Экономичная и универсальная высокопроизводительная система очистки белка с использованием многоколоночного пластинчатого адаптера

Резюме

Адаптер пластин с несколькими колонками позволяет сопроцессировать колонны хроматографии с многопробойными коллекторными пластинами для параллельной аффинной или ионообменной очистки, обеспечивая экономичный высокопроизводительный метод очистки белка. Его можно использовать под действием силы тяжести или вакуума, давая миллиграммовые количества белка с помощью доступных приборов.

Аннотация

Очистка белка необходима для изучения структуры и функции белка и обычно используется в сочетании с биофизическими методами. Это также ключевой компонент в разработке новых терапевтических средств. Развивающаяся эра функциональной протеомики подпитывает спрос на высокопроизводительную очистку белка и улучшенные методы, облегчающие это. Было выдвинуто гипотеза, что многоколонный пластинчатый адаптер (MCPA) может соприкосноветь несколько хроматографических колонок различных смол с многопробойными пластинами для параллельной очистки. Этот метод предлагает экономичный и универсальный метод очистки белка, который может использоваться под действием силы тяжести или вакуума, соперничая по скорости с автоматизированной системой. MCPA может быть использован для восстановления миллиграммовых выходов белка доступным и эффективным по времени методом для последующей характеристики и анализа. MCPA используется для высокопроизводительной аффинной очистки доменов SH3. Ионный обмен также был продемонстрирован с помощью MCPA для очистки белка после Ni-NTA аффинной хроматографии, указывая, как эта система может быть адаптирована к другим типам очистки. Благодаря его установке с несколькими колоннами, индивидуальная настройка параметров может быть выполнена в той же очистке, недостижимой современными методами на основе пластин.

Введение

Методы очистки белков для достижения миллиграммовых количеств очищенных белков необходимы для их характеристики и анализа, особенно для биофизических методов, таких как ЯМР. Очистка белка также занимает центральное место в других областях исследований, таких как процессы открытия лекарств и исследования белково-белкового взаимодействия; однако достижение таких количеств чистого белка может стать узким местом для этих методик^1,2,3. Основным методом очистки белка является хроматография, которая включает в себя множество методов, которые опираются на индивидуальные особенности белков и их метки. В аффинной хроматографии белки имеют дополнительный белковый или пептидный мотив, который работает как метка, имея сродство к определенному субстрату на хроматографической смоле^4. Наиболее распространенным методом сродства является иммобилизованная аффинная хроматография металлов (IMAC) с использованием помеченных His белков, тогда как другим популярным методом является ионообменная хроматография, которая разделяет белки на основе их заряда. Для обеспечения высочайшей чистоты сочетание аффинной хроматографии и ионного обмена часто используется вместе, что обычно требует дорогостоящего лабораторного оборудования для высокой пропускной способности.

Развивающаяся эра функциональной протеомики подпитывает спрос на высокопроизводительные методы очистки не единичных белков для специфического анализа, а большого количества белков одновременно для всестороннего анализа и исследований генома^5. Иммобилизованная аффинная хроматография металлов (IMAC) является одним из наиболее широко используемых методов высокопроизводительной очистки белка^6,7, но ее автоматизированные системы являются дорогостоящими и недоступными для небольших лабораторий^8. Более доступные альтернативы на основе пластин, которые в настоящее время доступны, используют доступное лабораторное оборудование, такое как вакуум. Хотя эти методы успешны в улучшении скорости очистки, он может достичь высокой пропускной способности очистки только в меньших масштабах, давая только белок в диапазоне микрограммов. Эти ограничения означают, что предварительно упакованные 96 фильтрующие пластины (например, от GE Healthcare, в настоящее время принадлежащей Cytiva) не могут быть использованы до биофизических методов^9. Гравитационная хроматография является наиболее экономичным методом очистки; однако настройка нескольких столбцов неудобна и может быть подвержена ошибкам для нескольких белков.

Был разработан и доказано, что многоколонный пластинчатый адаптер (MCPA) успешно и удобно запускает параллельные сродственные хроматографические колонки одновременно для очистки помеченных His дрожжевых доменов SH3^10. MCPA предлагает экономичный высокопроизводительный метод очистки, который не зависит от дорогостоящих приборов. Его гибкая конструкция может эффективно очищать миллиграммы белка с помощью нескольких аффинных хроматографических колонок под действием силы тяжести или вакуума. Кроме того, тип смолы, объем и другие параметры могут быть скорректированы для каждого отдельного столбца для более быстрой оптимизации. Это исследование демонстрирует, что ионообменная хроматография MCPA может быть использована в сочетании с аффинной хроматографией MCPA для усиления очистки домена Abp1 SH3. Кроме того, с помощью этих методов можно параллельно разделить до 24 различных белков.

протокол

1. Денатурировающая Ni-NTA хроматография

1. Подготовка буферов
   ПРИМЕЧАНИЕ: Подробная информация обо всех буферах приведена в таблице 1.
   1. Восполняйте 500 мл 0,5 М NaOH, обязательно сначала добавьте воду Milli-Q, а затем медленно добавляйте NaOH, пока якокер находится на мешалке. Фильтрация с помощью фильтра 0,22 мкм.
   2. Приготовьте 100 мл 0,1 мл сульфата никеля и процедить с помощью фильтра 0,22 мкм.
   3. Приготовьте 50 мл 2 М имидазола и процедилите с помощью фильтра 0,22 мкм.
   4. Готовят и фильтруют 0,22 мкм 1,5 л денатурирующего буфера при рН 8,0, состоящего из 5,3 мМ Tris-HCl, 4,7 мМ Трис-базового (Tris (гидроксиметил)метиламина), 13,7 мМ₂PO_4,86,3 мМ_Na2HPO₄ и 6 М гуанидина гидрохлорида.
   5. Готовят и фильтруют 0,22 мкм 500 мл лизисного буферного раствора имидазола 10 мМ, растворенного в денатурировавшем буфере (см. 1.1.4), используя запас имидазола 2 М.
   6. Готовят и фильтруют 0,22 мкм 500 мл промывочного буферного раствора имидазола 10 мМ, растворенного в денатурировавшем буфере (см. 1.1.4), используя запас имидазола 2 М.
   7. Подготовьте и фильтр 0,22 мкм 500 мл 100 мМ эдта-буфера, отрегулируйте рН до 8 с помощью 1 М NaOH.
   8. Готовят и фильтруют 0,22 мкм 500 мл элюирующего буфера, состоящего из 7 мл 99% ледниковой уксусной кислоты, в 6 М гуанидина гидрохлорида.
      ПРИМЕЧАНИЕ: При использовании собственных буферов адаптируйте в соответствии с таблицей 1.
2. Лизирование клеток (метод денатурации)
   1. Добавьте 2 мл буфера лизиса к каждому 1 г собранных гранул клеток E. coli, которые содержат чрезмерно экспрессированный белок, помеченный His. Вихрь в течение нескольких минут, пока клетки не будут повторно приостановлены. Оставьте образцы на коромысле на 30 минут при 4 °C.
   2. Центрифуга лизефицирует гранулы по 18 000 х г в течение 30 минут. Держите 50 мкл в морозильной камере при -20 °C, чтобы затем проанализировать гель SDS-PAGE.
   3. Осторожно высыпьте супернатанты, следя за тем, чтобы гранула не потревожилась. Лизаты должны быть прозрачного, светло-желтого цвета. Если лизаты мутные, центрифуга снова пробует; рассмотреть возможность ультразвуковой обшивки, если это возможно для разложения нуклеиновой кислоты.
   4. Отфильтруйте супернатанты через пустую колонку (без смолы, но с фильтром) и соберите в открытый лоток для сбора. Затем переложить в пробирку для использования на этапе 1.3.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если используются нативные буферы, то после этапа 1.2.1 обработайте образцы до 3 циклов замораживания/оттаивания при -80 °C или обработайте ультразвуком или френч-прессом для лиза клеток.
3. Подготовка вакуумной установки очистки и уравновешивающих колонн
   ПРИМЕЧАНИЕ: См. Рисунок 1 для настройки MCPA с 24 столбцами.
   1. Определите, сколько столбцов необходимо, а также требуемый тип и объем смолы. Как правило, для 100 мл культуры аутоиндукции (~ 2 г гранулы), экспрессирующих помеченные His-х sh3 домены с использованием плазмид на основе T7, используйте 0,6 мл смолы Ni-NTA на столбец, чтобы получить около 3 мг белка из примерно 6 мл лизата.
   2. Вставьте нужное количество колонок 12 мл (без смолы, но с фильтром) в предварительно собранную MCPA (длиннокапельную пластину с проколотым уплотнительным матом). Колонны должны плотно прилегать к отверстиям уплотнительного коврика, которые были проколоты.
   3. Если используется менее 24 столбцов, закройте пустые отверстия пустым закрытым столбцом.
   4. Возьмите открытую пластину сбора и поместите эту пластину в основание вакуумного коллектора и закройте ее верхней частью коллектора.
   5. Поместите собранный MCPA с колоннами на верхнюю часть вакуумного коллектора.
   6. Прикрепите трубку из вакуумной насосной системы к входному/соплу в нижней части вакуумного коллектора.
   7. Убедитесь, что шарики Ni-NTA находятся в 50% растворе с 20% этанолом. Прежде чем делать что-либо с бусинами, аккуратно встряхните / смешайте раствор бисера / этанола для равномерного повторного суспендирования. Затем, используя пипетку 5 мл, пипетку 1,2 мл 50% раствора в колонки. Во время пипетки убедитесь, что бусины остаются полностью смешанными.
   8. После пипетки во все 24 колонны включите вакуумный насос и запустите 20% этанол через колонну и в коллекционную пластину ниже.
   9. Выключите насос, как только весь 20% этанол пройдет через все колонны (смола Ni-NTA может выдерживать кратковременную сушку, если вакуум все еще применяется после того, как буфер прошел через колонну). Утилизируйте то, что находится в открытой тарелке для сбора, в ящик для мусора.
      ВНИМАНИЕ: Все отходы из бусин Ni-NTA опасны при обращении с бусинами или утилизации отходов, ношении перчаток, защитных плат и других СИЗ. Кроме того, утилизируйте все отходы сульфата никеля в отдельном контейнере для индивидуальной утилизации позже.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если смола новая или недавно регенерированная, остальные из этих шагов можно проигнорировать, перейдите к следующему разделу.
   10. Добавьте 3 объема смолы (1,8 мл) буфера ЭДТА 100 мМ с помощью шприца 20 мл или шприца-ретранслятора со шприцем 50 мл. Затем включите вакуумный насос, чтобы буфер ЭДТА промылся, и выключите насос после его промывки.
       ПРИМЕЧАНИЕ: Эта стирка должна удалить никель-синий цвет, но если это не так, повторяйте этот шаг, пока все столбцы не потеряют свой синий цвет. Выключите насос и вылейте содержимое открытой тарелки для сбора в ящик для отходов.
   11. Добавьте 3 объема смолы (1,8 мл) буфера NaOH 0,5 М в каждую колонку, прежде чем включать насос и запускать его через каждую колонку. Пустая коллекционная тарелка.
   12. Добавьте в каждую колонку 4 объема смолы (2,4 мл) 100 мМ сульфата никеля. Включите вакуумный насос и прогоните его через колонну еще раз.
   13. Добавьте 10 объемов смолы (~6000 мкл) воды Milli-Q и прогонйте ее через колонны. Выключите насос и вылейте содержимое тарелки для сбора в ящик для мусора.
   14. Дважды промывайте колонны с 4 объемами смолы (2,4 мл) имидазола 10 мМ в промывном буфере (денатуривном или нативном) каждый раз, чтобы удалить избыток никеля и уравновесить. Пустая коллекционная тарелка.
       ПРИМЕЧАНИЕ: Если какие-либо колонны работают значительно медленнее, отсоедините колонну и контрольный воздух можно протолкнуть через MCPA с помощью большого шприца. Если он разблокирован, используйте другой столбец со свежим фильтром.
   15. Если на MCPA будет очищено несколько различных образцов / белков, замените открытую пластину сбора на пластину сбора 48 x (5 мл / скважина). Однако, когда на каждой колонке используются только одни и те же образцы белка, можно продолжать использовать открытую пластину для сбора.
4. Погрузка, мойка и элюирование
   1. При выключении вакуума загружают лизаты в колонны (количество лизата будет варьироваться, как правило, от 1 до 12 мл или более и может потребоваться для загрузки несколькими партиями). Используйте тонкую пластиковую мешалку, чтобы аккуратно смешать шарики и лизат в колонке, чтобы максимизировать связывание.
   2. После осторожного перемешивания каждой колонки в течение нескольких минут включите вакуумный насос и пропущите лизаты через колонны. Если выполняется несколько образцов белка, используйте пластину для сбора 48 скважин и убедитесь, что пластина сбора заменена на другую пластину из 48 скважин после того, как пройдет 4 мл, поскольку колодцы в этих пластинах могут вместить только 4 мл раствора. Продолжайте запускать лизат до тех пор, пока все лизаты не будут запущены через столбец. Заморозьте пластины для сбора, которые содержат проточную часть.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Столбцы могут стать «заблокированными», в результате чего лисат проходит через столбец намного медленнее, чем должен. Это легко заметить, так как соседние колонны будут течь с нормальной скоростью. Если это происходит, рекомендуется перенести смесь лизата и смолы в колонку, содержащую свежий фильтр.
   3. Замените пластину сбора пустой открытой пластиной для сбора, а затем добавьте 9 объемов смолы (5,4 мл) 10 мМ буфера для промывки имидазола в каждую колонку и включите вакуум и запустите промывку. Повторите это 4-5 раз. Чтобы избежать переполнения, периодически опорожняйте мусорную плиту.
      1. Затем замените пластину сбора на чистую соответствующую пластину (открытая пластина только для одного белка и 96 хорошо, если есть несколько белков, гарантируя, что A1 находится в верхнем левом углу).
   4. Используя шприц-ретранслятор с шприцем 12,5 мл, пипетка ~ 1 объем смолы (0,75 мл) денатурирует буфер элюирования в каждую колонку.
   5. Чтобы избежать вспенивания белка, включите вакуумный насос при минимальной настройке. Осторожно поднимите MCPA, чтобы убедиться, что ничего не осталось капать в коллекционную пластину.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Альтернативой элюдации вакуумом или гравитацией является проталкивание шприцевого плунжера на 10 мл в верхнюю часть колонны, чтобы мягко протолкнуть буфер элюирования через колонну. Делайте это для каждой колонки, будьте осторожны при снятии шприцевого поршенного поршеня, чтобы не потревожить бусины в нижней части колонны. После того, как буфер элюдения будет проталкнут, аккуратно извлеките плунжер шприца из последней колонны, в которую он использовался, и кратковременно включите вакуумный насос, чтобы удалить последние капли из колонн.
      1. Если была использована сборная пластина из 96 скважин, то проверьте коллекционную пластину, чтобы убедиться, что то, что течет из каждой колонны через длинную капельную пластину, течет только в одну скважину и ничего не элюируется в соседние колодцы на пластине сбора.
   6. Для следующего элюирования повторите вышеуказанные 2 шага и соберите в свежую многоязычную (разные образцы) или открытую коллекционную пластину (те же образцы).
   7. Необязательный шаг, возьмите 50 мкл аликвоты каждого элюирования для анализа чистоты и концентрации.
   8. Добавьте 2 мл 20% этанола в каждую колонку и прогонйте его с помощью вакуумного насоса. Затем добавьте еще 2 мл 20% этанола в колонны и используйте свежую тонкую пластиковую мешалку, чтобы смешать 20% этанол и шарики перед переносом в трубку 50 мл для хранения при 4 °C. Очистите колонны и проверьте, что вода свободно течет через каждую колонну, а затем очистите все и уберите для последующего использования.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Некоторые столбцы в конечном итоге будут заблокированы и будут работать слишком медленно, эти столбцы должны быть заменены или фильтры очищены. Таким образом, рекомендуется периодически тестировать фильтры, удаляя смолу и заполняя столб водой, чтобы увидеть, быстро ли она протекает. Фильтры можно очищать, оставляя закрытую колонну, заполненную денатурирующим буфером элюирования и встряхивая на ночь.

2. Ионный обмен - Очистка одного белка

1. Подготовка буферов
   ПРИМЕЧАНИЕ: Подробная информация обо всех буферах приведена в таблице 1
   1. Приготовьте 2 л низкосолевого буфера: 10 мМ Tris pH 8,1 (5 мМ Tris Acid, 5 мM Tris Base). Фильтруйте раствор с помощью фильтра 0,22 мкм.
   2. Приготовьте 0,5 л буфера с высоким содержанием соли: 10 мМ Tris pH 8,1, 4 М NaCl. Измерьте 116,9 г NaCl и сделайте до 0,5 л с 10 мМ Tris pH 8,1 сверху. Фильтруйте раствор с помощью фильтра 0,22 мкм.
2. Создание серии концентраций соли: 0-1 M NaCl.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Диапазон концентраций соли может быть скорректирован для каждого белка.
   1. Установите 24 x 50 мл маркированных центрифужных трубок в стойку
   2. Используя буферы, изготовленные выше, подготовьте 24 х 14 мл разбавлений NaCl в диапазоне от 0 до 1000 мкМ. Начните с добавления необходимых объемов 4 М NaCl 10 мМ Tris. Это может быть сделано с шагом 25 мМ или 50 мМ в зависимости от белка.
   3. Затем добавьте необходимые объемы 10 мМ Трис к каждой трубке. Переверяйте каждую трубку несколько раз, чтобы перемешать.
3. Подготовка образцов
   1. Получение образцов, которые должны быть очищены ионным обменом. При желании возьмите аликвоту 50 мкл для последующего анализа.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Образцы всегда должны храниться в холодном цвете; это могут быть лизаты, или, может быть, после Ni-NTA. Образцы из Ni-NTA в денатурных буферах требуют диализа или буферного обмена в буфере Tris 10 мМ. Образцы из Ni-NTA в нативных буферах могут быть разбавлены буфером Tris 10 мМ для снижения концентрации соли, чтобы белок мог связываться со смолой IEX.
   2. Отжимают образцы при 18 000 х г в течение 10 минут.
   3. Осторожно вылейте супернатант в весовую лодку. Не нарушайте гранулу.
   4. Осторожно возьмите супернатант в шприц 20 мл и прикрепите фильтр 0,22 мкм.
   5. Медленно выталкивайте супернатант через фильтр в свежую трубку объемом 50 мл.
   6. Если требуется разбавление, разбавляют супернатант с буфером Триса 10 мМ, сделанным выше (в этом эксперименте супернатант разбавляли 1 из 2). Тем временем хранить при 4 °C.
4. Подготовка установки вакуумной очистки и уравновешивания
   ПРИМЕЧАНИЕ: В этом протоколе для очистки IEX одного образца используется только одна колонка. О множественных очистках см. в следующем разделе.
   1. Определите желаемый тип и объем смолы. Как правило, для получения до 20 мг частично чистых his-помеченных доменов SH3 используйте 0,4 мл смолы быстрого потока Q-сефарозы на столбец (см. шаг 2.4.8).
   2. Вставьте 24 открытых пустых столбца (пустых без фильтра внизу) в предварительно собранный MCPA. Колонны должны плотно прилегать к отверстиям уплотнительного коврика, которые были проколоты.
   3. Поместите шприц-поршень на 10 мл в каждую пустую колонну, кроме первой позиции, где начнется очистка.
   4. Протолкните дно открытой колонны (с фильтром) через резиновую прокладку плунжера шприца 5 мл (которая была пробита), чтобы сформировать резиновое кольцо на конце колонны. Это резиновое кольцо обеспечит хорошее уплотнение, когда эта колонна вставлена в каждую пустую колонну выше. На данный момент вставьте этот столбец в первый пустой столбец в MCPA.
   5. Возьмите открытую пластину сбора и поместите эту пластину в основание вакуумного коллектора и закройте ее верхней частью коллектора.
   6. Поместите собранный MCPA (с колоннами) поверх вакуумного коллектора.
   7. Прикрепите трубку из вакуумной насосной системы к входному отверстию/соплу в нижней части вакуума.
   8. Отрежьте синий наконечник пипетки ~ 2 см от дна и используйте, чтобы взять 800 мкл шариков Q-сефарозы (или любой другой ионообмонной смолы), гарантируя, что раствор этанола 50/50 50 смешивается, чтобы избежать наслоения. Пипетка 800 мкл в одну открытую колонну (с фильтром) в первом положении и как только шарики оседают на дно колонн, включают вакуум, достаточный для прохождения через 20% этанол.
   9. Вымойте колонну, содержащую бусины сефарозы, 2 х 2 мл 10 мМ Трис. Выключите вакуум непосредственно перед прохождением буфера Tris, чтобы предотвратить высыхание смолы. Бег можно отбросить.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если смола использовалась ранее, регенерируете путем промывки в 5 объемах смолы 4 M NaCl, а затем 5 объемов смолы 10 мM Tris перед этапом 2.4.9.
5. Погрузка, мойка и элюирование
   1. Перенесите весь образец, который должен быть очищен (см. раздел 3), в колонну Q sepharose в первом положении, используйте небольшую пластиковую петлю для перемешивания образца и шариков в течение примерно ~ 2 минут перед включением вакуумного насоса.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В случаях избытка супернатанта (>12 мл) остерегайтесь переполнения колонны. Дайте образцу пройти, затем добавьте еще, смешивая, прежде чем снова пробежать.
   2. Сохраните/заморозьте прохождение для последующего анализа.
   3. Поместите еще одну открытую пластину сбора в вакуумный коллектор, а затем вымойте каждую колонну сефарозы 2 x 2 мл 10 мМ Tris и храните.
   4. Вставьте пластину для сбора 96 скважин, убедившись, что A1 находится в левом верхнем углу.
   5. Чтобы собрать первую фракцию элюирования, снимите плунжер шприца со следующей колонны, переместите столбец Q sepharose в это положение и поставьте плунжер шприца в предыдущее положение. Затем пипетка 1 мл первой концентрации соли в колонку Q сефарозы. Включите насос и соберите элюирование. Выключите насос так же, как жидкость выстилкивается рядом с бусинами, чтобы избежать высыхания бусин.
   6. Чтобы собрать следующую фракцию элюирования, извлеките плунжер шприца из следующей колонны, переместите столбец Q sepharose в это положение и поставьте плунжер шприца в предыдущее положение.
   7. Добавьте 1 мл следующей концентрации соли в колонку и повторяйте процесс до тех пор, пока не будут использованы все концентрации и не будет собрано 24 элюирования в 24 отдельных скважинах. Проверьте, не попала ли жидкость в соседние скважины.
   8. Промыть колонну 2 мл 4 М NaCl 10 мМ Трис. Пусть это пройдет.
   9. Промыть 2 мл 20% этанола. Дайте этанолу работать до тех пор, пока он не окажется чуть выше шариков и герметичной колонны для хранения.
   10. Храните 96 листов сбора скважин и анализируйте с помощью УФ-спектроскопии и SDS PAGE.

3. Ионный обмен - Одновременная очистка 24 различных белков

ПРИМЕЧАНИЕ: Подробную информацию о создании буферов, серии концентраций соли и подготовке проб см. на этапах 2.1-2.3.

1. Подготовка установки очистки
   ПРИМЕЧАНИЕ: То, как настроена система очистки, во многом зависит от того, сколько белков будет очищено и сколько солевых состояний будет использоваться. Для очистки 12 образцов максимум до 24 образцов одновременно требуется сборная пластина для каждой концентрации соли, используемой для элюирования. Для менее чем 12 образцов можно переместить хроматографические колонки на несколько позиций в пределах одного MCPA перед изменением коллекционных пластин. В этом случае нет необходимости размещать колонны в пустых колоннах и их можно непосредственно прикрепить к уплотнительному мату MCPA. Приведенный ниже протокол предназначен для 24 одновременных ионообмосных чисток.
   1. Поместите собранный MCPA непосредственно прикрепленным к 24 пустым колоннам с фильтрами поверх вакуумного коллектора, который содержит открытую коллекторную пластину, и подготовьте и промыте 24 ионообмных колонны, как в одном методе очистки выше. Для этой очистки удобно использовать ретранслятор Эппендорфа или шприц для быстрой пипетки в колонны.
2. Погрузка, мойка и элюирование
   1. Поместите 48-скважинную коллекторную пластину в основание вакуумного коллектора перед установкой MCPA (с прикрепленными промытыми очистными колоннами). Убедитесь, что A1 находится в левом верхнем углу.
   2. Пипетка каждого образца белка (до 5 мл за раз) в соответствующую колонку. Перемешайте каждую колонку, используя тонкую пластиковую петлю (по одной петле для каждой колонки, чтобы избежать загрязнения) в течение примерно 2 минут. Затем включите вакуумный насос и дайте супернатанту протекать.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В случаях избыточного супернатанта остерегайтесь переполнения колонн. Пусть образец пройдет через столбец, затем добавьте еще, смешивая, прежде чем снова пробежать.
   3. Храните/замораживает 48-скважинную коллекционную пластину для последующего анализа, так как она содержит проточную часть для каждого белка.
   4. Поместите еще одну 48-скважинную коллекторную пластину в вакуумный коллектор, а затем промыть каждую колонну сефарозы 2 x 2 мл 10 мМ Tris.
   5. Вставьте первую 96-скважинную коллекторную пластину в коллектор, убедив, что A1 находится в верхнем левом углу, а затем пипетку 1 мл первой концентрации соли в каждую колонну, а затем включите вакуумный насос, чтобы запустить его через колонны. Снимите пластину для сбора, накройте парапленкой и храните при 4 °C для анализа.
   6. Повторите шаг для каждой последующей концентрации соли, используемой для элюирования. Убедитесь, что для каждого элюляции используется новая пластина для сбора, а также что каждая пластина для сбора помечена и хранится.
   7. Промывайте каждую колонну 2 мл 10 мМ Tris, 4 М NaCl.
   8. Вымойте каждую колонку 2 мл 20% этанола. Дайте этанолу работать до тех пор, пока он не окажется чуть выше бусин и герметизных колонн для хранения.
   9. Храните 96 пластин для сбора скважин и анализируйте с помощью УФ-спектроскопии и SDS-PAGE.

Результаты

Например, MCPA успешно очистил 14 мутантов AbpSH3 в условиях денатурирования с помощью Ni-NTA(рисунок 2A). Можно увидеть небольшое загрязняюще ~ 25 кДа, однако белок все еще в значительной степени чистый. Считается, что этим загрязнителем является YodA, общий совместно очищенный бело?...

Обсуждение

Метод надежен и прост в использовании для относительно неопытных биохимиков белка, однако есть несколько соображений, которые следует иметь в виду.

Предостережение при переполнении коллекционных пластин

Сама коллекторная плита из 48 скважин вме?...

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
2 mL/ well collection plate	Agilent technologies	201240-100
5 mL/ well collection plate	Agilent technologies	201238-100
12 mL chromatography columns	Bio-Rad	7311550
96 well long drip plate	Agilent technologies	200919-100	Come with 0.25 um filters which are to be removed.
96 well plate seal/mat	Agilent technologies	201158-100	Should be peirceable
His60 Ni Superflow Resin	Takara Bio	635660
HiTrap Q HP anion exchange column	GE Healthcare (Cytiva)	17115301
Lvis plate reader	BMG LABTECH		Compatible with FLUOstar Omega plate reader
Male leur plugs	Cole-Parmer	EW-45503-70
PlatePrep 96 well Vacuum Manifold Starter kit	Sigma-Aldrich	575650-U
Reservoir collection plate	Agilent technologies	201244-100
The Repeater Plus	Eppendorf	2226020	With 5 mL and 50 mL syringes
VACUSAFE vacuum	INTEGRA	158 320	The vacusafe vacuum has a vacuum range from 300 mBar to 600 mBar and a 4 L waste collection bottle