Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Целью данного исследования является демонстрация возможности разделения на основе флотации для выделения, активации и расширения первичных Т-клеток человека.
Процесс выделения Т-клеток из мононуклеарных клеток периферической крови (PBMCs) для создания культур ex vivo имеет решающее значение для исследований, клинических испытаний и клеточной терапии. В этом исследовании представлен простой, новый протокол для изоляции, активации и расширения Т-клеток из PBMCs ex vivo . В этом исследовании используется функционализированная технология сортировки клеток с активацией плавучести (BACS) для выделения и активации Т-клеток. Вкратце, протокол включает в себя положительный отбор клеток CD3+ из ПБМК, полученных из лейкопака, с последующей 48-часовой стимуляцией с предварительно конъюгированными анти-CD28-связанными микропузырьками стрептавидина (SAMB) до трансдукции в 24-луночных пластинах. Функционализированные микропузырьки предлагают уникальную возможность плавучей активации клеток, что приводит к пролиферативным фенотипам, которые позволяют расширяться с минимальным истощением. Этот метод обеспечивает снижение истощения, поскольку костимулирующие микропузырьки остаются плавучими и возвращаются в верхнюю часть питательной среды, тем самым уменьшая количество времени, в течение которого расширяющиеся клетки находятся в контакте с костимулирующими факторами. Результаты показывают, что изолированные и культивируемые Т-клетки получают достаточную стимуляцию для активации и пролиферации, но не до такой степени, которая приводит к гиперактивации, что затем приводит к истощению, о чем свидетельствует наличие избыточного PD-1.
В настоящее время во всем мире проводится более 500 клинических испытаний терапии рецепторами химерного антигена (CAR)-Т-клетками, и четыре продукта car-T-клеточной терапии доступны на рынке1. Тем не менее, многочисленные потребности в исследованиях и производстве CAR-T-клеток все еще существуют, которые необходимо решить для повышения эффективности, масштабируемости и долгосрочного успеха этих потенциально лечебных методовлечения 2,3,4,5. Прикладные клинические исследования и производство CAR-T-клеток начинаются с выделения Т-клеток из образца периферической крови и последующей стимуляции, трансдукции и расширения изолированных клеток. Такие параметры, как восстановление Т-клеток, чистота и сигналы активации/истощения, требуют тщательного рассмотрения при выборе методов изоляции и стимуляции клеток для исследования и производства CAR-T-клеток 3,4,6. Важно отметить, что улучшение терапевтической стойкости CAR-T-клеточной терапии путем минимизации биологических препятствий, возникающих в результате текущих производственных процессов, таких как истощение Т-клеток, необходимо для повышения терапевтической эффективности 6,7.
В качестве альтернативы традиционным методам изоляции клеток, таким как флуоресцентно-активированная сортировка клеток (FACS) и магнитно-активированная сортировка клеток (MACS), здесь демонстрируется сортировка клеток с активацией плавучести (BACS) с микропузырьками для изоляции Т-клеток. Разделение микропузырьков использует плавучие, полые микросферы (микропузырьки) для связывания мишеней и вывоза их на поверхность образцов жидкости 8,9. Функционализируя микропузырьки антителами (т.е. анти-CD3), желаемые популяции Т-клеток могут быть положительно отобраны из образцов периферической крови. Впоследствии в данной работе продемонстрировано использование другой популяции микропузырьков, функционализированных антителами (т.е. анти-CD28) для совместной стимуляции и активации положительно отобранных Т-клеток в суспензии. Микропузырьки предлагают простой и настраиваемый рабочий процесс изоляции и активации, который генерирует Т-клетки, готовые к взвешенной клеточной культуре и последующим приложениям, таким как генетическая модификация и расширение. Критически важно, что активация плавучих клеток микропузырьками способствует сдержанной стимуляции клеток для предотвращения чрезмерного истощения Т-клеток7.
Для этого исследования проточная цитометрия была основным инструментом, используемым для анализа успеха выделения, активации и трансдукции функционализированных микропузырьков, а также для предоставления подробной информации о конкретных субпопуляциях, присутствующих во время фаз роста и расширения после трансдукции. В дополнение к проточной цитометрии, для подтверждения здоровья клеток, морфологии и успеха трансдукции использовалась ярко-полевая и флуоресцентная микроскопия. Основываясь на этих результатах, технология и протокол microbubble обеспечивают более настраиваемую и более мягкую альтернативу традиционным методам изоляции и активации, используемым в настоящее время; в частности, клетки, активированные микропузырем, демонстрируют заметно более низкую экспрессию маркеров истощения Т-клеток, чем та, которая обычно наблюдается с помощью стандартных инструментов и наборов.
1. Выделение Т-клеток с микропузырьками с помощью положительного отбора
ПРИМЕЧАНИЕ: Этот протокол детализирует мелкомасштабный подход к положительному выбору CD3+ с использованием SAMB.
2. Стимуляция (активация) положительно выбранных Т-клеток
3. Расширение костимулированных клеток в клеточной культуральной среде
4. Необязательно: Трансдукция активированных Т-клеток лентивирусом
ПРИМЕЧАНИЕ: Подход, используемый здесь, адаптирован из Prommersberger et al. 10 см.
5. Расширение Т-клеток (с предварительной трансдукцией или без нее)
6. Сбор Т-клеток и проточная цитометрия
Т-клетки были выделены из купленных NBMC и покрыты для активации, как описано в протоколе. Отрицательные контрольные образцы (приобретенные МПК) не активировались. Эти контрольные образцы были включены, чтобы продемонстрировать эффект, который процесс активации микропузырька оказал на ?...
Описанный протокол позволяет выделять Т-клетки из образцов PBMC и активировать взвешенные Т-клетки в культуральных средах с микропузырьками. Этот метод опирается на функционализированные микропузырьки, присущая им плавучесть, дает уникальную возможность вводить в клетки костимулирую?...
Все авторы, на момент подачи заявки, являются сотрудниками Akadeum Life Sciences, которая производит и продает продукты для разделения микропузырьков.
Никакой.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
2-Mercaptoethanol | Gibco | 21985-023 | CAS: 60-24-2 |
Biologix Multi-Well Culture Plates 24-well plates | VWR | 76081-560 | |
Biotin anti-human CD28 (28.2) Antibody | Biolegend | 302904 | |
Biotin anti-human CD3 (OKT3) Antibody | Biolegend | 317320 | |
DPBS, no calcium, no magnesium | Gibco | 14190-136 | |
GlutaMAX Supplement | Thermofisher | 35050061 | |
Human Recombinant IL2 | BioVision (vwr) | 10006-122 | |
Lentiviral Particle rLV.EF1.zsGreen1-9 | Takara Bio | 0038VCT | |
Leukopak | BioIVT | HUMANLMX100-0001129 | |
Normal Human PBMCs | BioIVT | HUMANHLPB-0002562 | |
Penicillin/Streptomycin 100X for tissue culture | VWR | 97063-708 | CAS: 8025-06-7 |
Polybrene Infection/Transfection Reagent | Millipore Sigma | TR-1003-G | CAS:28728-55-4 |
Pooled Human AB Serum Plasma Derived Heat Inactivated | Innovative Research | ISERABHI100mL | |
RPMI 1640 Medium, GlutaMAX Supplement, HEPES | Gibco | 72400047 | |
Streptavidin Microbubble Kit (includes Akadeum's separation buffer) | Akadeum | 11110-000 |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеСмотреть дополнительные статьи
This article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены