JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Это видео демонстрирует процедуру выделения весь мозг от взрослых дрозофил при подготовке к записи от отдельных нейронов с использованием стандартных технологий целом клетки. Она включает в себя образы GFP меченых клеток и нейронов рассматриваться во время записи.

Аннотация

В этом видео мы продемонстрируем процедуру выделения весь мозг от взрослых дрозофил при подготовке к записи от отдельных нейронов. Мы начнем с описания рассекает решение и захвата взрослые самки, используемые в наших исследованиях. Процедура снятия весь мозг неповрежденным, в том числе и оптических долях, проиллюстрировано. Препарирование вышележащих трахеи также показано на рисунке. Изолированных мозг не только малой, но нуждается в особом уходе в обработке на данном этапе, чтобы предотвратить повреждение нейронов, многие из которых близки к внешней поверхности ткани. Мы покажем, как специальный держатель мы разработали для стабилизации мозга в записи камеры. Стандартный электрофизиологии создали используется для записи с отдельных нейронов или пары нейронов. Флуоресцентные изображения, рассматривается через микроскоп записи, от GAL4 линии вождения GFP выражение (GH146) показывает, как проекционных нейронов (PNS) отмечены в живой мозг. Высокая мощность Номарского изображение показывает зрения одного нейрона, которые преследуют за весь записи клетки. Когда мозг успешно удален без повреждения, большинство нейронов спонтанно активных, выпустив потенциалов действия и / или экспонирование спонтанных синаптических входа. Это, в месте подготовки, в котором все записи ячейки определили нейронов в мозг целиком могут быть объединены с генетических и фармакологических манипуляций, является полезной моделью для изучения клеточной физиологии и пластичность во взрослой ЦНС.

протокол

I. Препарирование мозга от взрослых летать

  1. Нанесите небольшое снижение (~ 100 мкл) рассекает решение в центре 35 мм чашки Петри.
  2. Поймать взрослую самку использовании аспиратора. Под микроскопом рассекает, используйте две иглы шприца обезглавить летать.
  3. Место голову в небольшую каплю рассекает физиологического раствора (папаин с нами) в чашке Петри.
  4. Позиция головы с хоботком перед нижней части блюда.
  5. Держите кутикулы покрытие левого глаза соединения с иглой 1. Сделать диагональные вырезать, которая простирается от спинной к брюшной поверхности с иглой 2, просто медиальнее иглы 1.
  6. Держите ротовые с иглой 1 и использования иглы 2, чтобы сделать горизонтальный разрез, который простирается от брюшной поверхности левым глазом в правый глаз, на уровне основания хоботка.
  7. Держите кутикулы покрытие правого глаза соединения с иглой 1. Сделать диагональные вырезать, которая простирается от спинной к брюшной поверхности с иглой 2, только медиальной иглы 1.
  8. Повернуть голову так, чтобы ростральной сторона лежит на поверхности чашки Петри. Вставьте иглу 1 между ростральной кутикулы и головного мозга, а также использовать иглу от 2 до следуют тем же путем, что и первый иглу. В идеале, капсула будет кожуру от мозга с обеих оптических долях прилагается так как они имеют важное значение в стабилизации мозга для записи.
  9. Трахеи, воздушные мешки, и других соединительных тканей, тщательно удаляют с помощью двух прекрасных щипцы чаевые.
  10. Всего вскрытие должно 3-10 минут

II. Монтаж ЦНС

  1. Мозг переходит к записи камеры использованием желтого пипетки чаевые.
  2. В записи камеры, мозг стабилизируется путем размещения платины кадр так, что два прекрасных волос крест в контакт с тканью на стыке между оптическими доли и центральной области мозга.
  3. Каждый мозг имеет право отдыхать в записи камеры с непрерывной перфузии с кислородом солевой (95% кислорода и 5% углекислого газа), по крайней мере 10 минут. Перфузии камере с кислородом физиологического раствора продолжалась в течение периода записи. Подготовка визуализируется использованием прямой микроскоп (Axioskop 2FS; Zeiss, Oberkochen, Германия) с фиксированной сцене и 40x цель погружения воды (Achroplan; числовой апертурой, 0,8; Zeiss) и Номарского оптики. GFP был просмотрен с БП 505-530 флуоресценции фильтр.

III. Электрофизиология

  1. Пипец в 8-14 МОм используются для записи целого клетка
  2. Текущий зажим и напряжения зажим записи выполняются с помощью Список EPC7 или Axopatch 200B усилитель, DIGIDATA 1322A цифро-аналоговый преобразователь (Molecular Devices, Foster City, CA), Dell Dimension 8200 компьютеров (Dell Computer, Раунд-Рок, штат Техас), и pClamp 9 программное обеспечение (Molecular Devices).

Обсуждение

Изолированных целом подготовка мозга мы проиллюстрируем в этом видео позволяет оценить сотовой механизмы, лежащие возбудимости и синаптической передачи в выявленных нейронов, в том числе в обонятельных путей обработки, во взрослом мозге дрозофилы (Gu и О Дауд, 2006). Такой подход является дополните?...

Благодарности

Эта работа была поддержана NIH грант NS27501 к DKOD. Дополнительная поддержка для этой работы была предоставлена ​​программа HHMI профессор Грант DKOD.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
#5 FocepsToolFine Science ToolsNo. 11251-10Be careful, never damage the fine tips of forceps
PapainReagentWorthington Biochemical312620 U/ml activated by 1 mM L-cysteine
Dissecting microscopeSMZ-2B Model:C-PSNikon InstrumentsEquipped with gooseneck fiber optic lights positioned a low angle
Needle & Syringe PrecisionGlide®?, Becton Dickinson Co305175 & 309602Cheap and durable
Upright microscopeAxioskop2 FS plusCarl Zeiss, Inc.Equipped with a fixed stage, 40X water immersion objective, Nomarski optics, and fluorescent lamp
Patch clamp amplifier200 BMolecular Devices
Digidata D-A converter 1322AMolecular Devices

Ссылки

  1. Gu, H., O Dowd, D. K., K, D. Cholinergic synaptic transmission in Adult Drosophila Kenyon cells in situ. Journal of Neuroscience. 26, 265-272 (2006).
  2. Wilson, R. I., Turner, G. C., Laurent, G. Transformation of olfactory representations in the Drosophila antennal lobe. Science. 303, 366-370 (2004).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Neuroscience6GFP

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены