Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.
Periton dokusunda yerleşik makrofajlarda gen fonksiyonunun araştırılması için in vivo, lentiviral vektörler kullanılarak adım adım bir protokol gösteriyoruz.
Periton dokusunda yerleşik makrofajlar, homeostazın sürdürülmesinde geniş işlevlere sahiptir ve lokal ve komşu dokulardaki patolojilerde rol oynarlar. İşlevleri mikro-çevresel ipuçları tarafından belirlenir; Bu nedenle, davranışlarını in vivo fizyolojik bir niş içinde araştırmak önemlidir. Şu anda, spesifik peritoneal makrofaj hedefleme metodolojileri, tüm fare transgenik modellerini kullanmaktadır. Burada, lentivirüs partikülleri kullanılarak peritoneal makrofajlarda mRNA ve küçük RNA türlerinin (örneğin, mikroRNA) ekspresyonunun etkili in vivo modülasyonu için bir protokol açıklanmaktadır. Lentivirüs preparatları HEK293T hücrelerde yapıldı ve tek bir sükroz tabakası üzerinde saflaştırıldı. İntraperitoneal enjeksiyonu takiben lentivirüs etkinliğinin in vivo olarak doğrulanması, lokal dokuya sınırlı makrofajların baskın enfeksiyonunu ortaya çıkardı. Peritoneal makrofajların hedeflenmesi homeostaz ve tiyoglikolat ile indüklenen peritonit sırasında başarılı olmuştur. Lentivirüsün intraperitoneal verilmesinin neden olduğu düşük seviyeli inflamasyon ve potansiyel deneyler için zaman kısıtlamaları dahil olmak üzere protokolün sınırlamaları tartışılmaktadır. Genel olarak, bu çalışma in vivo peritoneal makrofajlarda gen fonksiyonunun hızlı bir şekilde değerlendirilmesi için hızlı ve erişilebilir bir protokol sunmaktadır.
Dokuda yerleşik makrofajlar (Mφ), istilacı patojenleri algılayan ve bunlara yanıt veren heterojen bir fagositik bağışıklık hücresi popülasyonudur 1,2. Ek olarak, doku gelişiminde, yeniden şekillenmede ve homeostazın korunmasında önemli bir rol oynarlar 1,3. Birçok doku Mφ, embriyogenez sırasında yolk kesesi progenitörlerinden türetilir ve yaşam boyunca dokuda kalır 4,5. Bu hücrelerin fenotipi ve işlevleri, spesifik transkripsiyon faktörlerinin ve yerel mikro çe....
Tüm hayvan çalışmaları, Kurumsal ve Birleşik Krallık İçişleri Bakanlığı yönergelerine uygun olarak yürütülmüştür.
NOT: Lentivirüs ile yapılan tüm in vivo çalışmalar, araştırmada hayvanların etik kullanımına ilişkin yerel ve ulusal yönergelere göre ve ayrıca kategori II bulaşıcı materyallerin kullanımıyla ilgili tüm düzenlemelere bağlı kalarak yapılmalıdır. Hayvan refahı da yerel düzenlemelere uygun olarak izlenmelidir. Protokolün bu adımında, lentiviral partiküller ve kesici aletlerle çalışırken çok dikkatli olunması gerekir.
1. Transfeksiyon için HEK293T hücreleri....
Tam ve doğru bir şekilde takip edildiğinde, bu protokol, bu çalışmada belirlenen optimal hacimde on iki in vivo enjeksiyon için yeterli olan, tek bir preparat başına toplam 1.5 mL yüksek kaliteli lentivirüs stoğu verir18. Transfeksiyonun başarısı protokolün erken aşamalarında değerlendirilebilir. Sağlıklı ve birleşen HEK293T hücreleri, plazmitlerde mevcutsa, plazmit transfeksiyonundan 48 saat sonra kolayca tespit edilebilir bir iş.......
Dokuda yerleşik makrofajlar, fizyolojik çevreleri 6,7,8,9 tarafından belirlenen bir dizi homeostatik ve inflamatuar dokuya özgü işlevi 1,2 yerine getirir. Bu protokolde, peritoneal yerleşik makrofajların lentivirüs partikülleri kullanılarak in vivo olarak manipülasyonu için etkili .......
Yazarların ifşa edecek hiçbir şeyi yok.
Bu araştırma, tamamen veya kısmen, Wellcome Trust Araştırmacı Ödülü [107964/Z/15/Z] tarafından finanse edilmiştir. PRT ayrıca Birleşik Krallık Demans Araştırma Enstitüsü tarafından da desteklenmektedir. MAC, Biyoteknoloji ve Biyolojik Bilimler Araştırma Konseyi Keşif Bursu (BB / T009543/1) tarafından desteklenmektedir. Açık Erişim amacıyla, yazar, bu gönderimden kaynaklanan herhangi bir Yazar Tarafından Kabul Edilen Makale sürümüne bir CC BY kamu telif hakkı lisansı uygulamıştır. LCD, Swansea Üniversitesi'nde öğretim görevlisi ve Cardiff Üniversitesi'nde fahri araştırma görevlisidir. Bu çalışma, Ipseiz ve ark....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.05% Trypsin-EDTA (1x) (Trypsin 500 mg/L or 0.02 mM) | Thermo Fisher Scientific | 25300054 | |
0.22 μm sterile millex GP filter | Merck | SLGS033SS | |
0.45 μm sterile millex GP filter | Merck | SLHP033RS | |
0.5 mL U-100 insulin syringe with needle, 0.33 mm x 12.7 mm (29 G) | BD | 324892 | |
1 Litre Sharps Container | N/A | N/A | |
2.4G2 antibody (TruStain FcX anti-mouse CD16/32) | Biolegend | 101320 | |
40 μm strainer | Thermo Fisher Scientific | 22363547 | |
AimV medium (research grade), AlbuMax Supplement | Thermo Fisher Scientific | 31035025 | |
Blocking buffer | prepared in house | ||
Brewer thioglycolate medium | Sigma-Aldrich | B2551 | 4% stock solution prepared in water, autoclaved and kept frozen. |
CD11b | Biolegend | 101222 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD11b | BD | 550993 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD11c | Biolegend | 117317 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD11c | Biolegend | 117333 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD19 | BD | 560375 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD19 | Biolegend | 152410 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD226 | Biolegend | 128808 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD3e | BD | 560527 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD3e | Biolegend | 152313 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD4 | Biolegend | 100412 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD73 | eBioscience | 16-0731-82 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD8a | eBioscience | 48-0081-82 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Cell culture flask (T175 fask, 175 cm2, 550 mL) | Greiner Bio One | 658175 | |
Centrifuge tubes, conical bottom tubes 25 mm x 89 mm | Beckman Coulter | 358126 | |
Centrifuges | Beckman Coulter | Ultracentrifuge and TC centrifuge | |
Collagenase type IV | Sigma-Aldrich | C5138 | |
Conical centrifuge tubes (15 mL and 50 mL) | Greiner Bio One | 11512303 & 11849650 | |
Cryotubes | Greiner Bio One | 123277 | or cryotubes |
DMEM medium (1x) + 4.5g/L D-glucose, 400 µM L-glutamine | Thermo Fisher Scientific | 41965-062 | |
Dnase I | Sigma-Aldrich | 11284932001 | |
Effectene transfection reagent | Qiagen | 301425 | |
F4/80 | Biolegend | 123123 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
F4/80 | Biolegend | 123133 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
F4/80 | Biolegend | 123147 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
FceR1 | eBioscience | 48-5898-80 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Fetal calf serum (FCS) | Thermo Fisher Scientific | 10270-106 | heat inactivated for 30 min at 56 °C and sterile filtered through 0.22 μm filter |
Flow cytometer | Thermo Fisher Scientific | Attune NxT | |
Flow cytometry (FACS) buffer | prepared in house | ||
Fluorescent tissue culture microscope | Thermo Fisher Scientific | EVOS FL | |
Forceps | N/A | N/A | User preference |
Hank's balanced salt solution (HBSS) | Gibco, Life Technologies | 14175-053 | |
HEK293T cell line | grown for at least a week prior transfection. Mycoplasma free | ||
HIV-1 Core antigen | Beckman Coulter | 6604667 | |
Hyaluronidase | Sigma-Aldrich | H3506 | |
Hydrex surgical scrub, chlorhexiding gluconate 4% w/v skin cleanser | Ecolab | 3037170 | |
I-A/I-E | Biolegend | 107625 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
ICAM1 | Becton Dickinson | 554970 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Jurkat T cell line | grown for at least a week prior use. Mycoplasma free | ||
LIVE/DEAD fixable near-IR dead cell stain kit | Thermo Fisher Scientific | L34975 | |
Ly6G | Biolegend | 127615 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Mice | here used C57BL/6 females, aged 8-12 weeks (Charles Rivers), unless specified differently | ||
Microcapillary pipettes (volume range 0.5-1,000 μL) | Fisher Scientific & Starlab | 11963466 & 11943466 & 11973466 & S1111-3700 | |
NK1.1 | Biolegend | 108724 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148-500G | prepared to 2% w/v in PBS |
pCMV-ΔR8.91 packaging plasmid | Zuffrey, R., et al. 1997 | encodes Gag-Pol HIV protein driven by cytomegalovirus promoter. Ampicilin resistance. | |
Penicillin/Streptomycin (100x, 10,000 U/mL) | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
Petri dish | Greiner Bio One | 664160 | |
pHR'SIN-cPPT-SEW plasmid | Rosas, M. et al. 2014 | modified for shRNA and miR expression studies. Encodes EGFP marker downstream SFFV promoter and upstream of the Woodchuck hepatitiv virus enhancer. Ampicilin resistance. | |
pMD2.G plasmid | Naldini, L. et al. 1996 | encodes vesicular stomatis virus g-glycoprotein (VSV-G) envelope. Ampicilin resistance. | |
Rat IgG1, κ isotype control | Becton Dickinson | 550617 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Rat serum | Sigma-Aldrich | R9759-10ML | |
Red blood ACK lysis buffer | prepared in house | ||
RPMI 1640 medium (1x) + 400 uM L-glutamine | Thermo Fisher Scientific | 21875-091 | |
Saponin | Sigma-Aldrich | S4521 | |
SiglecF | BD | 562681 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Sodium hypochlorite Tablets (bleach, 2,000 ppm) | Guest Medical | H8818 | |
Sterile 24-well cell culture plate | Greiner Bio One | 662160 | |
Sterile Dulbecco's PBS (DPBS) (1x) Mg++ and Ca2+ - free | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | |
Sterile EDTA | Thermo Fisher Scientific | 15575020 | |
Sterile VWR disposable transfer pipets (23.0 mL, 30 cm) | VWR | 612-4515 | |
Sucrose | Thermo Fisher Scientific | 15503022 | |
surgical scissors | N/A | N/A | User preference |
Syringes (50 mL and 1 0mL) | Fisher Scientific | 10084450 & 768160 | |
Tim4 | Biolegend | 130007 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
U-bottom 96-well cell culture plate | Greiner Bio One | 650180 |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır