JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Эта рукопись вводит надежный метод изготовления вогнутой microwells без необходимости в дорогостоящих объектов. Использование магнитных сил, стальных шариков и массив через отверстие, несколько сотен microwells были сформированы в подложке полидиметилсилоксан (PDMS) 3 x 3 см.

Аннотация

Сфероида культура является полезным инструментом для понимания клеточного поведения в том, что он обеспечивает в естественных условиях-как трехмерной среде. Различные методы производства сфероида такие как non клей поверхностей, спиннер колбы, висит капли и microwells были использованы в исследованиях по вопросам взаимодействия в ячейке, иммунной активации, наркотиков скрининг, стволовых дифференцировки клеток и органоид поколения. Среди этих методов microwells с трехмерной геометрии вогнутой завоевали внимание ученых и инженеров, учитывая их преимущества единообразного размера сфероида поколения и легкость, с которой может быть ответы отдельных сфероидов мониторинг. Даже несмотря на то, что были предложены эффективные методы такие, как использование гибких оболочек и льда литографии, эти методы понести серьезные недостатки, такие как сложно контролировать размеры шаблона, достижение высоких пропорций и производство большие области microwells. Чтобы преодолеть эти проблемы, мы предлагаем надежный метод для изготовления вогнутой microwells без необходимости в дорогостоящих объектов. Этот метод использует массив через отверстие 30 x 30, несколько сотен микрометр порядка стали бусы и магнитные силы для изготовления 900 microwells в подложке полидиметилсилоксан (PDMS) 3 x 3 см. Чтобы продемонстрировать применимость нашего метода ячейку биологических приложений, мы культивировали жировых стволовых клеток для 3 дней и успешно производится с помощью нашей платформы микрорезервуар сфероидов. Кроме того мы провели магнитостатических моделирования для изучения механизма, согласно которому магнитная сила была использована для ловушку стальные шарики через отверстия. Мы считаем, что предлагаемый микрорезервуар изготовление метод может применяться для многих сотовых исследования, основанные на сфероиде таких наркотиков скрининг, регенерации тканей, дифференцировки стволовых клеток и рак метастазы.

Введение

Клетки, превратилась в форму сфероида больше похожи на реальные ткани в организме, чем двумерной плоскости культуры1. Учитывая это преимущество, использование сфероидов был принят для улучшения деятельности по изучению взаимодействия в ячейке2,3, иммунной активации4, наркотиков скрининг5и6дифференциации. Кроме того недавно были применены к organoids (рядом физиологических трехмерные (3D) ткани), которые являются очень полезными для изучения человеческого развития и болезней7сфероидов, включающий несколько типов клеток. Некоторые методы были использованы для производства сфероидов. Простейший метод предполагает использование поверхности без клея, таким образом, что клетки агрегировать друг с другом и формы сфероидов. Петри блюдо можно лечить с бычьим сывороточным альбумином, плюрониевого F-127 или гидрофобный полимер (например поли 2-hydroxyethl метакрилат) сделать его поверхности не клей89. Спиннер фляжка метод является еще одним известным средством производства большого количества сфероидов10,11. В этом методе клетки проходят в подвеска, помешивая, чтобы помешать им стать присоединяется к подложке. Вместо этого плавающей клетки агрегат в форме сфероидов. Поверхности метод non клей и паук фляжка метод может производить большое количество сфероидов. Однако они действуют ограничения, включая трудности в контролировать размер сфероида, а также отслеживание и мониторинг каждого сфероида. Как средство для таких проблем, другой метод производства сфероида, а именно, висит падение метод может быть занятых12. Это включает в себя хранение клеток подвеска капель на внутренней стороне крышки культуры блюдо. Эти капли обычно 15-30 мкл в размерах и содержит около 300 до 3000 клетки13. Когда крышка инвертируется, капли проводятся в месте поверхностного натяжения. Условия микрогравитации в каждой капле концентрируется клетки, которые затем образуют единый сфероидов на интерфейсе свободной жидкости воздух. Преимущества висит метод drop являются, что он предлагает хорошо контролируемых размер распределения, хотя это легко отслеживать и контролировать каждый сфероида, по отношению к не клей поверхности и spinner колбу методы. Однако, этот метод создает один недостаток в том, что массовое производство сфероидов и сам процесс производства является чрезмерно труда интенсивный.

В микрорезервуар массив является плоской пластины с многих микро размера скважин, каждый диаметром от 100 до 1000 мкм. Принцип производства сфероида при использовании microwells похож на поверхности метода non клей. Преимущества включают в себя тот факт, что microwells обеспечивают пробелы между microwells для разделения клетки или сфероидов, таким образом, что это легко контролировать размер сфероида, а также делает его легко контролировать каждый один сфероида. С большое количество microwells также возможна сфероида высок объём производства. Еще одним преимуществом microwells является возможность формы колодцы различной формы (шестигранные, цилиндрические, тригональная призматических) в зависимости от уникальных экспериментальных целей пользователей. Как правило однако, трехмерные (3D) вогнутые (полусферической) фигуру или рассматривается как наиболее подходящие для производства единообразного размера одного сфероидов. Таким образом, полезность вогнутые microwells было сообщено для многих исследований биологии клетки таких изучения cardiomyocyte дифференциация14эмбриональных стволовых клеток, секрецию инсулин островковых клеток кластеров15, Ферментативная активность гепатоцитов16и резистентности опухоли сфероидов17.

К сожалению изготовление microwells часто требует специализированных micropatterning услуги; обычные методы на основе фотолитографии требуют облучения и развивающихся объектов, в то время как реактивного ионного травления-методы, основанные нуждаются плазмы и ионно лучевого оборудования. Такое оборудование является дорогостоящим, вместе с процессом изготовления сложных представляет высокий барьер для вступления для биологов, которые не имеют доступа к микротехнологии. Для преодоления этих проблем, другие эффективные методы такие, как лед литографии18 (с использованием замороженных водных капель) и гибкой мембраны метод14 (с помощью мембраны, через отверстие субстрата и вакуума) было предложено. Однако эти методы также понести серьезные недостатки, такие как трудно контролировать размеры шаблона, достижение высокой пропорции и производство большей площади microwells.

Для преодоления вышеуказанных вопросов, мы предлагаем метод изготовления Роман вогнутой микрорезервуар использованием подложке через отверстие, стальные шарики и массив магнит. С помощью этого метода, сотни вогнутой сферических microwells могут быть изготовлены, используя механизм магнитной силы оказали помощь самоблокирующихся металлические бусины (рис. 1). Процесс изготовления предполагает использование очень мало дорогих и сложных объектов и не требует многих передовых навыков. Таким образом даже неквалифицированных лиц можно легко провести этот метод изготовления. Для демонстрации использования предложенного метода, человека жировой производные стволовые клетки были культивировали в вогнутые microwells производить сфероидов.

протокол

1. Подготовка через отверстие массив алюминиевые пластины и магнит массива

  1. Подготовить два 50 мм x 50 мм (или более) алюминиевых пластин. Толщина каждого листа был 300 мкм, что составляет половину диаметра шарика.
  2. Формируют массив через отверстие 30 x 30 на одном из алюминиевых пластин с помощью CNC вращающихся гравер с Φ550-мкм микро сверло с 30 мм/сек скорость окунуться и 8000 об/мин, скорость вращения шпинделя. Расстояние между каждой дыры (центр) был 1 мм (рис. 1a и 2a рисунок, я).
  3. Формируют массив 30 х 30 мкм Φ750 через отверстия на алюминиевой пластине, используя ту же процедуру, что и описанные в 1.2 (рис. 1a и 2a рисунок, ii).
  4. Приложите две пластины друг друга с помощью клейкой ленты и образуют Φ3 мм выравнивание отверстий на каждом из четырех углов двух алюминиевых пластин.
  5. Замочите алюминиевых пластин в 15% серной кислоты для 12 h для очистки их поверхностей. Так как тонкий слой оксида алюминия на поверхности алюминия делают коррозии, диаметр отверстия и Толщина пластины этой кислоты лечения не изменяются.
  6. Формируют массив 30 × 30 1 x 1 x 1 мм неодимовые магниты (с магнитной силой 0,363 N). Убедитесь, что каждый магнит противоположной полярности для своего соседа. Для предотвращения взлома или рассеяния магнит массива, прикрепите алюминиевой пластины 30 x 30 мм в нижней части магнита массива с помощью двухсторонней ленты (рис. 2a, iii и врезные в Рисунок 2).

2. шарик процесс треппинга

  1. Выравнивание и укладывают два алюминиевых пластин (Топ пластины: плита 750-мкм отверстие, Нижняя пластина: 550-мкм отверстие пластины) с использованием подготовленных выравнивание отверстий в четырех углах каждой пластины (рисунок 1b).
  2. Блокировки две пластины вместе, вставив м3 болты в отверстия выравнивание, а затем закрепите болты с гайками (рис. 1b).
  3. Стек алюминиевой пластины Ассамблеи на массиве подготовленный магнит (рис. 1b, 2bи 2 c). Совместите массив магнитов и массив через отверстия в алюминиевых пластин во время процесса укладки. Затем используйте Скотч исправить положение магнита массива.
  4. Место достаточное количество Φ600 мм SUJ2 стали бисер на собрании пластины и манипулировать бисер с помощью акрила (или неметаллические) пластины такой шарик будет поглощенной в каждое отверстие (рис. 1 c, 1 dи 1e) при одновременно Удаление избыточного бусы, которые не подали в отверстия.
  5. Осторожно снимите верхнюю крышку во избежание нежелательных рассеяния и вывих захваченных бусы (Рисунок 1f).

3. вогнутые микрорезервуар изготовление

  1. Переместите вогнутой микрорезервуар плесень, производимых в шагах 2.1-2.5, выше, в чашке Петри.
  2. Смешайте полидиметилсилоксан (PDMS) мономера и отвердителя согласно инструкции производителя19 с мономером PDMS: лечить агента в соотношении 10:1.
  3. Де газ PDMS смесь с помощью эксикаторе и вакуумный насос удалить любые пузыри в ловушку в смеси PDMS.
  4. Вылейте смесь PDMS в вогнутое микрорезервуар плесень и де газ снова, используя ту же процедуру, что описано в 3,3 (Рисунок 1f).
  5. Выпекать PDMS смесь на конфорку при 80 ° C 2 h сформировать шарик встроенный PDMS субстрата (рис. 1 g).
  6. Удаление вылечить PDMS субстрат из формы (рис. 1 g). В процессе удаления спрей метанола с помощью стиральные бутылки для отсоединения PDMS субстрата от плесени.
  7. С помощью Φ15 мм х 2 мм магнит, удалите захваченных стальные шарики из PDMS субстрата (рис. 1 h). Для этого процесса может использоваться любой магнит, который является достаточно сильным, чтобы извлечь бусы из субстрата PDMS.

4. сфероида культура

  1. Вырежьте вогнутой микрорезервуар узорные PDMS субстрат с помощью удар биопсия Φ14 мм для установки в 24-ну пластины в этом исследовании.
  2. Стерилизация полученный субстрат PDMS мм Φ14 в стерилизатор-автоклав при 121 ° C и 15 psi.
  3. Место стерилизованные PDMS субстрата в 24 хорошо плиту.
  4. Покройте весь субстрат PDMS раствором 4% (w/v) плюрониевого F-127 на ночь для предотвращения клетки привязанность к поверхности микрорезервуар. Во время процесса покрытия удалите все пузырьки воздуха, захваченного в вогнутые microwells закупорить или с помощью ультразвуковой очистки.
  5. Очистить решение F-127 три раза с помощью фосфат амортизированное saline (PBS).
  6. 1 мл раствора клеток средний (Дульбекко изменение орел средняя) (которая содержит 2 х 106 клеток) на подложке PDMS семян. Обратите внимание, что плотность посева может быть изменена согласно целевой сфероида размер и/или целевой тип ячейки. Здесь были использованы жировой производные стволовые клетки (ASC).
  7. Аспирационная 1 мл среды, используя 1000 мкл пипетки для удаления любой избыток клетки, которые не попали в microwells (рис. 3).
  8. Инкубировать клетки на 36,5 ° C, влажность > 95% и 5% CO2 состояния. В случае ИСС, используемые в нашем исследовании клетки совокупные на сфероиде в 48 ч.

Результаты

Выпуклая форма и шаблон микрорезервуар успешно были сфабрикованы, выполните шаги 2.1 до 3,7. (Рис. 4). Коммерческие стальных бусины попали в массиве 30 x 30 через отверстие. Бусины были проведены плотно без каких-либо пробелов между бусины и соответствующие ск...

Обсуждение

Основная задача этого метода изготовления был безопасной фиксации бусины в массиве через отверстие в алюминиевой пластине. Для решения этой задачи, исправить бисер надежно, как показано на рисунках 6 и 7был использован магнитная сила в виде массива магнит 30 x 30. Магнит?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют никаких конфликтов интересов раскрыть.

Благодарности

Это исследование было поддержано базовой программы исследований науки через национальных исследований фонда из Кореи (NRF) финансируется министерством науки, ИКТ и будущего планирования (СР 2014R1A1A2057527 и СР 2016R1D1A1B03934418).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
CNC rotary engraverRoland DGAEGX-350
Micro drill bitHAM Präzision30-1301 TAΦ 0.55 and 0.75 mm
Sulfuric acid 98%Daejung7683-4100For cleaning aluminum plate.
Dilute with distilled water with 15% solution
Neodymium magnetSupermagneteW-01-N1 x 1 x 1 mm
Bearing ballAgami ModelingSUJ2Φ 600 μm steel bead
Polydimethylsiloxane (PDMS)DowcorningSylgard 184
Pluronic F-127Sigma Aldrichp2443Dilute with phosphate buffered saline to 4% (w/v) solution
Dulbecco's modified eagle's medium (DMEM)ATCC30-2002
Dulbecco's phosphate buffered saline (D-PBS)ATCC30-2200
Fetal bovine serumATCC30-2020
Adipose-derived mesenchymal stem cellsATCCATCC PCS-500-011

Ссылки

  1. Fennema, E., Rivron, N., Rouwkema, J., van Blitterswijk, C., de Boer, J. Spheroid culture as a tool for creating 3D complex tissues. Trends Biotechnol. 31 (2), 108-115 (2013).
  2. Djordjevic, B., Lange, C. S. Hybrid spheroids as a tool for prediction of radiosensitivity in tumor therapy. Indian J Exp Biol. 42 (5), 443-447 (2004).
  3. Takezawa, T., Yamazaki, M., Mori, Y., Yonaha, T., Yoshizato, K. Morphological and immuno-cytochemical characterization of a hetero-spheroid composed of fibroblasts and hepatocytes. J Cell Sci. 101 (3), 495-501 (1992).
  4. Gottfried, E., Kunz-Schughart, L. A., Andreesen, R., Kreutz, M. Brave little world: spheroids as an in vitro model to study tumor-immune-cell interactions. Cell Cycle. 5 (7), 691-695 (2006).
  5. Zhang, X., et al. Development of an in vitro multicellular tumor spheroid model using microencapsulation and its application in anticancer drug screening and testing. Biotechnol Prog. 21 (4), 1289-1296 (2005).
  6. Kim, B. C., et al. Microwell-mediated micro cartilage-like tissue formation of adipose-derived stem cell. Macromol Res. 22 (3), 287-296 (2014).
  7. Fatehullah, A., Tan, S. H., Barker, N. Organoids as an in vitro model of human development and disease. Nature cell biology. 18 (3), 246-254 (2016).
  8. Yuhas, J. M., Li, A. P., Martinez, A. O., Ladman, A. J. A simplified method for production and growth of multicellular tumor spheroids. Cancer Res. 37 (10), 3639-3643 (1977).
  9. Hamilton, G. A., Westmoreland, C., George, E. Effects of medium composition on the morphology and function of rat hepatocytes cultured as spheroids and monolayers. In Vitro Cell Dev Biol-Animal. 37 (10), 656-667 (2001).
  10. Nyberg, S. L., et al. Rapid, large-scale formation of porcine hepatocyte spheroids in a novel spheroid reservoir bioartificial liver. Liver Transplant. 11 (8), 901-910 (2005).
  11. Lazar, A., et al. Extended liver-specific functions of porcine hepatocyte spheroids entrapped in collagen gel. In Vitro Cell Dev Biol-Animal. 31 (5), 340-346 (1995).
  12. Kelm, J. M., Timmins, N. E., Brown, C. J., Fussenegger, M., Nielsen, L. K. Method for generation of homogeneous multicellular tumor spheroids applicable to a wide variety of cell types. Biotechnol Bioeng. 83 (2), 173-180 (2003).
  13. Lin, R. Z., Chang, H. Y. Recent advances in three-dimensional multicellular spheroid culture for biomedical research. Biotechnol J. 3 (9-10), 1172-1184 (2008).
  14. Choi, Y. Y., et al. Controlled-size embryoid body formation in concave microwell arrays. Biomaterials. 31 (15), 4296-4303 (2010).
  15. Hwang, J. W., et al. Functional clustering of pancreatic islet cells using concave microwell array. Macromol Res. 19 (12), 1320-1326 (2011).
  16. Wong, S. F., et al. Concave microwell based size-controllable hepatosphere as a three-dimensional liver tissue model. Biomaterials. 32 (32), 8087-8096 (2011).
  17. Yeon, S. E., et al. Application of concave microwells to pancreatic tumor spheroids enabling anticancer drug evaluation in a clinically relevant drug resistance model. PloS one. 8 (9), (2013).
  18. Park, J. Y., Hwang, C. M., Lee, S. H. Ice-lithographic fabrication of concave microwells and a microfluidic network. Biomed Microdevices. 11 (1), 129-133 (2009).
  19. Corning, D. . Sylgard 184 Silicone Elastomer. Technical Data Sheet. , (2008).
  20. Giang, U. B. T., Lee, D., King, M. R., DeLouise, L. A. Microfabrication of cavities in polydimethylsiloxane using DRIE silicon molds. Lab on a Chip. 7 (12), 1660-1662 (2007).
  21. Choi, J. S., et al. Capture and culturing of single microalgae cells, and retrieval of colonies using a perforated hemispherical microwell structure. RSC Advances. 4 (106), 61298-61304 (2014).
  22. Zhong, K., Gao, Y., Li, F., Zhang, Z., Luo, N. Fabrication of PDMS microlens array by digital maskless grayscale lithography and replica molding technique. Optik. 125 (10), 2413-2416 (2014).
  23. Lai, D., et al. Simple multi-level microchannel fabrication by pseudo-grayscale backside diffused light lithography. RSC advances. 3 (42), 19467-19473 (2013).
  24. Pan, J., et al. Fabrication of a 3D hair follicle-like hydrogel by soft lithography. J Biomed MAter Res A. 101 (11), 3159-3169 (2013).
  25. Mori, R., Sakai, Y., Nakazawa, K. Micropatterned organoid culture of rat hepatocytes and HepG2 cells. J Biosci Bioeng. 106 (3), 237-242 (2008).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

131

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены