Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokol, düşük voltajlı alternatif akımla sürekli stimülasyonla indüklenen sıçan kalplerinde uzun süreli ventriküler fibrilasyon modeli sunmaktadır. Bu model yüksek bir başarı oranına sahiptir, stabil, güvenilir ve tekrarlanabilir, kardiyak fonksiyon üzerinde düşük bir etkiye sahiptir ve sadece hafif miyokard hasarına neden olur.

Özet

Ventriküler fibrilasyon (VF) kalp hastalarında görülme sıklığı yüksek olan ölümcül bir aritmidir, ancak perfüzyon altında VF arresti kalp cerrahisi alanında ihmal edilen bir intraoperatif arrest yöntemidir. Kalp cerrahisindeki son gelişmelerle birlikte, perfüzyon altında uzun süreli VF çalışmalarına olan talep artmıştır. Bununla birlikte, alan kronik ventriküler fibrilasyonun basit, güvenilir ve tekrarlanabilir hayvan modellerinden yoksundur. Bu protokol, epikardın alternatif akım (AC) elektriksel stimülasyonu yoluyla uzun süreli VF'yi indükler. VF'yi indüklemek için, uzun süreli VF'yi indüklemek için düşük veya yüksek voltajla sürekli stimülasyon ve spontan uzun süreli VF'yi indüklemek için düşük veya yüksek voltajla 5 dakika boyunca stimülasyon dahil olmak üzere farklı koşullar kullanılmıştır. Farklı durumların başarı oranlarının yanı sıra miyokard yaralanması ve kardiyak fonksiyonların iyileşme oranları karşılaştırıldı. Sonuçlar, sürekli düşük voltajlı stimülasyonun uzun süreli VF'yi indüklediğini ve 5 dakikalık düşük voltajlı stimülasyonun hafif miyokard hasarı ve yüksek oranda kardiyak fonksiyon iyileşmesi ile spontan uzun süreli VF'yi indüklediğini göstermiştir. Bununla birlikte, düşük voltajlı, sürekli uyarılan uzun vadeli VF modeli daha yüksek bir başarı oranına sahipti. Yüksek voltajlı stimülasyon daha yüksek VF indüksiyon oranı sağladı, ancak düşük defibrilasyon başarı oranı, kardiyak fonksiyonun zayıf iyileşmesi ve ciddi miyokard hasarı gösterdi. Bu sonuçlara dayanarak, yüksek başarı oranı, stabilitesi, güvenilirliği, tekrarlanabilirliği, kardiyak fonksiyon üzerindeki düşük etkisi ve hafif miyokard hasarı nedeniyle sürekli düşük voltajlı epikardiyal AC stimülasyonu önerilmektedir.

Giriş

Kalp cerrahisi genellikle torakotomi yoluyla, aortun bloke edilmesi ve kalbi tutuklamak için kardiyoplejik bir solüsyonla perfüzyon ile gerçekleştirilir. Tekrarlayan kalp cerrahisi ilk ameliyattan daha zor olabilir, komplikasyon ve mortalite oranları daha yüksektir 1,2,3. Ayrıca, konvansiyonel medyan sternotomi yaklaşımı, sternumun arkasındaki köprü damarlarına, yükselen aorta, sağ ventriküle ve diğer önemli yapılara zarar verebilir. Bağ dokusunun ayrılmasına bağlı yaygın kanama, sternal yara enfeksiyonu ve sternotomiye bağlı sternal osteomiyelit olası komplikasyonlardır. Kapsamlı diseksiyon vital kardiyak yapılarda lezyon ve kanama riskini arttırır.

Minimal invaziv kalp cerrahisinin gelişmesiyle birlikte, insizyonlar küçülmüştür ve kalp durması bazen zordur. Ventriküler fibrilasyon (VF)4,5 altında tekrarlanan kalp cerrahisi güvenli, uygulanabilir ve daha iyi miyokard koruması sağlayabilir. Bu nedenle, bu protokol minimal invaziv ekstrakorporeal dolaşım ile cerrahide VF kardiyak arrest yöntemini tanıtmaktadır. Kalp, VF sırasında etkili kasılmayı kaybeder ve bu nedenle, ameliyat sırasında artan aortu dikmeye ve bloke etmeye gerek yoktur, bu da prosedürü basitleştirir. Bununla birlikte, kalp sürekli perfüze edilse bile, uzun süreli VF hala kalbe zararlı olabilir.

Bu yöntem daha yaygın olarak kullanılmaya başlandıkça, VF sırasında kalbin nasıl korunacağı sorusu giderek daha fazla önem kazanmaktadır. Bu, uzun vadeli VF'nin hayvan modellerini kullanarak kapsamlı ve derinlemesine çalışmalar gerektirecektir. Geçmişte, bu alandaki araştırmalar çoğunlukla büyük hayvanlar6,7 kullanmış ve cerrahlar, anestezistler, perfüzyonistler ve diğer araştırmacılar arasında işbirliği gerektirmiştir. Bu çalışmalar çok uzun sürdü, örneklem büyüklükleri genellikle küçüktü ve çalışmalar genellikle kardiyak fonksiyona odaklandı ve mekanik ve moleküler değerlendirmelere daha az odaklandı. Bugüne kadar, hiçbir çalışma uzun vadeli bir VF modeli oluşturmak için ayrıntılı bir protokol bildirmemiştir.

Bu protokol, Langendorff aparatını kullanarak uzun vadeli bir VF sıçan modeli geliştirmek için gereken ayrıntıları sağlar. Protokol basit, ekonomik, tekrarlanabilir ve kararlıdır.

Protokol

Bu araştırmada kullanılan tüm deneysel prosedürler ve protokoller PLA Genel Hastanesi Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından gözden geçirilmiş ve onaylanmıştır.

1. Langendorff aparatının hazırlanması

  1. Krebs-Henseleit (K-H) arabelleğini hazırlayın. K-H tamponunu hazırlamak için damıtılmış suya aşağıdakileri ekleyin: 118,0 mM NaCl, 4,7 mM KCl, 1,2 mM MgSO 4, 1,2 mM NaH 2 PO4, 1,8 mM CaCl 2,25,0 mM NaHCO3, 11,1 mM glikoz ve 0,5 mM EDTA.
  2. Modifiye Langendorff perfüzyon sistemini hazırlayın.
    1. K-H tamponu içeren şişeyi yaklaşık 80 mmHg basınçta %95O2 + %5 CO2 ile sürekli olarak gazlayın. Perfüzyon tüpünün bir ucunu K-H tamponuna yerleştirin, perfüzyon tüpünün ortasını su banyosundan geçirin ve perfüzyon tüpünün diğer ucuna künt bir 20 G iğnesi takın.
    2. İğneyi bir tel standa askıya alın. Su banyosunun sıcaklığını, perfüzyon sisteminin sonundan itibaren K-H tamponunun sıcaklığı 37.0 °C ± 1.0 °C olacak şekilde ayarlayın.

2. Donanım ve yazılımın hazırlanması

  1. Donanım
    1. Tüm analog sinyalleri dijitalleştirmek ve kaydetmek için fizyolojik bir sinyal kaydedici kullanın. Bipolar elektrokardiyogramı (EKG) kaydetmek için iki paslanmaz çelik iğne elektrodu kullanın ve elektriksel stimülasyon için iki paslanmaz çelik iğne elektrodu kullanın.
    2. Dört elektrotun bir ucunu fizyolojik sinyal kaydediciye, diğer ucunu ise cihaza bağlandıktan sonra kalbin konumlandırılacağı alana yakın bir yere bağlayın.
  2. Yazılım
    1. Bipolar EKG ve hemodinamik parametreleri otomatik olarak tanımak, ayarlamak ve kaydetmek için dizüstü bilgisayar yazılımını kullanın. Parametreler arasında sol ventrikül basınç farkı (LVPD), sol ventrikül gelişmiş basıncı (LVDP) ile sol ventrikül diyastolik sonu basıncı (LVEDP) arasındaki fark ve kalp hızı (HR) bulunur.
    2. Elektrik stimülatörü parametrelerini 30 Hz AC'ye ayarlayın, alçak gerilim grubu 2 V ve yüksek voltaj grubu 6 V alır.

3. İzole kalbin hazırlanması

  1. Hayvanı hazırla.
    1. Sprague-Dawley (SD) sıçanlarını intraperitoneal enjeksiyonlardan sonra 0.05 mg/kg buprenorfin ve 1.000 IU/kg heparin sodyum enjeksiyonlarından sonra %2 izofluran ile uyuşturun. Sıçanın ayak parmağı sıkışmasına yanıt vermeyi bıraktığından emin olun.
    2. Sıçanı küçük bir hayvan cerrahi platformuna aktarın, sıçanı sırtüstü pozisyona yerleştirin ve göğsü% 75 etanol ile sterilize edin.
  2. Kalbi tüketin.
    1. Servikal diseksiyon ve trakeal entübasyondan sonra bir ventilatöre bağlı sıçan ile, cildi dişli forsepslerle ksifoid süreçten kaldırın ve doku makası ile deride 3 cm'lik enine bir kesi yapın. Deri ve kaburga kesilerini V şeklinde her iki taraftaki aksillaya uzatın.
    2. Kalbi ve akciğerleri tamamen açığa çıkarmak için sternumu kraniyal olarak doku forsepsleri ile yansıtın.
    3. İki kavisli forseps kullanarak timusu izole edin ve açıkça diseke edin. Timik dokuyu kelepçeleyin ve aortu ve dallarını açığa çıkarmak için her iki taraftan da yanal olarak saptırın.
    4. Aort ve pulmoner arterin künt bir şekilde ayrılmasını sağlamak için kavisli forseps kullanın, bu da kalbi çıkarmak ve çıkarıldıktan sonra kalbi askıya almak için oftalmik makasın daha sonra kullanılmasını kolaylaştırır.
      NOT: Bu yordamda yeni olanlar için, adım 3.2.4 atlanabilir.
    5. Brakiyosefalik gövdeyi çevreleyen dokudan ayırmak için künt diseksiyon kullanın. Daha sonra, kalbin çıkarılmasını kolaylaştırmak için brakiyosefalik gövdeyi kavisli forseps ile kelepçeleyin. Brakiyosefalik gövde ile sol ortak karotis arter arasındaki aortu hızla kesin. Sıçan, kalp çıkarılır çıkarılmaz ölür.
    6. Gereksiz dokuyu kesin ve kalan kanı yıkamak ve pompalamak için kalbi derhal 0-4 ° C'de K-H tamponlu bir Petri kabına daldırın.
      NOT: Aortun brakiyosefalik gövde ile sol ortak karotis arter arasında transeksiyonu önerilir, çünkü gövdenin korunması aortun tanımlanmasına ve kanülasyon derinliğinin tahmin edilmesine izin verir.
  3. Kalbi askıya alın.
    1. Kalbi ikinci bir Petri kabına aktarın. Aortu tanımlayın. Aortu kaldırmak için iki oftalmik forseps kullanın ve künt iğneyi Langendorff aparatına yerleştirin.
    2. Aort derinliğini uygun konuma ayarlayın. Bir asistanın 0 dikiş ipliği ile bir düğüm bağlamasını sağlayın. Ardından, perfüzyon akış regülatörünü açın.
      NOT: İşlem boyunca kalbe giren hava kabarcıklarını önlemeye özen gösterin. Ayrıca, aortun kesilmesinden ilk perfüzyona kadar geçen sürenin 2 dakikayı geçmemesi gerektiğini unutmayın.
    3. Bir basınç dönüştürücüsüne bağlı küçük modifiye edilmiş bir lateks balonu sol atriyuma yerleştirin ve balonu mitral kapaktan sol ventriküle doğru itin. 5-10 mmHg'lik bir diyastolik uç basınç elde etmek için balonu damıtılmış suyla doldurun.
    4. EKG ve elektriksel stimülasyon elektrotlarını kalbe bağlayın. Ardından, 37.0 ° C ± 1.0 ° C'lik bir iç sıcaklığı korumak için kalbi ceketli bir cam odaya yerleştirin.
      NOT: Aşağıdaki hariç tutma ölçütlerini kullanın: kalp atış hızı 25 mL/dk. EKG ve elektriksel stimülasyon elektrodu bağlantı konumları Şekil 1A'da, ceketli cam haznesi ise Şekil 1B'de gösterilmiştir.

4. Kalbin perfüzyonu ve elektriksel olarak uyarılması (Şekil 2)

  1. Denge aşaması (0-30 dk.)
    1. Perfüzyonu başlatın ve kalp kendiliğinden atana kadar yaklaşık 37 ° C'lik bir sıcaklığı koruyun; Ardından, kalbin 20 dakika boyunca dengelenmesine izin verin.
    2. Ceketli cam haznedeki sıcaklığı yaklaşık 30 ° C'de tutmak için su banyosu sıcaklığını ayarlayın.
      NOT: Tüm soğutma işlemi yaklaşık 10 dakika sürmelidir.
  2. Elektriksel stimülasyon aşaması (30-120 dk.)
    1. Sıcaklık istenen seviyeye ulaştıktan sonra, dizüstü bilgisayar yazılımındaki elektriksel stimülasyon anahtarını etkinleştirin.
      NOT: Elektriksel stimülasyonun başlangıcındaki bipolar EKG ve sol ventrikül basıncı (LVP) Şekil 3A'da gösterilmiştir.
    2. Hayvan sürekli uyarılan uzun süreli VF grubunun bir parçasıysa, 90 dakikalık elektriksel stimülasyona izin verin. Hayvan indüklenmiş spontan uzun süreli VF grubundaysa, 5 dakikalık elektriksel stimülasyona izin verin, ardından elektriksel stimülasyonu kapatın ve Şekil 3B'de gösterildiği gibi spontan uzun süreli VF için 90 dakika bekleyin.
      NOT: Spontan uzun süreli VF grubunda, elektriksel stimülasyondan sonraki 90 dakika içinde spontan VF geliştirmeyen kalpler için, elektriksel stimülasyon daha sonra dahil etme kriterlerini karşılamadıkları için kapatılır.
  3. Yeniden ısınma, defibrilasyon ve dayak aşaması (120-180 dk.)
    1. 90 dakikalık VF'den sonra, Şekil 3C'de gösterildiği gibi 0.1 J doğru akım defibrilasyonu vermek için elektrotlar kullanın.
    2. Aynı zamanda, ceketli cam haznedeki sıcaklığın yavaşça yaklaşık 37 ° C'ye yükselmesini sağlamak için su banyosu sıcaklığını düzenleyin. Isınma işlemine yaklaşık 10 dakika devam edin.
    3. Defibrilasyondan sonra, kalbin 60 dakika boyunca atmasına izin verin ve daha sonra yaklaşık 37 ° C'de% 10 KCl ile yavaş perfüzyonla atışı durdurun. Daha fazla analiz için kalbi çıkarın.
      NOT: Defibrilasyondan sonra atmayan kalpler dahil etme kriterlerini karşılamaz. Ek olarak, koroner efüzyonun soğumadan önce (20 dakikada), defibrilasyondan sonra (120 dakikada) ve deneyin sonunda (180 dakikada) toplanması önemlidir.

5. Kreatin kinaz-MB (CK-MB) testinin yapılması ve histolojik analiz

  1. CK-MB testi
    1. Toplanan koroner efüzyon sıvısındaki CK-MB seviyesini belirlemek için otomatik bir biyokimya analizörü ve ticari CK-MB tahlil kiti kullanın8.
  2. Histolojik analiz
    1. Kalbi tamponlu% 10 formaline sabitleyin, kalbi dehidrate edin ve parafine gömün.
    2. Parafine gömülü dokuyu 5 μm kesitlere ayırmak için bir mikrotom kullanın; Ardından, bölümleri cam slaytlara monte edin ve hematoksilin ve EOSIN9 ile lekeleyin.

Sonuçlar

Deneylerde toplam 57 sıçan kullanıldı ve bunların 30'u dahil etme kriterlerini karşıladı. Dahil edilen hayvanlar, her grupta altı hayvan olmak üzere beş gruba ayrıldı: kontrol grubu (Grup C), düşük voltajlı sürekli uyarılmış uzun süreli VF grubu (Grup LC), yüksek voltajlı sürekli uyarılmış uzun süreli VF grubu (Grup HC), düşük voltaja bağlı spontan uzun süreli VF grubu (Grup LI) ve yüksek voltaja bağlı spontan uzun vadeli VF grubu (Grup HI). Her grup için deneysel süreç

Tartışmalar

Bu protokol, daha önce bildirilmemiş olan izole sıçan kalplerinde uzun süreli VF'nin bir hayvan modelini oluşturur. Ayrıca bu çalışmada farklı elektriksel stimülasyon koşulları karşılaştırılmıştır. Bu çalışma, kalp cerrahisi sırasında ventriküler fibrilasyon durması ile ilgili çalışmalar için bir model sunmaktadır.

Modelin başarı oranı, personel, zaman ve ekonomik maliyetlerle ilgili çok önemli bir göstergedir. VF modellerinde başarı oranı, VF'nin kal...

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

Bu çalışma Kardiyovasküler Cerrahi, İlk Tıp Merkezi, Çin PLA Genel Hastanesi ve Laboratuvar Hayvanları Merkezi, Çin PLA Genel Hastanesi'nin desteğiyle gerçekleştirilmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
0 Non-absorbable sutureEthicon, Inc.Preparation of the isolated heart
95% O2 + 5% CO2Beijing BeiYang United Gas Co., Ltd. K-H buffer
AcqKnowledge softwareBIOPAC Systems Inc.Version 4.2.1Software
Automatic biochemistry analyzerRayto Life and Analytical Sciences Co., Ltd.Chemray 800CK-MB assay
BIOPAC research systemsBIOPAC Systems Inc.MP150Hardware
Blunt needle (20 G, TWLB)Tianjin Hanaco MEDICAL Co., Ltd.H-113AP-SModified Langendorff perfusion system
Calcium chlorideSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd10005861K-H buffer
CK-MB assay kits Changchun Huili Biotech Co., Ltd.C060CK-MB assay
Curved forcepShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd.Preparation of the isolated heart
EDTASinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd10009717K-H buffer
Electrical stimulatorBIOPAC Systems Inc.STEMISOCHardware
FilterTianjin Hanaco MEDICAL Co., Ltd.H-113AP-S
GlucoseSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd63005518K-H buffer
Heparin sodiumTianjin Biochem Pharmaceutical Co., Ltd.H120200505Preparation of the isolated heart
IsofluraneRWD Life Science Co.,LTD21082201Preparation of the isolated heart
Magnesium sulfateSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd20025118K-H buffer
Needle electrodesBIOPAC Systems Inc.EL452Hardware
Ophthalmic clampShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd.Preparation of the isolated heart
Ophthalmic forcepsShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd.Preparation of the isolated heart
Ophthalmic scissorsShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd.Preparation of the isolated heart
Perfusion tubeTianjin Hanaco MEDICAL Co., Ltd.H-113AP-SModified Langendorff perfusion system
Potassium chlorideSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd10016318K-H buffer
Sodium bicarbonateSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd10018960K-H buffer
Sodium chlorideSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd10019318K-H buffer
Sodium dihydrogen phosphate dihydrateSinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd20040718K-H buffer
Sprague-Dawley (SD) ratsSPF (Beijing) biotechnology Co., Ltd.Male, 300-350gPreparation of the isolated heart
ThermometerJiangsu Jingchuang Electronics Co., Ltd.GSP-6Modified Langendorff perfusion system
TissueforcepsShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd.Preparation of the isolated heart
Tissue scissorsShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd.Preparation of the isolated heart
Toothed forcepsShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd.Preparation of the isolated heart
VentilatorChengdu Instrument FactoryDKX-150Preparation of the isolated heart
Water bath1Ningbo Scientz Biotechnology Co.,Ltd.SC-15Modified Langendorff perfusion system
Water bath2Shanghai Yiheng Technology Instrument Co., Ltd.DK-8DModified Langendorff perfusion system

Referanslar

  1. Kilic, A., et al. Clinical outcomes of mitral valve reoperations in the United States: An analysis of the society of thoracic surgeons national database. The Annals of Thoracic Surgery. 107 (3), 754-759 (2019).
  2. Akins, C. W., et al. Risk of reoperative valve replacement for failed mitral and aortic bioprostheses. The Annals of Thoracic Surgery. 65 (6), 1551-1542 (1998).
  3. Jamieson, W. R., et al. Reoperation for bioprosthetic mitral structural failure: risk assessment. Circulation. 108 (Suppl 1), 98 (2003).
  4. Seeburger, J., et al. Minimally invasive mitral valve surgery after previous sternotomy: Experience in 181 patients. The Annals of Thoracic Surgery. 87 (3), 709-714 (2009).
  5. Arcidi, J. M., et al. Fifteen-year experience with minimally invasive approach for reoperations involving the mitral valve. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 143 (5), 1062-1068 (2012).
  6. Cox, J. L., et al. The safety of induced ventricular fibrillation during cardiopulmonary bypass in nonhypertrophied hearts. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 74 (3), 423-432 (1977).
  7. Schraut, W., Lamberti, J. J., Kampman, K., Glagov, S. Ventricular fibrillation during cardiopulmonary bypass: Long-term effects on myocardial morphology and function. The Annals of Thoracic Surgery. 27 (3), 230-234 (1979).
  8. Li, L., et al. Pravastatin attenuates cardiac dysfunction induced by lysophosphatidylcholine in isolated rat hearts. European Journal of Pharmacology. 640 (1-3), 139-142 (2010).
  9. Lang, S., et al. CXCL10/IP-10 neutralization can ameliorate lipopolysaccharide-induced acute respiratory distress syndrome in rats. PLoS One. 12 (1), e0169100 (2017).
  10. Lubbe, W. F., Bricknell, O. L., Marzagao, C. Ventricular fibrillation threshold and vulnerable period in the isolated perfused rat heart. Cardiovascular Research. 9 (5), 613-620 (1975).
  11. Hottentrott, C. E., Towers, B., Kurkji, H. J., Maloney, J. V., Buckberg, G. The hazard of ventricular fibrillation in hypertrophied ventricles during cardiopulmonary bypass. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 66 (5), 742-753 (1973).
  12. Hottenrott, C., Maloney, J. V., Buckberg, G. Studies of the effects of ventricular fibrillation on the adequacy of regional myocardial flow. I. Electrical vs. spontaneous fibrillation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 68 (4), 615-625 (1974).
  13. Buckberg, G. D., et al. Studies of the effects of hypothermia on regional myocardial blood flow and metabolism during cardiopulmonary bypass. I. The adequately perfused beating, fibrillating, and arrested heart. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 73 (1), 87-94 (1977).
  14. Gazmuri, R. J., Berkowitz, M., Cajigas, H. Myocardial effects of ventricular fibrillation in the isolated rat heart. Critical Care Medicine. 27 (8), 1542-1550 (1999).
  15. Clasen, L., et al. A modified approach for programmed electrical stimulation in mice: Inducibility of ventricular arrhythmias. PLoS One. 13 (8), e0201910 (2018).
  16. Diaz-Maue, L., et al. Advanced cardiac rhythm management by applying optogenetic multi-site photostimulation in murine hearts. Journal of Visualized Experiments. (174), e62335 (2021).
  17. Jungen, C., et al. Impact of intracardiac neurons on cardiac electrophysiology and arrhythmogenesis in an ex vivo Langendorff system. Journal of Visualized Experiments. 135, e57617 (2018).
  18. Koretsune, Y., Marban, E. Cell calcium in the pathophysiology of ventricular fibrillation and in the pathogenesis of postarrhythmic contractile dysfunction. Circulation. 80 (2), 369-379 (1989).
  19. Brazier, J. R., Cooper, N., McConnell, D. H., Buckberg, G. D. Studies of the effects of hypothermia on regional myocardial blood flow and metabolism during cardiopulmonary bypass. III. Effects of temperature, time, and perfusion pressure in fibrillating hearts. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 73 (1), 102-109 (1977).
  20. von Planta, I., et al. Cardiopulmonary resuscitation in the rat. Journal of Applied Physiology. 65 (6), 2641-2647 (1988).
  21. Luo, X., et al. Ageing increases cardiac electrical remodelling in rats and mice via NOX4/ROS/CaMKII-mediated calcium signalling. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022, 8538296 (2022).
  22. Hohnloser, S., Weirich, J., Antoni, H. Influence of direct current on the electrical activity of the heart and on its susceptibility to ventricular fibrillation. Basic Research in Cardiology. 77 (3), 237-249 (1982).
  23. Xie, J., et al. High-energy defibrillation increases the severity of postresuscitation myocardial dysfunction. Circulation. 96 (2), 683-688 (1997).
  24. Manoach, M., Netz, H., Erez, M., Weinstock, M. Ventricular self-defibrillation in mammals: Age and drug dependence. Age and Ageing. 9 (2), 112-116 (1980).
  25. Filippi, S., Gizzi, A., Cherubini, C., Luther, S., Fenton, F. H. Mechanistic insights into hypothermic ventricular fibrillation: The role of temperature and tissue size. Europace. 16 (3), 424-434 (2014).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

T pSay 192Ventrik ler fibrilasyonelektriksel stim lasyonizole kalpkardiyak fonksiyonmiyokard hasarhayvan modeli

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır