JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Biology

Analysera cellytan Adhesion Remodeling som svar på mekaniska spänningar med användning av magnetiska pärlor

Published: March 8th, 2017

DOI:

10.3791/55330

1Institute for Advanced Biosciences, Centre de recherche UGA - INSERM U1209 - CNRS UMR
* These authors contributed equally

Cellytan sammanväxningar är centrala i mechanotransduction, eftersom de sänder mekanisk spänning och initiera de signalvägar som är involverade i vävnadshomeostas och utveckling. Här presenterar vi ett protokoll för att dissekera de biokemiska vägar som aktiveras som svar på spänning, med hjälp av ligand-belagda magnetiska mikropärlor och kraft ansökan till vidhäftningsreceptorer.

Mechanosensitive cellyte vidhäftningskomplex tillåter celler att känna av de mekaniska egenskaperna hos sin omgivning. Nyligen genomförda studier har identifierat både kraftkännande molekyler på vidhäftningsställen och kraftberoende transkriptionsfaktorer som reglerar härstamning specifika genuttryck och driver fenotypiska utgångar. Emellertid har signaleringsnätverk omvandlar mekanisk spänning i biokemiska vägar förblev svårfångade. För att utforska de signalvägar som deltar vid mekanisk spänning som anbringas till cellytereceptor, kan superparamagnetiska mikropärlor användas. Här presenterar vi ett protokoll för användning av magnetiska pärlor för att tillämpa krafter till cellytans vidhäftningsproteiner. Med hjälp av denna metod är det möjligt att undersöka inte bara kraftberoende cytoplasma signalvägar av olika biokemiska metoder, men också vidhäftnings ombyggnad av magnetisk isolering av vidhäftningskomplex bundna till ligand-belagda pärlor. Detta protokoll omfattar framställningen av ligand-cointresse- superparamagnetiska pärlor, och tillämpningen av definiera dragkrafter följt av biokemiska analyser. Dessutom ger vi ett representativt urval av uppgifter som visar att spänning appliceras på integrin-baserad adhesion utlöser vidhäftning ombyggnad och förändrar proteintyrosinfosforylering.

I metazoer riktar mekaniska spänningar vävnadsutveckling och homeostas genom reglering av en myriad av cellulära processer såsom proliferation, differentiering och överlevnad 1, 2. Mekaniska spänningar kan uppstå från den extracellulära matrisen eller kan genereras av vidhäftande celler, vilket prov deras extracellulära miljön genom aktomyosin sammandragnings maskiner som drar till extracellulär matris och utför sin styvhet genom spänningskänsliga molekyler. Som svar på spänning, mechanosensitive vidhäftningsproteiner genomgå konformationsförändringar som utlöser komplexa signaleringskaskader. I sin tur dessa....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. Ligand Konjugering till magnetiska pärlor

Notera: Ligand konjugering utförs med användning av superparamagnetiska tosyl-aktiverade pärlorna med en 2,8 ^ m diameter (stamlösningens koncentration 10 8 pärlor / ml, 30 mg pärlor / ml). Följande protokoll är baserat på prover av approximativt 2 x 10 5 celler, som motsvarar MRC-5-celler odlade till 80% sammanflytning i en 60 mm vävnadsodlingsplatta. Justera volymen av kulor och reagens i enlighet med om du använd.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Den schematiska av teknik illustreras i figur 1a. Följande ligand konjugering, är magnetiska pärlor inkuberas med cellerna under 20 min, och sedan en permanentmagnet används för att applicera dragkrafter på ca 30-40 pN för olika tid. Figur 1b visar 2,8 fim FN-belagda magnetiska pärlor bundna till MRC5 celladhesionsreceptorer.

Tvättstegen av superparamagnetiska pärlor efter cellys är avgörande och bestämma graden av rening. Ett minimum av tre tv?.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Den här beskrivna metoden utgör en okomplicerad metod för att anbringa spänning till cellytans vidhäftningsreceptorer och tillåta deras efterföljande rening. Men några steg är avgörande för att utföra en effektiv vidhäftning rening och potentiella optimering kan göras beroende på de riktade vidhäftningsreceptorer. Vi presenterar potentiella problem användaren kan stöta nedan.

Vi använde magnetiska pärlor 2,8 um diameter men större pärlor kan användas, såsom 4,5 um dia.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

CG stöds av bidrag från Agence National de la Recherche (ANR-13-JSV1-0008), från Europeiska unionens sjunde ramprogram (Marie Curie Karriär Integration n˚8304162) och från European Research Council (ERC) under EU: s Horizon 2020 forsknings- och innovationsprogram (ERC Starting Grant n˚639300).

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
Neodymium magnets (on the upper face of 60 mm dish)K&J Magnetics, IncDX88-N52grade N52 dimension: 1 1/2" dia. x 1/2" thick
Neodymium magnets (on the lower face of 60 mm dish)K&J Magnetics, IncD84PC-BLKgrade N42 dimension: 1/2" dia. x 1/4" thick Black Plastic Coated 
Dynabeads M280 TosylactivatedThermofisher14203superparamagnetic beads 
DynaMag-2 MagnetThermofisher12321D
Fibronectin Sigma-AldrichF1141-5MGFibronectin from bovine plasma
Poly-D-LysineSigma-AldrichP7280-5MG
Apo-TransferrinSigma-AldrichT1428-50MGBovine Apo-Transferrin
Bovine serum albuminSigma-AldrichA7906-500G
DMEM high glucose, GlutaMAX supplement, pyruvate Life Technologies31966-021DMEM+GlutaMAX-I 500 ml 
60*15 mm culture dishFalcon353004

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -. L. . Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  2. DuFort, C. C., Paszek, M. J., Weaver, V. M. Balancing forces: architectural control of mechanotransduction. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (5), 308-319 (2011).
  3. Guilluy, C., et al. The Rho GEFs LARG and GEF-H1 regulate the mechanical response to force on integrins. Nat Cell Biol. 13 (6), 722-727 (2011).
  4. Matthews, B. D., Overby, D. R., Mannix, R., Ingber, D. E. Cellular adaptation to mechanical stress: role of integrins, Rho, cytoskeletal tension and mechanosensitive ion channels. J Cell Sci. 119 (3), 508-518 (2006).
  5. Zhao, X. -. H., et al. Force activates smooth muscle alpha-actin promoter activity through the Rho signaling pathway. J Cell Sci. 120 (Pt 10), 1801-1809 (2007).
  6. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  7. Austen, K., Kluger, C., Freikamp, A., Chrostek-Grashoff, A., Grashoff, C. Generation and analysis of biosensors to measure mechanical forces within cells. Meth Mol Biol. 1066, 169-184 (2013).
  8. Grashoff, C., et al. Measuring mechanical tension across vinculin reveals regulation of focal adhesion dynamics. Nature. 466 (7303), 263-266 (2010).
  9. Pelham, R. J., Wang, Y. l. . Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc Natl Acad Sci USA. 94 (25), 13661-13665 (1997).
  10. Choquet, D., Felsenfeld, D. P., Sheetz, M. P. Extracellular matrix rigidity causes strengthening of integrin-cytoskeleton linkages. Cell. 88 (1), 39-48 (1997).
  11. Chaudhuri, O., Parekh, S. H., Lam, W. A., Fletcher, D. A. Combined atomic force microscopy and side-view optical imaging for mechanical studies of cells. Nat Meth. 6 (5), 383-387 (2009).
  12. Bays, J. L., et al. Vinculin phosphorylation differentially regulates mechanotransduction at cell-cell and cell-matrix adhesions. J Cell Biol. 205 (2), 251-263 (2014).
  13. Collins, C., et al. Localized tensional forces on PECAM-1 elicit a global mechanotransduction response via the integrin-RhoA pathway. Curr Biol. 22 (22), 2087-2094 (2012).
  14. Gordon, W. R., et al. Mechanical Allostery: Evidence for a Force Requirement in the Proteolytic Activation of Notch. Dev Cell. 33 (6), 729-736 (2015).
  15. Lessey-Morillon, E. C., et al. The RhoA guanine nucleotide exchange factor, LARG, mediates ICAM-1-dependent mechanotransduction in endothelial cells to stimulate transendothelial migration. J Immunol. 192 (7), 3390-3398 (2014).
  16. Osborne, L. D., et al. TGF-β regulates LARG and GEF-H1 during EMT to affect stiffening response to force and cell invasion. Mol Biol Cell. 25 (22), 3528-3540 (2014).
  17. Scott, D. W., Tolbert, C. E., Burridge, K. Tension on JAM-A activates RhoA via GEF-H1 and p115 RhoGEF. Mol Biol Cell. 27 (9), 1420-1430 (2016).
  18. Glogauer, M., Ferrier, J., McCulloch, C. A. Magnetic fields applied to collagen-coated ferric oxide beads induce stretch-activated Ca2+ flux in fibroblasts. Am J Physiol - Cell Physiol. 269 (5), C1093-C1104 (1995).
  19. Glogauer, M., et al. Calcium ions and tyrosine phosphorylation interact coordinately with actin to regulate cytoprotective responses to stretching. J Cell Sci. 110 (Pt 1), 11-21 (1997).
  20. Kuo, J. -. C., Han, X., Hsiao, C. -. T., Yates, J. R., Waterman, C. M. Analysis of the myosin-II-responsive focal adhesion proteome reveals a role for β-Pix in negative regulation of focal adhesion maturation. Nat Cell Biol. 13 (4), 383-393 (2011).
  21. Schiller, H. B., et al. β1- and αv-class integrins cooperate to regulate myosin II during rigidity sensing of fibronectin-based microenvironments. Nat Cell Biol. 15 (6), 625-636 (2013).
  22. Guilluy, C., et al. Isolated nuclei adapt to force and reveal a mechanotransduction pathway in the nucleus. Nat Cell Biol. 16 (4), 376-381 (2014).
  23. Plopper, G. E., McNamee, H. P., Dike, L. E., Bojanowski, K., Ingber, D. E. Convergence of integrin and growth factor receptor signaling pathways within the focal adhesion complex. Mol Biol Cell. 6 (10), 1349-1365 (1995).
  24. Roca-Cusachs, P., Gauthier, N. C., Del Rio, ., A, M. P., Sheetz, Clustering of alpha(5)beta(1) integrins determines adhesion strength whereas alpha(v)beta(3) and talin enable mechanotransduction. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (38), 16245-16250 (2009).
  25. Ajeian, J. N., et al. Proteomic analysis of integrin-associated complexes from mesenchymal stem cells. Proteomics Clin Appl. 10 (1), 51-57 (2016).
  26. Horton, E. R., Astudillo, P., Humphries, M. J., Humphries, J. D. Mechanosensitivity of integrin adhesion complexes: Role of the consensus adhesome. Exp Cell Res. , (2015).
  27. Jones, M. C., et al. Isolation of integrin-based adhesion complexes. Curr Protoc Cell Biol. 66, 9.8.1-9.8.15 (2015).
  28. Ng, D. H. J., Humphries, J. D., Byron, A., Millon-Frémillon, A., Humphries, M. J. Microtubule-dependent modulation of adhesion complex composition. PloS One. 9 (12), e115213 (2014).
  29. Byron, A., Humphries, J. D., Bass, M. D., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of integrin adhesion complexes. Sci Sign. 4 (167), pt2 (2011).
  30. Byron, A., Humphries, J. D., Craig, S. E., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of α4β1 integrin adhesion complexes reveals α-subunit-dependent protein recruitment. Proteomics. 12 (13), 2107-2114 (2012).
  31. Marjoram, R. J., Guilluy, C., Burridge, K. Using magnets and magnetic beads to dissect signaling pathways activated by mechanical tension applied to cells. Methods. , (2015).
  32. Pasapera, A. M., Schneider, I. C., Rericha, E., Schlaepfer, D. D., Waterman, C. M. Myosin II activity regulates vinculin recruitment to focal adhesions through FAK-mediated paxillin phosphorylation. J Cell Biol. 188 (6), 877-890 (2010).
  33. Sawada, Y., Sheetz, M. P. Force transduction by Triton cytoskeletons. J Cell Biol. 156 (4), 609-615 (2002).
  34. Grinnell, F., Geiger, B. Interaction of fibronectin-coated beads with attached and spread fibroblasts. Binding, phagocytosis, and cytoskeletal reorganization. Exp Cell Res. 162 (2), 449-461 (1986).
  35. Schroeder, F., Kinden, D. A. Measurement of phagocytosis using fluorescent latex beads. J Biochem Biophys Meth. 8 (1), 15-27 (1983).
  36. Hoffman, B. D., Grashoff, C., Schwartz, M. A. Dynamic molecular processes mediate cellular mechanotransduction. Nature. 475 (7356), 316-323 (2011).
  37. Seo, D., et al. A Mechanogenetic Toolkit for Interrogating Cell Signaling in Space and Time. Cell. 165 (6), 1507-1518 (2016).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved