Myeloproliferatif tümörün İletimi-Transplantasyon Fare Modeli

Özet

This manuscript provides a description of the methodology used to establish transduction-transplantation mouse models. A detailed account is given of technical errors to avoid when performing bone marrow transplants. A clear understanding should be gained of the importance of high viral titer, transfection/transduction, and irradiation.

Özet

Transduction-transplantation is a quick and efficient way to model human hematologic malignancies in mice. This technique results in expression of the gene of interest in hematopoietic cells and can be used to study the gene's role in normal and/or malignant hematopoiesis. This protocol provides a detailed description on how to perform transduction-transplantation using calreticulin (CALR) mutations recently identified in myeloproliferative neoplasm (MPN) as an example. In this protocol whole bone marrow cells from 5-flurouracil (5-FU) treated donor mice are transduced with a retrovirus encoding mutant CALR and transplanted into lethally irradiated syngeneic hosts. Donor cells expressing mutant CALR are marked with green fluorescent protein (GFP). Transplanted mice develop an MPN phenotype including elevated platelets in the peripheral blood, expansion of megakaryocytes in the bone marrow, and bone marrow fibrosis. We provide a step-by-step account of how to generate retrovirus, calculate viral titer, transduce whole bone marrow cells, and transplant into irradiated recipient mice.

Giriş

İletimi transplantasyon farelerde hematolojik maligniteler modellemek için yararlı bir yöntemdir. Bu teknik geri BCR-ABL1 ektopik ifadesi sadakatle farelerde ¹ kronik miyeloid lösemi özetlemek olabilir ilk gösteriye kadar uzanan miyeloid malignitelerini çalışmak için özellikle değerli olmuştur. Bu teknik daha sonra miyeloproliferatif neoplazmı (MPN) mutasyona uğramış JAK2 ^V617F ve MPL ^{W515K / L} yoğun çalışma kolaylaştırmıştır.

MPN olgun miyeloid hücreleri ve kemik iliği fibrozisi aşırı ile karakterize hematolojik kanserlerde bir grup. Bu hastalıklar, genel olarak, JAK2, MPL veya CALR ya somatik mutasyon kazanmış bir hematopoietik kök hücrenin klonal büyümesi ortaya çıkar. İletimi-transplantasyon JAK2 ^V617F ve MPL ^{W515K / L} modelleri sergi polisitemi vera ve miyelofibrozisin ² klinik özellikleri ^{- 5 <}/ Sup>. Son zamanlarda, kalretikülin mutasyonlu MPN bir fare modeli de transdüksiyon transplantasyon yöntem ⁶ oluşturuldu. Bu fareler artmış trombositler, megakaryositler sayısının artması, ve kemik iliği fibrozisi olan bir esansiyel trombositemi benzeri hastalığı gelişebilir. Birlikte, bu modeller MPN moleküler patogenezi içgörü kazanmak için fırsat değil, aynı zamanda geliştirmek ve klinik öncesi ortamda terapötiklerin çalışma kapasitesi sağlamıştır sadece.

Bu yazının CALRdel52 mutasyon odaklanarak iletim-transplantasyon metodolojisi ayrıntılı bir açıklamasını sağlar. Bu teknik, bir mutant ışınlanmış singeneik alıcı farelere yapısını ifade eden retroviral kalıt kemik iliği hücrelerinin nakli kapsar.

Protokol

Bu çalışma onaylanmış ve California, Irvine Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından önerileri doğrultusunda gerçekleştirilmiştir. Tüm işlemler izofluran anestezi altında yapılan ve tüm çabaları acı en aza indirmek için yapılmıştır.

Ekotropik retrovirüs 1. Üretim

1. ticari bir maksi-hazırlık kiti ve sezyum klorür arıtma kullanarak en az 1 ug / ml bir konsantrasyonda yüksek kaliteli plazmidler hazırlayın.
   Not: Bu, bir MSCV omurgası (CALR ^7,8 bu durumda) ilgili geni kodlayan vektör ve (vs GFP, Neo) seçim işaretleyici olarak ekotropik bir paketleme plazmiti kodlayan gag-pol-env içerir (de ifade burada plazmid gibi).
2. DMEM çözülme ve genişletme düşük geçiş 293T hücreleri, penisilin / streptomisin (D10) ile,% 10 FBS ve L-glutamin ile takviye edilmiştir. Nemlendirilmiş bir 10 cm doku kültürü ile muamele edilmiş çanak levha 5 x 10 ⁶ hücredoku kültürü, 37 ° C'de kuluçka% 5 _CO2.
3. kültür içinde, 293T hücreleri genişletmek. Transfeksiyondan bir gün önce, bir vakum şişesi içine, 1 ml PBS ve aspirat süpernatan ilave edilerek hücrelerin yıkanması.
4. Hücreleri tripsinize edin için, 2 mi% 0.05 tripsin ekleyip inkübe yemekler 2 nemlendirilmiş bir doku kültürü kuluçka makinesi içinde - 3 dakika 37 ° C'de ve% 5 _CO2.
5. , Trypsinization durdurmak 15 ml konik tüp çanak 3 ml D10 ve transfer hücreleri ekleyin. 10 dakika boyunca 400 xg'de hücreleri dönerler.
6. 2 ml D10 bir termos ve tekrar süspansiyon hücre pelet haline Süpernatant aspire.
7. hemasitometre kullanarak tripan mavi dışlama hücreleri saymak.
8. Tohum oluşturulan virüs başına üç 10 cm doku kültürü ile tedavi edilen yemeklerin içine çanak başına 2 x 10 ⁶ hücre.
   NOT: En iyi sonuçlar için, hücreler 30 aşmasına izin vermez - transfeksiyon veya kötü virüs verim elde edilebilir anda% 50 izdiham.
9. Transfeksiyondan hemen önceve bir termos içine aspire medya 5 ml taze D10 ile değiştirin.
10. Her 10 cm Petri kabı bağımsız bir 1.5 mL steril mikrosantrfuj tüp hazırlanması transfekte edilmesi.
11. Pipet her mikrosantrifüj tüpe düşük serum ortamında 760 ul, daha sonra dikkatlice doğrudan ortama transfeksiyon reaktif 40 ul ekleyin. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında doku kültürü kaputu inkübe edin.
12. ilgili gen (boş vektör kullanılarak 15 ug varsa) olarak her bir ilgili tüp plazmid 5 ug MSCV vektörünün 30 ug ekleyin ve aşağı yukarı pipetleme yavaşça karıştırın. ilave bir 15 dakika boyunca doku kültürü kaputu oda sıcaklığında inkübe edin.
    NOT: Daha küçük vektörler yüksek viral verim sahip olma eğilimindedir.
13. Dikkatle damla damla, ilgili 10 cm Petri kabı içine her reaksiyon (yaklaşık 800 ul) toplam hacmi ekleyin ve hafifçe karıştırın yanlara doğru çanak eğin. nemlendirilmiş doku cu hücreleri dönünlture inkübatör.
14. doku kültürü kuluçka makinesi içinde bir 8 saat veya bir gece inkübe edildikten sonra, yavaşça aspire bir vakum şişesi içine ortam ve taze D10, 10 ml ile değiştirin.
15. 48 saat sonra, transfeksiyondan 'de 35 ml şırınganın içine süpernatan toplamak ve hücre debrisini uzaklaştırmak için 0.45 um'lik bir membrandan filtre.
16. İSTEĞE BAĞLI: 293T hücreleri ve ek virüs yerleştirin 10 ml taze D10 geri 72 saat sonrası transfeksiyon hasat edilebilir.
17. Hiçbir ek virüs tahsil edildiğinde biyolojik tehlike atık 293T hücrelerinin imha edin.
18. (Örneğin virüs titresi 1 ml veya BM enfeksiyonu için 6.5 ml için) tek kullanımlık birimlere kısım viral süpernatant. -80 ° C'de, sıvı azot ve mağaza virüsü ile flaş dondurma virüsü.
    NOT: onlar büyük ölçüde virüs titresi azaltmak olarak tekrarlanan donma / çözülme döngüleri kaçının.

2. Sitometrisi ile Bağıl Viral titresi belirlemek

1. 3T3 hücreleri çözülme ve D10 korumak. 10 cm Kültür hücreleridoku kültürü _CO2, 37 ° C'de, nemlendirilmiş bir doku kültürü inkübatörü içinde çanak muamele edilmiş ve% 5.
2. üç kopya halinde viral titresi gerçekleştirin. vakum balona 1 ml PBS ve aspirat süpernatant ekleyerek hücreleri yıkayın, hücreler hazırlamak.
3. Hücreleri tripsinize edin için, 2 mi% 0.05 tripsin ekleyip inkübe yemekler nemlendirilmiş bir doku kültürü inkübatörü içinde, 37 ° C'de ve% 5 _CO2.
4. , Trypsinization durdurmak 15 ml konik tüp çanak 3 ml D10 ve transfer hücreleri ekleyin. 10 dakika boyunca 400 xg'de hücreleri dönerler.
5. 2 ml D10 bir termos ve tekrar süspansiyon hücre pelet haline Süpernatant aspire.
6. hemasitometre kullanarak tripan mavi dışlama hücreleri saymak.
7. Tohum 3T3 beş 60 mm doku kültürü ile muamele edilmiş kaplarına 1 x 10 ⁵ hücre yoğunluğunda hücreler ve gece boyunca inkübe edilir.
8. 3, 1:10 1:30, ve 1: 1 ml toplam D10 kullanılarak çözündürüldü viral süpernatanın 100 dilüsyonları 1 sağlayın. Ayrıca virüssüz kontrolünü içerir.
9. beni aspirebir vakum şişesi içine 3T3 hücrelerinden çap ve D10, 4 ml ile değiştirin.
10. Viral süpernatan seyreltileri ile 3T3 hücreleri Yerleşimi ve her bir çanak 8 ug / ml bir son konsantrasyona kadar polibren ekleyin. 37 ° C'de doku kültürü kuluçka makinesi içinde 48 saat ve% 5 _CO2 inkübe edin.
11. flow sitometri ile göreli viral titresi belirlemek:
    1. Hücreleri yıkamak için, bir vakum balona medya aspire ve 5 ml PBS ekleyin.
    2. vakum şişe içine PBS aspire. 1 mi% 0.05 tripsin ilave edin ve 2 37 ° C de inkübe - 5 dakika çanak hücreleri ayırmak için.
    3. plaka kalan hücreleri ayırmak için aşağı 3 ml D10 ekleyin ve yukarı pipet ve. 10 dakika boyunca 400 xg'de FACS tüp ve santrifüj hücreleri aktarın.
    4. süpernatant süzün ve 3 ml PBS ile yıkama hücreleri. 10 dakika ve decant süpernatant 400 x g'de santrifüj. 200 ul PBS içinde süspanse.
    5. ⁹ bir akış sitometre üzerinde çalıştırın hücreler. t içinde 30.000 olayları - 20.000 arasında toplayıno (SSC vs FSC tarafından belirlenen) hücre kapısı yaşamak ve GFP ⁺ ve GFP yüzdesini hesaplamak ^- hücreler.
       Not: bir viral titresi olarak kabul edilebilir olarak kabul edilir zaman viral süpernatan verim, en az% ^50, GFP ⁺ 3T3 hücrelerinin 1:30 seyreltme. Eğer en az% 50, GFP ⁺ hücreleri, bu seyreltme sonuçlar daha sonra optimal iletim sonuçlar elde edilebilir. Viral titresini belirlemek için hesaplama Limon ve ark uyarlanmıştır. , Blood (1997) ^9.
    6. Virüs titresi = parçacık oluşturan birimler (PFU) / ml = [(GFP ⁺ hücrelerin frekansı x 3T3 hücre sayısı) yardımıyla yüzücünün (mi) / hacim] x seyreltme faktörü: göreli virüs titresini belirlemek için denklem kullanır.

3. transduce Donör Kemik İliği Hücreleri

1. kemik iliği için donör fareler hazırlamak için (BM) hasat önce% 5 Birleştirilen tamamlayıcı olan bir akış oranı ile izofluran buharlaştırıcı ile fareler anestezi/ Dakika, 1 L oksijen. reaksiyonunu değerlendirmek için ayak sıkıştırın.
   NOT: (az 8 haftalık) Donör fareler (8 gün önce transplantasyon) 5 gün önce kemik iliği hasat hazırlanmalıdır. Bir donör fareler en az 2 alıcılar için yeterli hücre sağlar.
2. Enjekte 150 mg / kg, 27 G x ½ "iğne kullanılarak, anestezi uygulanmış farelerde retroorbital enjeksiyon yoluyla 5-fluorourasil (5-FU).
   DİKKAT! 5-FU, bir anti-kanser kemoterapötik madde. Her zaman yetkili bir kimyasal bir davlumbaz veya kanallı biyogüvenlik kabini içinde 5-FU anlaştım. 5-FU ile tedavi edilen farelerin uygun etiketleme belirlemek için kurumun laboratuvar ve hayvan güvenliği komitesi danışın.
   1. yan anestezi fare getirin ve göz kafası biraz çıkıntı şekilde başparmak ve işaret parmağı hem de kullanılarak dizginlemek.
   2. medial canthus ve yukarı bakacak şekilde eğim ile iğne yanal ile başlayarak, bir 45 ° iğneyimedial yönde açısı ° ve iğne yarım takıldığında durdurun. Yavaşça hücreleri enjekte ve dikkatlice iğneyi kaldır.
      NOT: Bu teknik doğru yapılırsa, göz hafifçe geri çekilmelidir ve hiçbir direnç iğne sokulması üzerine keçe edilmelidir.
   3. Böyle şişme veya kanama gibi yaralanma herhangi bir işaret için fareyi inceleyin.
3. Hasat kemik iliği 5 gün (transplantasyonundan 3 gün önce), 5-FU tedavisi sonrası.
   1. / Dakika, 1 L% 5 Birleştirilen ilave oksijen akış hızı ile izofluran buharlaştırıcı ile fareler anestezi. reaksiyonunu değerlendirmek için ayak sıkıştırın.
   2. servikal dislokasyon ile fare Kurban. kürk ıslak hale gelinceye kadar% 70 EtOH ile cömertçe püskürtülerek fare sterilize edin.
   3. diseksiyon makas kullanarak, deride bir kesi yapmak ve uzak bacak kaslarından fasya teşrih. Sonra, kalça femur ve ayak bileğinde tibia kesilmesinin fare uzak bacak teşrih.
   4. virajBir "L" şeklinde bacak ve diseksiyon makas ile diz eklemi keserek her bacak kemiği ayırın.
   5. her bacak kemiğin distal uçlarında kıkırdak kaldırmak için, kıkırdak devre kadar yavaşça bacak kemik bir uca doğru kas kazımak için kesme makasları kullanın.
   6. 27 x g ½ inç iğne ile bir şırınga kullanılarak, PBS ile yıkayın, her bacak kemiği 50 ml konik bir tüp içinde 100 uM bir naylon membran üzerinde% 2 FBS ile takviye edilmiştir. Kemik kadar yıkayın kemik hasat hücrelerin sayısını arttırmak için beyaz olur.
   7. tek bir hücre süspansiyonu elde etmek için 50 mL konik tüp içine naylon membran aracılığı ile hücreler arasında püre bir şırınga pistonu kullanın. diğer fare bacak ile tekrarlayın.
4. 4 ° C'de santrifüje hücreler 400 x g'de 10 dakika ve süpernatan atılır. Süspanse BM 5 mi amonyum klorit, potasyum (ACK) tampon içinde, kırmızı kan hücreleri lize etmek için. 10 dakika boyunca buz üzerinde inkübe hücreleri.
5. hücre parçalama durdurmak için PBS ile tüp doldurun. Centri4 ° C'de fuge hücreler 400 x g'de 10 dakika ve süpernatan atılır. BM pelet kırmızı rengi varsa parçalama adımı yineleyin.
6. 5 ml PBS içinde süspanse ve hemasitometre kullanarak tripan mavi dışlama hücreleri saymak.
7. DMEM% 20 FBS, L-glutamin, penisilin / streptomisin ile takviye içeren 2x ön-Stim kokteyl m başına 2 x 10 ⁶ hücre yeniden süspanse hücre, IL-3, (14 ng / ml), IL-6 (24 ng / mi) ve SCF (112 ng / ml). Plaka 6 yuvalı plakalar içinde oyuk başına 2 mi.
8. 37 ° C'de gece boyunca inkübe hücreleri ve% 5 _CO2.
9. içeren her BM hücrelerinin viral süpernatan 2 ml ilave edilir ve polybrene (ug / ml 8 mg) ekleyin. 1,500 x g'de 90 dakika boyunca 30 ° C 'de dönel Plakalar daha sonra gece boyunca bir doku kültürü kuluçka makinesine plaka dönüş.
10. Pipet hücresi konik tüpler içine süspansiyonu ve 400 x g'de 10 dakika boyunca 4 ° C'de santrifüj plaka atın yoktur. 2 ml yeniden süspanse hücreleri taze 2x öncesi stim kuyu başına kokteyl ve özgün kuyulara geri dönün.
11. Adımları 3,7-3,9 yineleyerek bir ^2. spinoculation gerçekleştirin.

Alıcı Fare içine 4. Nakli Donör Hücreleri

1. 24 saat önce BM hücrelerinin enjeksiyonu için ölümcül doz, toplam vücut ışınlaması ile NOT: BALB / c farelerde için ölümcül doz ışınlama tipik 800-900 cGy ve C57B / 6 ¹⁰ 1,000-1,200 cGy olduğunu. doz tipik olarak, en azından 3-4 saat aralıklı ışınlama iki oturum ayrılmıştır.
2. yavaşça konik tüpler içine süpernatant pipetleme 6 kuyucuğu aşama 3.11, hasat transdüksiyona donör hücrelerinden devam etti. Kalıntı hücreleri toplamak ve 50 ml konik tüp eklemek 1 ml PBS ile iyice her yıkama.
3. oyuklara% 0.05 tripsin 0.5 ml ilave edilir ve 5 dakika boyunca doku kültür inkübatörü içinde 37 ° C'de inkübe edin.
4. kuyulara 1 ml D10 ekleyin ve yumuşak pipetleme kalan hücreleri ayırmak. ilgili tüp hücreleri ekleme400 x g'de 10 dakika boyunca 4 ° C'de santrifüj ile adım 4.2 ve pelet s.
5. 400 x g'de 10 dakika boyunca 4 ° C'de PBS ve santrifüj ile hücreler yıkanır. tripan mavi dışlama hemasitometre kullanarak 5 ml PBS içinde süspanse ve saymak hücreleri.
   Not: vektör, bir GFP etiketi vardır, o zaman, bir akış sitometresiyle GFP pozitif hücrelerin yüzdesi miktarı belirlenir.
6. Farelere enjeksiyon için 100 ul PBS - 50, 2 x 10 ⁶ hücre - 5 x 10 ⁵ süspanse edin.
7. steril bir 27 G x ½ "iğne kullanılarak anestezi farelere retroorbital enjeksiyon yoluyla hücreleri enjekte edilir.
   NOT: Diğer enjeksiyon teknikleri kuyruk ven, dalak, ya da femoral içerir.
   1. reaksiyonunu değerlendirmek için izofluran ve tutam ayak kullanarak fare anestezisi.
   2. yan fare yerleştirin ve göz kafası biraz çıkıntı şekilde başparmak ve işaret parmağı hem de kullanılarak dizginlemek.
   3. konik yukarı bakacak şekilde, n eklemek45 ° açıyla medial canthus lateral eedle.
      NOT: Bu teknik doğru yapılırsa, göz hafifçe geri çekilmelidir ve hiçbir direnç iğne sokulması üzerine keçe edilmelidir.
   4. Böyle şişme veya kanama gibi yaralanma herhangi bir işaret için fareyi inceleyin.
      NOT: Aşağıdaki nakli fareler birkaç hafta için düşük kan sayımı var ve bu yüzden enfeksiyona duyarlı olacaktır. antibiyotikler veya asitleştirilmiş su kullanımı ile profilaksisi kullanılabilmektedir.
8. Nakil sonrası bir ay flow sitometri engrafted donör hücreleri bir göstergesi olarak periferik kanda% GFP ölçün.
   NOT: Tek başına GFP hücrelerinin engraftman başarısını belirleyemiyor. Viral iletimi başarısız olmuş olabilir ama engraftmınt meydana gelmiş olabilir. Bu durumda, hiçbir GFP ⁺ hücreler tespit ama nakledilen hücrelerin melezleşmesi başarılı olacaktır.
   1. periferik kan b 10 ul alıny 21 G x 1 ½ "şırınga ile safen bacak ven delinmesiyle ve pıhtılaşmasını önlemek için PBS içinde 100 mM EDTA ekleyin.
   2. 10 dakika boyunca buz üzerinde, kan ve eritmek için 1 mi ACK ekleyin. 10 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj ile pelet hücreleri.
   3. Aspire bir vakum şişesi içinde yüzer ve 1 ml PBS ilave lizis durdurmak için% 2 FBS ile takviye edilmiştir. 10 dakika boyunca 400 x g'de santrifüj ile pelet hücreleri.
   4. 100 ul PBS içinde bir vakum şişe ve tekrar süspansiyon pelet aspire süpernatan% 2 FBS ile takviye edilmiştir.
   5. Bir akış sitometresinde örnekleri çalıştırın ve (SSC vs FSC tarafından belirlenir) canlı hücre kapısının içinde 300.000 olayları toplamak ve GFP ⁺ ve GFP yüzdesini hesaplamak ^- hücrelerinden ^9.
9. Ayrıca 1 ay nakil sonrası da, hastalığın ilerlemesini izlemek için otomatik bir veteriner hematoloji analizörü ¹⁸ kullanılarak tam kan sayımı (CBC) gerçekleştirin.
   NOT:% oranında hastalığı izlemeye devam edinAylık periferik kan ve CBC GFP.
10. Denemeyi sonlandırmak için, yanıt değerlendirmek için izofluran ve tutam ayak kullanarak fare uyutmak. histopatoloji için servikal dislokasyon ve hasat dalak ve kemik iliği tarafından fare Kurban.
    NOT: Deneyin uzunluğu öznel ve bitiş tarihi beklenen hastalık fenotipi dayalı değerlendirilmelidir.

Sonuçlar

transdüksiyon Nakil tekniği hücreler, ilgilenilen geni eksprese eden alıcı farelerin hematopoietik sulandırma ile sonuçlanır. Şekil 1 MPN mutasyona uğramış kalretikulin transdüksiyon-transplantasyon fare modelinin bir özetini göstermektedir. Kısaca, CALRwt ya CALRdel52 eksprese retrovirüs bir C57B / 6 verici fare BM hücrelerini enfekte etmek için kullanılır. Transduced hücreler ilk ay sonrası nakli sırasında meydana ışınlanmış C57B / 6 alıc...

Tartışmalar

Bu protokol, hastalığın şoförü olarak CALRdel52 mutasyonu myelofibrotik doğru ilerledikçe bir esansiyel trombositemi gibi hastalık özetlemek için farelerde kemik iliği nakli nasıl gerçekleştirileceği ayrıntılı bir açıklamasını sağlar. artan trombositler, megakaryositler genişlemesi ve kemik iliği fibrozis CALRdel52 sonuçlarını ifade eden hücrelerin başarılı nakli. Kemik iliği nakli çok aşamalı bir süreçtir gibi, teknik bir hata çıkar, hatta fare ölüm geni eksprese eden hücrele...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
CELL LINES
DMEM	Corning	MT-10-013-CV
293T cells	ATCC	CRL-11268
3T3 cells	ATCC	CRL-1658
PLASMIDS
EcoPak, also known as pCL-Eco	Addgene	12371	Retroviral packaging cell lines, such as EcoPack 2-293, may be used in place of the EcoPak plasmid and standard 293T cells. Additional γ-retrovirus envelope and packaging plasmids are available from Addgene and others.
MSCV-IRES-GFP (MIG)	Addgene	20672	Additional γ-retroviral transfer plasmids are available from Addgene and others.
CONSUMABLES
27G x 1/2" needles	BD	305620
Fetal bovine serum	Corning	MT-35-010-CV
Penicillin/streptomycin/L-glutamine	Corning	MT-30-009-CI
Trypsin-EDTA (0.05%)	Corning	MT-25-052-CI	Can be homemade
PBS	Corning	MT-21-031-CV
10cm dishes	Fisher	172931
15 ml conical tubes	Fisher	12565268
60mm dishes	Fisher	150288
Polybrene	Fisher	NC9840454
5-FU	Fisher	A13456-06
100um cell strainers	Fisher	22363549
50 ml conical tubes	Fisher	12565270
6-well plate	Fisher	130184
FACS tubes	Fisher	14-959-5
0.45um syringe filters	Fisher	0974061B
Opti-MEM	Gibco	31985-070
ACK buffer	Lonza	10-548E	Can be homemade
Recombinant murine IL-3	Peprotech	213-13
Recombinant murine IL-6	Peprotech	216-16
Recombinant murine SCF	Peprotech	250-03
X-tremeGENE 9	Roche	6365809001	Transfection reagent
1.5 ml centrifuge tubes	USA Scientific	1615-5500
EQUIPMENT
BD Accuri C6
X-ray irradiator