JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Insan pluripotent kök hücreleri (hPSC) türetilmiş nöral krest (NC) hücreler, insan gelişimi ve hastalık modelleme ve hücre replasman tedavileri için büyük bir potansiyele sahiptir. Burada, şu anda yaygın olarak kullanılan bir besleyici ücretsiz adaptasyon In vitro HPSCs NC hücrelerin derivasyon için farklılaşma protokolü sunulmuştur.

Özet

İnsan pluripotent kök hücreler (hPSCs) tabak içinde, insan hastalıklarının modellemek için hastalık veya kaza sonrası uygulamalarda rejeneratif transplante edilebilir hücre kaynağı olarak, insan embriyo gelişimini incelemek için büyük bir potansiyele sahiptir. Sinir tepe (NC)-hücreleri, periferik sinir sistemi ve glia, melanositler ve mezenkimal hücrelerden hücreler gibi yetişkin somatik hücre, büyük bir çeşitlilik için öncülerdir. Bunlar hücre kaderinin şartname ve göç dahil olmak üzere insan embriyonik gelişim, yönlerini incelemek için hücre değerli bir kaynaktır. Terminal olarak farklılaşmış hücre tipleri NC projenitör hücrelerin farklılaşma başka, in vitro olarak insan hastalıklarının Modele hastalık mekanizmalarını incelemek ve rejeneratif hücrelere ilaç üretmek için imkanı sunar. Bu makalede, hPSCs NC hücrelerinin türetilmesi için bir mevcut in vitro farklılaşma protokol adaptasyonu sunar. Bu yeni protokol sorumluluk yönün 18 gün gerektirirrentiation, besleyici-özgür insan embriyonik kök hücre (HESC) hatları gibi insan uyarılmış pluripotent kök hücre (hiPSC) hatları arasında kolayca ölçeklenebilir ve yüksek tekrarlanabilir olduğunu. Hem eski hem de yeni protokoller eşit kimlik NC hücreleri verim.

Giriş

İnsan embriyonik kök hücreleri (HESC) ve insan uyarılmış pluripotent kök hücreler (hiPSC) iyi hayvan modelleri ne birincil dokular ne mevcut olduğu için insan hastalıkların araştırılması ve gelecekteki tedavisi için özellikle, muazzam bir potansiyel göstermiştir. HESC / hiPSC tekniği Uygulama örnekleri aşağıdaki gibidir: Özellikle ilgi çekici hücreleri sınırsız miktar 1 de rejeneratif tıp için HESC / hiPSCs oluşturulabilir. Hücreler, belirli bir hastalık taşıyan hastaların üretilen ve vitro hastalık modellerinde 2,3 kurmak için kullanılabilir. Bu tür hastalık modelleri daha sonra yeni ilaç bileşikleri 4 arayışı hem de etkinlik ve toksisite 5 için mevcut ilaçların test büyük ölçekli ilaç taraması için kullanılabilecektir. In vitro hastalık modelleri, yeni hastalık mekanizmalarının tanımlanmasına yol açabilir. HESC / iPSC teknolojisinin tüm uygulamalar için spesifik ile çalışmak önemlidir, iyi tanımlamaksöz konusu hastalığın etkilenen d hücre türleri. Bu nedenle, katı ve tekrarlanabilir in vitro farklılaşma protokollerin kullanılabilirliği HESC / hiPSC teknolojisinin tüm uygulamalar için çok önemlidir. Protokoller HESC / hiPSC hatları ve farklı araştırmacılar arasında en az değişkenlik, zaman gider, çaba, zorluk ve maliyet hem de maksimum tekrarlanabilirlik gösteriyor ki arzu edilir.

Nöral krest (NC) hücreleri epidermis ve nöral epiteli arasında omurgalı nörülasyon sırasında ortaya çıkar. , Çoğaldıkları ve gelişen embriyonun boyunca göç eder ve yaygın olarak kemik / kıkırdak, kraniofasiyal iskelet, duyu sinirlerinin, Schwann hücreleri, melanositler, düz kas hücreleri, bağırsak, nöronlar, otonomik nöron, kromafin hücreleri de dahil olmak üzere, soy hücre tiplerinin etkileyici bir çeşitliliği doğuran , kalp septum hücreleri, diş ve adrenal / tiroid salgı bezi hücreleri 6. Bu durumda, hücreler, Kuzey Carolina çekici bir hücre alanı için kök hücre tipi ve için önemlidirBu tür Hirschsprung hastalığı 7, Ailevi Disotonomi 8 yanı sıra 9 gibi nöroblastoma kanser gibi hastalıkların, çeşitli modellenmesi. Dahası, in vitro insan embriyonik gelişim yönlerini incelemek için imkanı sunuyoruz.

Şu anda mevcut ve yaygın olarak hESC 10,11 NC hücrelerinin türetilmesi için vitro farklılaşma protokolünde uygulanan farklılaşma 35 güne kadar sürer ve bu gibi MS5 stromal hücreleri gibi besleyici hücreleri üzerinde uyarılmasını sinir içerir ve bu nedenle yetersiz tanımlanmış koşullar altında gerçekleştirilir. Bu NC hücreleri büyük miktarlarda üretmek için ölçekli kadar olabilir, yüksek verimlilik gösteren ilaç tarama 4 için gerekli olan, örneğin, bu iş ve maliyet yoğundur. Ayrıca, yeniden zor olabilir sinir rozet, elle pasajlanmasını da içerir ve bu HESC veya hiPSC büyük bir çeşitlilik uygulandığı zaman bu nedenle, özellikle genel olarak değişkenlik, tabidirçizgiler. Burada, besleyici hücre içermeyen bir 18 günlük protokolünde NC hücrelerin aşamalı türetme gösterilmiştir. Bu yöntem, şu anda kullanılan protokol daha kısa ve daha belirgin olduğunu. Ayrıca, farklı hiPSC hatları arasında NC hücreleri üreten çok sağlamdır. Önemlisi, bu iki protokol tarafından vermiştir NC hücreler nöral rozetler (bundan sonra adlandırılan rozet-NC ya da R-NC) sınırında ortaya olduğu gösterilmiştir. Iki protokolden birini kullanarak elde edilen hücreler aynı NC işaretleri ifade ve mikroarray analizi birlikte küme, morfolojik aynı görünüyor. Yeni protokolü (R-NC) kullanılarak elde edilen NC hücreleri göç ve daha fazla nöronların içine ayırt olabilir böyle eski protokolü (MS5-R-NC) kullanılarak elde edilen NC hücrelerine benzer, işlevseldir. Bu yüzden, hücreler, MS5-R-NC hücreleri ile eş zamanlı olarak kullanılabilir. HESC / iPSC NC hücrelerin derivasyon için R-NC hücre protokol NC soy içeren HESC / iPSC teknolojisinin tüm uygulamalar için faydalı olacaktır.

Protokol

1.. Kültür Medya, Kaplamalı Yemekleri ve hPSCs ve Bakım hazırlanması

1.1 Medya hazırlık

Not: en fazla 2 hafta boyunca karanlıkta 4 ° C'de sterilizasyon ve mağaza için tüm ortamı Filtre. Reaktif isimler, şirket ve katalog numaraları Malzeme tabloda listelenmiştir.

  1. DMEM/10% FCS: 885 ml DMEM, 100 ml FBS, 10 ml Pen / Strep ve 5 ml L-Glutamin birleştirin.
  2. HES-ortamı: 800 ml DMEM/F12, KSR 200 mi, 5 ml L-glutamin, 5 ml Pen / Strep, 10 ml MEM minimum esansiyel amino asitler çözeltisi, 1 ml β-mercaptoethanol birleştirin. FGF-2 ortamın süzülmesi ve sonra 10 ng / ml ilave edilir.
    DİKKAT: β-Mercaptoethanol inhalasyon, yenmesi ve cilt temasından kaçınmak, zehirlidir.
  3. KSR-farklılaştırma ortamı: 820 ml DMEM Knockout, KSR 150 mi, 10 ml L-glutamin, 10 ml Pen / Strep, 10 ml MEM minimum esansiyel amino asitler çözeltisi ve 1 ml β-mercaptoethanol birleştirin.
  4. N2-differentiatiortamı üzerinde: 980 ml ​​dH 2 O 12 g DMEM/F12 toz çözündürün 1.55 g Glukoz, 2 g sodyum bikarbonat ve 100 mg APO insan transferin ekleyin. Ortama çözünmüş çözeltisi ekleyin, 25 mg insan insülini ve 40 ul 1 N NaOH ile 2 ml dH 2 O karıştırın. 100 ul putressin dihidroklOliirürü, 60 ul selenit, 100 ul progesteron ekleyin ve dH 2 O. ile 1 L'ye kadar ses getirmek

Kültür kaplarına 1.2 Kaplama

  1. Matrigel kaplama: Çözülme 1 ml 'çözülene kadar bölenin üzerine 19 ml DMEM/F12 pipetleyerek matrigel alikosunu donduruldu. 40 mikron hücre süzgecinden ve plaka 8 ml/10 cm çanak geçirilerek kümeleri kaldırmak. Oda sıcaklığında 1 saat için yemekler inkübe edin. Hücrelerin hemen önce, kaplama Matrigel aspire.
    Not: 4 ° C'nin üzerindeki sıcaklıklarda gelme çünkü matrigel ile hızlı çalışın
  2. PO / Lam / FN kaplama: 10 cm çanak için 15 ug / ml Poli-L Ornithin hidrobromitin içeren 1x PBS 10 ml ekleyin. 37 ° C'de gece boyunca inkübe çanak 1x kez PBS ile yıkayın plakaları ve 2 ug / ml fare Laminin-I ve 2 ug / ml ihtiva eden fibronektin 1x PBS 10 ml/10 cm tabak ekleyin. 37 ° C'de gece boyunca inkübe yemekler Hücreleri kaplama önce tamamen çözüm kaldırmak ve plakalar üzerinde kapak olmadan doku kültürü kaputu duvara onları ayakta tarafından 15-20 dakika oda sıcaklığında iyice kurumasını bekleyin.
    Not: yemekleri bir (gözle görülebilir) yüzeyinde kristal yapıları görebilirsiniz zaman tamamen kuru ve hücre kaplama için hazırız. Plakalar, bu kurutulmuş halde bir kaç saat için oda sıcaklığında muhafaza edilebilir. PO / Lam / FN yemekler 2 gün önceden hazırlıklı olmak zorunda. Acil durumlarda, Lam / FN sadece 2-4 saat inkübe edilebilir. Ancak, bu optimal farklılaşma / sağkalım sonuçlarını riski olabilir.

HPSCs 1.3 Bakım

Not: hPSCs% 0.1 jelatin ve mitotikal inaktive fare embriyonik fibroblast (M tutulurHES-ortam içinde EFs) ile takviye edilmiş 10 ng / ml FGF-2, daha önce tarif edildiği gibi 10,12. Hücreler 6-8 gün, her bölünmüş olmalıdır.

  1. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında (magnezyum veya kalsiyum olmadan 1x PBS) 8 ml,% 0.1 jelatin ile kaplayın, 10 cm tabak.
  2. Bir 37 ° C su banyosu içinde hızla dondurulmuş MEFS çözülme. 10 ml DMEM/10% FBS 1 milyon MEFS ekleyin.
  3. Jelatin aspire ve hücreler plaka. En az 6 saat boyunca 37 ° C'de inkübe edilir.
  4. 1x PBS ile bir kez, plakayı yıkayın ve 10 uM Y-27632 dihidroklorid ile takviye edilmiş 10 ml HES-orta ekleyin, hazırlanan MEF plakadan DMEM/10% FBS aspire. Aracı, 20 dakika boyunca 37 ° C 'de ısınmasına izin verin.
    Not: hPSCs manuel bölmek için gömülü bir mikroskop ile bir laminer akış kaputu kullanılır. Bununla birlikte, hücreler, uygun alternatif yöntemler kullanılarak geçişli olabilir.
  5. Gömülü bir mikroskop ile bir laminer akış kaputu altında, bir hücre hırsızı kullanarak ayrı koloni ayırmak ve onları şamandıra izin.
  6. Bir kullanınYüzen koloniler aspire ve taze, sıcak MEF plaka üzerine sevketmek 1 ml şırınga. Yeni çanak hücrelerin yaklaşık olarak dörtte biri aktarın. 37 ° C'de inkübe edin
  7. Taze HES orta günlük hücreleri besleyin.

Farklılaşma için hPSCs 2. Kaplama

Not: hPSCs (Şekil 1B bakınız) bölmek veya kaplama farklılaşması için koloniler büyük olduğunda, ama yine de kendi sınırları mümkün ayırt hücreleri olduğunca az ile keskin kenarlara sahip olmalıdır. Hücreler manuel Pasajlanması kullanılarak korunur zaman koloniler kolayca gözle görülemeyecek kadar büyük olmalıdır. Bu zaman noktası için doğru fikir almak için bir pasaj olmadan iki hafta için ayrı hPSC çanak korumak ve hücreler ulaşmak izlemek ve onları ayırt / geçiş için ideal bir zaman noktasını geçebilir.

  1. Farklılaşmasını başlamadan önce matrigel 1 saat ile 10 cm yemekler hazırlayın. Başarılı matrigel kaplama olabilir,4x büyütme doğrulandı.
  2. HPSCs bölünmüş hazır olduğunda, ortam aspire ve hücreler% 0.05 tripsin-EDTA 4 ml.
  3. Tek hücreler mikroskop altında plaka kaldırma gibi MEFS görebilirsiniz kuvvetlice kadar 2 dakika boyunca yatay çanak çalkalayın. HPSC koloniler koloniler olarak takılı kalır.
  4. Hemen ve iyice tripsin aspire ve plaka, 2-4 dakika boyunca oda sıcaklığında bekletin.
  5. Plakasına HES-orta 2 ml ilave edilir ve P1000 pipet kullanılarak, hücreleri ayırmak.
    Not: hücreler kolayca yüzeyden kaldırılabilir edilemiyorsa, plaka, bir 2-3 dakika boyunca oda sıcaklığında kuluçkaya yatırılır, boş olabilir.
  6. 10 uM Y-27632 dihidroklorid ile takviye 8 ml HES-ortamına hücreleri aktarın.
  7. Önceden hazırlanan, 10 cm çanağından aspire Matrigel. Matrigel plaka üzerine (10 cm tabak ikinci Hücreler iki 10 cm çanaklara bölünmüş, örneğin), 1:1 veya 1:02 oranında hücreleri Plate. 37 ° C de inkübeGece boyunca C.
    Not: Bu kaplama yaklaşık olarak 100,000 hücre / cm 2 sonuçlanmalıdır.

Nöral Farklılaşma 3. İndüksiyon

Not: hücreler,% 90-100 sıklıkta (Şekil 1C bakınız), genellikle aşağıdaki gün zaman farklılaşması (gün 0) başlatılabilir. Doğru confluency henüz ulaşılamadığı takdirde onlar farklılaşması için hazır olana kadar, hücreler HES-orta günlük beslenebilir. Alternatif olarak, kaplama hücrelerinin ilk sayısı arttırılabilir.

  1. 3 0. günde, 0.1 uM ve 10 uM LDN193189 SB431542 içeren KSR farklılaşma orta çanağı 10 ml/10 cm günlük hücreleri besleme.
  2. Gün 4 ve 5 yem% 75 KSR-farklılaşma orta ve% 25 N2-farklılaşma orta hücreler LDN193189 ve SB431542 içeren hem de.
  3. 6 ve 7 gün besleme üzerinde% 50 KSR-farklılaştırma ortamının ve% 50 N2-farklılaşma ortamı ile hücreler LDN193189 ve SB4 ihtiva eden hem de31542.
  4. Gün 8 ve 9 yem% 25 KSR-farklılaşma orta ve% 75 N2-farklılaşma orta hücreler LDN193189 ve SB431542 içeren hem de.
  5. 11. günde hücre şarjı için 1.2.2 belirtildiği gibi günde 9 ve 10, PO / Lam / FN yemekler hazırlamak.
  6. Günde N2-farklılaştırma ortamının 10 besleme hücreleri LDN193189 ve SB431542 ihtiva etmektedir.

NC Şartname damlacıklar 4. Replating

  1. Gün 11 aspirat Lam / FN önceden hazırlanmış plakalardan ve 1.2.2 de açıklandığı gibi bunları, 20-30 dakika süreyle oda sıcaklığında tamamen kurumasını bekleyin.
  2. Ayırt hücreleri orta çıkarın, 1x PBS ile bir kez hücreleri yıkayın ve 8 ml accutase/10 cm çanak eklemek. 37 ° C'de 20 dakika boyunca inkübe
  3. Hücre kaldırıcı kullanarak, hücreleri ayırmak ve bir 5 ml pipetle Accutase bunları tekrar süspansiyon. Bir 15 ml tüp süspansiyon aktarın.
  4. 1x PBS içinde 5 ml ilave edilir ve 114 x g, 5 dakika boyunca hücreleri döndürün.
  5. 10 ml 1 hücrelerin tekrarx PBS. Tek bir hücre süspansiyonu sağlamak 40 mikron hücre süzgecinden filtre ve Hemasitometre veya eşdeğer tekniği kullanarak hücreleri saymak.
  6. Aşağı hücreleri Spin ve 100,000 'lik bir konsantrasyonda 200 uM askorbik asit (AA), 20 ng / ml BDNF, 100 ng / ml FGF8, 20 ng / ml SHH, 10 uM Y-27632 dihidroklorür içeren N2-farklılaştırma ortamı içine yeniden süspanse -150000 cells/10 ul.
  7. Onları kurutulmuş PO / Lam / FN 15 cm yemekleri üzerine dokunmadan birbirine yakın bir tekrar-pipet, plaka 10 ul damlacıkları kullanarak.
    Not: farklılaşmış hücrelerin biri 10 cm çanak normalde yaklaşık 2-3 kez 15 cm yemekleri ya da yaklaşık olarak 100 x 10 ul droplets/15 cm çanak sonuçlanır.
  8. Damlacıklar N2/AA/BDNF/FGF8/SHH/Y 30 ml ekleyin ve 37 ° C de inkübe edilir (damlacıkları rahatsız olan) çok dikkatli bir şekilde, daha sonra, 20-30 dakika boyunca oda sıcaklığında bekletin
  9. 12. günde, dikkatli bir şekilde 20 mL/15 cm tabak N2/AA/BDNF/FGF8/SHH ile hücrelerin beslenir.
  10. Da 'dany 14-17 N2/AA/BDNF/FGF8 her ikinci veya üçüncü gün hücreleri beslemek.
  11. Günde 16 ve 17 FACS sıralama sonra NC hücreleri replate PO / Lam / FN plakaları hazırlamak.

5. Floresan Aktive Hücre NC hücre sınıflandırması (FACS)

Not: FACS için hücrelerin hazırlanması, yaklaşık olarak 2 saat gerektirir.

  1. Gün 18 remove ortamı üzerinde, çanak 1x bir kez PBS ile yıkayın ve hücreler 12 mi Accutase ekleyin. 37 ° C'de 20 dakika boyunca inkübe hücreleri
  2. Bir hücre hırsızı kullanarak, yüzey hücreleri ayırmak ve onları şamandıra izin. 50 ml'lik bir tüpe transfer ve 1 x PBS, 30 ml ekleme, 5 ml pipet kullanılarak bir süspansiyon içine hücreleri Pipet. 114 x g, 5 dakika boyunca hücreleri dönerler.
  3. P1000 bir pipet kullanarak, 1 ml% 2 FBS / HBSS (HBSS, 15 mM HEPES ihtiva etmektedir) içinde tekrar süspansiyon hücreleri. % 2 FBS / HBSS 19 ml ilave edilir ve tek bir hücre süspansiyonu sağlamak için 40 mikron hücre süzgecinden hücreleri filtre. 15 dakika daha buz üzerinde hücrelerin inkübeantikor engelleme için ve daha sonra Hemasitometre kullanarak onları saymak.
  4. Aşağı hücreleri Spin ve% 2 FBS / HBSS içinde 10000000 hücre / ml 'lik bir konsantrasyonda tekrar süspansiyon bunları.
  5. Yalnızca kontrol (APC okunur ve 488 için) FACS lekeli boyanmamış, tek lekeli (HNK-1, sadece ve sadece p75) ve ikincil antikor 1000000 hücreleri kenara her ayarlayın.
  6. Uygun örnekler 1 ml süspansiyon içinde 10000000 hücre başına p75 birincil antikor HNK-1 ile 5 ul 5 ul eklenir ve buz üzerinde 20 dakika inkübe edilir.
  7. 10 ml 1 x PBS (114 x g hızında santrifüj 5 dakika) hücreler yıkanır ve 1 ml% 2 FBS / HBSS içinde tekrar süspansiyon hücreleri. Uygun örnekler 1 ml süspansiyon içinde APC 2 ul ve 10000000 hücre başına 488 ikincil antikor ilave edin ve 1 ul karanlıkta buz üzerinde 20 dakika inkübe edilir.
    Not: APC ve 488, sırasıyla, HNK-1 ve p75 boyanması için burada kullanılan ikincil antikorlardır.
  8. 10 ml 1 x PBS, hücreleri iki kere yıkayın, 500 ul 10000000 hücreleri tekrar süspansiyonDAPI (0.5 ng / ml) ya da, FACS analizi ölü hücreleri çıkarmak için uygun bir alternatif, canlı hücre lekesi içeren% 2 FBS / HBSS.
  9. FACS tüpler uygun örnekleri aktarın.
  10. Hücre toplanması için 0.5 ml% 2 FBS / HBSS FACS tüpleri hazırlayın.
    Not: Hücreler ve toplama tüpleri sıralama süre boyunca karanlıkta buz üzerinde tutulur.
  11. DAPI, APC ve 488 çeşit DAPI-/HNK-1 + / P75 + çift pozitif hücrelerini tespit edebilen lazer ile bir hücre sıralama makinesi kullanarak.
    Not: Bu hücreler sıralanmış popülasyonundan hariç olmak için Hazırlama Süresi ve hücrelerin ele hücre ölümü küçük bir yüzdesi neden olur, ölü hücreler DAPI lekeler olduğu ve bu nedenle izin verir. Herhangi bir alternatif ölü / canlı leke bu amaç için eşit derecede iyi çalışır. DAPI kendisi canlı hücre popülasyonunda sitotoksisiteye neden olmaz.

6.. SÄ Hücrelerinin replating, Kuzey Bakım ve Genişleme

Not: FACS sıralanmış hücreler el olmalıOptimum hayatta kalmasını sağlamak için özel bakım ile açtı. Onları replating kadar buz üzerinde tutun. Vorteks veya sert onları pipetle etmeyin. Hücreler tüp hafifçe vurarak yeniden süspanse edilebilir.

  1. FACS sıralama sonra, onları aşağı spin sonra, NC hücrelerin sayısı ve N2-farklılaşma ortamda tekrar süspansiyon 30.000 hücrelerin onları replate uygun hacminde 10 ng / ml FGF2, 20 ng / ml EGF ve 10 mcM Y-27632 dihidroklorüre ile desteklenmiş / 10 ul damlacıklar.
  2. Iyice kuru önce PO / Lam / FN plakaları ve 10 cm çanak plaka başına yaklaşık 50-70 damlacıkları hazırlanmıştır. Yemekler 20-30 dakika oda sıcaklığında bekletin.
  3. Çok dikkatli damlacıklarını bozmadan N2/FGF2/EGF/Y-27632 20 ml/10 cm çanak eklemek. 37 ° C de inkübe hücreleri
  4. N2/FGF2/EGF her 2-3 günde bir hücreleri besleyin.
    Not: damlacıkların içindeki yığmaya başladığınızda NC hücreleri genişletilmiş veya pasajlandığında yaklaşık olarak her 4-5 günde bir veya edilir.
  5. Geçide NC hücreler, orta, wa kaldırmaksh, hücreler bir defa PBS ile ve 1x cm tabak accutase/10 8 ml. 37 ° C'de 20 dakika boyunca inkübe
  6. 5 ml'lik bir pipet kullanılarak plaka kapalı hücreleri pipet ve bir 15 ml tüp aktarın. PBS 1x 6 ml ekleyin.
  7. 114 x g, 5 dakika boyunca hücreleri dönerler.
  8. Damlacık ul 20000 cells/10 elde etmek için 10 ng / ml FGF2, 20 ng / ml EGF ve 10 uM Y-27632 dihidroklorid ile takviye N2-farklılaştırma ortamı içinde tekrar süspansiyon hücreleri.
  9. Kurutuldu, PO / Lam / FN plakalar üzerine 10 ul damlalar hücreleri Replate. Yemekler 20-30 dakika oda sıcaklığında bekletin.
  10. Dikkatle N2/FGF2/EGF/Y-27632 20 ml/10 cm çanak eklemek. 37 ° C'de inkübe edin
    Not: NC hücreleri tutulan ya da nispeten homojen bir ata nüfus olarak 2 hafta boyunca genişletilebilir. Uzun kültür çeşitli döl hücre tipleri ayırt etmek için onları neden olabilir.

Sonuçlar

MS5-R-NC protokolü üzerinde 11 R-NC protokolünün en önemli iki gelişmeler besleyici ücretsiz, tanımlanmış farklılaşma koşulları ve süre şartına genel kısalma vardır. MS5 besleyici hücreler 13 hESC 14 sinir farklılaşmasını desteklemek için gösterilmiştir fare kemik iliği stromal türetilmiş hücrelerdir. HESC böylece erken insan nöral gelişimi taklit eden, Kuzey Carolina hücreler 10 ortaya hangi periferinde, düşük yoğunluklu bir şekilde epi...

Tartışmalar

HESC / hiPSCs R-NC hücrelerinin başarılı farklılaşması için aşağıdaki noktalar göz önüne alınmalıdır. Bu her zaman steril kültür koşulları altında çalışmak için çok önemlidir. Özellikle, bu kirlenme başarılı engel farklılaşmasını çünkü, düzenli mikoplazma kontaminasyonu için hPSC kültürleri test etmek önemlidir, ancak kolayca hPSC kültürde görsel olarak tespit edilemez. R-NC farklılaşması% 90-100 hücre yoğunluğunda başlanmalıdır; düşük hücre yoğunluğu, hücre...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa etmek hiçbir çatışan çıkarları var.

Teşekkürler

Ve Tri-kurumsal kök hücre girişimi (Starr Vakfı); Bu çalışma İsviçre Ulusal Bilim Vakfı ve NYSTEM (C026447 C026446) hibe yoluyla ileri araştırmacılar için bir burs ile desteklenmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
DMEMGibco-Life Technologies11965-092
Fetal Bovine Serum (FBS)Atlanta BiologicalsS11150
DMEM/F12Gibco-Life Technologies11330-032
Knockout Serum ReplacementGibco-Life Technologies10828-028Lot should be tested
L-GlutamineGibco-Life Technologies25030-081
Penicinlin/StreptomycinGibco-Life Technologies15140-122
MEM minimum essential amino acids solution Gibco-Life Technologies11140-050
β-Mercaptoethanol Gibco-Life Technologies21985-023toxic
Recombinant human FGF basic (FGF2)R&D Systems233-FB-001MG/CF
Knockout DMEMGibco-Life Technologies10829-018
DMEM/F12 powder Invitrogen12500-096
GlucoseSigmaG7021
Sodium Bicarbonate SigmaS5761
APO human transferrinSigmaT1147
Human insulin SigmaI2643
Putriscine dihydrochlorideSigmaP5780
SeleniteSigmaS5261
ProgesteroneSigmaP8783
Matrigel matrixBD Biosciences354234
Poly-L Ornithin hydrobromideSigmaP3655
Mouse Laminin-IR&D Systems3400-010-01
FibronectinBD Biosciences356008
Dispase in Hank's Balanced Salt Solution 5 U/mlStem Cell Technologies7013
Trypsin-EDTA Gibco-Life Technologies25300-054
Y-27632 dihydrochlorideTocris-R&D Systems1254
LDN193189Stemgent04-0074
SB431542Tocris-R&D Systems1614
AccutaseInnovative Cell TechnologiesAT104
Ascorbic Acid SigmaA4034
BDNFR&D Systems248-BD
FGF8R&D Systems423-F8
Mouse recombinant sonic hedgehog (SHH)R&D Systems464SH
HBSSGibco-Life Technologies14170-112
HEPESGibco-Life Technologies1563-080
Human recombinant EGFR&D Systems236EG
gelatin (PBS without Mg/Ca)in house
Antibodies:
Anti HNK-1/N-Cam (CD57) mIgMSigmaC6680-100TSTlot should be tested
Anti-p75 mIgG1 (Nerve Growth factor receptor)Advanced Targeting SystemsAB-N07lot should be tested
APC rat anti-mIgMBD Parmingen550676lot should be tested
AlexaFluor 488 goat anti-mouse IgG1 InvitrogenA21121lot should be tested
Anti Oct4 mIgG2b (used at 1:200 dilution)Santa Cruzsc-5279lot should be tested
Material/Equipment:
Mouse embryonic fibroblasts (7 million cells/vial)GlobalStemGSC-6105M
Cell culture dishes: 10 cm and 15 cm plates, centrifuge tubes, FACS tubes,  pipettes, pipette tips
Glass hematocytometer
Cell culture centrifuge
Cell culture incubator (CO2, humidity and temperature controlled)
Cell culture laminar flow hood with embedded microscope
Cell culture biosafety hood
Cell sorting machine, i.e. MoFlo
Inverted microscope
1 ml TB syringe 27Gx1/2BD Biosciences309623
Cell lifter PolyethyleneCorning Incorporated3008

Referanslar

  1. Lee, G., Studer, L. Induced pluripotent stem cell technology for the study of human disease. Nat Methods. 7, 25-27 (2010).
  2. Lee, G., et al. Modelling pathogenesis and treatment of familial dysautonomia using patient-specific iPSCs. Nature. 461, 402-406 (2009).
  3. Ebert, A. D., et al. Induced pluripotent stem cells from a spinal muscular atrophy patient. Nature. 457, 277-280 (2009).
  4. Lee, G., et al. Large-scale screening using familial dysautonomia induced pluripotent stem cells identifies compounds that rescue IKBKAP expression. Nat Biotechnol. 30, 1244-1248 (2012).
  5. Zimmer, B., et al. Evaluation of developmental toxicants and signaling pathways in a functional test based on the migration of human neural crest cells. Environ Health Perspect. 120, 1116-1122 (2012).
  6. Dupin, E., Sommer, L. Neural crest progenitors and stem cells: from early development to adulthood. Dev Biol. 366, 83-95 (2012).
  7. McKeown, S. J., Stamp, L., Hao, M. M., Young, H. M. Hirschsprung disease: a developmental disorder of the enteric nervous system. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2, 113-129 (2013).
  8. Slaugenhaupt, S. A., et al. Tissue-specific expression of a splicing mutation in the IKBKAP gene causes familial dysautonomia. Am J Hum Genet. 68, 598-605 (2001).
  9. Cheung, N. K., Dyer, M. A. Neuroblastoma: developmental biology, cancer genomics and immunotherapy. Nat Rev Cancer. 13, 397-411 (2013).
  10. Lee, G., et al. Isolation and directed differentiation of neural crest stem cells derived from human embryonic stem cells. Nat Biotechnol. 25, 1468-1475 (2007).
  11. Lee, G., Chambers, S. M., Tomishima, M. J., Studer, L. Derivation of neural crest cells from human pluripotent stem cells. Nat Protoc. 5, 688-701 (2010).
  12. Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nat Biotechnol. 27, 275-280 (2009).
  13. Itoh, K., et al. Reproducible establishment of hemopoietic supportive stromal cell lines from murine bone marrow. Exp Hematol. 17, 145-153 (1989).
  14. Barberi, T., et al. Neural subtype specification of fertilization and nuclear transfer embryonic stem cells and application in parkinsonian mice. Nat Biotechnol. 21, 1200-1207 (2003).
  15. Elkabetz, Y., et al. Human ES cell-derived neural rosettes reveal a functionally distinct early neural stem cell stage. Genes Dev. 22, 152-165 (2008).
  16. Mica, Y., Lee, G., Chambers, S. M., Tomishima, M. J., Studer, L. Modeling neural crest induction, melanocyte specification, and disease-related pigmentation defects in hESCs and patient-specific iPSCs. Cell Rep. 3, 1140-1152 (2013).
  17. Molofsky, A. V., et al. Bmi-1 dependence distinguishes neural stem cell self-renewal from progenitor proliferation. Nature. 425, 962-967 (2003).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

N robilimSay 87Embriyonik K k H creler ESCpluripotent k k h creleriuyar lm pluripotent k k h crelerin iPSCsSinir CrestPeriferik Sinir Sistemi PNSpluripotent k k h crelern ral krest h creleriIn vitro Farkl la mahastal k modellemefarkl la ma protokolinsan embriyonik k k h creleriinsan pluripotent k k h creleri

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır