Os autores agradecem ao Prof Hendrik Tevaearai e do Departamento de Cirurgia Cardiovascular de apoio financeiro para a parte inicial do estudo.

NOTA: Lewis ratos machos e fêmeas, de 200-220 g foram alojados em condições padrão de laboratório (12 horas de luz e de ciclo de escuro, de água ad libitum e alimentares, IVC gaiola). Todos os animais foram tratados de acordo com as recomendações do FELASA ea Lei Suíça sobre a protecção animal. 1. celular Preparação: Isolamento de Células-Tronco Mesenquimais de Medula Óssea <ol><li> Anestesiar os ratos com isoflurano a 5% de O 2 e 5 L / min, numa câmara de indução por 5 min. Coloque focinho do animal, para um cone de nariz ligada ao sistema de anestesia. Realize um dedo do pé ou cauda pitada de confirmar sedação. </li><li> Retirar a pele da perna com uma tesoura de corte da pele do tornozelo para o quadril. Retirar os músculos e corte da artéria femoral para a exsanguinação animal. Expor a articulação do quadril e deslocar a cabeça do fêmur. É importante para não danificar a cabeça do fêmur. Colocar os ossos em PBS estéril num tubo de plástico de 50 ml. </li><li> Remova todas as muscles e ligamentos dos ossos sem quebrá-los. NOTA: É importante que o osso permanece intacto para evitar ligação de solução de lavagem ou de contaminação com etanol. Lave os ossos pelados em etanol 70% por 5 min. </li><li> Sob a estéril câmara de fluxo laminar, cortar ambas as pontas dos ossos com uma tesoura. Lave a medula óssea através da injeção de PBS estéril a partir da extremidade do osso. Recolha de medula para um tubo de 15 ml. Centrífuga 7 min a 300 x g. </li><li> Remover o sobrenadante. Suspender o sedimento em 3 ml de tampão de lise de glóbulos vermelhos. Incubar a suspensão durante 1 min à temperatura ambiente antes de girar de novo durante 7 minutos a 300 x g. Em um frasco de cultura de 150 ml, estéril adicionar meio de cultura celular (395 ml de meio IMDM, 5 ml de pen / strep, 100 ml de FBS) e propagar as células. </li><li> Alterar o segundo meio dia para remover células não aderentes. <ol><li> Realizar as mudanças de meio a cada segundo dia, durante 2-3 semanas, até que a quantidade de célula desejado é obtido. </li><li> Em alternativa, preparar o biograft por sementesção das células para a matriz sólida, como descrito noutro local necessário e 3. </li></ol></li><li> O dia da implantação cardíaca, preparar as células ou colher o biograft imediatamente antes da aplicação do epicárdio. <ol><li> Coletar as células usando solução desprendimento de células Accutase. Contar as células. Encher um tubo de centrífuga de 1,5 ml, com o volume de suspensão de células para obter uma quantidade calculada de célula desejado. Centrifuga-se durante 7 minutos a 300 xg e remover o sobrenadante. </li><li> Alternativamente, a colheita biograft de meio de cultura celular, enxaguar em PBS estéril, e manter em meio de cultura fresco sem soro. </li></ol></li></ol> 2. Primeiro toracotomia e LAD Ligadura <ol><li> Pesa-se o rato. Ligue o bloco de aquecimento a 37 ° C. Anestesiar ratos com 5% de isoflurano e 5 L / min de 100% de O 2 em uma câmara de indução para 5-7 min. Realize um dedo do pé ou cauda pitada de confirmar sedação. Coloque o rato sobre a almofada de aquecimento. </li><li> Entubar o animal com um 14L iv cateter. Conectar o cateter intubação a um ventilador roedor programado para 2,5 L / min de oxigênio, 2,5% de isoflurano, o volume corrente de 2 ml, e uma freqüência respiratória de 90 ciclos / min. </li><li> Prepara-se uma solução de buprenorfina a 0,1 mg / kg. Injectar subcutaneamente um terço da solução. Raspar a parte esquerda do tórax. Desinfectar com uma solução de Betadine 1%. </li><li> Incisar a pele perpendicular ao esterno no quarto espaço intercostal. Separe as três camadas de músculo torácico (peitoral maior, peitoral ascendente e peitoral oblíquo externo). Abra o quarto espaço intercostal (entre as costelas 4 e 5). </li><li> Use um pequeno afastador para espalhar as costelas e para expor o coração. Abra o pericárdio com cuidado. Localize e ligadura da artéria descendente anterior coronariana (LAD), com 7,0 sutura 4 milímetros abaixo do átrio. </li><li> Feche o espaço intercostal, com dois pontos com 3,0 suturas. Posicione as duas suturas proximal e distal do esterno. Em primeiro lugar, tighten sutura distal. Prenda o tubo de escape ventilador para 2 segundos, a fim de inflar o peito e evitar pneumotórax. Aperte a segunda sutura. Posicione as camadas de músculos de volta no lugar (sem suturas são necessários). Fechar a pele com uma sutura 5.0. </li><li> Desinfetar a sutura com solução Betadine 1%. Injectar o resto da solução de buprenorfina. Desligue o sistema de anestesia. Remover cateter intubação. </li><li> Mantenha o rato na gaiola sob uma lâmpada quente por 1-2 horas. Manter um termómetro na gaiola e controlar a distância entre a lâmpada e o compartimento quente, a fim de evitar um excesso de aquecimento. Retorne o rato na unidade IVC. Injetar por via subcutânea Buprenorfina 0,05-0,1 mg / kg pós -operatively cada 6-12 horas para 48 horas. </li></ol> 3. Epicárdica Administração da Via Tratamento Segunda toracotomia <ol><li> Repita os passos de 2,1-2,3. </li><li> Incisar a pele perpendicular ao esterno no quinto espaço intercostal. Separar a fase 3s do músculo torácico (peitoral maior, peitoral ascendente e peitoral oblíquo externo). Abra o quinto espaço intercostal (entre as costelas 5 e 6). </li><li> Use um pequeno afastador para espalhar as costelas e para expor o coração. Se há alguma adesão, retire-os cuidadosamente com uma pinça fina. </li><li> Localize a área do infarto que aparece como uma área clara abaixo da ligadura. NOTA: Se necessário, use um pedaço de 10 cm de sutura (7,0) inserido no ápice para melhor visualizar o ventrículo esquerdo. Puxe delicadamente à sutura mantida frouxamente por uma braçadeira para expor o coração. </li><li> Aplique um dos seguintes tratamentos: <ol><li> Posicionar o biograft na superfície do coração. Utilizar a seringa pré-cheia de selante de fibrina previamente aquecida à temperatura ambiente durante 10 min. Aplique uma gota (50-100 L) de selante de fibrina sob a biograft usando uma agulha 25 G Luer. Verifique se o biograft está perfeitamente selado. </li><li> Alternativamente, aplicam-se o sedimento de células recolhidas com uma pipeta de ponta na superfície of o coração na área abaixo da ligadura pálido. Aplicar uma gota (50-100 ul) de selante de fibrina sobre o sedimento celular. </li></ol></li><li> Remover o pedaço de fio de sutura a partir do vértice. </li><li> Repita os passos de 2,6-2,8. </li></ol>

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	<li>Gjesdal, O., Bluemke, D. A., Lima, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+remodeling+at+the+population+level--risk+factors,+screening,+and+outcomes.">Cardiac remodeling at the population level--risk factors, screening, and outcomes.</a> Nat. Rev. Cardiol. 8, 673-685 (2011).</li><li>Alcon, A., Cagavi Bozkulak, E., Qyang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regenerating+functional+heart+tissue+for+myocardial+repair.">Regenerating functional heart tissue for myocardial repair.</a> Cell Mol. Life Sci. 69, 2635-2656 (2012).</li><li>Guex, A. G., Fortunato, G., Hegemann, D., Tevaearai, H. T., Giraud, M. 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F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+models+of+heart+failure:+an+updated+review.">Rodent models of heart failure: an updated review.</a> Heart Fail. Rev. 18, 219-249 (2013).</li><li>Horstick, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+procedure+affects+physiological+parameters+in+rat+myocardial+ischemia:+need+for+mechanical+ventilation.">Surgical procedure affects physiological parameters in rat myocardial ischemia: need for mechanical ventilation.</a> Am. J. Physiol. 276, 472-479 (1999).</li><li>Duchatelle, J. P., Vivet, P., Cortes, M., Groussard, O., Pocidalo, J. 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Organs. 32, 692-700 (2008).</li><li>Siepe, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myoblast-seeded+biodegradable+scaffolds+to+prevent+post-myocardial+infarction+evolution+toward+heart+failure.">Myoblast-seeded biodegradable scaffolds to prevent post-myocardial infarction evolution toward heart failure.</a> J. Thorac. Cardiov. Sur. 132, 124-131 (2006).</li><li>Guex, A. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasma-functionalized+electrospun+matrix+for+biograft+development+and+cardiac+function+stabilization.">Plasma-functionalized electrospun matrix for biograft development and cardiac function stabilization.</a> Acta Biomater. 10, (2014).</li><li>Terrovitis, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+Quantification+and+Optimization+of+Acute+Cell+Retention+by+In+Vivo+Positron+Emission+Tomography+After+Intramyocardial+Cardiac-Derived+Stem+Cell+Delivery.">Noninvasive Quantification and Optimization of Acute Cell Retention by In Vivo Positron Emission Tomography After Intramyocardial Cardiac-Derived Stem Cell Delivery.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 54, 1619-1626 (2009).</li><li>Guo, H. D., Wang, H. J., Tan, Y. Z., Wu, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transplantation+of+marrow-derived+cardiac+stem+cells+carried+in+fibrin+improves+cardiac+function+after+myocardial+infarction.">Transplantation of marrow-derived cardiac stem cells carried in fibrin improves cardiac function after myocardial infarction.</a> Tissue Eng. Part A. 17, 45-58 (2011).</li><li>Qiao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Death+and+Proliferation+Time+Course+of+Stem+Cells+Transplanted+in+the+Myocardium.">Death and Proliferation Time Course of Stem Cells Transplanted in the Myocardium.</a> Mol. Imaging Biol. 11, 408-414 (2009).</li><li>Conradi, L., Pahrmann, C., Schmidt, S., Deuse, T., Hansen, A., Eder, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bioluminescence+Imaging+for+Assessment+of+Immune+Responses+Following+Implantation+of+Engineered+Heart+Tissue+(EHT).">Bioluminescence Imaging for Assessment of Immune Responses Following Implantation of Engineered Heart Tissue (EHT).</a> J. Vis. Exp. 52 (e2605), (2011).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

A ligadura permanente da LAD causa lesão miocárdica irreversível. O primeiro modelo animal foi descrito em 1960 4. Desde então, tem sido considerado como um modelo padrão e adequado para MI crónica. Sua estabilidade e reprodutibilidade permitiu a avaliação experimental de terapias para MI 5. Procedimentos melhorou após a descrição inicial relatou uma taxa de mortalidade operatória de 35-13% 6. Como esperado, a ligadura LAD induzida função cardí...

Desde o final do século 19, a doença cardiovascular continua a ser o número um assassino em série nos países industrializados. Entre eles, a doença arterial coronária representa a etiologia principal. Os resultados de fase aguda no infarto do miocárdio (MI) e é seguido por remodelação mal-adaptativo que se desenvolve progressivamente em direção a uma fase crônica e insuficiência cardíaca grave. Apesar dos recentes avanços tecnológicos e terapêuticos significativos, a morbidade ea mortalidade devido à progressão da insuficiência cardíaca ainda está crescendo 1. Neste contexto, a terapia celular tem ganhado cada vez mais interesse como uma nova opção terapêutica para parar a progressão da doença para a insuficiência cardíaca e para estimular a capacidade regenerativa recentemente identificado do miocárdio. Estudos experimentais e clínicos têm fornecido muitas evidências dos efeitos benéficos obtidos após o transplante cardíaco de vários tipos de células. Entre os principais resultados incluíram melhoria cardifunção contrátil ac, diminuição do remodelamento ventricular esquerdo, redução do tamanho do infarto, e aumento da densidade vascular na área infartada. No entanto, a baixa retenção número de células após a injeção de células manteve-se uma desvantagem importante. Associação de células com um biomatriz para melhorar de entrega célula 2, recentemente promovido pesquisador e interesses clínicos. Ligadura da artéria descendente anterior da artéria coronária (LAD) é um método de referência para MI em modelo animal de pequeno porte que resulta em infarto transmural e uma cicatriz madura. A terapia celular aplicada na fase crônica da MI requer uma segunda intervenção cirúrgica. A esternotomia mediana geralmente é realizada para permitir a injeção intramiocárdica das células ou a implantação do epicárdio de bioenxertos. Tais procedimentos cirúrgicos invasivos, aumentar a taxa de mortalidade, pós-cirurgia de tempo de recuperação, a dor, e o risco de infecção. A abordagem minimamente invasiva aqui apresentada não só evita esse viés, mas também fornece oacessibilidade ptimal do coração para a aplicação dos tratamentos. MI e implantação do epicárdio de células associadas com uma biomatriz tipo gel são realizadas com o coração batendo através de toracotomia intercostal esquerdo.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="678">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:104px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:239px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">POLYSORB 3-0 suture</td>
			<td style="width:104px;">COVIDIEN</td>
			<td style="width:119px;">UL 204</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">POLYSORB 5-0 suture</td>
			<td style="width:104px;">COVIDIEN</td>
			<td style="width:119px;">UL 202</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">SURGIPRO II 7-0 Suture</td>
			<td style="width:104px;">COVIDIEN</td>
			<td style="width:119px;">VP904X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">CATHETER INSYTE 14G</td>
			<td style="width:104px;">BD</td>
			<td style="width:119px;">381267</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">INSPIRA ADVANCED VOLUME CONTROLLED VENTILATOR</td>
			<td style="width:104px;">HARVARD APPARATUS</td>
			<td style="width:119px;">557058</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">DUMONT #7 Forceps</td>
			<td style="width:104px;">FST Germany</td>
			<td style="width:119px;">11274-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Fibrin sealant</td>
			<td style="width:104px;">BAXTER</td>
			<td style="width:119px;">1501441</td>
			<td>TISSEEL Glue, Frozen -20&#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">CASTROVIEJO EYE SPECULA</td>
			<td style="width:104px;">HARVARD APPARATUS</td>
			<td style="width:119px;">72-8925</td>
			<td>use as retractor for the ribs</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">IMDM Glutamax</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>31980</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pen/Strep</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">FBS</td>
			<td>PAA Clone</td>
			<td>&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; A15-101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">bone scissors</td>
			<td style="width:104px;">Fine Science Tols</td>
			<td style="width:119px;">16044-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Red Blood Cell Lysis Solution</td>
			<td>Gentra Systems</td>
			<td>D-50k1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Accutase cell detachment solution</td>
			<td style="width:104px;">Stem cell technology</td>
			<td style="width:119px;">7920</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cell-based therapy for heart failure in rat: double thoracotomy for myocardial infarction and epicardial implantation of cells and biomatrix

Terapia celular cardíaca tem ganhado interesse crescente e implante de biomateriais associados com as células se tornou uma questão importante para otimizar a entrega de células do miocárdio. Roedor modelo de infarto do miocárdio (IM), que consiste de Esquerda artéria descendente anterior (LAD) ligadura tem sido comumente realizada através de uma toracotomia; uma segunda cirurgia de coração aberto através de uma esternotomia tem sido tradicionalmente realizada para a aplicação do epicárdio do tratamento. Desde a descrição do modelo de ligadura LAD, a taxa de mortalidade pós-operatória diminuiu 35-13%, porém a segunda cirurgia manteve-se crítico. A fim de melhorar a recuperação pós-cirurgia e reduzir a dor e infecção, procedimentos cirúrgicos minimamente invasivos são apresentados. Dois toracotomia foram realizadas, a inicial para LAD ligadura e o segundo tratamento a administração de epicárdico. Bioenxertos consistindo de células associadas com matrizes de tipo sólido ou de gel foram aplicados na AR enfartadaea. LAD ligação resultou em perda da função cardíaca, como confirmado por ecocardiografia realizada após 2 e 6 semanas. Goldner tricrômico coloração realizada em secções coração confirmou a formação de cicatriz transmural. Cirurgias primeiro e segundo resultou em menos que 10% de mortalidade pós-operatória.

Todos os animais recuperados dentro de 1 hora após toracotomias. A cicatrização foi rápida. Não se observou qualquer edema ou infecção. A toracotomia esquerda dobro permitido o acesso ideal para o coração (Figura 1). Dor e mortalidade pós-operatória foi baixa. O animal recuperou-se rapidamente a partir da cirurgia e ganho de peso (Figura 2). A percentagem de sobrevivência de Kaplan Meir foi de 96% para o primeiro toracotomia. Quatro ratos mais de...

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Cell-based Therapy for Heart Failure in Rat: Double Thoracotomy for Myocardial Infarction and Epicardial Implantation of Cells and Biomatrix

Implantação de um biograft para tratar infarto do miocárdio induzido por ligadura LAD em um modelo de roedor tem convencionalmente necessárias duas cirurgias de coração aberto. A fim de reduzir a mortalidade e proporcionar as condições óptimas para a fixação de Biomatrizes sólidos gelatinosos e associados a células, procedimentos minimamente invasivos têm sido desenvolvidos.

Terapia Celular para insuficiência cardíaca em Rat: Double toracotomia para infarto do miocárdio e Epicárdica implante de células e Biomatrix

Cardiac cell therapy has gained increasing interest and implantation of biomaterials associated with cells has become a major issue to optimize myocardial ...

cell-based-therapy-for-heart-failure-rat-double-thoracotomy-for

Research

JoVE Journal

Bioengineering

11.8K visualizações.  University of Fribourg.  Implantação de um biograft para tratar infarto do miocárdio induzido por ligadura LAD em um modelo de roedor tem convencionalmente necessárias duas cirurgias de coração aberto. A fim de reduzir a mortalidade e proporcionar as condições óptimas para a fixação de Biomatrizes sólidos gelatinosos e associados a células, procedimentos minimamente invasivos têm sido desenvolvidos. 