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우리는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 생체 내에서 복막 조직 상주 대식세포의 유전자 기능을 조사하기 위한 단계별 프로토콜을 보여줍니다.
복막 조직에 상주하는 대식세포는 항상성 유지에 광범위한 기능을 하며 국소 및 인접 조직 내의 병리학에 관여합니다. 그들의 기능은 미시 환경 단서에 의해 결정됩니다. 따라서 생체 내 생리학적 틈새에서 그들의 행동을 조사하는 것이 필수적입니다. 현재 특정 복막 대식세포 표적화 방법론은 전체 마우스 형질전환 모델을 사용합니다. 여기에서는 렌티바이러스 입자를 이용한 복막 대식세포에서 mRNA 및 small RNA 종(예: microRNA) 발현의 효과적인 in vivo 조절을 위한 프로토콜에 대해 설명합니다. 렌티바이러스 제제는 HEK293T 세포에서 제조하고 단일 슈크로스 층에서 정제하였다. 복강내 주사 후 렌티바이러스 효과에 대한 in vivo 검증에서 국소 조직에 국한된 대식세포의 우세한 감염이 밝혀졌습니다. 복막 대식세포의 표적화는 항상성 및 티오글리콜레이트 유발 복막염 동안 성공적이었습니다. 렌티바이러스의 복강 내 전달에 의해 유발되는 낮은 수준의 염증과 잠재적인 실험을 위한 시간 제한을 포함한 프로토콜의 한계에 대해 논의합니다. 전반적으로 이 연구는 생체 내 복막 대식세포의 유전자 기능을 신속하게 평가하기 위한 빠르고 접근 가능한 프로토콜을 제시합니다.
조직 상주 대식세포(Tissue-resident macrophage, Mφ)는 침입하는 병원체를 감지하고 이에 반응하는 식세포 면역세포의 이질적인 집단입니다 1,2. 또한 조직 발달, 리모델링 및 항상성 유지에 필수적인 역할을 합니다 1,3. 많은 조직 Mφ는 배아 발생 동안 난황낭 전구 세포에서 파생되며 평생 동안 조직에 남아 있습니다 4,5. 이들 세포의 표현형과 기능은 특정 전사 인자와 국소 미세환경 6,7,8,9의 협력적이고 계층적인 상호작용에 의해 결정된다. 이러한 의존성에 대한 이해가 증가함에 따라 생리학적으로 관련된 틈새 내에서 Mφ의 유전자 조작을 위한 효과적인 in viv....
모든 동물 작업은 기관 및 영국 내무부 지침에 따라 수행되었습니다.
참고: 렌티바이러스에 대한 모든 in vivo 연구는 연구에서 동물의 윤리적 사용에 대한 지역 및 국가 지침에 따라 수행되어야 하며, 카테고리 II 감염 물질의 사용과 관련된 모든 규정을 준수해야 합니다. 동물 복지 또한 현지 규정에 따라 모니터링해야 합니다. 프로토콜의 이 단계에서는 렌티바이러스 입자 및 날카로운 물질로 작업할 때 극도의 주의를 기울여야 합니다.
1. transfection을 위한 HEK293T 세포 준비
참고: 멸균 조직 배양 생물 안전 작업대에서 다음 단계를 수행합니다.
이 프로토콜을 완전하고 정확하게 따를 경우, 단일 제제당 총 1.5mL의 고품질 렌티바이러스 스톡을 생성하며, 이는 이 연구에서 결정된 최적의 부피로 12회의 in vivo 주사에 충분합니다18. transfection의 성공 여부는 프로토콜 초기에 평가할 수 있습니다. 건강하고 융합된 HEK293T 세포는 플라스미드에 존재하는 경우 플라스미드 transfection 후 48시간 후에 ?.......
조직에 상주하는 대식세포는 생리적 환경6,7,8,9에 의해 좌우되는 다양한 항상성 및 염증성 조직 특이적 기능(1,2)을 수행한다. 이 프로토콜에서는 렌티바이러스 입자를 사용하여 생체 내에서 복막 상주 대식세포를 조작하는 ?.......
저자는 밝힐 것이 없습니다.
이 연구는 Wellcome Trust Investigator Award [107964/Z/15/Z]의 지원을 받았습니다. P.R.T는 영국 치매 연구소(UK Dementia Research Institute)의 지원도 받고 있습니다. MAC는 Biotechnology and Biological Sciences Research Council Discovery Fellowship(BB/T009543/1)의 지원을 받습니다. 오픈 액세스를 위해, 저자는 이 제출물로 인해 발생하는 모든 저자 수락 원고 버전에 CC BY 공개 저작권 라이선스를 적용했습니다. L.C.D는 스완지 대학교의 강사이자 카디프 대학교의 명예 연구원입니다. 이 작업은 Ipseiz et al. 202018에서 수행한 작업에 의해 지원됩니다.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.05% Trypsin-EDTA (1x) (Trypsin 500 mg/L or 0.02 mM) | Thermo Fisher Scientific | 25300054 | |
0.22 μm sterile millex GP filter | Merck | SLGS033SS | |
0.45 μm sterile millex GP filter | Merck | SLHP033RS | |
0.5 mL U-100 insulin syringe with needle, 0.33 mm x 12.7 mm (29 G) | BD | 324892 | |
1 Litre Sharps Container | N/A | N/A | |
2.4G2 antibody (TruStain FcX anti-mouse CD16/32) | Biolegend | 101320 | |
40 μm strainer | Thermo Fisher Scientific | 22363547 | |
AimV medium (research grade), AlbuMax Supplement | Thermo Fisher Scientific | 31035025 | |
Blocking buffer | prepared in house | ||
Brewer thioglycolate medium | Sigma-Aldrich | B2551 | 4% stock solution prepared in water, autoclaved and kept frozen. |
CD11b | Biolegend | 101222 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD11b | BD | 550993 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD11c | Biolegend | 117317 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD11c | Biolegend | 117333 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD19 | BD | 560375 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD19 | Biolegend | 152410 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD226 | Biolegend | 128808 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD3e | BD | 560527 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD3e | Biolegend | 152313 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD4 | Biolegend | 100412 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD73 | eBioscience | 16-0731-82 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
CD8a | eBioscience | 48-0081-82 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Cell culture flask (T175 fask, 175 cm2, 550 mL) | Greiner Bio One | 658175 | |
Centrifuge tubes, conical bottom tubes 25 mm x 89 mm | Beckman Coulter | 358126 | |
Centrifuges | Beckman Coulter | Ultracentrifuge and TC centrifuge | |
Collagenase type IV | Sigma-Aldrich | C5138 | |
Conical centrifuge tubes (15 mL and 50 mL) | Greiner Bio One | 11512303 & 11849650 | |
Cryotubes | Greiner Bio One | 123277 | or cryotubes |
DMEM medium (1x) + 4.5g/L D-glucose, 400 µM L-glutamine | Thermo Fisher Scientific | 41965-062 | |
Dnase I | Sigma-Aldrich | 11284932001 | |
Effectene transfection reagent | Qiagen | 301425 | |
F4/80 | Biolegend | 123123 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
F4/80 | Biolegend | 123133 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
F4/80 | Biolegend | 123147 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
FceR1 | eBioscience | 48-5898-80 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Fetal calf serum (FCS) | Thermo Fisher Scientific | 10270-106 | heat inactivated for 30 min at 56 °C and sterile filtered through 0.22 μm filter |
Flow cytometer | Thermo Fisher Scientific | Attune NxT | |
Flow cytometry (FACS) buffer | prepared in house | ||
Fluorescent tissue culture microscope | Thermo Fisher Scientific | EVOS FL | |
Forceps | N/A | N/A | User preference |
Hank's balanced salt solution (HBSS) | Gibco, Life Technologies | 14175-053 | |
HEK293T cell line | grown for at least a week prior transfection. Mycoplasma free | ||
HIV-1 Core antigen | Beckman Coulter | 6604667 | |
Hyaluronidase | Sigma-Aldrich | H3506 | |
Hydrex surgical scrub, chlorhexiding gluconate 4% w/v skin cleanser | Ecolab | 3037170 | |
I-A/I-E | Biolegend | 107625 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
ICAM1 | Becton Dickinson | 554970 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Jurkat T cell line | grown for at least a week prior use. Mycoplasma free | ||
LIVE/DEAD fixable near-IR dead cell stain kit | Thermo Fisher Scientific | L34975 | |
Ly6G | Biolegend | 127615 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Mice | here used C57BL/6 females, aged 8-12 weeks (Charles Rivers), unless specified differently | ||
Microcapillary pipettes (volume range 0.5-1,000 μL) | Fisher Scientific & Starlab | 11963466 & 11943466 & 11973466 & S1111-3700 | |
NK1.1 | Biolegend | 108724 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148-500G | prepared to 2% w/v in PBS |
pCMV-ΔR8.91 packaging plasmid | Zuffrey, R., et al. 1997 | encodes Gag-Pol HIV protein driven by cytomegalovirus promoter. Ampicilin resistance. | |
Penicillin/Streptomycin (100x, 10,000 U/mL) | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
Petri dish | Greiner Bio One | 664160 | |
pHR'SIN-cPPT-SEW plasmid | Rosas, M. et al. 2014 | modified for shRNA and miR expression studies. Encodes EGFP marker downstream SFFV promoter and upstream of the Woodchuck hepatitiv virus enhancer. Ampicilin resistance. | |
pMD2.G plasmid | Naldini, L. et al. 1996 | encodes vesicular stomatis virus g-glycoprotein (VSV-G) envelope. Ampicilin resistance. | |
Rat IgG1, κ isotype control | Becton Dickinson | 550617 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Rat serum | Sigma-Aldrich | R9759-10ML | |
Red blood ACK lysis buffer | prepared in house | ||
RPMI 1640 medium (1x) + 400 uM L-glutamine | Thermo Fisher Scientific | 21875-091 | |
Saponin | Sigma-Aldrich | S4521 | |
SiglecF | BD | 562681 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
Sodium hypochlorite Tablets (bleach, 2,000 ppm) | Guest Medical | H8818 | |
Sterile 24-well cell culture plate | Greiner Bio One | 662160 | |
Sterile Dulbecco's PBS (DPBS) (1x) Mg++ and Ca2+ - free | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | |
Sterile EDTA | Thermo Fisher Scientific | 15575020 | |
Sterile VWR disposable transfer pipets (23.0 mL, 30 cm) | VWR | 612-4515 | |
Sucrose | Thermo Fisher Scientific | 15503022 | |
surgical scissors | N/A | N/A | User preference |
Syringes (50 mL and 1 0mL) | Fisher Scientific | 10084450 & 768160 | |
Tim4 | Biolegend | 130007 | Refer to Table 1 for the dilution and concentration |
U-bottom 96-well cell culture plate | Greiner Bio One | 650180 |
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