JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Мы представляем технику для локализованных отправления наркотиков через транс барабанные маршрут в улитке. Доставка лекарств через этот маршрут не будет мешать эффективность противораковых химиотерапевтических препаратов, таких как цисплатин.

Аннотация

Системного администрирования защитных агентов для лечения лекарственно индуцированные ототоксичность ограничивается возможность, что эти защитные агенты могут вмешиваться химиотерапевтических эффективность основных препаратов. Это особенно верно для наркотиков цисплатин, чьи действия противоопухолевых являются аттенуированных антиоксидантов, которые обеспечивают адекватную защиту от потери слуха. Других текущих или потенциальных otoprotective агентов может представлять подобную проблему, если управление системно. Применение различных биологических или защитных агентов непосредственно к улитки позволит высокий уровень этих агентов локально ограниченных системных побочных эффектов. В настоящем докладе мы демонстрируем транс барабанные метод доставки различных наркотиков или биологических реагентов улитки, которая должна укрепить основные научные исследования на улитки и предоставляют простой способ направления использования otoprotective агентов в клиниках. В настоящем докладе подробно метод доставки транс барабанные лекарств и приводятся примеры того, как этот метод успешно использовался в подопытных животных для лечения цисплатином ототоксичность.

Введение

Периферического отдела слуховой системы изысканно чувствительна к наркотикам как цисплатин и аминогликозидами антибиотики. Цисплатин является широко используемым химиотерапевтического агента для лечения целого ряда солидных опухолей, например, яичников, яичек и головы и шеи рак. Ототоксичность опытных с использованием этого препарата дозу ограничения и довольно часто, затрагивающие 75-100% больных лечение1. Другие препараты, такие как карбоплатин и Оксалиплатин, появились как альтернативы цисплатин2,3,4,5, однако их полезность ограничена несколько рака.

Ранние исследования показали важную роль реактивнооксигенных видов (ров) в посредничестве ототоксичность, цисплатина и аминогликозидов. Последующие исследования показали, что NOX3 изоформы NADPH оксидаза является основным источником рос в улитке и управляется цисплатин6,7. Поколение ROS компромиссов антиоксидантной способности клеток, приводит к буферизации увеличилась перекисного окисления липидов клеточных мембран8. Кроме того цисплатин увеличивает производство гидроксильных радикалов, которые генерируют высокотоксичных альдегид 4-hydroxynonenal (4-HNE), инициатор клеток смерть9,10. Основываясь на этих выводах, были рассмотрены несколько антиоксидантов для лечения цисплатином ототоксичность. К ним относятся N-ацетил-цистеин (NAC), натрия тиосульфат (STS), Амифостин и D-метионина. Однако серьезную озабоченность антиоксидантной терапии является, что эти антиоксиданты могут уменьшить цисплатин химиотерапии эффективность при приеме системно11 через взаимодействие цисплатина с тиоловых групп в молекулах антиоксидант.

С учетом этих проблем с антиоксидантной терапии цель данного исследования заключалась в изучении транс барабанные маршрут доставки антиоксидантов и других препаратов улитки сократить потери слуха. Транс барабанные маршрут наркотиков и короткие вмешательства (Си) РНК, описанные ниже, представляется особенно многообещающим.

протокол

Руководящие принципы и протоколом, утвержденным Южного Иллинойса университета Школа медицины лабораторных животных ухода и использовать Комитет использовать мужской Wistar, которую крыс были обработаны в соответствии с национальными институтами здоровья животных. Ответ слуховой ствола мозга (ABR) была исполнена на крысах при под анестезией до введения препарата и 72 ч после проверить эффект транс барабанные лекарств.

1. слуховые мозга ответ (ABR)

Примечание: ABR измерения были собраны с использованием слухового тестирования оборудования и программного обеспечения. ABR представляет вызванные потенциалы или высокочастотных волн, генерируемых восьмого черепного нерва (волны I и II) и других выше слуховой мозг стволовых структур, включая улитковый ядра anteroventral (волна III), боковые lemniscus (волна IV) и уступает colliculus (волна V). Эти волны дифференцированы в зависимости от задержки. ABR измерения были выполнены как описано ранее12.

  1. Анестезировать крыс с смесь 90 мг/кг кетамина и 17 мг/кг Ксилазина через внутрибрюшинной инъекции. Подтвердите глубины анестезии через мыс щепотка рефлекс. Применить глазные смазки (или минеральное масло капли) в оба глаза, чтобы предотвратить высыхание глаза и избежать изъязвления во время анестезии.
  2. Место крыса в лежачем положении на грелку (37 ° C) внутри контролируемой акустической стенд. Испытательное оборудование аудиологии находится вне и рядом стенд.
  3. Вставить электродов из нержавеющей стали соответственно: земли электрода в тылу пашины, положительный электрод между двух ушей прямо на вершине черепа и отрицательные электроды ниже Пинна каждого уха.
  4. Примените акустических стимулов, с помощью высокочастотных преобразователей как взрыв тона 5 мс на 8, 16 и 32 кГц. Определение интенсивности стимула как уровень звукового давления в децибелах (дБ SPL). Это начинается в 10 дБ SPL и достигает 90 дБ SPL с размером 10-dB шаг. Калибровки звука интенсивности для максимальной мощностью 90-dB SPL с помощью импульсной точности измеритель уровня звука.
    Примечание: Результат теста дает представление о целостности органа периферического слуха, улитки и вышеупомянутые слуховой структур. Сигналы генерируются в течение 15 мс стимул ввода и задержка волн зависит от проводимости время, которое в свою очередь регулируется от трех важнейших факторов: объем мозга, интенсивности и частоты звука. Слуховых вызванных потенциалов были записаны с помощью программного обеспечения, поставляемого изготовителем.
  5. Рассмотрим минимальной интенсивности, которая может вызвать два различных сигналов (II и III) 0.5 мкВ амплитуды как порог видное место.
    Примечание: Сдвиг порога представляет собой разницу в порог, измеренная после лечения по сравнению с порога, полученные до начала лечения.

2. Транс барабанные инъекции

  1. Чтобы препарат транс tympanically, место крыса в положение левой боковой пролежни.
    1. Вставьте 2,5 мм Одноразовые ушные Корнцанги в ушной канал.
    2. С использованием хирургического область позиция корнцанги, так что барабанная перепонка видна.
    3. С помощью 29 G X ½, шприц 0,5 мл инсулина, составить 50 мкл [R] - N - фенил изопропиловый аденозина (R-Пиа) раствор (1 мкм), 8-Cyclopentyl-1,3-dipropylxanthine (DPCPX) раствора (3 мкм) или siRNA раствор (0,9 мкг) для вставки (5 единиц).
    4. Используйте Корнцанги направлять иглу в регионе передней нижней барабанной перепонки.
    5. Засуните отверстие через мембрану с иглой и назначать лекарственные средства, упомянутые в 1.2.3. Разрешить крысы на отдых в этом положении в течение 15 мин.
      Примечание: 50 мкл должна быть адекватной тома помещалось барабанной перепонки. Не жидкость должна быть в канал уха после администрации.
    6. Место крыса в правой боковой пролежни позицию и повторите шаги 1.2.1 через 1.2.5 для администрации в другом ухе.
  2. Для крыс, получавших цисплатин внутрибрюшинно место крыса в лежачем положении на грелку на 37 ° C.
    1. С помощью 21 G X 3/4 Бабочка иглы (12" длиной трубы), составить цисплатин (11 мг/кг, 1 мг/мл раствора в стерильных фосфатный буфер [PBS]).
    2. С помощью насоса шприца, администрировать цисплатин (1 мг/мл) через внутрибрюшинной инъекции более 30 мин.
      Примечание: Крыса 250г объем будет 2,75 мл со скоростью примерно 0,1 мл / мин.
  3. Продолжать следить за глубины анестезии на протяжении этих процедур. После завершения цисплатин администрация место крыса обратно в клетке в лежачем положении, убедившись, что нет ничего, чтобы воспрепятствовать ее дыхание.
  4. Контролировать крыс до тех пор, пока полностью выздоровел.

3. улитки диссекции и декальцинации

  1. После окончательного ABR (после 72 ч) анестезировать Крыса с смесь 90 мг/кг кетамина и 17 мг/кг Ксилазина через внутрибрюшинной инъекции. Подтвердите анестезии с ног щепотка рефлекс. Усыпить крыс через обезглавливание.
  2. Проанализируем, височной кости, как описано ранее,13.
  3. Место улитки в параформальдегида 4% в 1 x PBS решение в пузырек 7-ОД стеклом сцинтилляционные (полностью охватывающих улитки). Поставить в холодильник на ночь при 4 ° C. Удаление параформальдегида и мыть с ПБС при комнатной температуре.
  4. Удаление PBS и полностью заполнить трубу с 120-мм раствором ЭДТА (рН 7.3). Место на вращателе при комнатной температуре и позволяют декальцинации для 2-3 недели, изменив решение ЭДТА ежедневно.

4. Cryosectioning

  1. По завершении декальцинации полностью погрузите улитки в следующие решения (7 мл) на 24 ч в 4 ° C: 10% сахарозы, 20%-ая сахароза, 1:1 смесь 20%-ая сахароза, и оптимального раскроя температуры (OCT) внедрение комплекса.
  2. Место свежие октября соединения для заполнения и полностью покрывают улитки в 15 x 15 мм x 5 мм одноразовые, встраивание формы. Ориентируйте улитки на его стороне, так что это параллельно нижней части встраивание формы, как описано в Whitlon и др. 14
  3. Сразу же место плесень на сухой лед в OCT и храните при температуре-80 ° C на ночь.
  4. Погружать Микроскоп слайды в 0.01% поли-L-лизин при комнатной температуре за 30 мин удалить слайды, не промыть и позволяют для высыхания на ночь. Используйте эти слайды для cryosections.
  5. Удаление улитки в октября из морозильной камеры-80 ° C и поместите его на сухой лед. Используя острые микротом лезвия (L x ш: 80 мм x 8 мм, толщиной 0,25 мм, угол резки 34 °), раздел OCT блоков на 10 мкм, с использованием криостата при-30 ° C. Место два раздела на слайд.
  6. Охладите слайды на 4 ° C, когда закончите.

5. иммуногистохимии

  1. Место слайды в стекло микроскопа, окрашивание блюдо на коммуникационном слайд. Заполнить блюдо с 350 мл ПБС и мыть слайды для 5 минут три раза при комнатной температуре.
  2. Удаление слайдов из блюдо и высушить область, окружающие ткани, с помощью сухой очистки, будучи не забудьте высушить ткань.
    1. С помощью жидкого блокировки ручки, нарисуйте круг вокруг секции ткани.
  3. Блокировать ткани на 1 ч при комнатной температуре, добавляя 150 мкл блокирования решения, содержащие 10% нормальной (осел) сыворотки, 1% неионогенных моющего средства и 1% BSA в однократном ПБС.
  4. Кран избыток блокирования решения и инкубировать ткани на ночь при 4 ° C в камере увлажненный с 150 мкл 10% нормальной (осел) сыворотки, 0.1% неионогенных моющего средства, и основное антитело (см. Примечание ниже) и в однократном ПБС.
    Примечание: Для следующих антител, использовались эти разведения: Рисунок 2 и 3, p-STAT1 Ser727 1: 300. Рисунок 4, p-STAT1 Ser727, масштаба 1: 100 и 1: 100 TRPV1.
  5. Место слайды в стекло микроскопа, окрашивание блюдо на коммуникационном слайд. Заполнить блюдо с 350 мл ПБС и мыть слайды 5 минут три раза при комнатной температуре.
  6. Проинкубируйте с вторичные антитела, разбавленный раствор, содержащий неионогенные 0,01% моющего средства и 10% нормальной (осел) сыворотки в однократном ПБС для 2-3 ч при комнатной температуре в камере увлажненный в темноте.
    Примечание: Для следующих вторичные антитела, использовались эти разведения: Рисунок 2 и 3, осел анти кролик IgG 1: 600. На рисунке 4родамин (TRITC) осла анти кролик IgG 1: 500 и осел анти коза IgG 1: 500.
  7. Место слайды в стекло микроскопа, окрашивание блюдо на коммуникационном слайд. Заполнить блюдо с 350 мл ПБС и мыть слайды 5 минут три раза при комнатной температуре.
  8. Коснитесь значка лишнюю жидкость со слайда и сухой слайд насухо вокруг ткани. Смонтируйте слайды, добавив одну каплю установки агента с DAPI непосредственно на ткани. Медленно место coverslip на вершине, обеспечивая, что нет пузырьков образуются под и позволяют слайды для лечения на ночь при комнатной температуре в темноте. Хранить слайды при 4 ° C.
  9. Изображения слайдов с помощью конфокальной микроскопии. Использование лазеров для визуализации следующим: УФ лазер для DAPI, 488 нм лазер для осла анти кролик IgG и 543 Нм лазер для родамин TRITC.

Результаты

ABR ответы измеряется в крыс на три дня следующей администрации цисплатин показал значительное повышение в пороговых значений. Высота этих порогов был значительно сокращен в крыс с транс барабанные [R] - N - phenylisopropyladenosine (R-Пиа), аденозин1 рецептора агонисто...

Обсуждение

Транс барабанные администрирования маршрут позволяет для локализованных доставки наркотиков и других агентов улитки, которые могли бы в противном случае производят значительные системные побочные эффекты, если управление системно. Этот метод введения препарата позволяет быстрый до...

Раскрытие информации

Конфликта интересов не объявлен.

Благодарности

Работа, описанная в этой статье была поддержана NCI RO1 CA166907, NIDCD RO1-DC 002396 и RO3 DC011621.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Ketathesia (100 mg/ml) 10 mlHenry Schein56344Controlled substance 
AnaSed Injection/Xylazine (20 mg/ml) 20 mlHenry Schein33197
2.5 mm disposable ear speculaWelch Allyn52432
Surgical ScopeZeiss
29 G X 1/2 insulin syringeFisher Scientific14-841-32 Can be purchased through other vendors
cis-Diammineplatinum(II) dichlorideSigma AldrichP4394TOXIC - wear proper PPE
Harvard 50-7103 Homeothermic Blanket Control UnitHarvard ApparatusSeries 863
Excel International 21 G X 3/4 butterfly needleFisher14-840-34 Can be purchased through other vendors
BSP Single Speed Syringe PumpBrain Tree Sci, IncBSP-99
Pulse Sound Measurement SystemBruel & KjaerPulse 13 software
High-Frequency ModuleBruel & Kjaer3560C
1/8″ Pressure-field Microphone —-Type 4138Bruel & Kjaerbp2030
High Frequency TransducerIntelligent Hearing SystemM014600
Opti-Amp Power TransmitterIntelligent Hearing SystemM013010P
SmartEP ABR SystemIntelligent Hearing SystemM011110
Disposable Subdermal EEG ElectrodesCareFusion019-409700
16% Formaldehyde, Methanol-freeFisher Scientific28908TOXIC - wear proper PPE 
7 mL Borosilicate Glass Scintillation VialFisher Scientific03-337-26Can be purchased through other vendors
EDTAFisher ScientificBP118-500Can be purchased through other vendors
SucroseFisher ScientificS5-500Can be purchased through other vendors
Tissue Plus OCT CompoundFisher Scientific4585
CryoMolds (15 mm x 15 mm x 5mm)Fisher Scientific22-363-553Can be purchased through other vendors
Microscope Slides (25mm x 75mm)MidSci1354WCan be purchased through other vendors
Coverslips (22 x 22 x 1)Fisher Scientific12-542-BCan be purchased through other vendors
Poly-L-Lysine Solution (0.01%)EMD MilliporeA-005-CCan be purchased through other vendors
HM525 NX CryostatThermo Fischer Scientific956640
MX35 Premier Disposable Low-Profile Microtome BladesThermo Fischer Scientific3052835
Wheaton™ Glass 20-Slide Staining Dish with Removable RackFisher Scientific08-812
Super Pap Pen Liquid BlockerTed Pella, Inc.22309
Normal Donkey SerumJackson Immuno Research017-000-121Can be purchased through other vendors
TritonX-100Acros21568Can be purchased through other vendors
BSASigma AldrichA7906Can be purchased through other vendors
Phospho-Stat1 (Ser727) antibodyCell Signaling9177
VR1 Antibody (C-15)Santa Cruzsc-12503
DyLight 488 Donkey anti RabbitJackson Immuno Research711-485-152Discontinued
DyLight 488 Donkey anti GoatJackson Immuno Research705-485-003Discontinued
Rhodamine (TRTIC) Donkey anti RabbitJackson Immuno Research711-025-152Discontinued
ProLong® Diamond Antifade Mountant w/ DAPIThermo FisherP36971
(−)-N6-(2-Phenylisopropyl)adenosineSigma AldrichP4532
8-Cyclopentyl-1,3-dipropylxanthineSigma AldrichC101
siRNA pSTAT1QiagenCustome MadeKaur et al. 201120
siRNA NOX3QiagenCustome MadeKaur et al. 201120
Scrambled Negative Control siRNAQiagen1022076Kaur et al. 201120

Ссылки

  1. McKeage, M. J. Comparative adverse effect profiles of platinum drugs. Drug Saf. 13 (4), 228-244 (1995).
  2. Boulikas, T., Vougiouka, M. Cisplatin and platinum drugs at the molecular level. Oncol Rep. 10 (6), 1663-1682 (2003).
  3. Fouladi, M., et al. Phase II study of oxaliplatin in children with recurrent or refractory medulloblastoma, supratentorial primitive neuroectodermal tumors, and atypical teratoid rhabdoid tumors: a pediatric brain tumor consortium study. Cancer. 107 (9), 2291-2297 (2006).
  4. Pasetto, L. M., D'Andrea, M. R., Rossi, E., Monfardini, S. Oxaliplatin-related neurotoxicity: how and why. Crit Rev Oncol Hematol. 59 (2), 159-168 (2006).
  5. Ardizzoni, A., et al. Cisplatin- versus carboplatin-based chemotherapy in first-line treatment of advanced non-small-cell lung cancer: an individual patient data meta-analysis. J Natl Cancer Inst. 99 (11), 847-857 (2007).
  6. Banfi, B., Malgrange, B., Knisz, J., Steger, K., Dubois-Dauphin, M., Krause, K. H. NOX3, a superoxide-generating NADPH oxidase of the inner ear. J Biol Chem. 279 (44), 46065-46072 (2004).
  7. Mukherjea, D., Whitworth, C. A., Nandish, S., Dunaway, G. A., Rybak, L. P., Ramkumar, V. Expression of the kidney injury molecule 1 in the rat cochlea and induction by cisplatin. Neuroscience. 139 (2), 733-740 (2006).
  8. Rybak, L. P., Husain, K., Morris, C., Whitworth, C., Somani, S. Effect of protective agents against cisplatin ototoxicity. Am J Otol. 21 (4), 513-520 (2000).
  9. Lee, J. E., et al. Role of reactive radicals in degeneration of the auditory system of mice following cisplatin treatment. Acta Otolaryngol. 124 (10), 1131-1135 (2004).
  10. Lee, J. E., et al. Mechanisms of apoptosis induced by cisplatin in marginal cells in mouse stria vascularis. ORL J Otorhinolaryngol Relat Spec. 66 (3), 111-118 (2004).
  11. Lawenda, B. D., Kelly, K. M., Ladas, E. J., Sagar, S. M., Vickers, A., Blumberg, J. B. Should supplemental antioxidant administration be avoided during chemotherapy and radiation therapy. J Natl Cancer Inst. 100 (11), 773-783 (2008).
  12. Akil, O., Oursler, A. E., Fan, K., Lustig, L. R. Mouse auditory brainstem response testing. Bio Protoc. 6 (6), 1768 (2016).
  13. Montgomery, S. C., Cox, B. C. Whole Mount Dissection and Immunofluorescence of the Adult Mouse Cochlea. J. Vis. Exp. (107), e53561 (2016).
  14. Whitlon, D. S., Szakaly, R., Greiner, M. A. Cryoembedding and sectioning of cochleas for immunocytochemistry and in situ hybridization. Brain Res Brain Res Protoc. 6 (3), 159-166 (2001).
  15. Londos, C., Cooper, D. M., Wolff, J. Subclasses of external adenosine receptors. Proc Natl Acad Sci. 77 (5), 2551-2554 (1980).
  16. Lohse, M. J., Klotz, K. N., Lindenborn-Fotinos, J., Reddington, M., Schwabe, U., Olsson, R. A. 8-Cyclopentyl-1,3-dipropylxanthine (DPCPX)--a selective high affinity antagonist radioligand for A1 adenosine receptors. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 336 (2), 204-210 (1987).
  17. Rybak, L. P., Whitworth, C., Scott, V., Weberg, A. D., Bhardwaj, B. Rat as a potential model for hearing loss in biotinidase deficiency. Ann Otol Rhinol Laryngol. 100 (4), 294-300 (1991).
  18. Mukherjea, D., et al. NOX3 NADPH oxidase couples transient receptor potential vanilloid 1 to signal transducer and activator of transcription 1-mediated inflammation and hearing loss. Antioxid Redox Signal. 14 (6), 999-1010 (2011).
  19. Kaur, T., et al. Adenosine A1 receptor protects against cisplatin ototoxicity by suppressing the NOX3/STAT1 inflammatory pathway in the cochlea. J Neurosci. 36 (14), 3962-3977 (2016).
  20. Kaur, T., Mukherjea, D., Sheehan, K., Jajoo, S., Rybak, L. P., Ramkumar, V. Short interfering RNA against STAT1 attenuates cisplatin-induced ototoxicity in the rat by suppressing inflammation. Cell Death Dis. 2 (180), (2011).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

133NOX3STAT1TRPV1

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены