JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Sinekler için iki seçenekli bir besleme tahlilleri için bir protokol sunuyoruz. Bu besleme testini çalıştırmak hızlı ve kolaydır ve sadece küçük ölçekli laboratuvar araştırmaları için değil, aynı zamanda sineklerdeki yüksek verimli davranışsal ekranlar için de uygundur.

Özet

Zararlı ajanların tüketiminden kaçınırken besin değeri olan yiyecekleri seçmek için, hayvanların yiyecek ortamlarını değerlendirmek için sofistike ve sağlam bir tat sistemine ihtiyaçları vardır. Meyve sineği, Drosophila melanogaster, gıda tercihinin moleküler, hücresel ve sinirsel temellerini çözmek için yaygın olarak kullanılan genetik olarak çekişli bir model organizmadır. Sinek yemi tercihlerini analiz etmek için sağlam bir beslenme yöntemine ihtiyaç vardır. Burada açıklanan, titiz, maliyet tasarrufu sağlayan ve hızlı olan iki seçenekli bir besleme tahlildir. Test Petri-dish bazlıdır ve yemeğin iki yarısına mavi veya kırmızı boya ile desteklenmiş iki farklı yiyeceğin eklenmesini içerir. Daha sonra, ~70 önceden tasarlanmış, 2-4 günlük sinekler yemeğe yerleştirilir ve yaklaşık 90 dakika boyunca karanlıkta mavi ve kırmızı yiyecekler arasında seçim yapmasına izin verilir. Her bir sineğin karnının incelenmesi, tercih indeksinin hesaplanması ile takip edilir. Çok katlı plakaların aksine, her Petri kabının doldurulması sadece ~ 20 s sürer ve zaman ve çaba tasarrufu sağlar. Bu besleme tahlili, sineklerin belirli bir yiyeceği sevip sevmediğini hızlı bir şekilde belirlemek için kullanılabilir.

Giriş

Sinekler ve memeliler arasındaki tat organlarının anatomik yapısındaki dramatik farklılıklara rağmen, sineklerin birçok lezzetli maddeye davranışsal tepkileri memelilerinkine çarpıcı bir şekilde benzer. Örneğin, sinekler şeker1,2,3,4,5,6,7,8, amino asitler9,10ve besinleri gösteren düşük tuz11'i tercih eder, ancak acı yiyecekleri reddeder12,13,14,15 unpalatable veya toksiktir. Son yirmi yılda, sinekler, lezzetli algılama, tat transdüksiyon, tat plastisitesi ve besleme yönetmeliği 16 ,17,18 , 19,20dahil olmak üzere tat hissi ve gıda tüketimi ile ilgili birçok temel sorunun anlaşılmasını ilerletmek için son derece değerli bir model organizma olduğunu kanıtlamıştır. Dikkat çekici bir şekilde, bir dizi çalışma, tat algısının altında kalan tat transdüksiyonunun ve sinir devresi mekanizmalarının meyve sinekleri ve memeliler arasında benzer olduğunu göstermiştir. Bu nedenle, meyve sineği, araştırmacıların hayvanlar aleminde gıda tespiti ve tüketimini yöneten evrimsel olarak korunmuş kavramları ve ilkeleri ortaya çıkarmalarını sağlayan ideal bir deneysel organizma olarak hizmet eder.

Sineklerde tat alma hissini araştırmak için, gıda tercihini objektif olarak ölçmek için hızlı ve titiz bir test oluşturmak önemlidir. Yıllar içinde, çeşitli beslenme yöntemleri, boya bazlı tahliller11,12,13,21,22,23, sinek hortumu uzatma yanıtı24, Kılcal Besleyici (CAFE) tahlil25,26, Sinek Sıvı-Gıda Etkileşim Sayacı (FLIC) tahlil27, ve diğer kombinatoryal yöntemler, meyve sinekleri için gıda tercihini ve / veya gıda alımını nicel olarak ölçmek için geliştirilmiştir28,29,30,31. Popüler beslenme paradigmalarından biri, çok katlı bir mikrotiter plakası12 , 21,32 veya burada açıklandığı gibi, besleme odası olarak küçük bir Petri kabı11,22 kullanan boya bazlı iki seçenekli besleme tahlilleridir. Bu test, sineğin karnının şeffaflığına göre tasarlanmıştır. Bu test sırasında, sinekler besleme odasına yerleştirilir ve kırmızı boya veya mavi boya ile karıştırılmış iki yiyecek seçeneği ile sunulur. Test tamamlandıktan sonra, sinek karınları hangi yiyeceği tükettiğine bağlı olarak kırmızı veya mavi görünür.

Hem Petri kabı hem de çok plakalı boya bazlı besleme testleri oldukça sağlamdır ve yaklaşık olarak aynı sonuçları verir. Bu iki tahlil kullanılarak, gıda zevklerini ve gıda dokusunu algılamaktan sorumlu son derece çeşitlendirilmiş reseptörleri ve hücreleri deşifre etmek için çok sayıda önemli keşif ve atılım yapılmıştır11,12,21,22,32,33. Boya bazlı testte, önemli ölçüde zaman ve çaba gerektiren deneysel bir adım, yiyeceklerin hazırlanması ve beslenme odasına yüklenmesidir. Yiyecek hazırlama ve yükleme süresini azaltmak için, bu test, çok katlı mikroter plakanın iki eşit bölmeye ayrılmış küçük bir Petri kabı ile değiştirilmesiyle değiştirildi. Petri-dish bazlı testte, yemeğin iki yarısına mavi veya kırmızı boya ile desteklenmiş iki farklı yiyecek eklenir. Daha sonra, ~70 önceden tasarlanmış, 2-4 günlük sinekler yemeğe yerleştirilir ve yaklaşık 90 dakika boyunca karanlıkta mavi ve kırmızı yiyecekler arasında seçim yapmasına izin verilir. Daha sonra her sineğin karnı incelenir ve tercih indeksi (PI) hesaplanır.

Bu Petri-dish tabanlı iki seçenekli besleme tahlili uygun fiyatlı, basit ve hızlıdır. Bir multiwell tabağının doldurulması yaklaşık 110 s gerekirken, her Petri kabı sadece ~ 20 s sürer. Ek olarak, multiwell plakası, çok sayıda küçük kuyuya (örneğin, tabak başına 60 veya daha fazla kuyu) küçük hacimlerde yiyecek pipetleme gerektirir, bu da önemli ölçüde hassasiyet ve dikkat gerektirir. Tersine, Petri-dish tabanlı test plaka başına sadece iki eylem gerektirir. Besleme tahlili çok sayıda çoğaltma içerebileceğinden, Petri-dish tabanlı test önemsiz miktarda zaman ve çaba tasarrufu sağlar. Bu tahlil, çok katlı testten elde edilenlere eşdeğer sonuçlar verir ve tuz tadıkodlaması 11, gıda deneyimi22ile değiştirilen tat plastisitesi ve gıda dokusu duyusunun moleküler temeli33dahil olmak üzere tat duyusunda birçok temel soruyu ele almada başarılı olduğunu kanıtlamıştır. Özetle, bu Petri-dish tabanlı iki seçenekli test, sineklerin uygun beslenme davranışını ortaya çıkarmak için dış ve iç besin milieusunu nasıl algılayıp algılamayacaklarını araştırmak için güçlü bir araçtır.

Protokol

1. Test odalarının montajı

NOT: Bu protokol 35 mm Petri kabının kullanımını açıklarken (Şekil 1A), ikiye bölebilen ve kaplanabilen herhangi bir su geçirmez, pürüzsüz tabanlı kap kullanılarak istenen etki elde edilebilir.

  1. İlk olarak, kapaklı 35 mm Petri kabını, su geçirmez yapıştırıcı ile orta çizgiden aşağı doğru bir plastik uzunluğu (5 mm genişlik ve 3 mm yükseklik) sabitleyerek iki su geçirmez bölme oluşturarak ikiye ayırın. Test edilen iki gıda substratının karıştırılmasını önleyebilecek sızıntıyı önlemek için contanın tamamlandığını onaylayın.
    NOT: Montajdan sonra, conta tuttuğu sürece bu cihazı yeniden kullanın.

2. Açlık şişelerinin hazırlanması

  1. Yeterli sayıda boş plastik sinek şişesi hazırlayın; ardından, altta bir kağıt mendil parçasını gevşek bir şekilde sıkıştırın. Kağıt mendili alanı dolduracak kadar sıkıştırın, ancak yoğun bir kütle oluşturuyor olacak kadar değil.
    NOT: Dokuda derin çatlaklar veya kıvrımlar olmadığından emin olun, çünkü bu sineklerin sıkışmasına neden olabilir.
  2. Şişeye ~ 3 mL saf su ekleyin, böylece doku tamamen doygundur, ancak duran su yoktur. Şişenin duvarında büyük miktarda fazla su damlacıkları olmadığından emin olun. Alternatif olarak, her boş şişeye% 1 agarose 5 mL ekleyerek ve agarose'un oda sıcaklığında katılaşmasını sağlayarak% 1 w / v agar çözeltisi (sakkaroz olmadan) hazırlayarak ıslatılmış kağıt için agarose değiştirin.

3. Deneyden önce sineklerin ıslak açlığı

  1. Deney saatinden 24 saat önce açlığa başla. CO2 anestezisi altında, ~70, 2-4 günlük grupları hazırlanan açlık şişelerine uçar ve her şişeyi genotip ve açlık zamanı ile etiketler.

4. Reaktif kurulumu

  1. Boyaların hazırlanması
    NOT: Herhangi bir deney yapmadan önce, kullanılacak kırmızı ve mavi boyaların doğru konsantrasyonlarını belirlemek için bir ön kontrol tahlilinin yapılması önemlidir.
    1. Kontrol tahlilleri için, her boya için bir dizi seyreltme hazırlayın ve besleme testini farklı bir boya rengine sahip aynı yiyecekle gerçekleştirin. Deneysel bileşik eklenmediğinde ~0 PI veren iki boya konsantrasyonlarını (bir kırmızı, bir mavi) tanımlamak için sonuçları kullanın (bkz. bölüm 7).
      NOT: Örneğin, son mavi boya konsantrasyonu 50 μM'de sabitlendi ve bir dizi kırmızı boya konsantrasyonuna karşı test edildi. Kırmızı boya dozaj eğrisi temel alınarak, optimum kırmızı boya konsantrasyonu 210 μM idi ve bu da minimum boya önyargısı verdi (Şekil 1B). Daha yüksek bir kırmızı boya konsantrasyonu, kırmızı yiyecekleri tercih etmek için uçarken, daha düşük bir konsantrasyon mavi yiyecekleri tercih etmek için uçar. Mavi veya kırmızı boya konsantrasyonlarını 1 μM'lik artışlarla dikkatlice iyileştirin, çünkü bu büyüklükteki ve daha büyük farklılıklar deneysel sonuçları etkileyebilir.
  2. % 1 agarose hazırlanması
    1. Mikrodalga güvenli bir kapta 0,5 g agarose ve 50 mL saf suyu (veya bunların bir kısmını) birleştirin. Agarose çözeltisini çözünene kadar mikrodalgaya koyun, gerektiği gibi karıştırın.
  3. Diğer gıda bileşenlerinin hazırlanması
    1. Sakkaroz ve deneysel bileşikler de dahil olmak üzere her gıda bileşenini, test edilen son konsantrasyonun 100 kat veya daha yüksek konsantrasyonunda suda çözün.
      NOT: %1 ağar'a eklenen her bir gıda maddesinin toplam hacmi 10 mL erimiş agar başına 1 mL'yi geçmemelidir. Aksi takdirde, agarose çok seyreltilmiş olabilir ve uygun şekilde katılaşmaz.
  4. Gıda medyasının hazırlanması
    1. Konik polipropilen santrifüj tüplerinde (15 veya 50 mL) agar, boya ve istenen deneysel bileşiği karıştırın; kontrol gıdasında deneysel şok tabancası yerine su kullanın. Agar hala tamamen sıvıyken bunu yapın ve bir girdap karıştırıcısı kullanarak iyice karıştırın. Bulaşıklara dağıtılmadan önce agaroseun sertleşmesini önlemek için kullanılmazken tüpleri 60 °C'lik bir su banyosunda tutun.
  5. Deney için yemek hazırlama
    NOT: Başlamadan önce tüm yemeklerin tamamen kuru olduğundan emin olun.
    1. Pipet 1 mL kırmızı deneysel gıda ortamı tahlil kabının bir tarafına(Şekil 1A); istediğiniz sayıda yemek için tekrarlayın. Agarose'un sertleşene kadar soğumasına izin verin (3-5 dk) ve ardından pipet 1 mL mavi kontrol yemeği yemeklerin diğer tarafına (Şekil 1A). Bu işlemi kırmızı/deneysel mavi çift kontrolü ile tekrarlayın.
      NOT: Deneye başlamadan önce tüm yemeklerin tam olarak ayarlı olduğundan emin olun. Bulaşıkları 30 dakika içinde kullanın.

5. İki yönlü besleme testinin başlatılması

  1. Uçma ve tırmanma gibi belirgin motor aktiviteler gözlenene kadar buz üzerindeki deneysel sinek hatlarını geçici olarak felç edin. Sinekler hareketsiz hale geldikten sonra, şişeyi hafifçe ters çevirin ve tüm sinekleri test odasına aktarmak için dokunun.
    NOT: Soğuk şok ~ 3-5 dakika sürer. Uzun süre soğuğa maruz kalmak sineğin fizyolojisini ve sağlığını etkileyebilir ve bu nedenle kaçınılmalıdır.
  2. Kapağı hızlı bir şekilde hazneye yerleştirin ve bir kenara koyun. Tüm sinekler transfer edildikten sonra, tüm odaları karanlık, kapalı bir alana taşıyın. Tahlillerin 90 dakika çalışmasına izin verin.
    NOT: Karanlık bir ortam, sineğin görsel yolunun beslenme davranışı üzerindeki etkisini en aza indirir ve yemeğin dışından gelen çevresel ipuçlarını kaldırır.

6. İki yönlü besleme testini sonlandırma

  1. 90 dakika geçtikten sonra, sinekleri feda etmek için odaları -20 ° C dondurucuya aktarın. ~1 saat sonra sinekleri sayın.
    NOT: Yemeği dondurucuya yerleştirmeden önce her Petri kabını ters çevirin ve yiyeceklerin üzerine sineklerin dondurulmamasını sağlayın.

7. Gıda tercihlerini belirlemek için bir tercih indeksi (PI) atama

  1. Standart bir diseksiyon mikroskobu altında, her bir tabakta sineklerin karın rengini inceleyin. Sinekleri karınlarının rengine göre kırmızı, mavi veya mor olarak sayın (Şekil 2A). Karnı% 50'den fazla renkliyse, sağlam beslenmeyi gösteren sineği sayın (Şekil 2B). Karnı sadece küçük bir yiyecek noktası içeriyorsa, zayıf yemeyi gösteren sineği hariç tutun (Şekil 2C).
  2. Mavi, kırmızı veya hem mavi hem de kırmızı yiyecekler yiyen sineklerin sayısı sayıldıktan sonra, her Petri kabına bir tercih indeksi (PI) atamak için aşağıdaki denklemi kullanın:

PI = (Deneysel yiyecek yiyen sinek sayısı) - (Kontrol gıdalarını yiyen sinek sayısı) / (Deneysel yiyecekleri yiyen sinek sayısı) + (Sineklerin sayısı yiyecek kontrolü yiyor) + (Her ikisini de yiyen sinek sayısı)

PI > 0 deneysel bileşik için bir tercih gösterir, PI < 0 deneysel bileşiğe karşı bir nefret gösterir ve PI = 0 bileşiğin beslenme davranışı üzerinde hiçbir etkisi olmadığını gösterir.

8. Test odalarının temizlenmesi

  1. Petri tabakalarını gıda substratını kazıyarak ve kokusuz sabun ve suyla durulayarak derhal temizleyin. Petri tabaklarını bir gecede damıtılmış suda bekletin. Her tabaktaki bölme contasının hala su geçirmez olup olmadığını kontrol edin, ardından bulaşık havasını kurumaya bırakın.
    NOT: Artık agarose veya boya lekesi olmadığından emin olduktan sonra Petri tabakları tekrar kullanıma hazırdır.

Sonuçlar

Bu tahlilde, 35 mm'lik bir çanak, yemeğin her yarısı mavi veya kırmızı boya ile birleştirilmiş agarose yiyecekleri içeren iki eşit besleme bölmesine ayrılmıştır (Şekil 1A). Boya önyargısını dışlamak için, mavi ve kırmızı boya konsantrasyonları, sadece bu iki boya eklendiğinde yaklaşık "0" PI verecek şekilde dikkatlice rafine edilmiştir (Şekil 1B). Petri kabı test edilmiş yiyeceklerle yüklendikten sonra, ~70 ıslak aç, 2-4 g?...

Tartışmalar

Bu yöntem, sorunların ortaya çıkabileceği birkaç önemli adımı içerir. İlk olarak, sineklerin istikrarlı veri sağlamak için yeterli miktarda yiyecek yuttmasını sağlayın. Sinekler zayıf beslenirse, sineklerin en az 24 saat boyunca ıslak aç olduğundan ve deneysel ortamın en az minimum sakkaroz konsantrasyonu (2 mM) içerdiğiden emin olun. Gıda tüketimini daha da teşvik etmek için, sineklerin fizyolojik durumuna bağlı olarak ıslak açlık süresini 24 saatin ötesine uzatın. Çok fazla sinek u...

Açıklamalar

Yazarlar çıkar çatışması veya rakip finansal çıkarlar beyan etmemektedir.

Teşekkürler

Yazarlar, dr. Tingwei Mi'ye iki seçenekli beslenme testini optimize etmelerine yardımcı olduğu için teşekkür eder. Ayrıca Samuel Chan ve Wyatt Koolmees'e el yazması hakkındaki yorumları için teşekkür etmek istiyorlar. Bu proje Ulusal Sağlık Enstitüleri R03 DC014787 (Y.V.Z.) ve R01 DC018592 (Y.V.Z.) ve Ambrose Monell Vakfı tarafından finanse edildi.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
35 mm Petri dishFisher Scientific08-772E
AgaroseThomas ScientificC756P56
Clear adhesiveFisher ScientificNC9884114
Conical centrifuge tubesFisher Scientific05-527-90
Dissection microscopeAmscopeSM-2T-6WB-V331
FCF Brilliant BlueWako Chemical3844-45-9
Fly CO2 anesthesia setupGenesee Scientfic59-114/54-104M
Fly incubator with programmable day/night cyclePowers Scientific Inc.IS33SD
Fly lines
Glass dish (microwave-safe)
KimwipesFisher Scientific06-666A
Media storage bottleFisher Scientific50-192-9998
Plastic divider cut to fit the dish from a sheet no thicker than 5 mm
Plastic fly vialsGenesee Scientific32-116
SucroseMillipore SigmaS9378
Sulforhodamine BMillipore SigmaS9012
Tastant compound of interest
Vortex mixerBenchmark ScientificBV1000
Water bathFisher ScientificFSGPD05

Referanslar

  1. Jiao, Y., Moon, S. J., Montell, C. A Drosophila gustatory receptor required for the responses to sucrose, glucose, and maltose identified by mRNA tagging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (35), 14110-14115 (2007).
  2. Dahanukar, A., Foster, K., van der Goes van Naters, W. M., Carlson, J. R. A Gr receptor is required for response to the sugar trehalose in taste neurons of Drosophila. Nature Neuroscience. 4 (12), 1182-1186 (2001).
  3. Ueno, K., et al. Trehalose sensitivity in Drosophila correlates with mutations in and expression of the gustatory receptor gene Gr5a. Current Biology. 11 (18), 1451-1455 (2001).
  4. Fujii, S., et al. Drosophila sugar receptors in sweet taste perception, olfaction, and internal nutrient sensing. Current Biology. 25 (5), 621-627 (2015).
  5. Wang, Z., Singhvi, A., Kong, P., Scott, K. Taste representations in the Drosophila brain. Cell. 117 (7), 981-991 (2004).
  6. Thorne, N., Chromey, C., Bray, S., Amrein, H. Taste perception and coding in Drosophila. Current Biology. 14 (12), 1065-1079 (2004).
  7. Slone, J., Daniels, J., Amrein, H. Sugar receptors in Drosophila. Current Biology. 17 (20), 1809-1816 (2007).
  8. Dus, M., et al. Nutrient sensor in the brain directs the action of the brain-gut axis in Drosophila. Neuron. 87 (1), 139-151 (2015).
  9. Toshima, N., Tanimura, T. Taste preference for amino acids is dependent on internal nutritional state in Drosophila melanogaster. Journal of Experimental Biology. 215 (16), 2827-2832 (2012).
  10. Melcher, C., Bader, R., Pankratz, M. J. Amino acids, taste circuits, and feeding behavior in Drosophila: towards understanding the psychology of feeding in flies and man. Journal of Endocrinology. 192 (3), 467-472 (2007).
  11. Zhang, Y. V., Ni, J., Montell, C. The molecular basis for attractive salt-taste coding in Drosophila. Science. 340 (6138), 1334-1338 (2013).
  12. Weiss, L. A., Dahanukar, A., Kwon, J. Y., Banerjee, D., Carlson, J. R. The molecular and cellular basis of bitter taste in Drosophila. Neuron. 69 (2), 258-272 (2011).
  13. Moon, S. J., Kottgen, M., Jiao, Y., Xu, H., Montell, C. A taste receptor required for the caffeine response in vivo. Current Biology. 16 (18), 1812-1817 (2006).
  14. Dweck, H. K. M., Carlson, J. R. Molecular logic and evolution of bitter taste in Drosophila. Current Biology. 30 (1), 17-30 (2020).
  15. Lee, Y., et al. Gustatory receptors required for avoiding the insecticide L-canavanine. Journal of Neuroscience. 32 (4), 1429-1435 (2012).
  16. Montell, C. A taste of the Drosophila gustatory receptors. Current Opinion in Neurobiology. 19 (4), 345-353 (2009).
  17. Clyne, P. J., Warr, C. G., Carlson, J. R. Candidate taste receptors in Drosophila. Science. 287 (5459), 1830-1834 (2000).
  18. Liman, E. R., Zhang, Y. V., Montell, C. Peripheral coding of taste. Neuron. 81 (5), 984-1000 (2014).
  19. Scott, K. Gustatory processing in Drosophila melanogaster. Annual Review of Entomology. 63, 15-30 (2018).
  20. Freeman, E. G., Dahanukar, A. Molecular neurobiology of Drosophila taste. Current Opinion in Neurobiology. 34, 140-148 (2015).
  21. Tanimura, T., Isono, K., Yamamoto, M. T. Taste sensitivity to trehalose and its alteration by gene dosage in Drosophila melanogaster. Genetics. 119 (2), 399-406 (1988).
  22. Zhang, Y. V., Raghuwanshi, R. P., Shen, W. L., Montell, C. Food experience-induced taste desensitization modulated by the Drosophila TRPL channel. Nature Neuroscience. 16 (10), 1468-1476 (2013).
  23. Bantel, A. P., Tessier, C. R. Taste preference assay for adult Drosophila. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (115), e54403 (2016).
  24. Shiraiwa, T., Carlson, J. R. Proboscis extension response (PER) assay in Drosophila. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (3), e193 (2007).
  25. Ja, W. W., et al. Prandiology of Drosophila and the CAFE assay. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (20), 8253-8256 (2007).
  26. Diegelmann, S., et al. The CApillary FEeder assay measures food intake in Drosophila melanogaster. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (121), e55024 (2017).
  27. Ro, J., Harvanek, Z. M., Pletcher, S. D. FLIC: high-throughput, continuous analysis of feeding behaviors in Drosophila. PLoS One. 9 (6), 101107 (2014).
  28. Yoshihara, M. Simultaneous recording of calcium signals from identified neurons and feeding behavior of Drosophila melanogaster. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (62), e3625 (2012).
  29. Deshpande, S. A., et al. Quantifying Drosophila food intake: comparative analysis of current methodology. Nature Methods. 11 (5), 535-540 (2014).
  30. Yapici, N., Cohn, R., Schusterreiter, C., Ruta, V., Vosshall, L. B. A taste circuit that regulates ingestion by integrating food and hunger signals. Cell. 165 (3), 715-729 (2016).
  31. Jiang, L., Zhan, Y., Zhu, Y. Combining quantitative food-intake assays and forcibly activating neurons to study appetite in Drosophila. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (134), e56900 (2018).
  32. Moon, S. J., Lee, Y., Jiao, Y., Montell, C. A Drosophila gustatory receptor essential for aversive taste and inhibiting male-to-male courtship. Current Biology. 19 (19), 1623-1627 (2009).
  33. Zhang, Y. V., Aikin, T. J., Li, Z., Montell, C. The basis of food texture sensation in Drosophila. Neuron. 91 (4), 863-877 (2016).
  34. Itskov, P. M., et al. Automated monitoring and quantitative analysis of feeding behaviour in Drosophila. Nature Communications. 5, 4560 (2014).
  35. Qi, W., et al. A quantitative feeding assay in adult Drosophila reveals rapid modulation of food ingestion by its nutritional value. Molecular Brain. 8, 87 (2015).
  36. Simpson, J. H., Looger, L. L. Functional imaging and optogenetics in Drosophila. Genetics. 208 (4), 1291-1309 (2018).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

N robilimSay 168

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır