Araştırma NSERC tarafından desteklenmektedir.

1. Sosyalleştirme <ol><li> Mevcut sosyal saflarına söndürmek için, her kerevit 7 için ev sahipliği - filtrelenmiş olarak hizmet veren bir gazlı su ve küçük bir plastik saksı ile dolu 14 gün, ayrı bir plastik kap (30 cm uzunluğunda x 17.5 cm genişlik x 13 cm derinliğinde) sığınırlar. Eğer şeffaf kaplar kullanılır, bölücü (örneğin kağıt havlu) kerevit görsel izole sağlamak için taşıyıcıları arasında yer almaktadır. </li><li> 14 gün - &quot;İzole&quot; grubunda Kerevit 3 ek bir izolasyon kalır. Su değişti ve kerevit haftada 3 kez beslenir. </li><li> Bir sosyal rütbe kurmak için, kerevit, ilk izolasyon sonrasında aynı cinsiyetten çiftleri yerleştirilir. Kerevit tartılır ve vücut uzunluğu ölçülür (telzon için kürsüden);% 10 ağırlık ve uzunluk içinde büyüklük-en uyumlu çiftleri. Beyaz akrilik boya, kerevit bireyleri tespit etmek amacıyla her karapaksla uygulanır. (Genellikle bir nokta, bir üye ve diğer bir çizgi uygulanır.) </li><li> 30 dakika dinlenme döneminden sonra, her kerevit çifti, süzülmüş, gazlı su (oda sıcaklığı) ile yarı yolda dolu, temiz, beyaz plastik kap (48 cm uzunluk x 25 cm genişlik x 13 cm derinlik), etkileşim izin verilir. Bu karşılaşma da VHS kaset üzerine bir video kaset kaydedici bağlı bir kamera ile kaydedilir ya da bir web kamerası olan bir bilgisayar üzerine kaydedilir. Bu etkileşim hakimiyeti saflarına geliştirmenize olanak tanır. </li><li> 14 gün ilk etkileşim, her kerevit çifti birlikte ek bir 3 için daha büyük bir plastik kap (58 cm uzunluğunda x 30 cm genişlik x 35 cm derinliğinde) ev sahipliği yapmaktadır. Bu kapsayıcı bir filtrasyon sistemi dolaşan su alır. (Yaklaşık 10 cm uzunluğunda) tek bir PVC boru barınak sağlanmaktadır. </li></ol> 2. İnşaat Test Akvaryum ve Kontroller Metot I <ol><li> Yansıtıcı bir çevre, bir cam ya da pleksiglas akvaryum (52 ​​cm uzunluk x 25 cm genişlik x 30 cm yüksek) (Şekil 1) yanıtları incelemek için. </li><li> Bir ayna (x 20 cm yüksekliğinde 25 cm uzun) yerleştirilir ve akvaryumun bir ucunda ya da tutkal ya da montaj balmumu ile güvence altına alınmıştır. Sonunda aynaya bitişik iki ayna (x 20 cm yüksekliğinde 26 cm uzun), iki tarafta yerleştirilir ve tutkal ya da balmumu ile teminat altına alınmıştır. </li><li> Kalan duvarları mat kaplamalı cam filmi kaplıdır. Bu film yansıması kaldırır, ancak aydınlatma koşulları engel değildir. Film hafif bir zımparalama film tamamen yansıtıcı olmayan olduğundan emin olmak için gerekli olabilir. </li></ol> Yöntem II <ol start="4"><li> (Şekil 2) iki uç odaları canlı kerevit (&quot;kaynak kerevit&quot;), Pleksiglas akvaryum tarafından sağlanan görsel uyaranlara verilen yanıtlar incelemek için kullanılır. Akvaryum, büyük bir orta bölmesi (48 cm uzunluk x 26 cm genişlik x 26 cm, yüksek) ve eşit büyüklükte iki küçük ucunu bölmeleri (x 26 cm genişliğinde 12 cm uzunluğunda ve 26 cm yüksekliğinde) içerir. Sonunda bölmeleri bölmeleri arasında geçen su ve kimyasal ipuçları önlemek için kapalı şeffaf pleksiglas, orta bölme ayrılır. </li><li> Tüm akvaryum dış çevre bırakarak, her iki ucundaki iki engelleri şeffaf olmayan bir yansıtıcı mat plastik kaplanmıştır. </li><li> Kontrol olarak, kil modelleme yapılmış bir küp (örneğin Sculptee) asal bir nesneden görsel girdi sağlamak için kullanılır. Kaynak kerevit yaklaşık hacmi küp (3,5 cm x 3,0 cm x 3,3 cm) ve benzer bir rengi kırmızıya boyanır. </li></ol> 3. Görsel Eğitim Metot I <ol><li> Egemenliği durumunu belirlemek için mücadele takip eden 14 gün Kerevit ayna / mat tankeri 3 videoya. </li><li> Kerevit gazlı, filtrelenmiş su içeren bir Tupperware konteyner ve barınma için kullanılan plastik bir saksı içine yerleştirilir, her birinde. Kerevit test odasına alınır ve test etmeden önce gelmesini 30 dakika verilmiştir. </li><li> Aynalar ve yansıtıcı olmayan bir plastik yarım astarlı, yaklaşık 20 cm derinliğe kadar gazlı, filtre edilmiş su ile dolu olan yarım astarlı testi akvaryum,. </li><li> Bir dijital fotoğraf makinesi, VHS video kaset kaydedici, ses / video kabloları üzerinden bağlanan ve tüm akvaryum görüntülemek için yeterince yüksek bir akvaryum üstüne yerleştirilir. Videolar VHS kaset üzerine kaydedilir. Alternatif olarak, bir bilgisayara bağlı bir web kamerası ve bir film yapma programı ile video kayıt ve DVD kaydedilebilir. </li><li> Çiftinin Bir kerevit saksı kullanarak akvaryum merkezi haline hafifçe yerleştirilir ve 20 dakika süreyle faaliyet kaydedilir. Hiç kimse gereksiz görsel ve işitsel girdiler paraziti azaltmak için, kayıt sırasında oda mevcut. Kayıt ortamı sakin olmasını sağlamak için her türlü çabayı yapılır. </li><li> Aşağıdaki test, kerevit kaldırılır ve tank boşaltılır, yıkanır ve su ile doldurulabilir. </li><li> Deneysel koşullar dengelemek için, akvaryum yere döndü.Odanın karşı tarafında aynalar. Bu kerevit akvaryumun bir tarafını tercih etmeye neden olabilecek bilinmeyen faktörler telafi etmek için yardımcı olur. </li><li> Çiftinin ikinci üyesi, daha sonra ilk olarak aynı şekilde test edilir. </li></ol> Yöntem II <ol start="9"><li> Metot I açıklandığı gibi, kerevit test odasına getirilen ve aynı kayıt cihazları kullanarak videoya. </li><li> Tüm odaları (orta test odası ve iki uç odası) yaklaşık 20 cm yüksekliğe kadar gazlı, filtre edilmiş su ile doldurulur. </li><li> Kerevit, kerevit test olarak yaklaşık aynı boyutta bir ucunu odasına yerleştirilir ve kontrol küp diğer yerleştirilir. </li><li> Saksı barınak kullanarak, test edilen kerevit akvaryumun ortasına doğru yavaşça yerleştirilir ve 20 dakika süreyle videoya. </li><li> Aşağıdaki test, akvaryum, boşaltılmış yıkanır ve su ile doldurulabilir. </li><li> Çiftinin ikinci üyesi test etmeden önce, kaynak kerevit ve kontrol küp denge koşullarına karşı, diğer ucunu odalarına taşınır. </li></ol> 4. Görsel Uyaranlar Responses Analizi Metot I <ol><li> Bu yüzden deneyci, kerevit, sosyal statü, ayna / mat akvaryum davranış kör olduğunu, davranış çalışmalarda mücadele analiz etmeden önce analiz edilir. </li><li> Kerevit akvaryumun her tarafında geçirdiği zamanın miktarı kaydedilir. Kerevit sonraki chelipeds coxae tankın orta hat (Şekil 3) geçerken bir taraftan geçmek için kabul edilir. </li><li> (Açıklamaları için bakınız Tablo 1), viraj dönüm, donma ve ters yürüyüş geçiş davranışların sıklığı da kaydedilmektedir. </li><li> Davranışları, her sosyal grup için eşleştirilmiş t-Testi ile yansıtıcı olmayan bir tarafında sergilenen davranışlar karşılaştırıldığında tank yansıtıcı tarafında sergilenmektedir. </li></ol> Yöntem II <ol start="5"><li> Yöntem olarak, kerevit davranış, video kasetleri mücadele çalışmalarda analiz etmeden önce analiz edilir. </li><li> Kerevit akvaryum her iki tarafında üzerinde harcadığı zaman miktarı Yöntem I. açıklandığı gibi kaydedilir </li><li> Viraj alma sıklığı, bakan, dönüm, geçiş kadar yetiştirme sonu ve yürüme (Tablo 1) ters kaydedilir. </li><li> Kaynak kerevit tarafında yapılan davranışlar, her sosyal grup için eşleştirilmiş t-testi kullanılarak kontrol küp tarafında yapılan davranışları karşılaştırılmıştır. </li></ol> 5. Kavgalar, analizi <ol><li> Eşleştirme ilk 30 dakika boyunca mücadele davranış kayıtları incelendi ve puanlanır. Her 30 dakika kayıt oturumu kerevit onların pençeleri ve / veya anten kullanarak iletişim kurmak birkaç karşılaştığında içerir. Bu karşılaşmalar içinde, chelae genellikle, itme, vurma veya rakip açgözlü için kullanılır ve antenler bazen rakip çırpmak için kullanılır. Bir kerevit rakibi yere çevirmek ve onu tutmaya çalışmayın. Her karşılaşma, ters yürüyerek veya ulaşmak için kuyruk saygısız bir kerevit inziva &quot;yüzme kaçmak.&quot; Sona erer </li><li> Agonistik karşılaştığında sayısı kaydedilir ve kerevit kimliğini (toraks işaretleme boya tarafından belirlenen), her karşılaşma inziva de kaydedilir. Karşılaştığında her 30 dakika oturumda çoğunluk kaybeder kerevit kaybeden sayılır ve diğer kerevit kazanmış sayılır. </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar 30 dakikalık mücadele döneminde, tüm çiftleri agonistik davranışlar sergilerler. Bu tür davranışlar, vurma anten, lunging, itme, kavrama, çarpıcı chelae, ve her yerde olduğu gibi bildirilen saygısız rakibi, (örneğin, Mayıs &amp; Mercier 2006, 2007) sayılabilir. Her çift tutarlı bir inziva ve daha fazla temas önler Sonunda bir kerevit. Geri çekilen kerevit kaybeden sayılır ve bağımlı olarak sıralanır; kazanan kerevit baskın olarak sıralanır. Sıra tankı kerevit davranış, barınak için sadece bir plastik tüp içeren gözlemleyerek eşleştirilmiş konut dönemi boyunca izlenebilir. Baskın kerevit değişmez barınak kaplar ve alt kerevit değildir. Alt kerevit genellikle chelae yürür önünde birbirine yakın ve uzattı ve baskın kerevit genellikle yükseltilmiş chelae ile yürür ve daha ayrı (Guiasu ve Dunham, 1998). Pis su tankı, yeni gıda eklendiğinde, baskın kerevit genellikle ilk gıda alır. P. ile yapılan çalışmalarda clarkii (örneğin, Mayıs &amp; Mercier 2006, 2007), sürekli eşleştirme üç gün sonra, genellikle herhangi bir rütbe ters vardır . Eşleştirme süresi tamamlanmadan önce nadir durumlarda, çiftin bir üyesi ölür. Bu eşleştirme süresi ise oluşma olasılığı daha yüksektir.uzun (örneğin 14 gün) ve kerevit boyutu veya ağırlığı ile çok yakından eşleştirilir. Böylece ağırlığı yaklaşık% 10 fark izin vererek, ölüm önlenebilir. Çiftinin bir üyesi ölürse, diğer üye veri çalışmaya dahil değildir. Hakim ve alt kerevit genellikle yansıtıcı çevreye farklı tepkiler göstermektedir. Hakim kerevit yansıtıcı tarafında sürekli olarak daha fazla zaman harcamak, ancak alt ve izole kerevit (Mayıs &amp; Mercier, 2006, 2007). Hakim kerevit de viraj ve yansıtıcı olmayan bir tarafında daha yansıtıcı tarafta daha sık dönüm sergi, ancak izolatları ve astları genellikle yok. Ancak, egemen ve tabi kerevit arasındaki bu tür farklılıkları, hemen kurulur ancak 3-14 gün eşleştirme döneminde (Mayıs &amp; Mercier, 2007) içinde geliştirmek değildir. Ön kanıt egemen ve tabi bu kerevit eşleştirme 3 gün sonra canlı kerevit (kaynak kerevit) (Mayıs ve ark, 2008) tarafından sağlanan görsel ipuçları farklı tepki gösterir. Hakim kerevit o tarafta daha uzun süre kaynak kerevit ve köşe akvaryum tarafta daha fazla zaman harcamak, ama alt kerevit, iki taraf arasındaki bu farklılık göstermezler. <table border="1"><tbody><tr><td> Davranış </td><td> Tanım </td></tr><tr><td> viraj </td><td> akvaryumun köşesine bakan ve farklı duvarları (Şekil 4) dokunmaktan hem pençeleri ipuçları ile en az 5 s için orada kalan </td></tr><tr><td> bakan sonunda </td><td> sonunda duvara dokunarak, en az bir pençe ucu ile en az 5 s (Şekil 5) için tankın bir ucunda duvara karşı karşıya </td></tr><tr><td> dönüş </td><td> saat yönünün tersine veya tam tersi yönünde yürüyüş yolu yönü (Şekil 6) değiştirerek </td></tr><tr><td> geçit </td><td> akvaryumun çevre bırakarak başka bir duvara en az bir vücut uzunluğu yürüme (Şekil 7) </td></tr><tr><td> yürüme ters </td><td> geriye doğru en az bir vücut uzunluğu için yürüyüş </td></tr><tr><td> donma </td><td> en az 5 s için uzantıları ve antenler de dahil olmak üzere tüm görünür hareketi, ani bırakma </td></tr><tr><td> şaha kalkma </td><td> dördüncü ve beşinci ayakları üzerinde duran bir duvara karşı toraks ventral kaldırma ve duvara en az bir yürüme bacağı yerleştirerek </td></tr></tbody></table> Tablo 1, P tarafından sergilenen. Davranışlar test deposu santral kompartman clarkii. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1 akvaryum akvaryum Yöntemi I. Yarısında kullanılan şematik yansıtıcı olmayan plastik ile kaplanmış, diğer yarısı ise, ayna ile kaplı. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Şekil 2. Yöntem II kullanılan akvaryum şematik. Bu tank sağlam bir pleksiglas bariyer tarafından bölünmüş bir test kerevit yerleştirilen merkezi alanı, ve iki uç odaları, oluşur. Canlı kerevit bir ucunu odasına yerleştirilen ve bir küp, bir kontrol gibi diğer ucunu odasına yerleştirilir. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig3.jpg" alt="Şekil 3" /> Şekil 3, dikey bir noktalı çizgi olarak tasvir orta hat ile test akvaryum şematik . Chelipeds coxae orta hatta geçerken kerevit bir tarafı diğerine geçer. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig4.jpg" alt="Şekil 4" /> Şekil 4 viraj ise kerevit konumunu gösteren diyagram. Hem chelae ipuçları farklı duvarlara dokunmadan olduğunu unutmayın. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig5.jpg" alt="Şekil 5" /> Şekil 5 Diyagramı sonunda duvara dönük kerevit konumunu gösteren. Hem chelae aynı duvara dokunarak olduğunu unutmayın. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig6.jpg" alt="Şekil 6" /> Şekil 6 dönüm gösteren şematik diyagram. Hareketin yönünü Reversing bir dönüş oluşturur. Açar (örneğin yönüne yön 1 2 ve 4 yönde 5 yön) tarafında bir köşesinde (gösterilmemiştir) oluşabilir. Viraj ve aynı yönde bırakarak girme (örneğin 3 yönde yön 1) bir dönüş değil. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig7.jpg" alt="Şekil 7" /> Figüre 7 geçiş davranışı gösteren şematik. Geçişi, kerevit, en az bir en yakın duvar (ok) vücut uzunluğu mesafede, başka bir duvara bir duvar ve seyahatler ayrıldığında oluşur. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig8.jpg" alt="Şekil 8" /> Şekil 8 Fotoğraf davranışı kadar yetiştirme tasvir. Kerevit, son iki ayakları üzerinde duran ve en az bir yürüme bacağı ile temas eden, bir duvara karşı vücudun kaldırır.

<ol>
	<li>Bruski, C. A., Dunham, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+importance+of+vision+in+agonistic+communication+of+the+crayfish+Orconectes+rusticus.+I:+an+analysis+of+bout+dynamics.">The importance of vision in agonistic communication of the crayfish Orconectes rusticus. I: an analysis of bout dynamics.</a> Behav. 103, 83-107 (1987).</li><li>Delgado-Morales, G., Hernandez-Falcon, J., Ramon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Agnostic+behavior+in+crayfish:the+importance+of+sensory+inputs.">Agnostic behavior in crayfish:the importance of sensory inputs.</a> Crustaceana. 77 (1), 1-24 (2004).</li><li>Guiasu, R. C., Dunham, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inter-form+agonistic+contests+in+male+crayfishes,+Cambarus+robustus+(Decapoda,+Cambaridae).">Inter-form agonistic contests in male crayfishes, Cambarus robustus (Decapoda, Cambaridae).</a> Invert. Biol.. 117 (2), 144-154 (1998).</li><li>May, H. Y., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+crayfish+to+a+reflective+environment+depend+on+dominance+status.">Responses of crayfish to a reflective environment depend on dominance status.</a> Can. J. Zool. 84 (8), 1104-1111 (2006).</li><li>May, H. Y., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Joffre+Duration+of+socialization+influences+responses+to+a+mirror:+responses+of+dominant+and+subordinate+crayfish+diverge+with+time+of+pairing.">Joffre Duration of socialization influences responses to a mirror: responses of dominant and subordinate crayfish diverge with time of pairing.</a> J. Exp. Biol. 210, 4428-4436 (2007).</li><li>May, H. Y., Luebbert, J., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+Crayfish+to+a+Visual+Stimulus+Provided+by+a+Conspecific.">Responses of Crayfish to a Visual Stimulus Provided by a Conspecific.</a> , (2008).</li></ol>

Baskın kerevit yansıtıcı bir ortamda daha fazla zaman harcamak gözlem yansıyan görüntü conspecific olarak tanımak ve bu görsel ipuçları yaklaşım davranışı ortaya çıkarmak için yeterli olduğunu göstermektedir. Yansıyan bir görüntü yerine bir canlı kerevit kullanarak benzer sonuçlar böyle bir yorumu destekler. Alt ve izole kerevit yansıtıcı bir ortamda böyle bir tercih, ne de alt kerevit bir küp üzerinde canlı kerevit tercih görünüyor. Böylece, görsel ipuçları verilen yanıtlar ...

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Single chamber test tank</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Brock University Machine Shop</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>End-chamber test tank</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Brock University Machine Shop</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Isolation container</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Rubbermaid</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>30 cm x 17.5 cm x 13 cm holes in lid to allow air and light to pass through when lid is on</td>
</tr>
<tr>
<td>Fighting chamber</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>48 cm x 25 cm x 13 cm</td>
</tr>
<tr>
<td>Social housing chamber</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>58 cm x 30 cm x 35 cm</td>
</tr>
<tr>
<td>small plastic flower pot</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to serve as shelter</td>
</tr>
<tr>
<td>Coolpix 4500 camera</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Nikon</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>T120 video cassette recorder</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>RCA</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Computer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Windows Movie Maker or other video acquiring software</td>
</tr>
<tr>
<td>webcam</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Logitech</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>modelling clay</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sculptee</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to make control cube</td>
</tr>
<tr>
<td>red latex paint</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>FolkArt</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to make control cube</td>
</tr>
<tr>
<td>waterbase varnish</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>FolkArt</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to make control cube</td>
</tr>		</tbody>
		</table>
		</div>

recording behavioral responses to reflection in crayfish

Sosyal davranış, duyusal, görsel, mekanik ve koku alma sistemler giriş bağlıdır. Bir önemli konu, her davranış rehberlik duyusal modalite göreli rolleri ile ilgilidir. Mekanik ve kimyasal-duyusal uyaranlar görsel uyaranlara izole ederek görsel girdilerin rolü incelenmiştir. (Bruski ve Dunham, 1987: Delgado-Morales ve ark, 2004) bazı çalışmalarda görsel girdiler gözlerimizi bağlayarak veya düşük ışık yoğunluğu ile kaldırıldı, ve kalan duyu modaliteleri etkisi saptanamamıştır. Alternatif bir yaklaşım, herhangi bir uygun, mekanik ve kimyasal-duyusal ipuçlarının olmaması halinde görsel girişlerin etkilerini incelemek. Bu yaklaşım, görsel girdilerin özel rolünü tespit etmek hedefliyor. Biz, kimyasal ve mekanik ipuçları vermeden kerevit görsel uyaranlara sağlamak için iki yöntem kullanılır. Bir yöntem, kerevit duvarların yarısı yansıtıcı bir ortam sağlamak için aynalarla kaplı bir akvaryumda videoya, diğer yarısı yansıtıcı olmayan (mat kaplamalı) plastik kaplıdır. Bu kerevit yansıtıcı ve yansıtıcı olmayan ortamlarda arasındaki bir seçenek sunuyor. Tankın yarısı boyunca hareket ederken yansıtıcı ortamı kerevit yansıyan görüntüler şeklinde görsel ipuçları sağlar; bu görsel ipuçları tankın yansıtıcı olmayan yarım eksik. Alternatif bir yöntem, küçük bir odası olmayan bir hareket görsel girdi sağlayan görsel ipuçları ve ters küçük odasında inert bir nesne sağlayan bir kerevit, video kaset, her iki ucunda küçük bir odası tarafından ayrı bir akvaryum kerevit davranış. olmayan kerevit kaynağıdır. Bizim yayınlanan sonuçları yansıtıcı ortam kerevit karşılıklar sosyalleşme ve egemenlik sıralaması bağlı olduğunu göstermektedir. Toplumsallaşmış kerevit yansıtıcı bir ortamda daha fazla zaman harcadı ve yansıtıcı olmayan bir ortamda çok daha sık orada bazı davranışlar sergiledi; izole kerevit gibi farklılıklar göstermektedir. Aynı cinsiyetten çiftleri yerleştirildiler Kerevit baskın ya da alt ya da bir sosyal rütbe geliştirdi. Yansıması yanıtlar, egemen ve tabi kerevit arasındaki farklılık (Mayıs &amp; Mercier, 2006, 2007 Mayıs &amp; Mercier). Hakim kerevit, yansıtıcı tarafta daha fazla zaman harcadı, daha sık yansıtıcı köşeler girdi ve yansıtıcı olmayan tarafa göre yansıtıcı köşeler daha fazla zaman harcadı. Alt kerevit yansıtıcı olmayan tarafta daha yansıtıcı tarafta daha sık ters yürüdü. Ön veriler, bitişik küçük bir odasında bir kerevit (Mayıs ve ark, 2008) tarafından sağlanan görsel ipuçları benzer etkiler öneririz .

Watch this Scientific Journal Video about Recording Behavioral Responses to Reflection in Crayfish at JoVE.com

Recording Behavioral Responses to Reflection in Crayfish

Biz, dokunsal ve kimyasal ipuçlarının yokluğunda davranışları üzerindeki etkileri görsel ipuçları eğitim için iki yöntem geliştirdik. Bir yöntem bir akvaryum yansıtıcı duvarlar kerevit videoya yanıtları içerir; diğer şeffaf bir bölme arkasında bir canlı kerevit tarafından sağlanan görsel girdiler etkilerini inceler.

Kerevit Yansıma Davranış Yanıtları kaydedilmesi

Social behavior depends on sensory input from the visual, mechanical and olfactory systems.  One important issue concerns the relative roles of each ...

recording-behavioral-responses-to-reflection-in-crayfish

Research

JoVE Journal

Neuroscience

10.6K Görüntüleme.  Brock University. Biz, dokunsal ve kimyasal ipuçlarının yokluğunda davranışları üzerindeki etkileri görsel ipuçları eğitim için iki yöntem geliştirdik. Bir yöntem bir akvaryum yansıtıcı duvarlar kerevit videoya yanıtları içerir; diğer şeffaf bir bölme arkasında bir canlı kerevit tarafından sağlanan görsel girdiler etkilerini inceler.

Video: Recording Behavioral Responses to Reflection in Crayfish

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that influence a cell's membrane potential and which we address in these experiments are: (1) Ion concentration of K+ on the outside of the membrane, and (2) the permeability of the membrane to specific ions. The crayfish abdominal extensor muscles are in groupings with some being tonic (slow) and others phasic (fast) in their biochemical and physiological phenotypes, as well as in their structure; the motor neurons that innervate these muscles are correspondingly different in functional characteristics. We use these muscles as well as the superficial, tonic abdominal flexor muscle to demonstrate properties in synaptic transmission. In addition, we introduce a sensory-CNS-motor neuron-muscle circuit to demonstrate the effect of cuticular sensory stimulation as well as the influence of neuromodulators on certain aspects of the circuit. With the techniques obtained in this exercise, one can begin to answer many questions remaining in other experimental preparations as well as in physiological applications related to medicine and health. We have demonstrated the usefulness of model invertebrate preparations to address fundamental questions pertinent to all animals.

The experiments demonstrate an easy approach for students to gain experience in examining muscle structure, synaptic responses, the effects of ion gradients and permeability on membrane potentials. Also, a sensory-CNS-motor-muscle circuit is presented to show a means to test effects of compounds on a neuronal circuit.

Membran Potansiyelleri, Synaptic Yanıtları, Sinir Devresi, Nöromodülasyon ve Kerevit kullanarak kas Histoloji: Öğrenci Laboratuvarı Egzersizler

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that ...

Nörobilim

Correlating Behavioral Responses to fMRI Signals from Human Prefrontal Cortex: Examining Cognitive Processes Using Task Analysis

The aim of this methods paper is to describe how to implement a neuroimaging technique to examine complementary brain processes engaged by two similar tasks. Participants' behavior during task performance in an fMRI scanner can then be correlated to the brain activity using the blood-oxygen-level-dependent signal. We measure behavior to be able to sort correct trials, where the subject performed the task correctly and then be able to examine the brain signals related to correct performance. Conversely, if subjects do not perform the task correctly, and these trials are included in the same analysis with the correct trials we would introduce trials that were not only for correct performance. Thus, in many cases these errors can be used themselves to then correlate brain activity to them. We describe two complementary tasks that are used in our lab to examine the brain during suppression of an automatic responses: the stroop1 and anti-saccade tasks. The emotional stroop paradigm instructs participants to either report the superimposed emotional 'word' across the affective faces or the facial 'expressions' of the face stimuli1,2. When the word and the facial expression refer to different emotions, a conflict between what must be said and what is automatically read occurs. The participant has to resolve the conflict between two simultaneously competing processes of word reading and facial expression. Our urge to read out a word leads to strong 'stimulus-response (SR)' associations; hence inhibiting these strong SR's is difficult and participants are prone to making errors. Overcoming this conflict and directing attention away from the face or the word requires the subject to inhibit bottom up processes which typically directs attention to the more salient stimulus. Similarly, in the anti-saccade task3,4,5,6, where an instruction cue is used to direct only attention to a peripheral stimulus location but then the eye movement is made to the mirror opposite position. Yet again we measure behavior by recording the eye movements of participants which allows for the sorting of the behavioral responses into correct and error trials7 which then can be correlated to brain activity. Neuroimaging now allows researchers to measure different behaviors of correct and error trials that are indicative of different cognitive processes and pinpoint the different neural networks involved.

The goal of our research is to correlate behavior to brain activity. Accurate behavioral measures and imaging techniques allow us to elucidate brain-behavior relationships.

İnsan Prefrontal Korteks gelen fMRI Sinyallerine Davranışsal Tepkiler ilişkilendirilmesi: Görev Analizi Bilişsel Süreçler incelenmesi

The aim of this methods paper is to describe how to implement a neuroimaging technique to examine complementary brain processes engaged by two similar ...

A General Method for Evaluating Incubation of Sucrose Craving in Rats

For someone on a food-restricted diet, food craving in response to food-paired cues may serve as a key behavioral transition point between abstinence and relapse to food taking 1. Food craving conceptualized in this way is akin to drug craving in response to drug-paired cues. A rich literature has been developed around understanding the behavioral and neurobiological determinants of drug craving; we and others have been focusing recently on translating techniques from basic addiction research to better understand addiction-like behaviors related to food 2-4.
As done in previous studies of drug craving, we examine sucrose craving behavior by utilizing a rat model of relapse. In this model, rats self-administer either drug or food in sessions over several days. In a session, lever responding delivers the reward along with a tone+light stimulus. Craving behavior is then operationally defined as responding in a subsequent session where the reward is not available. Rats will reliably respond for the tone+light stimulus, likely due to its acquired conditioned reinforcing properties 5. This behavior is sometimes referred to as sucrose seeking or cue reactivity. In the present discussion we will use the term "sucrose craving" to subsume both of these constructs.
In the past decade, we have focused on how the length of time following reward self-administration influences reward craving. Interestingly, rats increase responding for the reward-paired cue over the course of several weeks of a period of forced-abstinence. This "incubation of craving" is observed in rats that have self-administered either food or drugs of abuse 4,6. This time-dependent increase in craving we have identified in the animal model may have great potential relevance to human drug and food addiction behaviors.
Here we present a protocol for assessing incubation of sucrose craving in rats. Variants of the procedure will be indicated where craving is assessed as responding for a discrete sucrose-paired cue following extinction of lever pressing within the sucrose self-administration context (Extinction without cues) or as responding for sucrose-paired cues in a general extinction context (Extinction with cues).

Responding for food or drug-paired cues increases over the course of a period of abstinence and this may relate to an increased susceptibility to relapse behaviors. Here we detail a procedure for evaluating this "incubation of craving" in rats that have self-administered sucrose.

Sıçanlarda Sakkaroz Craving Kuluçka değerlendirilmesi için Genel Bir Yöntem

For someone on a food-restricted diet, food craving in response to food-paired cues may serve as a key behavioral transition point between abstinence and ...

Large-scale Recording of Neurons by Movable Silicon Probes in Behaving Rodents

A major challenge in neuroscience is linking behavior to the collective activity of neural assemblies. Understanding of input-output relationships of neurons and circuits requires methods with the spatial selectivity and temporal resolution appropriate for mechanistic analysis of neural ensembles in the behaving animal, i.e. recording of representatively large samples of isolated single neurons. Ensemble monitoring of neuronal activity has progressed remarkably in the past decade in both small and large-brained animals, including human subjects1-11. Multiple-site recording with silicon-based devices are particularly effective because of their scalability, small volume and geometric design.
Here, we describe methods for recording multiple single neurons and local field potential in behaving rodents, using commercially available micro-machined silicon probes with custom-made accessory components. There are two basic options for interfacing silicon probes to preamplifiers: printed circuit boards and flexible cables. Probe supplying companies (<a href="http://www.neuronexustech.com/" >http://www.neuronexustech.com/</a>; <a href="http://www.sbmicrosystems.com/">http://www.sbmicrosystems.com/</a>; <a href="http://www.acreo.se/">http://www.acreo.se/</a>) usually provide the bonding service and deliver probes bonded to printed circuit boards or flexible cables. Here, we describe the implantation of a 4-shank, 32-site probe attached to flexible polyimide cable, and mounted on a movable microdrive. Each step of the probe preparation, microdrive construction and surgery is illustrated so that the end user can easily replicate the process.

We describe methods for large-scale recording of multiple single units and local field potential in behaving rodents with silicon probes. Drive fabrication, probe attachment to the drive and probe implantation processes are illustrated in sufficient details for easy replication.

Kemirgenler davranmak yılında Hareketli Silikon Problar tarafından Nöronlar Büyük ölçekli Kaydı

A major challenge in neuroscience is linking behavior to the collective activity of neural assemblies. Understanding of input-output relationships of ...

Recording and Analysis of Circadian Rhythms in Running-wheel Activity in Rodents

When rodents have free access to a running wheel in their home cage, voluntary use of this wheel will depend on the time of day1-5. Nocturnal rodents, including rats, hamsters, and mice, are active during the night and relatively inactive during the day. Many other behavioral and physiological measures also exhibit daily rhythms, but in rodents, running-wheel activity serves as a particularly reliable and convenient measure of the output of the master circadian clock, the suprachiasmatic nucleus (SCN) of the hypothalamus. In general, through a process called entrainment, the daily pattern of running-wheel activity will naturally align with the environmental light-dark cycle (LD cycle; e.g. 12 hr-light:12 hr-dark). However circadian rhythms are endogenously generated patterns in behavior that exhibit a ~24 hr period, and persist in constant darkness. Thus, in the absence of an LD cycle, the recording and analysis of running-wheel activity can be used to determine the subjective time-of-day. Because these rhythms are directed by the circadian clock the subjective time-of-day is referred to as the circadian time (CT). In contrast, when an LD cycle is present, the time-of-day that is determined by the environmental LD cycle is called the zeitgeber time (ZT).
Although circadian rhythms in running-wheel activity are typically linked to the SCN clock6-8, circadian oscillators in many other regions of the brain and body9-14 could also be involved in the regulation of daily activity rhythms. For instance, daily rhythms in food-anticipatory activity do not require the SCN15,16 and instead, are correlated with changes in the activity of extra-SCN oscillators17-20. Thus, running-wheel activity recordings can provide important behavioral information not only about the output of the master SCN clock, but also on the activity of extra-SCN oscillators. Below we describe the equipment and methods used to record, analyze and display circadian locomotor activity rhythms in laboratory rodents.

Circadian rhythms in voluntary wheel-running activity in mammals are tightly coupled to the molecular oscillations of a master clock in the brain. As such, these daily rhythms in behavior can be used to study the influence of genetic, pharmacological, and environmental factors on the functioning of this circadian clock.

Kemirgenler Faaliyet teker Running kayıt ve Sirkadiyen Rhythms Analizi

When rodents have free access to a running wheel in their home cage, voluntary use of this wheel will depend on the time of day1-5. Nocturnal rodents, ...

Simultaneous Electrophysiological Recording and Calcium Imaging of Suprachiasmatic Nucleus Neurons

Simultaneous electrophysiological and fluorescent imaging recording methods were used to study the role of changes of membrane potential or current in regulating the intracellular calcium concentration. Changing environmental conditions, such as the light-dark cycle, can modify neuronal and neural network activity and the expression of a family of circadian clock genes within the suprachiasmatic nucleus (SCN), the location of the master circadian clock in the mammalian brain. Excitatory synaptic transmission leads to an increase in the postsynaptic Ca2+ concentration that is believed to activate the signaling pathways that shifts the rhythmic expression of circadian clock genes. Hypothalamic slices containing the SCN were patch clamped using microelectrodes filled with an internal solution containing the calcium indicator bis-fura-2. After a seal was formed between the microelectrode and the SCN neuronal membrane, the membrane was ruptured using gentle suction and the calcium probe diffused into the neuron filling both the soma and dendrites. Quantitative ratiometric measurements of the intracellular calcium concentration were recorded simultaneously with membrane potential or current. Using these methods it is possible to study the role of changes of the intracellular calcium concentration produced by synaptic activity and action potential firing of individual neurons. In this presentation we demonstrate the methods to simultaneously record electrophysiological activity along with intracellular calcium from individual SCN neurons maintained in brain slices.

Procedures are described to perform simultaneous recordings of membrane potential or current and changes of intracellular calcium concentration. Suprachiasmatic nucleus neurons are filled with the calcium indicator bis-fura-2 using a patch clamp electrode in the whole cell patch clamp configuration.

Eşzamanlı Elektrofizyolojik Kayıt ve Suprakiazmatik Nucleus Nöronlar Kalsiyum Görüntüleme

Simultaneous electrophysiological and fluorescent imaging recording methods were used to study the role of changes of membrane potential or current in ...

Using Single Sensillum Recording to Detect Olfactory Neuron Responses of Bed Bugs to Semiochemicals

The insect olfactory system plays an important role in detecting semiochemicals in the environment. In particular, the antennal sensilla which house single or multiple neurons inside, are considered to make the major contribution in responding to the chemical stimuli. By directly recording action potential in the olfactory sensillum after exposure to stimuli, single sensillum recording (SSR) technique provides a powerful approach for investigating the neural responses of insects to chemical stimuli. For the bed bug, which is a notorious human parasite, multiple types of olfactory sensillum have been characterized. In this study, we demonstrated neural responses of bed bug olfactory sensilla to two chemical stimuli and the dose-dependent responses to one of them using the SSR method. This approach enables researchers to conduct early screening for individual chemical stimuli on the bed bug olfactory sensilla, which would provide valuable information for the development of new bed bug attractants or repellents and benefits the bed bug control efforts.

Bed bugs rely on olfactory receptor neurons housed in their antennal olfactory sensilla to detect semiochemicals in the environment. Utilizing single sensillum recording, we demonstrate a method to evaluate bed bug response to semiochemicals and explore the coding process involved.

Semiokimyasallar için yatak hataların Koku Nöron Cevapları Algılama Tek Sensillum Kaydı Kullanma

The insect olfactory system plays an important role in detecting semiochemicals in the environment. In particular, the antennal sensilla which house ...

Electrophysiological Method for Recording Intracellular Voltage Responses of Drosophila Photoreceptors and Interneurons to Light Stimuli In Vivo

Voltage responses of insect photoreceptors and visual interneurons can be accurately recorded with conventional sharp microelectrodes. The method described here enables the investigator to measure long-lasting (from minutes to hours) high-quality intracellular responses from single Drosophila R1-R6 photoreceptors and Large Monopolar Cells (LMCs) to light stimuli. Because the recording system has low noise, it can be used to study variability among individual cells in the fly eye, and how their outputs reflect the physical properties of the visual environment. We outline all key steps in performing this technique. The basic steps in constructing an appropriate electrophysiology set-up for recording, such as design and selection of the experimental equipment are described. We also explain how to prepare for recording by making appropriate (sharp) recording and (blunt) reference electrodes. Details are given on how to fix an intact fly in a bespoke fly-holder, prepare a small window in its eye and insert a recording electrode through this hole with minimal damage. We explain how to localize the center of a cell's receptive field, dark- or light-adapt the studied cell, and to record its voltage responses to dynamic light stimuli. Finally, we describe the criteria for stable normal recordings, show characteristic high-quality voltage responses of individual cells to different light stimuli, and briefly define how to quantify their signaling performance. Many aspects of the method are technically challenging and require practice and patience to master. But once learned and optimized for the investigator's experimental objectives, it grants outstanding in vivo neurophysiological data.

Electrophysiological Method for Recording Intracellular Voltage Responses of Drosophila Photoreceptors and Interneurons to Light Stimuli In Vivo

Sharp microelectrodes enable accurate electrophysiological characterization of photoreceptor and visual interneuron output in living Drosophila. Here we show how to use this method to record high-quality voltage responses of individual cells to controlled light stimulation. This method is ideal for studying neural information processing in insect compound eyes.

Recording Hücre içi Gerilim Yanıtları için Elektrofizyolojik Yöntem<em&gt; Drosophila</em&gt; Işık Uyaranların için Fotoreseptörler ve internöronlar<em&gt; İn Vivo</em

Voltage responses of insect photoreceptors and visual interneurons can be accurately recorded with conventional sharp microelectrodes. The method ...

A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees (Bombus terrestris)

Generalist pollinators like the buff-tailed bumble bee, Bombus terrestris, encounter both nutrients and toxins in the floral nectar they collect from flowering plants. Only a few studies have described the gustatory responses of bees toward toxins in food, and these experiments have mainly used the proboscis extension response on restrained honey bees. Here, a new behavioral assay is presented for measuring the feeding responses of freely-moving, individual worker bumble bees to nutrients and toxins. This assay measures the amount of solution ingested by each bumble bee and identifies how tastants in food influence the microstructure of the feeding behavior.
The solutions are presented in a microcapillary tube to individual bumble bees that have been previously starved for 2-4 hr. The behavior is captured on digital video. The fine structure of the feeding behavior is analyzed by continuously scoring the position of the proboscis (mouthparts) from video recordings using event logging software. The position of the proboscis is defined by three different behavioral categories: (1) proboscis is extended and in contact with the solution, (2) proboscis is extended but not in contact with the solution and (3) proboscis is stowed under the head. Furthermore the speed of the proboscis retracting away from the solution is also estimated.
In the present assay the volume of solution consumed, the number of feeding bouts, the duration of the feeding bouts and the speed of the proboscis retraction after the first contact is used to evaluate the phagostimulatory or the deterrent activity of the compounds tested.
This new taste assay will allow researchers to measure how compounds found in nectar influence the feeding behavior of bees and will also be useful to pollination biologists, toxicologists and neuroethologists studying the bumble bee&#39;s taste system.

A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees Bombus terrestris

A novel behavioral assay is described for investigating the short term gustatory responses of the mouthparts of freely-moving bumble bees (Bombus terrestris) toward nutrients and toxins in solution.

A Novel Davranış Testi (Bumble Bees Serbestçe hareket eden Bireyin Tat Cevapları, Araştırma<em&gt; Bombus terrestris</em&gt;)

Generalist pollinators like the buff-tailed bumble bee, Bombus terrestris, encounter both nutrients and toxins in the floral nectar they collect from ...

An Emerging Target Paradigm to Evoke Fast Visuomotor Responses on Human Upper Limb Muscles

To reach towards a seen object, visual information has to be transformed into motor commands. Visual information such as the object&#8217;s color, shape, and size are processed and integrated within numerous brain areas, then ultimately relayed to the motor periphery. In some instances, a reaction is needed as fast as possible. These fast visuomotor transformations, and their underlying neurological substrates, are poorly understood in humans as they have lacked a reliable biomarker. Stimulus-locked responses (SLRs) are short latency (&#60;100 ms) bursts of electromyographic (EMG) activity representing the first wave of muscle recruitment influenced by visual stimulus presentation. SLRs provide a quantifiable output of rapid visuomotor transformations, but SLRs have not been consistently observed in all subjects in past studies. Here we describe a new, behavioral paradigm featuring the sudden emergence of a moving target below an obstacle that consistently evokes robust SLRs. Human participants generated visually guided reaches toward or away from the emerging target using a robotic manipulandum while surface electrodes recorded EMG activity from the pectoralis major muscle. In comparison to previous studies that investigated SLRs using static stimuli, the SLRs evoked with this emerging target paradigm were larger, evolved earlier, and were present in all participants. Reach reaction times (RTs) were also expedited in the emerging target paradigm. This paradigm affords numerous opportunities for modification that could permit systematic study of the impact of various sensory, cognitive, and motor manipulations on fast visuomotor responses. Overall, our results demonstrate that an emerging target paradigm is capable of consistently and robustly evoking activity within a fast visuomotor system.

Presented here is a behavioral paradigm that elicits robust fast visuomotor responses on human upper limb muscles during visually guided reaches.

İnsan Üst Ekstremite Kaslarında Hızlı Visuomotor Tepkiler uyandırmak için Yükselen Bir Hedef Paradigma

To reach towards a seen object, visual information has to be transformed into motor commands. Visual information such as the object&#8217;s color, shape, ...