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Este protocolo introduz um método para desenvolver um andaime usando rins descelularizados. O protocolo inclui processos de descelularização e recelularização para confirmar a biodisponibilidade. A descelularização é realizada utilizando-se triton X-100 e sulfato de dodecyl de sódio.
Engenharia de tecidos é uma disciplina de ponta na biomedicina. Técnicas de cultura celular podem ser aplicadas para a regeneração de tecidos e órgãos funcionais para substituir órgãos doentes ou danificados. Andaimes são necessários para facilitar a geração de órgãos ou tecidos tridimensionais usando células-tronco diferenciadas in vivo. Neste relatório, descrevemos um novo método para o desenvolvimento de andaimes vascularizados usando rins descelularizados. Os ratos Sprague-Dawley de oito semanas de idade foram usados neste estudo, e a heparina foi injetada no coração para facilitar o fluxo para os vasos renais, permitindo que a heparina perfunde para os vasos renais. A cavidade abdominal foi aberta, e o rim esquerdo foi coletado. Os rins coletados foram perfundidos por 9h usando detergentes, como Tritão X-100 e sulfato de dodecyl de sódio, para descelularizar o tecido. Os andaimes renais descelularizados foram então lavados suavemente com penicilina/estreptomicina de 1% e heparina para remover detritos celulares e resíduos químicos. Espera-se que o transplante de células-tronco com os andaimes vasculares descelularizados facilite a geração de novos órgãos. Assim, os andaimes vascularizados podem fornecer uma base para a engenharia tecidual dos enxertos de órgãos no futuro.
Técnicas de cultura celular são aplicadas para a regeneração de tecidos e órgãos funcionais para substituir órgãos doentes ou danificados. O transplante de órgãos aogênicos é atualmente o tratamento mais comum para danos irreversíveis aos órgãos; no entanto, essa abordagem requer o uso de imunossupressão para evitar a rejeição do órgão transplantado. Além disso, apesar dos avanços na imunologia do transplante, 20% dos transplantados podem sofrer rejeição aguda dentro de 5 anos, e dentro de 10 anos após o transplante, 40% dos receptores podem perder o enxerto transplantado ou morrer1.
Os avanços nas tecnologias de eng....
Este estudo foi aprovado pela administração da Universidade Nacional de Medicina de Pusan e foi conduzido de acordo com diretrizes éticas para o uso e cuidado dos animais. (certificado nº 2017-119). Antes de qualquer estudo em animais, deve-se obter aprovação institucional.
NOTA: Todos os instrumentos/equipamentos cirúrgicos e anestésicos recomendados para apresentação cirúrgica bem sucedida e imagem de órgãos abdominais estão detalhados na Tabela 1.
1. Procedimentos de preparação para a colheita de rins de rato
A morfologia bruta dos rins de rato era vermelho escuro(Figura 1A). Após a descelularização, o rim ficou pálido e translúcido(Figura 1D). O DNA genômico residual foi avaliado com um kit comercial de acordo com as instruções do fabricante, em andaimes renais descelularizados e comparado com o dos rins nativos (controle). A análise quantitativa confirmou que o DNA genômico tecidual foi quase eliminado após a descelularização. De 14 casos, o conteúdo .......
Vários protocolos têm sido utilizados para a descelularização de órgãos e outros tecidos. O protocolo ideal de descelularização deve preservar a arquitetura tridimensional da matriz extracelular (ECM). Em geral, tais protocolos consistem em lise da membrana celular por meio de processamento físico ou soluções iônicas, dissociando o citoplasma e o núcleo do ECM por processamento enzimático ou detergentes, e, em seguida, removendo detritos celulares do tecido3. Os processos físicos in.......
Os autores não têm conflitos de interesse para divulgar.
Este estudo foi apoiado por uma bolsa do Instituto de Pesquisa Biomédica do Hospital Nacional universitário de Pusan.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 cc syringe (inject probes and vehicle solutions | Becton Dickinson | 305217 | |
10-0 ethilon for vessel anastomosis | Ethicon | 9032G | |
25 gauge inch guide needle(for vascular catheters) | Becton Dickinson | 305145 | |
3-0 PDS incision closure rat | Ethicon | Z316H | |
3-0 Prolene incision closure rat | Ethicon | 8832H | |
3-0 silk spool vascular access/ligation in rat | Braintree Scientific | SUT-S 110 | |
4-0 PDS incision closure mouse | Ethicon | Z773D | |
4-0 Prolene incision closure mouse | Ethicon | 8831H | |
5-0 silk spool vascular access/ligation in mouse | Braintree Scientific | SUT-S 106 | |
Fine Scissors to cut fascia/connective tissue | Fine Science Tools | 14058-09 | |
Halsey needle holder | Fine Science Tools | 12001-13 | |
Kelly Hemostat for rats: muscle clamp to minimize bleeding when cut | Fine Science Tools | 13018-14 | |
Polyethelyne 50 tubing, catheter tubing 100 ft | Braintree Scientific | .023" × .038” | |
Schwartz microserrefine vascular clamps | Fine Science Tools | 18052-01 (straight) | |
18052-03 (curved) | |||
Surgical Scissors to cut skin | Fine Science Tools | 14002-12 | |
Vannas-Tubingen Spring scissors for arteriotomy | Fine Science Tools | 15003-08 |
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