JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Протокол сочетает в себе технику быстрого восстановления охлаждения легких с нормотермической регионарной перфузией брюшной полости для получения трансплантата брюшной полости у контролируемых доноров асистолии, что является безопасным и полезным методом расширения пула доноров.

Аннотация

Контролируемое донорство после смерти от кровообращения (cDCD) способствовало увеличению числа доноров во всем мире. Опыт, опубликованный в последние годы, подтверждает, что результаты после трансплантации легких от cDCD аналогичны результатам от доноров смерти мозга; Тем не менее, использование легких от доноров асистолии остается низким. Это может быть вызвано несколькими причинами: различная правовая база в разных странах и центрах с различными предсмертными вмешательствами, неадекватная помощь донорам легких перед закупкой или даже плохой опыт работы с процедурами и протоколами cDCD.

Первоначально метод быстрого восстановления широко использовался для забора органов грудной клетки и брюшной полости при цДКД, но в последнее десятилетие нормотермическая регионарная перфузия брюшной полости (ANRP) с помощью устройств экстракорпоральной мембранной оксигенации стала полезным методом восстановления кровотока к органам брюшной полости, что позволяет улучшить их качество и функциональную оценку до трансплантации. Это усложняет процедуру донорства и вызывает сомнения в повреждении трансплантатов из-за двойной температуры.

Целью данной статьи является описание протокола, основанного на опыте работы одного центра с донорами Маастрихта III, сочетающего охлаждение легких, быстрое восстановление грудной клетки и нормотермическую регионарную перфузию брюшной полости. Объясняются советы и рекомендации, посвященные предсмертным вмешательствам и методам процедуры заготовки легких. Это может помочь свести к минимуму нежелание специалистов использовать эту комбинированную технику и побудить другие донорские центры использовать ее, несмотря на возросшую сложность процедуры.

Введение

Донорство после смерти от кровообращения (DCD) началось в Испании с неконтролируемых доноров. В 1996 году был опубликован первый национальный консенсусный документ по DCD в качестве руководства по практике неконтролируемого донорствапосле смерти от кровообращения 1 (uDCD), также устанавливающий мораторий на контролируемое донорство после смерти от кровообращения (cDCD). В 2012 году был достигнут новый консенсус, заложивший основу и законодательную базу для практики как uDCD, так и cDCD2. В настоящее время Испания является одной из самых активных стран в области DCD, достигнув самого высокого уровня доноров после смерти от кровообращения в мире3. В 2021 году этот тип доноров составлял почти 35% от общего числа доноров в стране, при этом наблюдалось заметное снижение uDCD, и донорами были исключительно cDCD4.

Заготовка органов при cDCD обычно выполняется с использованием метода сверхбыстрого восстановления5. После констатации смерти и по истечении бесконтактного периода проводится быстрая стернотомия и лапаротомия. Брюшную аорту и легочную артерию канюлируют и промывают холодными перфузионными растворами для сохранения органов брюшной полости и грудной клетки, а перед извлечением проводят местное охлаждение6. В этой ситуации цДКД характеризуется непредсказуемыми последствиями теплой ишемии, после отмены поддерживающей жизнь терапии. Ишемическое повреждение в этот период агонической гипотензии и прогрессирующей гипоксии, за которым следует неконтактный период после остановки сердца, еще больше усугубляется более поздним периодом холодовой ишемии7. Эта комбинация теплой и холодной ишемии, по-видимому, вредна, особенно для трансплантатовбрюшной полости 8,9,10, что вызывает большее нежелание среди профессионалов использовать эти органы от доноров cDCD.

Чтобы свести к минимуму эти риски, с растущим интересом была разработана модель сохранения in situ, основанная на предыдущем опыте испанских команд, работающих в uCDC11. Использование систем экстракорпоральной мембранной оксигенации (ЭКМО) для восстановления кровотока после смерти и до восстановления трансплантата может обратить вспять метаболические отклонения, вызванные ишемией, и восстановить клеточную физиологию1, 2. Абдоминальная нормотермическая регионарная перфузия (ANRP) может улучшить качество ишемически поврежденных органов при cDCD13. Функция органа может быть оценена и улучшена, что позволяет лучше выбирать трансплантаты брюшной полости для трансплантации.

Недавний международный многоцентровый опыт свидетельствует о том, что ANRP по сравнению с методом быстрого восстановления (ОР) помогает преодолеть традиционные ограничения при цДКД, снижая частоту посттрансплантационных билиарных осложнений, способствуя успешной трансплантации более старой печени и улучшая выживаемость печеночного трансплантата14,15. В почках он, по-видимому, улучшает краткосрочные исходы с более низкой отсроченной функцией трансплантата и более высокими показателями выживаемости трансплантата в течение 1 года16. Обладая этими доказательствами, ANRP при cDCD получил преимущества по сравнению с методом быстрого восстановления для получения трансплантата брюшной полости и в настоящее время применяется в нескольких европейских странах и других частях мира17,18.

Однако использование легких доноров cDCD было быстро принято во всем мире. Функциональное время теплой ишемии легких до 60 мин, по-видимому, не влияет на выживаемость19. За последнее десятилетие несколько центров и многопрофильных учреждений сообщили о результатах трансплантации легких от cDCD, сопоставимых с результатами DBD20,21. Метод RR является обычным методом забора легких: легкие охлаждают местно и удаляют после промывания холодным консервационным раствором22.

О первых опытах сочетания ANRP и RR легких при cDCD сообщили две группы из Соединенного Королевства23,24. Спустя годы была опубликована вариация этой техники с добавлениемпредсмертных вмешательств 25. Результаты показывают, что этот метод двойной заготовки безопасен и эффективен как для брюшных, так и для грудных трансплантатов26. Очевидно, что процедура донорства усложняется. Она требует технологических и человеческих ресурсов, достаточных организационных возможностей, имеет более высокие экономические затраты. Все это может отбить у профессионалов желание начать программу. Цель этого исследования состоит в том, чтобы представить протокол, специально ориентированный на посмертные вмешательства, канюляцию и установку баллона для окклюзии аорты, с советами и рекомендациями, полученными из опыта, а также прокомментировать различные технические детали, которые следует учитывать при извлечении легких при использовании ARNP. В настоящее время в Центре доноры cDCD стали основным источником трансплантатов для трансплантации грудной и брюшной полости.

протокол

Эти вмешательства проводятся у постели больного в отделении интенсивной терапии (ОИТ). Этот протокол соответствует руководящим принципам комитета по этике Университетской больницы Маркиза де Вальдесильи и соответствует испанской правовой базе в отношении процедур донорства. Было получено информированное согласие от ближайших родственников на видеозапись процедур исследования. cDCD рассматривается у пациентов с катастрофическим повреждением головного мозга или терминальным сердцем или нейродегенеративным заболеванием, для которых было принято решение об отмене поддерживающей жизнь терапии (WSLT). Критерии исключения и оценка легких такие же, как и у доноров смерти мозга (табл. 1).

1. Предсмертные вмешательства у донора

  1. Гепаринизация: внутривенно вводят донору болюс 300-500 МЕ/кг гепарина.
  2. Канюляция
    ПРИМЕЧАНИЕ: Канюляция выполняется сердечно-сосудистым хирургом и является стерильной процедурой.
    1. Подготовьте стерильный инструментальный стол со всем необходимым оборудованием (набор ЭКМО и хирургические инструменты), а также электрокоагуляционную и аспирационную систему.
    2. Подготовьте операционное поле на выбранный пах с дезинфицирующим раствором и стерильными простынями.
    3. Сделайте продольный разрез 8-10 см лезвием No 23, остановив кровотечение с помощью электрокоагуляции и зажимов Liga. Отделите края раны ретрактором и приступайте к рассечению, чтобы обнажить бедренную артерию и вену. Обхватите оба сосуда сосудистыми петлями для остановки кровотечения.
    4. Выберите подходящие диаметры канюли в соответствии с размерами сосудов и достаточно большие, чтобы обеспечить достаточный поток для перфузии органов и предотвратить проблемы с низким потоком (обычно 21 французский).
    5. Канюляют бедренную вену, вводя сначала металлическую проволоку в качестве направляющей, а затем прогрессивные расширители, чтобы, наконец, ввести канюлю. Если наблюдается кровотечение, для контроля наложите шов на полипропиленовую кисетную нить peri cannula 4-0.
    6. Таким же образом поступают и с бедренной артерией, используя в этом случае двухпросветную канюлю.
    7. Отрежьте 10-сантиметровый кусочек входной линии ЭКМО. Вставьте прямой соединитель с замком Луера с трехходовым запорным краном, собранным на одном конце детали, и подсоедините другой конец детали к артериальной канюле (рис. 1).
    8. Очистите линии ЭКМО. Используйте ирригационную грушу с солевым раствором, чтобы заполнить линии при соединении с канюлями. Подсоедините выходную линию ЭКМО к венозной канюле и входную линию ЭКМО к прямому разъему с помощью предварительно собранного трехходового запорного крана к артериальной канюле. Трехходовой запорный кран можно использовать для продувки системы (рис. 2).
    9. Держите линии ЭКМО зажатыми. Закрепите обе канюли в паху шелковыми швами размера 1, чтобы избежать смещения во время переноса.
    10. Поместите контролируемую линию давления в канюлю бедренной артерии и в левую лучевую артерию донора.
  3. Установка баллона для окклюзии аорты
    1. Возьмем, за основу, расстояние между мечевидным отростком донора и дистальным концом артериальной канюли и определите длину вводимого катетера, чтобы достичь грудной нисходящей аорты. Установите контрольную метку в баллоне шелковым швом или маркером.
    2. Вводят проводник из металлической проволоки через свободный просвет канюли бедренной артерии. Продолжайте работу с катетером таким же образом, ориентируясь по металлической проволоке, и вводите его до указанной отметки.
    3. Подтвердите правильное положение окклюзионного баллона с помощью портативной рентгенографии грудной клетки или рентгеноскопии (проверьте рентгеноконтрастные следы катетера над диафрагмой).
    4. Проверьте правильность функции окклюзионного баллона, заполнив его 50-кубовым конусным шприцем физиологическим раствором всего на 4-5 секунд, подтвердив, что артериальное давление из бедренной канюли исчезает, а давление из левой лучевой артерии сохраняется (рис. 3).
    5. Когда бедренный пульс исчезает, запишите объем наполнения как минимальный объем, который будет использоваться для блокировки грудной аорты во время ARNP. Если в бедренной канюле обнаружен поток, еще раз проверьте правильность позиционирования или наполнения.

2. Отмена поддерживающей жизнь терапии (WLST) и констатация смерти

  1. Перевести донора, подключенного к системе ЭКМО, в операционную. Подготовьте и задрапируйте донора стерильным способом.
  2. Установите и подготовьте растворы и линии для сохранения легких и брюшной полости. Держите хирургическую бригаду вычищенной, стерильной и готовой в соседней операционной.
  3. Используйте хронометр для регистрации теплых ишемических периодов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Функциональное теплое ишемическое время (FWIT), определяемое как время от систолического артериального давления <60 мм рт.ст. до ANRP, начинается для трансплантатов брюшной полости и введения раствора для сохранения легких через легочную артерию для легких (включая 5-минутный период без прикосновения). Рассматриваются верхние пределы 30 мин для печени и поджелудочной железы и 60 мин для почек и легких.
  4. Разрешить родственникам находиться со своим близким человеком во время WLST до объявления смерти.
  5. Инициируйте WLST. Экстубация необязательна в соответствии с пожеланиями родственника. После объявления смерти выведите родственников из операционной.
  6. По истечении 5-минутного периода без прикосновения наполните баллон для окклюзии аорты заранее определенным минимальным объемом, обеспечивающим нисходящую блокаду грудной аорты.
  7. Если давление со стороны левой лучевой артерии исчезает, инициируйте ANRP. Давление из бедренной канюли превратится в непрерывный непульсирующий поток, обеспечиваемый ЭКМО.
  8. Если поток в радиальной линии увеличивается параллельно бедренному давлению, остановите ANRP и проверьте правильное положение и заполнение или зажмите грудную аорту еще через 5 минут без прикосновения, прежде чем восстанавливать ANRP. ANRP не начинается до тех пор, пока окклюзия аорты не будет полностью подтверждена.
    ПРИМЕЧАНИЕ: WLST может быть выполнен в операционной или в отделении интенсивной терапии по желанию родственников и близких. Если это выполняется в отделении интенсивной терапии, после 5-минутного периода без касания баллон заполняется и проверяется функция, инициируется ARNP, и донор переводится в операционную, где хирургическая бригада готова приступить к работе. При обнаружении неисправности окклюзионного баллона АРНП прекращают до тех пор, пока грудная аорта не будет пережата в операционной.

3. Техника восстановления и заготовки легких

ПРИМЕЧАНИЕ: Методы восстановления и заготовки легких выполняются торакальным хирургом и координатором трансплантации (рис. 4).

  1. Выполните срединную стернотомию: выполните срединный вертикальный разрез кожи от надгрудинной выемки до кончика мечевидного отростка. Расширьте разрез до грудной фасции и надкостницы грудины с помощью электрокоагуляции.
  2. Разделяют межключичную связку и создают плоскость путем рассечения пальцев позади грудины, как на уровне надгрудинной выемки, так и мечевидного отростка. Разделите грудину электропилой. Поместите грудный ретрактор и осторожно раскройте, освободив перикард от задней поверхности грудины. Контролируйте любую точку кровотечения с помощью электрокоагуляции.
  3. В то же время проводят повторную интубацию и вентиляцию донора со 100% кислородом и положительным давлением в конце выдоха 5 см H2O.
  4. Если бронхоскопия не была выполнена во время пребывания донора в отделении интенсивной терапии в качестве критического маневра ведения пациента, она может быть выполнена на этом этапе вторым хирургом торакальной бригады. Для бронхоскопии введите гибкий бронхоскоп через эндотрахеальную трубку и оцените анатомию, внешний вид слизистой оболочки и прозрачные выделения.
  5. Вскрывают обе плевральные полости продольными разрезами в плевре средостения.
  6. Если есть сомнения или проблемы по поводу адекватной блокады надаортальных сосудов с помощью окклюзионного баллона, втяните левое легкое медиально, чтобы обнажить и зажать грудную аорту как можно ниже под прямым зрением.
  7. Осмотрите легкие, выполнив визуальную и пальпаторную оценку. Осмотрите на наличие булл, ушибов, ателектаза, пневмонии и скрытых опухолей. Введите 1 л физиологического раствора с температурой 4 °C в обе плевральные полости.
  8. Уменьшите долю вдыхаемого кислорода до 50%. Вскрывают перикард с помощью перевернутого Т-образного разреза. Втяните латерально края перикарда с помощью шелковых швов 2-0, закрепленных на коже противомоскитными щипцами, чтобы обнажить структуры сердца.
  9. Наложите полипропиленовый кисетный шов 4-0 на главную легочную артерию ниже бифуркации. Выполните артериотомию с помощью лезвия No 11 и расширьте с помощью изогнутых щипцов от комаров.
  10. Канюляция легочной артерии (ПА) с помощью прямоугольной прямой канюли, зажатой на конце. Соедините канюлю легочной артерии с линией системы орошения, собрав прямой соединитель с замком Луера и трехходовым запорным краном. Подключите систему орошения к раствору для сохранения легких. Очистите линии.
  11. Начните промывать 50-60 мл/кг раствора для консервации холодным способом антестандартным способом. Начните промывать 500 мкг простагландина, разведенного в 100 мл физиологического раствора, одновременно через трехходовой запорный кран.
  12. Откройте придаток левого предсердия или левое предсердие напрямую, чтобы обеспечить свободный дренаж. При обнаружении участков ателектаза набирают их короткими инспираторными удержаниями при давлении 25-30 смН2О.
  13. После завершения консервации извлеките канюлю PA. Объявите остальной команде о намерении пережать полую вену и начать иссечение сердца.
  14. Перед пережатием полых вен донору вводят 1-1,2 л физиологического раствора, чтобы избежать снижения потока насоса из-за потери венозного возврата крови из грудной клетки.
  15. Поместите поперечный зажим в нижнюю полую вену, убедившись, что культи достаточно для печени. Перевязать и разделить нижнюю полую жилку шелковой нитью No 3.
  16. Свяжите и разделите верхнюю полую жилку от каудальной до азиготной шелковой нитью No 3. Закрепите дистальную культю зажимом.
  17. Оставьте зажимы в операционном поле, стараясь не снимать их случайно, так как в противном случае ANRP будет скомпрометирован. Иссеките остальную часть сердца стандартным способом.
  18. После иссечения сердца удалите легкие по той же процедуре, что и у доноров смерти мозга, как описано ниже.
    1. Разделить нижние легочные связки, открыть задний перикард и обнажить пищевод. Освободите задние средостения прикрепления легкого с помощью тупой диссекции, обеспечивая осторожный гемостаз.
    2. Рассеките легочные артерии от аорты. Изолируйте трахею над килем и проведите степлером ТА.
    3. Надуйте легкие до 50-60% дыхательного объема, прежде чем извлекать эндотрахеальную трубку и разделять трахею. Удалите все оставшиеся насадки и извлеките блок легких у донора.
  19. Тщательно проверьте грудную полость, чтобы обнаружить любую точку кровотечения, особенно перевязку азиготной вены и прижигание сосудов или капилляров из заднего средостения, паратрахеальных структур и окружающих тканей. Постоянная кровопотеря может уменьшить поток насоса.
  20. Перенесите блок легких на задний стол и приступайте к операции на скамье. Разделяют левое и правое легкое.
  21. С помощью катетера Фолея с раздутой луковицей на кончике последовательно через каждую легочную вену проводят ретроградную промывку 0,2-0,25 л раствора для консервации холода.
  22. Упакуйте каждое легкое в первый стерильный пакет, содержащий только раствор для холодной консервации, окруженный двумя другими пластиковыми пакетами, и храните в переносном холодильнике, содержащем ледяной физиологический раствор при температуре 4 ° C.
  23. Если показана система перфузии легких ex vivo , выполните следующие действия для подключения устройства к легочной артерии и трахее во время заготовки легких.
    1. Сохранить основной ствол легочной артерии, а не только ее бифуркацию при заготовке.
    2. Если это невозможно, возьмите кусочек аорты длиной 3-4 см, чтобы сзади сшить его с бифуркацией легочной артерии для замены ствола легочной артерии.
    3. Разделите трахею на четыре-пять колец над килем, чтобы иметь достаточную длину для интубации.
    4. Держите и храните легкие в блоке.

4. Абдоминальная нормотермическая регионарная перфузия

  1. Инициируйте ANRP после заполнения баллона для окклюзии аорты и проверки правильности функции.
  2. Установите следующие целевые точки мониторинга: расход насоса = 2-2,5 л/мин, постоянное давление 60-65 мм рт.ст. в канюле бедренной артерии, температура = 37 °C, pH = 7,35-7,45, гематокрит >25%.
  3. Возьмите образцы крови из канюли бедренной артерии с помощью шприца объемом 10 мл после начала ANRP и каждые 30 минут для биохимического анализа печени и почек, уровня лактата в сыворотке, артериального газа в крови и гематокрита. Поддерживайте ARNP не менее 90-120 минут.
  4. Откажитесь от печени, если значения аланинтрансаминазы (АЛТ) или аспартаттрансаминазы (АСТ) более чем в четыре раза превышают верхний предел нормы во время ANRP.

5. Восстановление печени и почек

ПРИМЕЧАНИЕ: Восстановление печени и почек выполняется хирургом печени и хирургом почек соответственно.

  1. Выполните срединную лапаротомию: выполните срединный вертикальный разрез кожи вдоль белой линии, от мечевидного отростка (присоединитесь к предыдущей стернотомии) до лобка, искривив разрез вокруг пупка. Используйте электрокоагуляцию для рассечения подкожно-жировой клетчатки и поверхностных фасциальных слоев вплоть до влагалища прямой мышцы живота.
  2. Рассекают передний и задний компоненты влагалища прямой мышцы живота и вскрывают брюшину, чтобы получить доступ к брюшной полости. Расширьте разрез, вставив пальцы в созданное отверстие, стараясь не травмировать нижележащие структуры. Поместите ретракторы, чтобы иметь адекватное воздействие на живот.
  3. Оцените макроскопическое качество органов брюшной полости, выполнив визуальную и пальпаторную оценку. Биопсия печени может быть взята, если есть какие-либо опасения, как в случае с донорами смерти мозга.
  4. Если химические показатели верны и макроскопический вид в норме, проверьте органы.
  5. Остановите устройство ЭКМО. Промойте консервационный раствор для органов брюшной полости через канюлю бедренной артерии и используйте венозную канюлю бедренной кости для обескровливания.
  6. Закупайте органы брюшной полости, пригодные для трансплантации, стандартным способом, как в DBD27,28.

Результаты

Мы провели описательный анализ 30 трансплантаций легких, выполненных в университетской клинике Маркиза де Вальдесилья, с легкими, полученными от доноров cDCD за последние 2 года, 2020 и 2021 годы. Здесь представлены демографические характеристики доноров и реципиентов, технические данные, по?...

Обсуждение

Хотя использование одновременной холодовой перфузии легких с ARNP при cDCD было впервые опубликовано в 2014 году, для этого было описано очень мало опытов25,26,29. Кроме того, в большинстве стран использование легких cDCD, независимо от используе?...

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

Авторы выражают признательность всем участникам, участвующим в программе трансплантации легких в университетской больнице Маркиза де Вальдесилья.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Vial 5 mL Heparin 1000 UI/mLROVIFor donor heparinization
ECMO KIT (MATERIALS FOR CANNULATION)
Artery pressure linesBEXEN MEDICAL137.15Artery pressure line por radial artery and femoral cannula
Bandage scissorsSURGIMEDICBC-881RShear to cut ECMO lines
Bio-medicus Venous cannula 21 Fr (7.0 mm) x 27.5 in (69.9 cm)MEDTRONIC96670-121Venous cannula
Clhorhexidine solution 2%Disinfectant solution
ECMO device Maquet RotaflowMaquet, Rasttat, GermanyECMO system
Electrocautery handleDEXTROSW12200
EndoReturn Arterial Cannula Kit  21-23FEdwards LifesciencesER21B, ER23BArterial cannula with a doble lumen to ECMO connection and to introduce aortic oclussion balloon
Ethicon LigaClip med/short 20 titanium mediumETHICONMCS30Ligaclips for control bleeding during groin dissection
Ethicon LigaClip med/short 20 titanium smallETHICONMCS20Ligaclips for control bleeding during groin dissection
Insertion Kit Bio-medicus 180cmMEDTRONIC96551Insertion Kit for ECMO cannulas, with catheter, metal wire guide and dilators
Irrigation pearMEDLINEDYNDE 20125Pear to be filled with saline and purge ECMO lines at the site of connection with cannulas
Luer cone syringe 50ccCARDIONATUR60MLSyringe filled with saline to fill occlusion balloon
Mersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cmETHICONW562HSilk curved suture for ECMO cannulas fixation
Prolene 4/0ETHICONW8355polypropylene suture for purse string in femoral vessels or vascular suture
Prolene 5/0 , 60 cmETHICON8325polypropylene suture for vascular suture
Prolene 5/0, 90 cmETHICON8720polypropylene suture for vascular suture
Reliant Stent Graft Balloon Catheter 12FMedtronic, IrelandAB46Aortic occlusion balloon introduced through femoral artery. It is used as an endoclamp
Scalpel blade no 11INTRAVEN150011
Scapel blade no 23INTRAVEN150023
Silicone tubeIBERHOSPITEX0027224-PSilicone tube to connect suction system
Sofsilk braided silk no 1 strandsCOVIDIENL-12Silk strand for ligation or bleeding control
Sofsilk braided silk no 3 strandsCOVIDIENL-115Silk strand for ligation or bleeding control
straight connector 3/8"x3/8" with Luer lockANDOCOR04CS0022Piece to connect arterial cannula with ECMO line and the three way stop-cock for pressure line and blood sampling
Surgical pads packTEXPOL146500
Surgical staplerCOVIDIEN8886803712Stapler to close surgical wound
Three-way stopcockBD CONNECTA394501Three way stop-cock to connect farterial cannula with pressure line
Vessel loop largeMEDLINEVLMAXRVascular loop to embrace femoral artery and vein for bleeding control.
Vessel loop smallMEDLINEVLMINRVascular loop to embrace femoral artery and vein for bleeding control.
Yankauer suction terminal 50 VDEXTROMEDICA349701Suction terminal for suction while surgical dissection
SURGICAL TOOLS FOR CANNULATION
Adson retractor 20 cm adn 33 cm
Aortic clamp
Boyd Scissors 18 cm
Dissection forceps without jaws 21 cm
Farabeuf retractor small
Mayo scissors straight 14 cm and 16 cm
Metzembaum scissors 18 cm, 20 cm and 23 cm
Mosquito forceps straigth and curved
Needle holder 18 cm and 23 cm
Russ dissection forceps 15 cm
Scalpel handle no 23 and no 21,  21 cm
Surgical Dissector 23 cm
MATERIALS FOR LUNG PROCUREMENT
10 cc syringeBD DISCARDIT309110
Alprostadil 500 mcgs injectable solutionPFIZERProstaglandin injected with lung preservation solution
Disposable GIA cartridge Steril 6/CaMEDTRONIC1141634
Disposable GIA stapler 60/3.8 3/CaMEDTRONIC2802122Stapler for trachea and bronquial division
Foley catheter 18 Ch FolysilFolysil, ColoplastAA6118urinary catheter employed to canulated pulmonary veins for retrograde perfusion
Lung preservation solution Perfadex 1000 mLMedisan, Uppsala, Sweeden19811 ( box of 10 units)Lung preservation solution
Mersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cmETHICONW562HSilk curved suture for pericardium sutures
Paediatric Venous cannulaSORIN GROUPV132-12Cannula used for pulmonary artery cannulation
Prolene 4/0ETHICONW8355polypropylene suture for purse string in pulmonary artery
Scalpel blade no 11INTRAVEN150011
Sofsilk braided silk no 1 strandsCOVIDIENL-12Silk strand to fix arterial cannula with the tourniquet
Sofsilk braided silk no 3 strandsCOVIDIENL-115Silk strand for vessel ligation
Sterile bagsTo keep and store lungs.
Straigth connector 1,4"/1,4" with luer lockANDOCOR04CS0032Piece to connect pulmonary artery arterial cannula with preservation line and the three way stop-cock for prostaglandin
Three-way stopcockBD CONNECTA394501Three way stop-cock to connect farterial cannula with pressure line
Uromatic set for irrigation double leadMEDISAVETRC4007NIrrigation system for lung preservation solution
Uromatic set for irrigation single leadMEDISAVETRC4002Irrigation system for lung preservation solution
SURGICAL TOOLS FOR LUNG PROCUREMENT
Aortic cross- clamp
Battery-powered surgical saw
Cooley vascular clamp
Dissecting forceps 18 cm and 27,9 cm
Finochietto sternal retractor
Metzembaum scissors 20 cm and 23 cm
Mosquito forceps curved 12,5 cm
Vascular clamps
SURGICAL TOOLS FOR ABDOMINAL ORGAN PROCUREMENT
Adson articulated retractors
Allis forceps 16 cm
Aortic cross-clamps
Boyd scissors 17 cm
Castroviejo needle holder
Cooley Vascular clamps
Crile forceps curved 18 cm
Davis retractor 24.5 cm
DeBakey dissecting forceps 19.7 cm adn 24.1 cm
DeBakey vascular clamps
Dissecting forceps 18 cm and 27.9 cm
Duval forceps 23 cm
Farabeuf retractors
Kidney Trays 300 cc and 500 cc
Kocher forceps straigth 18 cm
Langenbeck retractors 21 cm and 23 cm
Mayo scissors straigth and curved , 17 cm
Mosquito forceps straigth and curved, 12.5 cm
Needle holders 15 cm, 18 cm, 23 cm and 23 cm.
Pean forceps 16 cm
Potts scissors 19cm
Rochester forceps curved 24 cm
Rochester forceps straigth 24 cm
Russ dissection forceps 15 cm and 20 cm
Scalpel handles
Senn-mueller retractor 16 cm

Ссылки

  1. Matesanz, R. Spanish National Consensus Document on the recovery of organs from non-heart beating donors. Nefrología. 16, 48-53 (1996).
  2. Organización Nacional de Trasplantes. Memoria de actividad donación y trasplante. Organización Nacional de Trasplantes. , (2020).
  3. Bellingham, J. M., et al. Donation after cardiac death: A 29-year experience. Surgery. 150 (4), 692-702 (2011).
  4. Algahim, M. F., Love, R. B. Donation after circulatory death: The current state and technical approaches to organ procurement. Current Opinion in Organ Transplantation. 20 (2), 127-133 (2015).
  5. Lepoittevin, M., et al. Preservation of organs to be transplanted: An essential step in the Transplant process. International Journal of Molecular Sciences. 23 (9), 4989 (2022).
  6. Wadei, H. M., et al. Comparison of kidney function between donation after cardiac death and donation after brain death kidney transplantation. Transplantation. 96 (3), 274-281 (2013).
  7. Jay, C., et al. A comprehensive risk assessment of mortality following donation after cardiac death liver transplant-An analysis of the national registry. Journal of Hepatology. 55 (4), 808-813 (2011).
  8. O'Neill, S., Roebuck, A., Khoo, E., Wigmore, S. J., Harrison, E. M. A meta-analysis and meta-regression of outcomes including biliary complications in donation after cardiac death liver transplantation. Transplant International. 27 (11), 1159-1174 (2014).
  9. Fondevila, C., et al. Applicability and results of Maastricht type 2 donation after cardiac death liver transplantation. American Journal of Transplantation. 12 (1), 162-170 (2012).
  10. Hessheimer, A. J., Riquelme, F., Fudora-Suarez, Y., García Pérez, R., Fondevila, C. Normothermic perfusion and outcomes after liver transplantation. Transplantation Reviews. 33 (4), 200-208 (2019).
  11. Oniscu, G. C., et al. In situ normothermic regional perfusion for controlled donation after circulatory death- The United Kingdom Experience. American Journal of Transplantation. 14 (12), 2846-2854 (2014).
  12. Watson, C. J. E., et al. et al. In situ normothermic perfusion of livers in controlled circulatory death donation may prevent ischemic cholangiopahy and improve graft survival. American Journal of Transplantation. 19 (6), 1745-1758 (2019).
  13. Hessheimer, A. J., et al. Abdominal normothermic regional perfusion in controlled DCD liver transplantation: outcomes and risk factors for graft loss. American Journal of Transplantation. 22 (4), 1169-1181 (2022).
  14. Padilla, M., et al. Improved short-term outcomes of kidney transplants in controlled donation after the circulatory determination of death with the use of normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 21 (11), 3618-3628 (2021).
  15. Lomero, M., et al. Donation after circulatory death today: An updated overview of the European Landscape. Transplant International. 33 (1), 76-88 (2020).
  16. Dominguez-Gil, B., et al. Expanding controlled donation after the circulatory determination of death: Statement from an international collaborative. Intensive Care Medicine. 47 (3), 265-281 (2021).
  17. Levvey, B., et al. Influence of lung donor agonal and warm ischemic times on early mortality: Analyses from the ISHLT DCD Lung Transplant Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 26-34 (2019).
  18. Van Raemdonck, D., et al. Donation after circulatory death in lung transplantation- Five-year follow-up form ISHLT Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (12), 1235-1245 (2019).
  19. Palleschi, A., et al. Lung transplantation from donation after controlled cardiocirculatory death. Systematic review and meta-analysis. Transplantation Reviews. 34 (1), 100513 (2020).
  20. Keshavamurthy, S., Rodgers-Fishl, P. Donation after circulatory death (DCD)-Lung procurement. Indian Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 37, 425-432 (2021).
  21. Oniscu, G. C., Siddique, A., Dark, J. Dual temperature multiorgan recovery from a Maastricht category III donor after circulatory death. American Journal of Transplantation. 14 (9), 2181-2186 (2014).
  22. Perera, M. T., Clutton-Brock, T., Muiesan, P. One donor, two types of preservation: First description of a donation after circulatory death donor with normothermic abdominal perfusion and simultaneous cold perfusion of lungs. Liver Transplantation. 20 (8), 1012-1015 (2014).
  23. Miñambres, E., et al. Improving the outcomes of organs obtained from controlled donation after circulatory death donors using abdominal normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 17 (8), 2165-2172 (2017).
  24. Miñambres, E., et al. Combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death using normothermic abdominal perfusion. Initial experience in two Spanish centers. American Journal of Transplantation. 20 (1), 231-240 (2020).
  25. He, B., Han, X., Fink, M. A., Tsoulfas, G. Procurement of Abdominal Organs in Multi-Organ Donation in Deceased Donor. Organ Donation and Transplantation - Current Status and Future Challenges. , (2018).
  26. Baranski, A. . Surgical Technique of the Abdominal Organ Procurement. , (2009).
  27. Tanaka, S., et al. Effect on the donor lungs of using abdominal normothermic regional perfusion in controlled donation after circulatory death. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 59 (2), 359-366 (2021).
  28. Wind, J., Faut, M., Van Smaalen, T. C., Van Heurn, E. L. Variability in protocols on donation after circulatory death in Europe. Critical Care. 17 (5), 217 (2013).
  29. Perez-Villares, J. M., Rubio, J. J., Del Río, F., Miñambres, E. Validation of a new proposal to avoid donor resuscitation in controlled donation after circulatory death with normothermic regional perfusion. Resuscitation. 117, 46-49 (2017).
  30. Ausania, F., White, S. A., Pocock, P., Manas, M. Kidney damage during organ recovery in donation after circulatory death donors: Data from UK National Transplant Database. American Journal of Transplantation. 12 (4), 932-936 (2012).
  31. Ausania, F., White, S. A., Coctes, R., Hulme, W., Manas, D. M. Liver damage during organ donor procurement in donation after circulatory death compared with donation after brain death. British Journal of Surgery. 100 (3), 381-386 (2013).
  32. Palleschi, A., et al. Successful preservation and transplant of warm ischaemic lungs from controlled donors after circulatory death by prolonged in situ ventilation during normothermic regional perfusion of abdominal organs. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 29 (5), 699-705 (2019).
  33. Caralt, M., et al. 34;Non-touch" vena cava technique as an improvement in combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death. Transplantation Proceedings. 51 (1), 9-11 (2019).
  34. Miñambres, E., Rubio, J. J., Coll, E., Dominguez-Gil, B. Donation after circulatory death and its expansion in Spain. Current Opinion in Organ Transplantation. 23 (1), 120-129 (2021).
  35. Perez-Villares, J. M., et al. Mobile ECMO team for controlled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 18 (5), 1293-1294 (2018).
  36. Rubio Muñoz, J. J., Domínguez-Gil, G., Miñambres García, E., del Rio Gallegos, F., Pérez-Villares, J. M. Papel de la perfusión normo térmica con oxigenación de membrana extracorpórea en la donación en asistolia controlada en España. Role of normothermic perfusion with ECMO in donation after controlled cardiac death in Spain. Medicina Intensiva. 46 (1), 31-41 (2021).
  37. Miñambres, E., et al. Spanish experience with heart transplants from controlled donation after the circulatory determination of death using thoraco-abdominal normothermic regional perfusion and cold storage. American Journal of Transplantation. 21 (4), 1597-1602 (2021).
  38. Messer, S., et al. Human heart transplantation from donation after circulatory-determined death donors using normothermic regional perfusion and cold storage. Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (7), 865-869 (2018).
  39. Suberviola, B., et al. Excellent long-term outcome with lungs obtained from uncontrolled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 19 (4), 1195-1201 (2019).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

186

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены