Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Method Article
Мы представляем протокол непосредственной визуализации метаболической активности в клетках, регулируемых аминокислотами, с помощью микроскопии стимулированного комбинационного рассеяния (DO-SRS) с зондированием оксида дейтерия (тяжелая водаD2O), которая интегрирована с флуоресцентной микроскопией двухфотонного возбуждения (2PEF).
Незаменимые ароматические аминокислоты (АБА) являются строительными блоками для синтеза новой биомассы в клетках и поддержания нормальных биологических функций. Например, обильный запас ААА важен для поддержания быстрого роста и деления раковых клеток. В связи с этим растет спрос на высокоспецифичный, неинвазивный подход к визуализации с минимальной подготовкой образцов для прямой визуализации того, как клетки используют АБА для метаболизма in situ. Здесь мы разрабатываем оптическую платформу визуализации, которая сочетает зондирование оксидом дейтерия (D2O) с вынужденным комбинационным рассеянием (DO-SRS) и интегрирует DO-SRS с двухфотонной флуоресценцией возбуждения (2PEF) в один микроскоп для прямой визуализации метаболической активности клеток HeLa под регуляцией ААА. В совокупности платформа DO-SRS обеспечивает высокое пространственное разрешение и специфичность вновь синтезированных белков и липидов в отдельных клеточных единицах HeLa. Кроме того, модальность 2PEF может обнаруживать сигналы автофлуоресценции никотинамидадениндинуклеотида (NADH) и флавина без меток. Описанная здесь система визуализации совместима как с моделями in vitro , так и с моделями in vivo , что является гибким для различных экспериментов. Общий рабочий процесс этого протокола включает в себя культивирование клеток, приготовление питательных сред, синхронизацию клеток, фиксацию клеток и визуализацию образцов с помощью модальностей DO-SRS и 2PEF.
Будучи незаменимыми ароматическими аминокислотами (ААА), фенилаланин (Phe) и триптофан (Tryp) могут поглощаться человеческим организмом для синтеза новых молекул для поддержания нормальных биологическихфункций. Фенилаланин необходим для синтеза белков, меланина и тирозина, а трип — для синтеза мелатонина, серотонина и ниацина 2,3. Однако избыточное потребление этих АБА может усиливать регуляцию рапамицинового пути (mTOR) у млекопитающих, ингибировать АМФ-активируемую протеинкиназу и вмешиваться в митохондриальный метаболизм, коллективно изменяя биосинтез макромолекул и приводя к образованию злокачественных предшественников, таких как активные формы кислорода (АФК) в здоровых клетках 4,5,6. Прямая визуализация измененной метаболической динамики при избыточной регуляции ААА имеет важное значение для понимания роли АБА в стимулировании развития рака и росте здоровых клеток 7,8,9.
Традиционные исследования ААА основаны на газовой хроматографии (ГХ)10. Другие методы, такие как магнитно-резонансная томография (МРТ), имеют ограниченное пространственное разрешение, что затрудняет проведение клеточного и субклеточного анализа биологических образцов11. Недавно была разработана матричная лазерная десорбция/ионизация (MALDI) для выяснения роли ААА в синтезе липидов и белков в пролиферации рака с помощью неинвазивных биомаркеров12,13,14. Тем не менее, этот метод по-прежнему страдает от малой глубины изображения, плохого пространственного разрешения и обширной пробоподготовки. На клеточном уровне нетоксичные стабильные изотопы, такие как азот-15 и углерод-13, могут быть прослежены с помощью мультиизотопной визуализации и масс-спектрометрии вторичных ионов наноразмерной степени, чтобы понять их включение в макромолекулы. Однако эти методы губительны для живых биологических образцов15,16. Атомно-силовая микроскопия (АСМ) является еще одним мощным методом, который может визуализировать метаболическуюдинамику. С другой стороны, медленная скорость сканирования во время АСМ может привести к искажению изображения результата из-за теплового дрейфа.
Мы разработали неинвазивную биортогональную модальность визуализации путем объединения микроскопии стимулированного комбинационного рассеяния (DO-SRS) с зондированием оксида дейтерия (D2O)и флуоресцентной микроскопии с двухфотонным возбуждением (2PEF) без меток. Этот метод обеспечивает высокое пространственное разрешение и химическую специфичность при визуализации биологических образцов 18,19,20,21,22,23,24. Этот протокол знакомит с применением DO-SRS и 2PEF для изучения метаболической динамики изменений липидов, белков и окислительно-восстановительных соотношений во время прогрессирования рака. ПосколькуD2Oявляется стабильной изотопной формой воды, клеточные биомолекулы могут быть помечены дейтерием (D) из-за его быстрой компенсации общей водой в клетках, образуя углерод-дейтериевые (C-D) связи посредством ферментативного обмена21. C-D связи во вновь синтезированных макромолекулах, включая липиды, белки, ДНК/РНК и углеводы, могут быть обнаружены в клеточной молчаливой области рамановского спектра 20,21,22,25,26,27. С помощью двух синхронизированных лазерных импульсов C-D связи вновь синтезированных липидов и белков могут быть отображены на отдельных клетках с помощью гиперспектральной визуализации (HSI) без экстракции или маркировки их цитотоксическими агентами. Кроме того, SRS-микроскопия позволяет создавать трехмерные (3D) модели выбранных областей интереса в биологических образцах путем захвата и объединения набора изображений поперечного сечения22,26. С помощью гиперспектральной и объемной 3D-визуализации DO-SRS может получить пространственное распределение вновь синтезированных макромолекул в отдельных клетках, а также тип органелл, которые способствуют процессу стимулирования роста рака в соответствии с правилом AAA22. Кроме того, используя 2PEF, мы можем получить сигналы автофлуоресценции флавина и никотинамидадениндинуклеотида (NADH) с высоким разрешением, большой глубиной проникновения и низким уровнем повреждения в биологических образцах21,23,24. Сигналы автофлуоресценции флавина и NADH были использованы для характеристики окислительно-восстановительного гомеостаза и перекисного окисления липидов в раковых клетках22,26. Таким образом, сопряжение DO-SRS и 2PEF не только обеспечивает субклеточный анализ ААА-регулируемой метаболической динамики в раковых клетках с высоким пространственным распределением, информацией о химической специфичности и минимальной пробоподготовкой, но и снижает потребность в извлечении или маркировке эндогенных молекул токсичными реагентами. В этом протоколе мы сначала представляем процедурыD2Oи аминокислотного препарата, а также культуру раковых клеток. Затем мы покажем протоколы визуализации DO-SRS и 2PEF. Наконец, представлены репрезентативные результаты визуализации SRS и 2PEF, которые демонстрируют ААА-регулируемые метаболические изменения липидов и белков, а также изменения окислительно-восстановительного соотношения в раковых клетках. Подробная иллюстрация процесса приведена на рисунке 1.
1. Подготовка материала
2. Подготовка образцов клеток
3. Измерение методом спектроскопии комбинационного рассеяния света (рис. 2)
4. Эксперименты по визуализации с 2PEF и SRS
ПРИМЕЧАНИЕ: Подробное описание лазерной юстировки SRS можно найти в предыдущем отчете28. Этот протокол ориентирован на работу мультимодальной системы визуализации SRS и 2PEF (рис. 2C, D).
5. Анализ спектров и изображений
Добавление избытка ААА в 15-кратной концентрации к 50%-нойО-содержащей клеточной питательной среде приводило к образованию отчетливых C-D рамановских полос вновь синтезированных липидов и белков в клетках HeLa (рис. 2B). Предыдущие эксперименты проводились с различными...
Визуализация DO-SRS и 2PEF была применена для исследования метаболической динамики в различных моделях ex vivo, включая дрозофилу и ткани человека 21,22,23,24,26,27,33. Ме...
Авторы не имеют конкурирующих финансовых интересов или иных конфликтов интересов.
Мы благодарим д-ра Яхуана Ли и Энтони Фанга за их техническую поддержку, а также лабораторию Фрейли за клеточную линию. Мы выражаем признательность за стартовые фонды от UCSD, NIH U54CA132378, NIH 5R01NS111039, NIH R21NS125395, NIHU54DK134301, NIHU54 HL165443 и Hellman Fellow Award.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10 mL Serological Pipettes | Avantor (by VWR) | 75816-100 | https://us.vwr.com/store/product?keyword=75816-100 |
15 mL Conical Centrifuge Tube | VWR | 89039-664 | https://mms.mckesson.com/product/1001859/VWR-International-89039-664 |
16% Formaldehyde, Methanol-free | ThermoFisher Scientific | 28906 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/28906 |
24-well plate | Fisherbrand | FB0112929 | https://www.fishersci.com/shop/products/24-well-tc-multidish-100-cs/FB012929#?keyword=FB012929 |
25 mm Syringe Filter, 2 μm PES | Foxx Life Sciences | 381-2216-OEM | https://www.foxxlifesciences.com/collections/pes-syringe-filters/products/381-2216-oem?variant=16274336003 |
460 nm Filter Cube | Olympus | OCT-ET460/50M32 | |
AC Adapters of the Power Supply for LD OBIS 6 Laser Remote | Olympus | Supply power to the laser | |
Band-pass Filter | KR Electronics | KR2724 | 8 MHz |
BNC 50 Ohm Terminator | Mini Circuits | STRM-50 | |
BNC Cable | Thorlabs | 2249-C | Coaxial Cable, BNC Male/Male |
Broadband Dielectric Mirror | Thorlabs | BB1-E03 | 750 - 1100 nm |
Centrifuge | |||
Condenser | Olympus | ||
Cover Glass | Corning | 2850-25 | https://ecatalog.corning.com/life-sciences/b2b/NL/en/Glassware/Cover-Glass/Corning%C2%AE-Square-%231%C2%BD-Cover-Glass/p/2850-25 |
DC power supply | TopWard | 6302D | |
Dichroic Mount | Thorlabs | KM100CL | |
Dimethyl Sulfoxide Cell Culture Reagent | mpbio | 196055 | https://www.mpbio.com/0219605525-dimethyl-sulfoxide-cf |
Dulbecco's Modified Eagle’s Medium without Methionine, Threonine, and Sodium Pyruvate | MilliporeSigma | 38210000 | https://www.usbio.net/media/D9800-22/dulbeccorsquos-mem-dmem-wsodium-bicarbonate-wo-methionine-threonine-sodium-pyruvate-powder With Sodium Bicarbonate and without Methionine, Threonine, and Sodium Pyruvate |
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium | Corning | MT10027CV | https://www.fishersci.com/shop/products/dmem-dulbecco-s-modified-eagle-s-medium-4/MT10027CV#:~:text=Dulbecco's%20Modified%20Eagle's%20Medium%20 |
FIJI ImageJ | ImageJ | Version 1.53t 24 August 2022 | https://imagej.net/software/fiji/downloads |
Heavy Water (Deuterium Oxide) | Cambridge Isotope Laboratories, Inc. | 7732-18-5 | https://shop.isotope.com/productdetails.aspx?itemno=DLM-4-1L |
Hela Cells | ATCC | CCL-2 | https://www.atcc.org/products/ccl-2 |
Hemocymeter | MilliporeSigma | Z359629-1EA | https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/sigma/z359629?gclid=Cj0KCQiA37KbBhDgARIsAI zce15A5FIy0WS7I6ec2KVk QPXVMEqlAnYis_bKB6P6lr SIZ-wAXOyAELIaAhhEEAL w_wcB&gclsrc=aw.ds |
High O.D. Bandpass Filter | Chroma Technology | ET890/220m | Filter the Stokes beam and transmit the pump beam |
HyClone Fetal Bovine Serum (FBS) | Cytiva | SH300880340 | https://www.fishersci.com/shop/products/hyclone-fetal-bovine-serum-u-s-standard-4/SH300880340 |
HyClone Trypsin 0.25% (1x) Solution | Cytiva | SH30042.02 | https://www.cytivalifesciences.com/en/us/shop/cell-culture-and-fermentation/reagents-and-supplements/cell-disassociation-reagents/hyclone-trypsin-protease-p-00445 |
Integrated SRS Laser System | Applied Physics & Electronics, Inc. | picoEMERALD | picoEMERALD provides an output pulse at 1031 nm with 6-ps pulse width and 80-MHz repetition rate, which serves as the Stokes beam. The frequency doubled beam at 532 nm is used to synchronously seed a picosecond optical parametric oscillator (OPO) to produce a mode-locked pulse train with five~6 ps pulse width (the idler beam of the OPO is blocked with an,interferometric filter). The output wavelength of the OPO is tunable from 720–950 nm, which serves as the pump beam. The intensity of the 1031 nm Stokes beam is modulated sinusoidally by a built-in EOM at 8 MHz with a modulation depth of more than 90%. The pump beam is spatially overlapped with the Stokes beam by using a dichroic mirror inside picoEMERALD. The temporal overlap between pump and Stokes pulses are achieved with a built-in delay stage and optimized by the SRS signal of pure D2O at the microscope. |
Inverted Laser-scanning Microscope | Olympus | FV1200MPE | |
IX3-CBH Control box | Olympus | Control the laser-scanning microscope | |
Kinematic Mirror Mount | Thorlabs | POLARIS-K1-2AH | 2 Low-Profile Hex Adjusters |
L-Phenalynine | Sigma | P5482-25G | https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/sigma/p5482 |
L-Tryptophan | Sigma | T8941-25G | https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/sigma/t8941 |
LabSpec 6 | Horiba XploRA | N/A | https://www.horiba.com/gbr/scientific/products/detail/action/show/Product/labspec-6-spectroscopy-suite-software-1843/ |
Lock-In Amplifier | Zurich Instruments | N/A | https://www.zhinst.com/americas/en/products/shfli-lock-in-amplifier |
Long-pass Dichroic Beam Splitter | Semrock | Di02-R980-25x36 | 980 nm laser BrightLine single-edge laser-flat dichroic beamsplitter |
MATLAB | MathWorks | Version: R2022b | https://www.mathworks.com/products/new_products/latest_features.html |
Microscope Slides | Fisherbrand | 12-550-003 | https://www.fishersci.com/shop/products/fisherbrand-selectfrost-microscope-slides-9/12550003#?keyword=12-550-003 |
Microscopy Imaging Software | Olympus | FluoView | |
MPLN 100x, Olympus | Olympus | MPLAPON | https://www.olympus-ims.com/en/microscope/mplapon/#!cms[focus]=cmsContent11364 |
MPLN 50x, Olympus | Olympus | MPLAPON | https://www.olympus-ims.com/en/microscope/mplapon/#!cms[focus]=cmsContent11363 |
NA Oil Condenser | Olympus | 6-U130 | https://www.hitechinstruments.com/Product-Details/olympus-achromatic-aplanatic-high-na-condneser |
Nail Polish | Wet n Wild | B01EO2G5O4 | https://www.amazon.com/dp/B01EO2G5O4/ref=cm_sw_r_api_i_E609VVDWW HHQP38FXXDC_0 |
Origin | OriginLab | Origin 2022b (9.95) | https://www.originlab.com/index.aspx?go=PRODUCTS/Origin |
Parafilm | Fisher Scientific | S37440 | https://www.fishersci.com/shop/products/parafilm-m-wrapping-film-3/p-2379782 |
PBS 1x (Dulbecco's Phosphate Buffered Saline) | Thermofischer - Gibco | 14040117 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14040117?SID=srch-hj-14040117 |
Penicillin/Streptomycin | Thermofischer - Gibco | 15140122 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15140122 |
Periscope Assembly | Thorlabs | RS99 | Includes the top and bottom units, Ø1" post, and clamping fork. |
picoEmerald System | A.P.E | N/A | https://www.ape-berlin.de/en/cars-srs/ |
Shielded Box with BNC Connectors | Pomona Electronics | 2902 | Aluminum Box with Cover, BNC Female/Female |
Si Photodiode Detector | Home Built | N/A | DYI series |
Silicon Wafer | |||
Spacers | Grace Bio-Labs | 654008 | https://gracebio.com/product/secureseal-imaging-spacers-654008/ |
Spontaneous Raman spectroscopy | Horiba XploRA | N/A | https://www.horiba.com/int/products/detail/action/show/Product/xploratm-plus-1528/ |
Stimulated Raman Scattering Microscopy | Home Built | N/A | |
Touch Panel Controller | Olympus | Control the X-Y direction of the laser-scanning microscope | |
Trypan Blue 0.4% (0.85% NaCl) | Lonza | 17-942E | https://bioscience.lonza.com/lonza_bs/US/en/Culture-Media-and-Reagents/p/000000000000181876/Trypan-Blue%2C-0-4%25-Solution" |
Tweezers | Kaverme - Amazon | B07RNVXXV1 | https://www.amazon.com/Precision-Anti-Static-Electronics-Laboratory-Jewelry-Making/dp/B07RNVXXV1" |
Two Photon Excitation Fluorescence Microscopy | Home Built | N/A | |
Weighing Paper | VWR | 12578-165 | https://us.vwr.com/store/product/4597617/vwr-weighing-paper |
Zurich LabOneQ Software | Zurich Instruments | Control the Zurich lock-in amplifier |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены