Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu makalede embriyonik dokulardan saf formu ex vivo chimeric organları için bir araya getirilebilen bıldırcın ve tavuk embriyolar izole etmek için bir yöntem sağlar.

Özet

Embriyonik Doku yalıtmak için kapasite sırayla gelişim biyolojisi örtüsünü açmak temel süreçleri tartışmasız katkılar sağlamıştır bıldırcın-tavuk chimera sistemi kurulması için önemli bir adım oldu.

Burada olduğunu bıldırcın ve Mikrocerrahi ve biyolojik özelliklerini koruyarak süre enzimatik sindirim tarafından tavuk embriyonik dokulardan yalıtmak için en iyi duruma getirilmiş bir yöntemi açıklanmıştır. Yalıtım sonra her iki tür dokulardan bir tüp bebek organotypic tahlil 48 h. bıldırcın için ilişkili ve tavuk dokuları farklı nükleer özellikleri ve moleküler işaretleyiciler hücresel çapraz konuşma arasında çalışma izin tarafından ayrımcılığa dokuların heterospecific Derneği. Bu yaklaşım, bu nedenle, karmaşık doku etkileşimleri gelişim süreçlerinde olanlar faringeal morfogenez ve foregut oluşumu sırasında meydana gelen gibi son derece dinamik uzamsal değişiklikler ile çalışmak için yararlı bir araçtır endoderm elde edilen organlar. Bu deneysel yaklaşım ilk mezenkimal epitel etkileşimleri erken-evrelerinde timus oluşumu incelemek için geliştirilmiştir. Bu, potansiyel timik rudiment endoderm kaynaklı ve Mezenşim mesoderm kaynaklı, sırasıyla bıldırcın ve tavuk embriyo izole edildi.

Organları oluşturmak için kapasite ilişkili dokuların daha fazla tavuk embriyo chorioallantoic membran (CAM) aşılama tarafından test edilecek. CAM besin sağlar ve explanted dokulara gaz alışverişi sağlar. Ovo geliştirme 10 gün sonra chimeric organ hasat explants geleneksel morfolojik yöntemlerle analiz edilebilir. Bu yordam ayrıca organogenesis (ovo gelişiminde) son dönemlerinde için ilk gelişimi (tüp bebek geliştirme) üzerinden organ oluşumu sırasında doku özgü katkıları eğitim verir.

Son olarak, geliştirilmiş yalıtım yöntemini sağlar ayrıca üç boyutlu (3D) doku özel gen ekspresyonu desenleri yüksek çözünürlüklü topografik analizi için de kullanılabilir embriyonik dokular, korunmuş.

Giriş

1970'lerin başında, bir zarif bıldırcın-tavuk chimera sistem Le Douarin, geliştirme1,2sırasında hücre göç ve hücresel etkileşimlerin rolünü anlamak için yeni yollar açma tarafından geliştirilmiştir. Hücre değişimi iki tür arasındaki önemli ölçüde embriyogenez, daha sonra gergin oluşumu ve hematopoetik dahil olmak üzere çok sayıda gelişimsel süreçleri çalışmaya kullanıldığında doğruladı rahatsız değil öncül modeli geliştirildi sistemleri1. İkinci örnek olarak alırsak, hematopoetik ataları timik epitel rudiment kolonize döngüsel dalgaları ilk gözlenen bıldırcın-tavuk chimera sistem3kullanarak. Bunun için timus, üçüncü ve dördüncü faringeal torbalar (3/4PP), endoderm aday bölge 15-30 - somite aşamada [embriyonik gün (E) 1.5-E2.5] bıldırcın (q) embriyo mekanik ve enzimatik izole edildi. Bu aşamalar tavuk Hamburger ve Hamilton4 (HH) - aşamaları 12-17 karşılık gelir. Yalıtım yordamlar tripsin enzimatik endoderm ekli Mezenşim dan ayırmak için kullanımı ile başladı. İzole endoderm ana tavuk (c) embriyo E3-E3.5 (SS-aşamaları 20-21), somatopleura bölgeye aşılı. Bu Contegra Mezenşim timik epitel gelişimine de katkıda organ oluşumu3' e "keyfi" olarak kabul edildi. Daha sonra art arda gelen dalgalar tavuk ev sahibi kan yoluyla progenitör hücrelerin ana bilgisayar embriyo3timus oluşumunda katkıda bulunmak ve bıldırcın donör timik epitel muadili sızmış.

Son zamanlarda, bu yaklaşım değiştirilmiş bir sürümü de erken-evrelerinde timus oluşumu5mezenkimal epitel etkileşimleri eğitimi için önemli olduğu kanıtlanmış oldu. Bu bağlamda, ektopik timus chimeric embriyo3 oluşumu dahil dokular, donör ve ana bilgisayar embriyolar, her ikisi de izole ve ex vivo ilişkili. Bıldırcın 3/4PP endoderm (E2.5-E3) ve tavuk somatopleura mesoderm (E2.5-E3) izole etmek için kullanılan gelişmiş bir protokol. Kısaca, embriyonik doku mikrocerrahi ve tüp bebek Pankreatin sindirim tabi izole edildi. Ayrıca, enzimatik sindirim, sıcaklığı ve süresi, kuluçka koşulları doku ve gelişimsel sahne (Tablo 1) göre optimize.

Ardından, izole dokular bir organotypic vitro sistemde 48 h, daha önce bildirilen5,6ilişkili. Tüp bebek derneğin dokuların içinde vivo manipülasyon bazı sınırlamalar üstesinden embriyo, yerel hücresel etkileşimlerde taklit eder. Bu sistem geliştirme faringeal cihazları gibi karmaşık morphogenic olaylarda hücresel etkileşimlerin çalışmaya özellikle yararlıdır.

Timus doku her dokusunda katkısını yanı sıra yetenek bir timus oluşturmak için heterospecific derneğin keşfedilmeyi kullanarak daha fazla CAM metodolojisi, daha önce ayrıntılı5,7,8olabilir. Kısaca, kültürlü dokulara cE8 embriyo CAM aşılı ve 10 gün boyunca ovo içinde geliştirmek için izin. O zaman, timus oluşumu hasat explants morfolojik analizi ile değerlendirilmiştir. Olduğu gibi klasik bıldırcın-tavuk çalışmalar3, bıldırcın timik epitel hematopoetik progenitör hücreler (HPCs) daha sonra organ gelişimi9' a,10 katkıda bulunmak için gösterildi tavuk embriyo elde tarafından kolonize . HPCs ile son derece bozukluklarına CAM5,7,8chimeric ektopik timus embriyo göç. Bıldırcın türetilmiş timik epitel doku özel moleküler işaretleyiciler ihtiyacını üstesinden species-specific antikorlar (yani, QCPN - MAb bıldırcın Perinükleer), kullanarak immünhistokimya belirlenebilir.

Bu deneysel Yöntem, önceki yayın8' de bildirilen iki aşamalı yaklaşım olarak sinyalleme yollarının modülasyonu düzenli yönetim sırasında tüp bebek ve ovo geliştirme farmakolojik ajanlar tarafından sağlar. Ayrıca, explants herhangi bir zaman-noktada deneme8tabii hasat edilebilir.

Son olarak, burada ayrıntılı yalıtım Protokolü doğal özellikleri korunması ve 3D-mimari embriyonik dokuların, aksi takdirde yerinde gen ekspresyonu desenleri embriyonik'in ayrıntılı için özellikle yararlı tarafından erişilemeyen sağlar geleneksel yöntemleri. Buna ek olarak, transcriptome analiz yaklaşımları, RNA-seq veya microarrays, dahil olmak üzere de izole dokularda bir doku özgü yüksek üretilen iş "omics" analiz sağlarken genetik işaretler gerek kalmadan uygulanabilir.

Protokol

Bu deneylerin hayvan bakımı ve Centro Académico de Medicina de etik kuralları izleyin Lisboa.

1. bıldırcın ve tavuk yumurta kuluçka döllenmiş

  1. Yer yumurta Japon bıldırcın (Coturnix coturnix japonica) 38 ° C oksijen kuluçka makinesine 3 gün boyunca döllenmiş. Yukarı dönük olacak şekilde hava odasında yumurta (yumurta künt son) kuluçkaya.
    Not: Kuluçka makinesi alt kısmında bir su kabı yerleştirerek oksijen ortamı elde edilir.
  2. Döllenmiş yumurta tavuk (Gallus gallus) 38 ° C oksijen kuluçka 2,5 gün kuluçkaya. Yatay bir konumda yumurtaları kuluçkaya ve embriyo konum belirlemek için bir parça kömür kullanarak üst tarafı işaretleyin.
    Not: Bu deneme kurarken 40 bıldırcın yumurtası ve 60 tavuk yumurtası ile başlayın.

2. bıldırcın endoderm timik rudiment potansiyel etki alanını içeren yalıtım

Not: yatay laminar akış kukuIeta ve steril aletler ve malzemeler yumurta işleme yordamları için steril koşullarda kullanın.

  1. Timik rudiment meşru topraklarının içeren embriyonik bölge kaldırmak içinrd 3 ve 4th içeren faringeal kemer bölgesi (3/4PAR), açıklanan7,8olarak kemerler.
    1. Bir büyük borosilikat cam kase (100 x 50 mm; 100 cm3) 60 mL soğuk fosfat tamponlu tuz çözeltisi (PBS) ile doldurun.
    2. Eğri makas yardımıyla dokunun ve 3 gün boyunca inkübe yumurta dairesel delik bir bıldırcın kabuk. Yumurta karşı tarafta delik künt aç ve soğuk PBS ile kase yumurta sarısı (embriyo ile) aktarmak.
    3. Embriyo vitelline membran harici olarak eğri makas kullanarak ekstra embriyonik damarları keserek sarısı kaldırın.
    4. İnce forseps yardımıyla, transfer embriyo için küçük bir kase (60 x 30 mm; 15 cm3) 10 mL soğuk PBS ile dolu.
    5. Bir kepçe ile 100 mm Petri kabına siyah bir tabanı ile embriyo taşımak ( Tablo malzemelerigörmek) 10 mL soğuk PBS içeren ve stereomicroscope yerleştirin.
    6. 3/4PAR, yukarıda açıklanan8olarak incelemek.
    7. 3/4PAR ve bir cam tabak dörtte üçü aktarmak 2 mL steril Pasteur pipet kullanarak soğuk PBS ile dolu Aspire edin.
  2. Pankreatin ile enzimatik sindirim tarafından timik rudiment (3/4PP endoderm) meşru topraklarının içeren endoderm yalıtmak.
    1. Spatula ve ince forseps yardımıyla, soğuk Pankreatin (8 mg/mL; 1:3 seyreltme olarak 25 mg/mL soğuk PBS ile) transferi bir cam tabak dörtte üçü 3/4PAR dolu.
    2. Buz enzimatik sindirim için 1 h için kuluçkaya.
      Not: Geliştirme (Tablo 1) aşaması enzimatik sindirim bağlıdır.
    3. 3/4PAR dan endoderm yalıtmak için stereomicroscope (40 x-60 x büyütme) altında cam tabak yerleştirin.
      Not: tüm yüzeyler ve çözümleri soğuk bu yordam sırasında tutmak. Eğer belgili tanımlık doku incelemek için uzun süren yeni bir soğuk Pankreatin çözüm değiştirmek (> 15 dk). Bir ışık kaynağı olarak LED ışıklar sınırlı ısı yükü dikkate alınarak stereomicroscope veya optik lifler dahil kullanın.
    4. Çevre dokular üzerinden endoderm yalıtmak için PIN sahipleri iki paslanmaz çelik microscalpels kullanın.
      Not: 0,1 mm ve 0.2 mm ve nikel iğne sahipleri arasında çapı 1 mm 0 mm çene açılış büyüklüğündeki microscalpels kullanın.
      1. Önce nöral tüp ve faringeal endoderm dorsal yüzeye bağlı mesoderm kaldırın.
      2. Sırt tarafı yukarı ile dikkatli bir şekilde ayırmak ve faringeal kemerler arasında Mezenşim kaldırmak ve faringeal torbalar içinde karşı karşıya. 3/4PAR her iki tarafta bu yordamı gerçekleştirin.
      3. Kalbini tüp ve anterior torbalar çevreleyen Mezenşim kaldırın.
      4. Ventral tarafı yukarı ile 2nd ve 3rd faringeal kemerler ektoderm kesme ve torbalar için bağlı Mezenşim dikkatli bir şekilde çıkarın. 3/4PAR diğer tarafında bu yordamı yineleyin. Bu aşamada tiroid rudiment görünür olmalıdır.
      5. Faringeal endoderm iki microscalpels ile bağlı kalan mezenkimal hücreler kaldırın.
      6. 2nd ve 3rd s,rd 3 ve 4th torbalar tiroid rudiment ve 2nd endoderm ön kısmından içeren faringeal endoderm dissociating arasında enine bir kesim yapmak faringeal kese.
      7. Spatula ve ince forseps yardımıyla transfer izole 3/4PP endoderm bir cam tabak dörtte üçü için % 100 soğuk fetal Sığır serum ile (FBS) dolu.
  3. Buz üzerinde izole dokular ile cam çanak tüp bebek tahlil hazırlanması sırasında tutmak. Alternatif olarak, izole doku üç boyutlu korunabilir ve in situ olarak gen-ifade için analiz edilebilir.

3. yalıtım tavuk somatopleura mesoderm

Not: yumurta gerçekleştirmek işleme yordamları steril koşullarda yatay laminar akış kukuIeta ve sterilize edilmiş aletler ve malzemeler kullanarak.

  1. Somites 19-24 (ss19-24) düzeyinde somatopleura mesoderm içeren embriyonik bölge kaldırın.
    1. Tavuk yumurta inkübatör kuluçka 2.5 gün sonra kaldırın.
    2. Eğri makas ile kabukta küçük bir delik açın. Bir iğne takın ve albümin 2 mL içinde yumurta albümin birim alt ve (işaretli kabuk altında bulunan) embriyo zarar görmesini önlemek için bir 10 mL şırınga ile Aspire edin. Emişli albümin atmak.
    3. Bir daire kesme delik (ilâ 2 / 3 üst yüzey alanı) eğri makas kullanarak kabuk işaretli bölgesinde.
    4. Vitelline membran ince forseps ile embriyo tutarken extraembryonic gemiler dışarıdan kesti.
    5. Bir stereomicroscope altında embriyo soğuk PBS 10 mL içeren bir siyah Bankası ile bir 100 mm Petri kabına yerleştirin.
      Not: bir stereomicroscope bu aşamadan itibaren mikrocerrahi yordamlar ilerici büyütme için kullanın.
    6. Embriyo plaka altına tutmak için dört ince böcek pimleri kullanın. Pimleri bir kare şekli oluşturan extraembryonic bölgede yerleştirin.
    7. 19 ve somites 24-kemiği embriyo eksen ve wecker göz makas kullanarak tüm embriyo bölge geçiş arasında iki kesim gerçekleştirin.
    8. Embriyo bölümünde, ss19-24, kesme marjinal embriyonik kenarlarından serbest bırakın.
    9. Aspiratı ss19-24 doku ve bir cam tabak dörtte üçü aktarmak 2 mL steril Pasteur pipet kullanarak soğuk PBS ile dolu.
  2. Somatopleura bölge (ss19-24) yanal mesoderm Pankreatin (8 mg/mL; 1:3 seyreltme olarak 25 mg/mL soğuk PBS ile) ile enzimatik sindirim tarafından izole et.
    1. Spatula ve ince forseps, transfer yardımıyla dörtte üçü soğuk Pankreatin çözüm ile dolu bir cam ss19-24 dokuların çanağı.
    2. Buz enzimatik sindirim için 30 dk için kuluçkaya.
    3. Stereomicroscope altında bir sahibi iki microscalpels kullanarak çevre dokular üzerinden mesoderm yalıtmak.
      Not: tüm yüzeyler ve çözümleri soğuk bu yordam sırasında tutmak. Eğer belgili tanımlık doku incelemek için uzun süren yeni bir soğuk Pankreatin çözüm değiştirmek (> 10 dak.). Bir ışık kaynağı olarak LED ışıklar sınırlı ısı yükü dikkate alınarak stereomicroscope veya optik lifler dahil kullanın.
    4. Mesoderm yalıtım sırasında önce ektoderm ventrally bulunduğu splancnopleura dokular dikkatli dekolmanı tarafından takip yüzeyde kaldırın.
    5. Somatopleura sağ yanal mesoderm nöral tüp paralel hareket halinde keserek serbest bırakın.
    6. Embriyo sol tarafındaki mesoderm ayrılması yineleyin.
      Not: Bu işlem sırasında microscalpel hareketleri yavaş olun. Maruz kalan ekstra hücresel matris proteinler doku ve sıvı hareketleri önleme aletleri için sopa.
    7. Spatula ve ince forseps yardımıyla bir cam tabak dörtte üçü izole mesoderm aktarmak ile soğuk FBS dolu.
  3. Buz üzerinde izole dokular ile cam çanak tüp bebek tahlil hazırlanması sırasında tutmak.

4. İn vitro organotypic tahlil: bıldırcın 3/4PP endoderm ve tavuk somatopleura mesoderm heterospecific Derneği

  1. %10 FBS ve % 1 kalem/Strep3,5RPMI-1640 orta ile kültür ortamı hazırlamak.
  2. Bir metal ızgara 35 mm ile 5 mL kültür ortamının Petri kabına yerleştirin.
    Not: üst kılavuz ile orta yüzey seviye için sıvı fazlalığı kaldırın.
  3. İnce forseps yardımıyla bir membran filtre kültür orta daldırma ve sonra hava ile temas halinde bir yüzeye sahip ızgaranın üstüne yerleştirin.
    Not: Membran alanı (13 mm çap ile) dörtte biri doku Derneği için yeterlidir.
  4. Stereomicroscope altında membran filtre üst izole doku ilişkilendirin. İlk nazik bir nakli kaşık (veya spatula) yardımı ile kaydırarak cam tabak 3/4PP endoderm (adım 2) aktarmak ve ince forseps. İzole mesoderm (adım 3) için bu yordamı yineleyin.
    Not: bir microscalpel yardımı ile ilişkisini en üst düzeye çıkarmak belgili tanımlık doku karıştırın.
  5. Dikkatle 48 h. kültürlü dokulara chorioallantoic membran (CAM) aşılı için ilişkili dokulara oksijen kuluçka %5 CO2 37 ° C'de yer.
    Not: CAM ektopik organ oluşumu daha önce ayrıntılı8yaşındaydım.

Sonuçlar

İletişim kuralı birkaç hücresel ve gelişim biyolojisi teknik yaklaşım içinde kullanılmak üzere kuş embriyonik doku yalıtmak için bir yöntemi ayrıntıları. Bu yöntem daha önce timus oluşumu5erken evrelerinde mezenkimal epitel etkileşimleri çalışmaya istihdam edildi. Burada, yeni sonuçları Şekil 1 ve Şekil 2benzer yaklaşımları kullanarak, gösterilir.

Tartışmalar

Burada verilen embriyonik doku yalıtım yordam bıldırcın-tavuk chimeric bebekleri farklı biyolojik bağlamlarda3,5,6üretmek için önceki teknik geliştirildi.

Bu yaklaşım genetik manipülasyon veya belirsiz, genetiği değiştirilmiş hayvan modelleri kullanımını sınırlama çoğu kez doku özgü işaretleri kullanımı gerektirmeden saf embriyonik doku yalıtmak uygundur. Mezenkimal epit...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Yazarlar Isabel Alcobia için el yazması, eleştirel okuma için minnettarız yapmak video anlatımı için Mário Henriques ve Vitor Proa Instituto de Histologia e Biologia Histoloji hizmetinden Desenvolvimento, Faculdade de Medicina de Lisboa, Universidade de Lisboa, teknik destek için. Unidade de audiovisuais (görsel-işitsel birimi), Faculdade de Paulo Caeiro ve Hugo Silva için özellikle borçlu olduğumuzu Medicina de Lisboa, Universidade de Lisboa olağanüstü bağlılıklarını bu video üretimi için. Lütfen Interaves ve video sistemi ile donatılmış bir stereoscope sağlamak için Leica Microsystems anıyoruz - Sociedade Agro-Pecuária, S.A bıldırcın ile katkıda bulunmak için yumurta döllenmiş. Bu eser Faculdade de tarafından desteklenen Medicina de Lisboa, Universidade de Lisboa (FMUL).

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Chicken fertilized eggs (Gallus gallus)Pintobar, PortugalPoultry farm 
Quail fertilized eggs (Coturnix coturnix)Interaves, PortugalBird farm 
15 mL PP centrifuge tubesCorning430052
50 mL PP centrifuge tubesCorning430290
60 x 20 mm pyrex dishesDuran group21 755 41
100 x 20 mm pyrex dishesDuran group21 755 48
Metal gridGoodfellowsfine meshed  stainless steel grid
Membrane filterMilliporeDTTP013000.6 mm Isopore membrane filter
Petri dish, 35 x 10 mmSigma-AldrichP5112 
60 x 30 mm pyrex bowls (Small size)from supermarket 
100 x 50 mm pyrex bowls (Large size)from supermarket 
Transfer pipettesSamco Scientific, Thermo Fisher Scientific2041S2 mL plastic pipet
Glass pasteur pipetteNormax5426015
Clear plastic tapefrom supermarket 
Cytokeratin (pan; acidic and basic, type I and II cytokeratins), clone Lu-5BMA BiomedicalsT-1302
Fetal Bovine SerumInvitrogen, Thermo Fisher ScientificStandart FBS
PancreatinSigma-AldrichP-3292Prepare a 25 mg/mL solution according to manufacturer's instructions; centrifuge and filter prior to aliquote and store at -20ºC. Aliquots can be kept frozen for several years.
ParaformaldehydeSigma-AldrichP6148
Penicillin-StreptomycinInvitrogen, Thermo Fisher Scientific15140-122
Phosphate-Buffered Saline (PBS)GIBCO, Thermo Fisher Scientific10010023
QCPN antibodyDevelopmental Studies Hybridoma BankQCPN
RPMI 1640 Medium, GlutaMAX Supplement GIBCO, Thermo Fisher Scientific61870010
Bluesil RTV141A/B Silicone Elastomer 1.1Kg KitELKEM/SilmidRH141001KGTo prepare the back base for petri dish
Dumont #5 ForcepsFine Science Tools11251-30 Thin forceps
Extra fine Bonn scissors, curvedFine Science Tools14085-08Curved scissors
Insect pins Fine Science Tools26001-300.3 mm Stainless steel pin
Micro spatula Fine Science Tools10087-12Transplantation spoon
Minutien PinsFine Science Tools26002-200.2 mm Stainless steel microscalpel
Minutien PinsFine Science Tools26002-100.1 mm Stainless steel microscalpel
Moria Nickel Plated Pin HolderFine Science Tools26016-12Nickel plated pin holder
Moria Perforated SpoonFine Science Tools10370-17Skimmer
Wecker Eye ScissorFine Science Tools15010-11
CameraLeica Microsystems MC170 HD
MicroscopeLeica Microsystems DM2500
NanoZoomer S360 Digital slide scanner Hamamatsu PhotonicsC13220-01
StereoscopeLeica Microsystems Leica M80

Referanslar

  1. Le Douarin, N. The Nogent Institute--50 years of embryology. The International Journal of Developmental Biology. 49 (2-3), 85-103 (2005).
  2. Le Douarin, N. M., Teillet, M. A. The migration of neural crest cells to the wall of the digestive tract in avian embryo. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 30 (1), 31-48 (1973).
  3. Le Douarin, N. M., Jotereau, F. V. Tracing of cells of the avian thymus through embryonic life in interspecific chimeras. Journal of Experimental Medicine. 142 (1), 17-40 (1975).
  4. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951. Developmental Dynamics. 195 (4), 231-272 (1992).
  5. Neves, H., Dupin, E., Parreira, L., Le Douarin, N. M. Modulation of Bmp4 signalling in the epithelial-mesenchymal interactions that take place in early thymus and parathyroid development in avian embryos. Developmental Biology. 361 (2), 208-219 (2012).
  6. Takahashi, Y., Bontoux, M., Le Douarin, N. M. Epithelio--mesenchymal interactions are critical for Quox 7 expression and membrane bone differentiation in the neural crest derived mandibular mesenchyme. Embo Journal. 10 (9), 2387-2393 (1991).
  7. Figueiredo, M., et al. Notch and Hedgehog in the thymus/parathyroid common primordium: Crosstalk in organ formation. Developmental Biology. 418 (2), 268-282 (2016).
  8. Figueiredo, M., Neves, H. Two-step Approach to Explore Early-and Late-stages of Organ Formation in the Avian Model: The Thymus and Parathyroid Glands Organogenesis Paradigm Video Link. Journal of Visualuzed Experiments. , (2018).
  9. Nehls, M., et al. Two genetically separable steps in the differentiation of thymic epithelium. Science (New York, N.Y.). 272 (5263), 886-889 (1996).
  10. Morahan, G., et al. The nu gene acts cell-autonomously and is required for differentiation of thymic epithelial progenitors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (12), 5742-5746 (1996).
  11. Jerome, L. A., Papaioannou, V. E. DiGeorge syndrome phenotype in mice mutant for the T-box gene, Tbx1. Nature Genetics. 27 (3), 286-291 (2001).
  12. Nie, X., Brown, C. B., Wang, Q., Jiao, K. Inactivation of Bmp4 from the Tbx1 expression domain causes abnormal pharyngeal arch artery and cardiac outflow tract remodeling. Cells Tissues Organs. 193 (6), 393-403 (2011).
  13. Zou, D., et al. Patterning of the third pharyngeal pouch into thymus/parathyroid by Six and Eya1. Developmental Biology. 293 (2), 499-513 (2006).
  14. Davey, M. G., Tickle, C. The chicken as a model for embryonic development. Cytogenetic and Genome Research. 117 (1-4), 231-239 (2007).
  15. Nowak-sliwinska, P., Segura, T., Iruela-arispe, M. L., Angeles, L. The chicken chorioallantoic membrane model in biology, medicine and bioengineering. Angiogenesis. 17 (4), 779-804 (2014).
  16. Uematsu, E., et al. Use of in ovo chorioallantoic membrane engraftment to culture testes from neonatal mice. Comparative Medicine. 64 (4), 264-269 (2014).
  17. Martyn, I., Kanno, T. Y., Ruzo, A., Siggia, E. D., Brivanlou, A. H. Self-organization of a human organizer by combined Wnt and Nodal signaling. Nature. 558 (7708), 132-135 (2018).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Geli im biyolojisisay 144embriyonik doku yal t m3D korunmu dokulari inde in vitro organotypic tahlilb ld rc n tavuk chimeric organtimus

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır