentativas de adquirir o reagente da Sigma-Aldrich resultaram no recebimento de misturas complexas de produtos de degradação com < 15% do composto desejado. Além disso, sintetizar o reagente relatado nos não era uma opção realista também, como a rota sintética publicada é um pouco complicada e requer equipamento sofisticado de química orgânica que mais radioquímica e imagem molecular laboratórios — incluindo a nossa — simplesmente não possuem.

Em resposta a esses obstáculos, nos propusemos a criar uma facilmente acessível e altamente estável phenyloxadiazolyl reagente de sulfona de metila que pode ser obtido através de uma rota sintética robusta e razoavelmente fáceis. No início deste ano, informamos a criação de um modular, estável e facilmente acessível phenyloxadiazolyl metil sulfona reagente — apelidado de 'PODS' — como uma plataforma para bioconjugations tiol-baseado (Figura 1 e Figura 3)22. A principal diferença entre cápsulas e o reagente relatado por Barbas, et al é que o antigo emprega um anel da anilina anexado para o agrupamento de sulfona de metil phenyloxadiazolyl, enquanto este último dispõe de um fenol na mesma posição (Figura 4). Essa mudança facilita uma rota sintética mais simples e acessível, bem como — se nossa experiência com o composto comercialmente disponível é emblemática — um reagente final mais estável. Neste trabalho, nós também sintetizado um par de vagens-rolamento bifuncionais quelantes — PODS-DFO e vagens-CHX-A '-DTPA — para facilitar a criação de 89Zr - e 177Lu-rotulados radioimmunoconjugates, respectivamente. Como vamos discutir, temos demonstrado que bioconjugations local-seletiva baseada em vagens reproducibly e robustamente criar radioimmunoconjugates homogênea, bem definidas, altamente immunoreactive e altamente estável. Além disso, experimentos pré-clínicos em modelos murino de câncer colorretal demonstraram que estes site-seletivamente rotulado radioimmunoconjugates exposição superior desempenho in vivo comparado ao radiolabeled anticorpos sintetizados através de baseado em maleimide conjugações.

O over-arching objetivo deste trabalho é facilitar a criação de immunoconjugates bem definidas, homogêneas, altamente estável e altamente immunoreactive para aplicações in vitro e in vivo. A abordagem sintética é bastante simples de ser realizada em quase qualquer laboratório, e o reagente de vagens do pai pode ser modificado com uma infinidade de diferentes quelantes, fluorophores ou cargas. No presente protocolo e o vídeo que acompanha, descreveremos a síntese simples, quatro etapas de vagens (Figura 5); a criação de uma variante de vagens-rolamento do DOTA, um quelante amplamente utilizado para a coordenação de 64Cu, 68Ga, 111, em 177Lu e 225Ac (Figura 6); e o bioconjugation de vagens-DOTA de um anticorpo de modelo, o Trastuzumabe HER2-direcionamento IgG1 (Figura 7).

Protocolo

1. a síntese de 4-[5-(methylthio)-1,3,4-oxadiazol-2-yl]-aniline (1)

Nota: Devido à luz-sensibilidade do composto, mantenha todas as reacções em vasos de folha-cobertas.

  1. Em um 10 mL redondo balão de fundo, dissolver 100 mg (0.517 mmol, 1 equivalente) de 5-(4-aminophenyl)-1,3,4-oxadiazole-2-thiol em 3 mL de metanol.
  2. Para esta solução, adicionar 360 μL de diisopropylethylamine (DIPEA; 2,07 mmol; 4 equivalentes; anidro) e uma barra de agitação magnética pequena. Cubra o frasco com uma rolha de borracha e agitar a solução durante 10 minutos à temperatura ambiente.
  3. Utilizando uma seringa de vidro de 1 mL, picar um buraco através da rolha de borracha e rapidamente adicionar 32 μL (0.517 mmol, 1 equivalente) de Iodometano para esta mistura. Permita que a mistura se reagir durante 45 minutos à temperatura ambiente.
    Nota: Devido os potenciais efeitos nocivos de Iodometano, esta reação deve ser feita em uma coifa de química.
  4. Definir o banho de água de um evaporador rotativo para 40 ° C e reduzir lentamente a pressão para remover o solvente para pagar um sólido branco.
  5. Dissolver o sólido em 3 mL de acetato de etilo e lave pelo menos três vezes com um 5 mL de solução de carbonato de sódio 0,1 M, usando um funil de separação.
    Nota: Levar periodicamente local-testes da fase aquosa sob uma lâmpada UV; uma vez que nada é visto sob a lâmpada, você pode parar as lavagens.
  6. Recolher a fase orgânica em um funil de separação e lave-o com água até que o pH da fase aquosa atinge 6,8-7,0 (usando papel de pH).
  7. Recolher a fase orgânica e adicionar sulfato de magnésio para eliminar quaisquer vestígios de água.
    Nota: O sulfato de magnésio deve ser adicionado com uma espátula pequena, após o qual a solução deve ser rodada. Se as partículas finas do agente de secagem ainda são vistas, a solução é seca. Se não, adicione pequenas quantidades de sulfato de magnésio até partículas finas podem ser vistas.
  8. Filtre a mistura usando um fritas de vidro médio ou papel de filtro.
  9. Evapore os voláteis usando um evaporador rotativo, um processo que deveria produzir o produto desejado como agulhas brancas.

2. a síntese de tert-butyl[18-({4-[5-(methylthio)-1,3,4-oxadiazol-2-yl]phenyl}amino)-15,18-dioxo-4,7,10-trioxa-14-azaoctadecyl] carbamato (2)

Nota: Devido à luz-sensibilidade do composto, mantenha todas as reacções em vasos de folha-cobertas.

  1. Em 25 mL de uma rodada de balão, dissolver 387 mg (0,92 mmol, 1,0 equivalente), de NBoc-n-Succinil-4,7,10-trioxa-1,13-tridecanediamine, em 10 mL de diclorometano.
  2. Para esta solução, adicionar 480 μL (2.76 mmol, 3 equivalentes) de DIPEA, 264 mg (1.38 mmol; 1,5 equivalentes) de N-etil - n-[3-(dimetilamino) propil] carbodiimida cloridrato (EDCI) e 200 mg (0,97 mmol, 1,1 equivalentes) de 1. Selar o recipiente com uma tampa de vidro e deixe-a reação mexa por 5 dias à temperatura ambiente.
    Nota: Esteja atento a evaporação de diclorometano. Se necessário, adicione mais durante toda a semana.
  3. Lave a mistura em um funil de separação com uma solução de ácido clorídrico de 1 M (3 x 5 mL).
  4. Recolher a fase orgânica e continuar a lavá-la em um funil de separação, primeiro com uma solução de 1 M Na2CO3 (2 x 5 mL) e, em seguida, com água (3 x 5 mL).
  5. Recolher a fase orgânica e adicionar sulfato de magnésio para eliminar quaisquer vestígios de água (ver passo 1.7). Filtre a mistura usando um fritas de vidro médio ou papel de filtro.
  6. Usando um evaporador rotativo, remova os solventes voláteis sob pressão reduzida para pagar um sólido esbranquiçado.
  7. Dissolver novamente este sólido em 10 mL de acetato de etilo e precipitar o produto através da adição de gradual (por exemplo, 2 mL de cada vez) de 30 mL de ciclo-hexano.
  8. Filtre a solução com papel de filtro ou uma fritas de vidro médio para obter o produto como um pó branco.

3. a síntese de tert-butyl[18-({4-[5-(methylsulfonyl)-1,3,4-oxadiazol-2-yl]phenyl}amino)-15,18-dioxo-4,7,10-trioxa-14-azaoctadecyl] carbamato (3)

Nota: Devido à luz-sensibilidade do composto, mantenha todas as reacções em vasos de folha-cobertas.

  1. Em um balão de fundo redondo de 10 mL, dissolva 30 mg (0,05 mmol; 1 equivalente) de 2 em 4 mL de diclorometano.
  2. Lentamente adicione 49 mg (0,2 mmol; 4 equivalentes) do ácido m-chloroperbenzoic de 70% a esta mistura e cobrir o recipiente de reação com uma rolha de vidro. Agite a solução durante a noite à temperatura ambiente, em última análise, produzindo uma mistura de amarela.
  3. Lave a mistura de amarela em um funil de separação, primeiro com uma solução 0,1 M de NaOH (3 x 5 mL) e, em seguida, com água (3 x 5 mL).
  4. Seque a fase orgânica com sulfato de magnésio e filtrar a mistura usando um fritas de vidro médio ou papel de filtro.
  5. Usando um evaporador rotativo, remova os solventes sob pressão reduzida para obter o produto como um pálido sólido.

4. síntese de N1-(3-{2-[2-(3-aminopropoxy)ethoxy]-ethoxy}propyl)-N4- succinamide {4-[5-(methylsulfonyl)-1,3,4-oxadiazol-2-yl] fenil} (PODS)

  1. Em 25 mL de uma rodada de balão, dissolver 30 mg de 3 em 2,0 mL de diclorometano.
  2. Adicionar 400 μL de ácido trifluoroacético e selar o balão com uma rolha de vidro.
  3. Agite a mistura de reação em temperatura ambiente por 3 horas.
  4. Usando um evaporador rotativo, remova os compostos voláteis sob pressão reduzida à temperatura ambiente, deixando um resíduo oleoso.
  5. Dissolver o resíduo oleoso em 7 mL de água e, usando um funil de separação, lavar com acetato de etila (3 x 4 mL). Mantenha a camada aquosa.
  6. Lyophilize a camada aquosa para pagar vagens como um pó branco.
    Nota: Os coeficientes de absorção molar para sachês em 298 e 280 nm são 9.900 e 12.400 cm-1M-1, respectivamente.

5. a síntese de vagens-DOTA

  1. Em um tubo de microcentrifugadora de 1,5 mL, dissolver em 300 μL de dimetil sulfóxido (0,018 mmol; 1 equivalente) de 10 mg de vagens e adicionar 26 μL de N, N-diisopropylethylamine (0,15 mmol; 8 equivalentes).
  2. Dissolver 15,2 mg de DOTA-Bn-NCS (0,02 mmol; 1,2 equivalentes) em 100 μL de Dimetilsulfóxido e combinar esta solução com a solução da etapa 5.1. Feche o tubo de microcentrifugadora.
  3. Permitir que a reação a incubar durante uma noite em temperatura ambiente.
  4. Purifica o produto usando reverso-fase C18 HPLC cromatografia para remover qualquer DOTA-Bn-NCS não tenha reagido.
    Nota: Tempos de retenção são obviamente altamente dependentes do equipamento de HPLC de cada laboratório (bombas, colunas, tubos, etc.), e controles apropriados devem ser executados antes da purificação. No entanto, apresentar um exemplo, se um gradiente de 5:95 MeCN/H2O (ambos com 0,1% TFA) para 70:30 MeCN/H2O (ambos com 0,1% TFA) são utilizados mais de 30 min, uma coluna de18 semipreparativa 19 x 250 mm C e uma vazão de 6 mL/min , Vagens, p-SCN-Bn-DOTA e DOTA-vagens terão tempos de retenção de 14,4, 18,8 e 19,6 min, respectivamente. Todos os três compostos podem ser monitorados em 254 nm.

6. o bioconjugation de vagens-DOTA de Trastuzumabe

Nota: Para esta etapa, iniciamos com uma solução stock de 16,4 mg/mL de trastuzumab.

  1. Em um tubo de microcentrifugadora baixa proteína ligação 1,5 mL, dilua 61 μL da solução estoque de trastuzumab (1mg; 6,67 nmol, 1 equivalente) com 859 μL de tampão fosfato solução salina (pH 7,4).
  2. A esta mistura, adicione 6.7 μL de 10mm recém-feitos solução do TCEP em H2O (66,7 nmol, 10 equivalentes).
  3. Preparar uma solução de 1 mg/mL de vagens-DOTA em DMSO e adicionar 73 μL desta solução de vagens-DOTA a mistura de reacção (66.67 nmol, 10 equivalentes).
  4. Selar o microcentrifuga tubo e incubar a solução por 2 horas a temperatura ambiente.
  5. Depois de 2 horas, purifica o immunoconjugate usando uma coluna do desalting exclusão de tamanho descartáveis pré-embalados.
    1. Primeiro, equilibrar a coluna de exclusão de tamanho, conforme descrito pelo fornecedor para remover quaisquer conservantes presentes na coluna durante o armazenamento. Um procedimento típico envolve a coluna 5 vezes com um volume de PBS que corresponde ao volume da coluna de lavagem: 5 x 2,5 mL de PBS.
    2. Em seguida, adicione a mistura de reação à coluna de exclusão de tamanho, observando o volume da mistura de reação.
    3. Após a mistura de reação entrou a coluna, adicionar uma quantidade adequada de PBS para trazer o volume total da solução adicionado à coluna de 2,5 mL. Por exemplo, se a reação de conjugação resultou em um volume total de 1,3 mL, 1,2 mL de PBS adicional precisa ser adicionado à coluna.
    4. Finalmente, recolha o produto usando 2 mL de PBS como eluente.
  6. Concentre-se no final immunoconjugate com unidades de filtragem centrífuga com um corte de peso molecular 50 kDa.

Resultados

As quatro primeiras etapas deste protocolo — a síntese de vagens — ter sido projetado para ser robusto e confiável. A deprotonação e substituição de 5-(4-aminophenyl)-1,3,4-oxadiazole-2-thiol para formar o produto desejado Tioéter proporciona o Tioéter em > 99% de rendimento após apenas 45 minutos. Em seguida, a ligadura entre 1 e N-Boc-N'-succinyl-4,7,10-trioxa-1,13-tridecanediamine foi conseguida através de um peptídeo padrão procedimento de acoplamento,...

Discussão

Neste relatório, decidimos não incluir quaisquer protocolos para experimentação radioativos ou in vivo. Nossos motivos são simples. No que diz respeito ao primeiro, o radioativos de uma immunoconjugate baseada em vagens não difere em tudo isso de um immunoconjugate sintetizado usando outras estratégias bioconjugation, e esses procedimentos têm sido exaustivamente analisado em outro lugar2 . No que diz respeito a último, as especificidades de pré-clínicos experimentos in vivo (i.e., mode...

Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Os autores agradecer Dr. Sai Kiran Sharma conversas úteis.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
5-(4-aminophenyl)-1,3,4-oxadiazole-2-thiolSigma-Aldrich675024
1.5 mL LoBind Microcentrifugal TubeEppendorf925000090
1.5 mL Microcentrifugal TubeFisherbrand05-408-129
AcetonitrileFisher ScientificA998-4
Amicon Ultra-2 Centrifugal Filter UnitEMD MilliporeEN300000141G
CyclohexaneFisher ScientificC556-4
DichloromethaneFisher ScientificAC383780010
DiisopropylethylamineMP Biomedicals, LLC150915
DimethylsulfoxideFisher Scientific31-727-5100ML
Ethyl AcetateFisher ScientificE145 4
Hydrochloric AcidFisher ScientificA144-500
IodomethaneSigma-Aldrich289566-100G
Magnesium SulfateAcros Organics413485000
m-chloroperbenzoic acidSigma-Aldrich273031
MethanolFisher ScientificA412 1
NBoc-N′-succinyl-4,7,10-trioxa-1,13-tridecanediamineSigma-Aldrich671401Store at -80 °C
N-ethyl-N′- [3- (dimethylamino)propyl] carbodiimide hydrochlorideSigma-Aldrich3450
Phosphate Buffered SalineSigma-AldrichP549310× Concentration
p-SCN-Bn-DOTAMacrocyclicsB-205Store at -80 °C
Sephadex G-25 in PD-10 Desalting ColumnsGE Healthcare17085101
Sodium CarbonateSigma-AldrichS7795
Sodium HydroxideFisher ScientificS318-1
TCEPThermoFischer Scientific20490
TriethylamineFisher ScientificAC157911000
Trifluoroacetic AcidFisher ScientificA116-50

Referências

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