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Biology

자석 구슬을 사용하여 기계 인장에 대한 응답으로 세포 표면 접착 리모델링 분석

Published: March 8th, 2017

DOI:

10.3791/55330

1Institute for Advanced Biosciences, Centre de recherche UGA - INSERM U1209 - CNRS UMR
* These authors contributed equally

이들은 기계적 장력 송신 조직 항상성 및 개발에 관여하는 신호 전달 경로를 시작으로 세포 표면 유착은 mechanotransduction 중앙이다. 여기서는 리간드 피복 된 자성 마이크로 비드 접착 수용체 포스 응용 프로그램을 사용하여, 인장에 응답하여 활성화되는 생화학 적 경로를 해부위한 프로토콜을 제시한다.

Mechanosensitive 세포 표면 접착 착물 셀들은 주변의 기계적 특성을 감지 할 수있다. 최근의 연구는 접착 부위에 힘을 감지 분자 및 혈통 특정 유전자 발현을 조절하고 표현형 출력을 구동 힘에 의존하는 전사 인자를 모두 확인했다. 그러나, 생화학 적 경로에 기계적인 긴장을 변환 신호 네트워크는 애매 남아있다. 세포 표면 수용체에 적용된 기계적 장력에 종사하는 신호 전달 경로를 탐색하기 위해, 초상 자성 마이크로 비즈가 사용될 수있다. 여기서 우리는 세포 표면의 접착 단백질의 힘을 적용하는 자성 비드를 이용하기위한 프로토콜을 제시한다. 이 방법을 사용하면, 리간드 피복 된 비드에 부착 된 접착 단지 자기 분리에 의해서도 힘 따라 다양한 생화학 적 방법에 의해 세포 내 신호 전달 경로, 또한 접착 리모델링을 조사 할 수있다. 이 프로토콜은 리간드 공동의 제조를 포함ated 초상 자성 구슬, 그리고 응용 프로그램이 생화학 적 분석 한 다음 인장 힘을 정의합니다. 또한, 우리는 인테그린 기반의 접착에 적용하는 장력을 보여주는 데이터의 대표 샘플이 부착 리모델링을 유발 단백질 티로신 인산화를 변경 제공합니다.

후생 동물에서 기계적인 긴장은 증식, 분화 및 생존 1, 2 등 세포 프로세스의 무수의 조절을 통해 조직 개발 및 항상성을 지시합니다. 기계 긴장은 세포 외 기질에서 발생할 수 또는 부착 세포 샘플 세포 외 기질에 끌어과 긴장에 민감한 분자를 통해 강성을 프로브 액토 마이 오신의 수축성 기계를 통해 자신의 세포 외 환경을 생성 할 수 있습니다. 장력에 응답하여, mechanosensitive 접착 단백질은 복잡한 신호 캐스케이드를 트리거 형태 적 변화를 겪는다. 차례로,이 신호 전달 경로는 세포 외 환경에 세포의 행동을 조정 증식, 분화 및 생존을 포괄 mechanoresponse을 조율. 이러한 프로세스는 빠르게 메카의 루프에 다시 공급하는 (초 분) 단기 기간에 정착 될 수있다 mechanosensitive 구조를 수정하여 notransduction. 예를 들어, 인테그린 기반 유착의 Rho는 GTPase 매개 골격 리모델링 3,4,5 내지 장력에 응답하여 강화한다. 병행하여, 다른 신호 전달 경로는 결....

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자석 구슬 1. 리간드 활용

주 : 리간드 결합은 2.8 μm의 직경 상자성 토실 활성화 된 비드를 사용하여 수행된다 (원액 농도 10 8 비드 / ㎖, 30 mg의 비드 / ㎖). 다음 프로토콜은 60mm 조직 배양 접시에서 80 % 컨 플루 언시로 성장 MRC-5 세포에 해당하는 약 2 × 105 세포의 샘플들에 기초한다. 따라서 다른 합류점에서 서로 다른 크기 또는 셀의 판을 사용하는 경우 구슬 및 .......

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기술의 개략도는도 1a에 도시되어있다. 리간드 결합 후, 자성 비드를 20 분 동안 세포를 배양 한 후 영구 자석은 시간의 다양한 시간 동안 30-40 PN의 인장력을 적용하기 위해 사용된다. 도 1b는 MRC5 세포 부착 수용체에 결합 2.8 μm의 FN 코팅 된 자성 비드를 나타낸다.

세포 용해 후의 초상 자성 비드의 세정 단계는 매우 중요 및 정제의 정도를 결정한다. 세.......

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여기에 기재된 방법은 세포 표면 접착 수용체에 장력을 적용하고 그 이후의 정제를 허용하는 간단한 방법을 구성한다. 그러나 일부 단계는 대상 접착 수용체에 따라 효율적으로 접착 정화 및 잠재적 인 최적화를 수행 할 수 있습니다 수행하는 것이 중요하다. 우리는 사용자가 아래에 발생할 수있는 잠재적 인 문제를 제시한다.

우리는 2.8 μm의 직경 자성 비드를 사용하지만, ?.......

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CG는 유럽 연합 (EU) 일곱 번째 프레임 워크 프로그램의 직원은 국립 드 라 공들인 (ANR-13 JSV1-0008), (마리 퀴리 경력 통합 n˚8304162)에서 유럽 연합 (EU)의 지평선에서 유럽 연구위원회 (ERC)에서 보조금 지원 2020 연구와 혁신 프로그램 (ERC 시작 부여 n˚639300).

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NameCompanyCatalog NumberComments
Neodymium magnets (on the upper face of 60 mm dish)K&J Magnetics, IncDX88-N52grade N52 dimension: 1 1/2" dia. x 1/2" thick
Neodymium magnets (on the lower face of 60 mm dish)K&J Magnetics, IncD84PC-BLKgrade N42 dimension: 1/2" dia. x 1/4" thick Black Plastic Coated 
Dynabeads M280 TosylactivatedThermofisher14203superparamagnetic beads 
DynaMag-2 MagnetThermofisher12321D
Fibronectin Sigma-AldrichF1141-5MGFibronectin from bovine plasma
Poly-D-LysineSigma-AldrichP7280-5MG
Apo-TransferrinSigma-AldrichT1428-50MGBovine Apo-Transferrin
Bovine serum albuminSigma-AldrichA7906-500G
DMEM high glucose, GlutaMAX supplement, pyruvate Life Technologies31966-021DMEM+GlutaMAX-I 500 ml 
60*15 mm culture dishFalcon353004

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -. L. . Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  2. DuFort, C. C., Paszek, M. J., Weaver, V. M. Balancing forces: architectural control of mechanotransduction. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (5), 308-319 (2011).
  3. Guilluy, C., et al. The Rho GEFs LARG and GEF-H1 regulate the mechanical response to force on integrins. Nat Cell Biol. 13 (6), 722-727 (2011).
  4. Matthews, B. D., Overby, D. R., Mannix, R., Ingber, D. E. Cellular adaptation to mechanical stress: role of integrins, Rho, cytoskeletal tension and mechanosensitive ion channels. J Cell Sci. 119 (3), 508-518 (2006).
  5. Zhao, X. -. H., et al. Force activates smooth muscle alpha-actin promoter activity through the Rho signaling pathway. J Cell Sci. 120 (Pt 10), 1801-1809 (2007).
  6. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  7. Austen, K., Kluger, C., Freikamp, A., Chrostek-Grashoff, A., Grashoff, C. Generation and analysis of biosensors to measure mechanical forces within cells. Meth Mol Biol. 1066, 169-184 (2013).
  8. Grashoff, C., et al. Measuring mechanical tension across vinculin reveals regulation of focal adhesion dynamics. Nature. 466 (7303), 263-266 (2010).
  9. Pelham, R. J., Wang, Y. l. . Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc Natl Acad Sci USA. 94 (25), 13661-13665 (1997).
  10. Choquet, D., Felsenfeld, D. P., Sheetz, M. P. Extracellular matrix rigidity causes strengthening of integrin-cytoskeleton linkages. Cell. 88 (1), 39-48 (1997).
  11. Chaudhuri, O., Parekh, S. H., Lam, W. A., Fletcher, D. A. Combined atomic force microscopy and side-view optical imaging for mechanical studies of cells. Nat Meth. 6 (5), 383-387 (2009).
  12. Bays, J. L., et al. Vinculin phosphorylation differentially regulates mechanotransduction at cell-cell and cell-matrix adhesions. J Cell Biol. 205 (2), 251-263 (2014).
  13. Collins, C., et al. Localized tensional forces on PECAM-1 elicit a global mechanotransduction response via the integrin-RhoA pathway. Curr Biol. 22 (22), 2087-2094 (2012).
  14. Gordon, W. R., et al. Mechanical Allostery: Evidence for a Force Requirement in the Proteolytic Activation of Notch. Dev Cell. 33 (6), 729-736 (2015).
  15. Lessey-Morillon, E. C., et al. The RhoA guanine nucleotide exchange factor, LARG, mediates ICAM-1-dependent mechanotransduction in endothelial cells to stimulate transendothelial migration. J Immunol. 192 (7), 3390-3398 (2014).
  16. Osborne, L. D., et al. TGF-β regulates LARG and GEF-H1 during EMT to affect stiffening response to force and cell invasion. Mol Biol Cell. 25 (22), 3528-3540 (2014).
  17. Scott, D. W., Tolbert, C. E., Burridge, K. Tension on JAM-A activates RhoA via GEF-H1 and p115 RhoGEF. Mol Biol Cell. 27 (9), 1420-1430 (2016).
  18. Glogauer, M., Ferrier, J., McCulloch, C. A. Magnetic fields applied to collagen-coated ferric oxide beads induce stretch-activated Ca2+ flux in fibroblasts. Am J Physiol - Cell Physiol. 269 (5), C1093-C1104 (1995).
  19. Glogauer, M., et al. Calcium ions and tyrosine phosphorylation interact coordinately with actin to regulate cytoprotective responses to stretching. J Cell Sci. 110 (Pt 1), 11-21 (1997).
  20. Kuo, J. -. C., Han, X., Hsiao, C. -. T., Yates, J. R., Waterman, C. M. Analysis of the myosin-II-responsive focal adhesion proteome reveals a role for β-Pix in negative regulation of focal adhesion maturation. Nat Cell Biol. 13 (4), 383-393 (2011).
  21. Schiller, H. B., et al. β1- and αv-class integrins cooperate to regulate myosin II during rigidity sensing of fibronectin-based microenvironments. Nat Cell Biol. 15 (6), 625-636 (2013).
  22. Guilluy, C., et al. Isolated nuclei adapt to force and reveal a mechanotransduction pathway in the nucleus. Nat Cell Biol. 16 (4), 376-381 (2014).
  23. Plopper, G. E., McNamee, H. P., Dike, L. E., Bojanowski, K., Ingber, D. E. Convergence of integrin and growth factor receptor signaling pathways within the focal adhesion complex. Mol Biol Cell. 6 (10), 1349-1365 (1995).
  24. Roca-Cusachs, P., Gauthier, N. C., Del Rio, ., A, M. P., Sheetz, Clustering of alpha(5)beta(1) integrins determines adhesion strength whereas alpha(v)beta(3) and talin enable mechanotransduction. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (38), 16245-16250 (2009).
  25. Ajeian, J. N., et al. Proteomic analysis of integrin-associated complexes from mesenchymal stem cells. Proteomics Clin Appl. 10 (1), 51-57 (2016).
  26. Horton, E. R., Astudillo, P., Humphries, M. J., Humphries, J. D. Mechanosensitivity of integrin adhesion complexes: Role of the consensus adhesome. Exp Cell Res. , (2015).
  27. Jones, M. C., et al. Isolation of integrin-based adhesion complexes. Curr Protoc Cell Biol. 66, 9.8.1-9.8.15 (2015).
  28. Ng, D. H. J., Humphries, J. D., Byron, A., Millon-Frémillon, A., Humphries, M. J. Microtubule-dependent modulation of adhesion complex composition. PloS One. 9 (12), e115213 (2014).
  29. Byron, A., Humphries, J. D., Bass, M. D., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of integrin adhesion complexes. Sci Sign. 4 (167), pt2 (2011).
  30. Byron, A., Humphries, J. D., Craig, S. E., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of α4β1 integrin adhesion complexes reveals α-subunit-dependent protein recruitment. Proteomics. 12 (13), 2107-2114 (2012).
  31. Marjoram, R. J., Guilluy, C., Burridge, K. Using magnets and magnetic beads to dissect signaling pathways activated by mechanical tension applied to cells. Methods. , (2015).
  32. Pasapera, A. M., Schneider, I. C., Rericha, E., Schlaepfer, D. D., Waterman, C. M. Myosin II activity regulates vinculin recruitment to focal adhesions through FAK-mediated paxillin phosphorylation. J Cell Biol. 188 (6), 877-890 (2010).
  33. Sawada, Y., Sheetz, M. P. Force transduction by Triton cytoskeletons. J Cell Biol. 156 (4), 609-615 (2002).
  34. Grinnell, F., Geiger, B. Interaction of fibronectin-coated beads with attached and spread fibroblasts. Binding, phagocytosis, and cytoskeletal reorganization. Exp Cell Res. 162 (2), 449-461 (1986).
  35. Schroeder, F., Kinden, D. A. Measurement of phagocytosis using fluorescent latex beads. J Biochem Biophys Meth. 8 (1), 15-27 (1983).
  36. Hoffman, B. D., Grashoff, C., Schwartz, M. A. Dynamic molecular processes mediate cellular mechanotransduction. Nature. 475 (7356), 316-323 (2011).
  37. Seo, D., et al. A Mechanogenetic Toolkit for Interrogating Cell Signaling in Space and Time. Cell. 165 (6), 1507-1518 (2016).

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