Name: recording behavioral responses to reflection in crayfish
Uploaded: 2010-05-14T17:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 30 s
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연구 NSERC 지원.

1. 사회화 <ol><li> 기존의 사회 계급을 소화하려면 각 왕새우는 7 보관되어 있습니다 - 별도의 플라스틱 용기 (30cm 길이 X 17.5 cm (폭) x 13cm 깊이)에서 14 일, 여과, 화난 물과 같은 역할을하는 작은 플라스틱 화분으로 가득 쉼터. 투명한 용기를 사용하는 경우 구분선 (예 : 종이 타월)는 왕새우가 시각 격리되도록하기 위해 용기 사이에 배치됩니다. </li><li> 십사일 - &quot;절연&quot;그룹에 왕새우가 추가 3 격리에 남아 있습니다. 물이 변경되고 왕새우는 3 회 매주 공급하고 있습니다. </li><li> 사회 계급을 설정하려면, 왕새우는 초기 격리 다음과 같은 동성 쌍에 배치됩니다. 크레이 피쉬는 무게이며, 몸 길이는 (텔슨에 연단) 측정, 쌍은 10 %의 무게와 길이 이내로 크기와 일치합니다. 화이트 아크릴 페인트는 개인을 식별하는 각 왕새우의 등딱지에 적용됩니다. (보통 점 한 회원과 다른 라인에 적용됩니다.) </li><li> 30 분 휴식 기간 후, 각 왕새우 쌍이 필터링, 화난 물 (상온)로 절반을 가득 깨끗한 흰색 플라스틱 용기 (48cm 길이 X 25cm (폭) x 13cm 깊이)에 상호 작용하도록 허용됩니다. 외계는 중 비디오 카세트 레코더에 연결된 카메라와 VHS 테이프에 기록, 또는 그것은 웹캠과 컴퓨터에 기록됩니다. 이것은 상호 작용이 지배 순위가 개발 할 수 있습니다. </li><li> 십사일 - 초기 상호 작용에 따라, 각 왕새우 쌍은 추가 3에 대한보다 큰 플라스틱 용기 (58cm 길이 X 30cm (폭) x 35cm 깊이)에 함께 보관되어 있습니다. 이 컨테이너는 여과 시스템에서 순환 물을받습니다. 단일 PVC 튜브는 (약 10cm 길이) 은신처 제공됩니다. </li></ol> 2. 테스트 수족관 및 제어 구축 방법 I <ol><li> 반사 환경, 유리 또는 플렉시 수족관 (52cm 길이 X 25cm x 세로 30cm 높이) (그림 1) 사용에 대한 답변을 확인하려면 다음과 같이하십시오. </li><li> 하나의 거울 (25cm 길이 20cm X 높이)는 수족관의 한쪽에 배치하거나,​​ 접착제 또는 설치 왁스와 보안이다. 두 개의 거울 (26cm 길이 20cm X 높이)는 최종 미러 인접, 측면에 배치하고, 접착제 또는 왁스로 안전하고 있습니다. </li><li> 나머지 벽은 무광택 마무리 창 필름에 나와 있습니다. 이 영화는 반사를 제거하지만, 조명 조건을 방해하지 않습니다. 필름 가벼운 샌딩이 영화는 완전히 비 - 반사되도록해야 할 수 있습니다. </li></ol> 방법 II <ol start="4"><li> 이 최종 챔버와 함께 라이브 왕새우 ( &quot;소스 왕새우&quot;), 플렉시 수족관에서 제공하는 시각적 자극에 대한 답변을 확인하려면 것은 (그림 2)이 사용됩니다. 수족관은 대형 중앙 구획 (48cm 길이 X 26cm x 세로 26cm 높이)와 동등한 크기의 두 작은 끝 구획 (X 26cm 폭 12cm 길이 26cm 높이)가 포함되어 있습니다. 최종 구획은 구획 사이의 통과에서 물과 화학 단서를 방지하기 위해 밀폐되어 투명 플렉시로 중앙 구획 구분됩니다. </li><li> 전체 수족관의 바깥쪽 경계는 각 끝에있는 두 장벽이 투명 떠나, 비 반사 매트 플라스틱으로 코팅됩니다. </li><li> 컨트롤로 모델링 점토의 건설 큐브 (예 : Sculptee) 불활성 개체의 시각적 입력을 제공하는 데 사용됩니다. 큐브 (3.5 cm X 3.0 cm X 3.3 cm)는 소스 왕새우의 대략적인 볼륨과 유사한 색상을 빨간색으로 색칠합니다. </li></ol> 3. 영상 교육 방법 I <ol><li> 우위 상태를 확인하기 위해 싸움을 다음 십사일 - 왕새우가 거울 / 매트 탱크 3 촬영합니다. </li><li> 크레이 피쉬는 aerated, 여과 물이 들어있는 유리 섬유 복합 컨테이너와 쉼터에 사용되는 플라스틱 화분에, 한 대씩 배치됩니다. 크레이 피쉬는 테스트 룸으로 이동하고 테스트하기 전에 적응 30 분 주어집니다. </li><li> 테스트 수족관은 거울과 절반 정도가 늘어선 아닌 반사 플라스틱으로 약 20cm의 깊이로 aerated, 여과 물을 가득와 반 가로수. </li><li> 디지털 카메라는 VHS 비디오 카세트 레코더의 오디오 / 비디오 케이블을 통해 연결되어 있고 전체 수족관을 볼 수있을만큼 높지 수족관 위에 배치됩니다. 동영상이 VHS 테이프에 기록됩니다. 또는 컴퓨터에 연결된 웹캠을 사용할 수 있으며, 동영상은 동영상 제작 프로그램에 기록하고 DVD에 저장할 수 있습니다. </li><li> 쌍 하나 왕새우는 꽃 냄비를 사용하여 수족관의 중앙에 부드럽게 위치하며, 활동은 20 분에 대해서만 기록됩니다. 아무 관계없는 사람은 시각과 청각 입력으로부터 간섭을 줄이기 위해, 녹음하는 동안 방에 존재하지 않습니다. 모든 노력은 녹음 환경이 조용 수 있도록 구성되어 있습니다. </li><li> 테스트를 다음, 왕새우가 제거되고 탱크가납니다, 씻어서 물로 리필. </li><li> 카운터 밸런스 실험 조건, 수족관이 곳으로 주변에 설정되어방의 반대편에 거울. 이 왕새우는 수족관의 한쪽을 선호하는 원인이 될 수 알려지지 않은 요인에 대한 보상하는 데 도움이됩니다. </li><li> 쌍 두 번째 회원은 다음 첫 번째와 같은 방식으로 테스트됩니다. </li></ol> 방법 II <ol start="9"><li> 마찬가지 방법 I에서 설명한 왕새우는 테스트 룸으로 이동됩니다 같은 녹음 장비를 사용하여 촬영하고 있습니다. </li><li> 모든 여왕님 (중간 시험 챔버와 두 최종 실) 약 20cm의 높이에 aerated, 여과 물을 채워지게된다. </li><li> 크레이 피쉬, 왕새우는 테스트중인로 거의 같은 크기는 한쪽 끝을 챔버에 배치하고, 컨트롤 큐브는 다른 배치됩니다. </li><li> 꽃 냄비 보호소를 사용하여 테스트중인 왕새우는 부드럽게 수족관의 중앙에 배치됩니다 20 분 촬영입니다. </li><li> 테스트 후, 수족관은 비운 씻어서 물로 리필입니다. </li><li> 한 켤레의 두 번째 멤버를 테스트하기 전에, 소스의 왕새우 및 제어 큐브는 균형 조건에 대응하기 위해, 반대 끝 방으로 이동됩니다. </li></ol> 4. 시각적 자극에 대한 반응 분석 방법 I <ol><li> 그래서 실험자의 왕새우의 사회적 지위, 거울 / 매트 수족관에서 동작 장님이되어 행동을 재판 싸우는 분석 전에 분석이다. </li><li> 크레이 피쉬는 수족관의 각 측면에 많은 시간을 보낸다 금액 기록됩니다. 크레이 피쉬는 chelipeds의 coxae는 탱크의 정중선 (그림 3)을 통과하면 다음으로 한쪽에서 전달하는 것으로 간주됩니다. </li><li> (설명을 표 1 참조), 매점 회전, 동결 및 역방향 도보를 건너 행동의 빈도도 기록됩니다. </li><li> 동작은 각 사회 그룹에 대한 이점 T - Test를 사용하여 비 반사 측면에 전시 행동에 비해있는 탱크의 반사 측면에 전시. </li></ol> 방법 II <ol start="5"><li> 방법에서와 마찬가지로 저는, 왕새우 문제의 비디오 테이프는 싸움의 시험 분석을하기 전에 분석하고 있습니다. </li><li> 크레이 피쉬는 수족관의 양쪽에 많은 시간을 보낸다 금액은 방법 나에서 설명한대로 기록됩니다 </li><li> 코너링의 주파수, 마주 회전, 교차점, 잘 양육을 종료하고 산책 (표 1) 반대로 기록됩니다. </li><li> 소스 왕새우 사이드에서 수행 행동은 각 사회 그룹에 대한 이점 T - 테스트를 사용하여 제어 큐브 사이드에서 수행 행동에 비해 수 있습니다. </li></ol> 5. 통하는 분석 <ol><li> 페어링의 초기 30 분 동안 전투 동작의 기록을 볼과 득점 있습니다. 각 30 분 녹음 세션 왕새우들이 발톱 및 / 또는 안테나를 사용하여 접촉하게하는 몇 가지 조우를 포함합니다. 이 발생 내에서 chelae은 일반적으로 추진하고 강렬하거나 상대를 쥐고​​ 사용되는, 그리고 안테나를 때로는 상대를 흔든다에 사용됩니다. 하나 크레이 피쉬는 상대를 뒤집어하고 바닥에 그를 잡아 시도할 수 있습니다. 각각의 만남은 역방향 도보로 또는 달성하기 위해 꼬리를 내리고 한 왕새우 휴양소는 &quot;수영 탈출.&quot;언제까지 </li><li> 고대 그리스의 운동 경기의 조우의 숫자가 기록되며, 왕새우의 정체성은 (흉부에 표시 페인트에 의해 결정) 각 발생에서 피정도 기록입니다. 각 30 분 세션에서 조우의 대부분을 잃는 왕새우는 패배자로 간주하고, 다른 왕새우는 승자 것으로 간주됩니다. </li></ol> 6. 대표 결과 30 분 전투 기간 동안, 모든 쌍은 무리한 행동을 나타냅니다. 이러한 행동은 안테나 도청, lunging, 밀고, 욕심, 강렬 chelae와 같은 다른보고 내리고 상대를 (예 : 월 &amp; 메르 시에 2006, 2007) 등이 있습니다. 각 쌍을 지속 피정 더욱 연락처를 피할에 결국 한 왕새우. 퇴각 크레이 피쉬는 패배자로 간주하고 종속으로 선정되며 선정된 왕새우가 지배적으로 선정됩니다. 순위는 은신처에 대한 하나의 플라스틱 튜브를 포함 들고 탱크 왕새우 행동을 관찰하여 이점 주택 기간 동안 모니터링할 수 있습니다. 지배 크레이 피쉬는 결국에 피난처를 점유하고 하위 왕새우가되지 않습니다. 하위 크레이 피쉬가 자주 chelae와 함께 산책하는 것은 전면에 가깝게 밖 개최하고, 지배 왕새우는 일반적으로 제기 chelae와 함께 산책과 더욱 차별 (Guiasu &amp; 던햄, 1998). 새로운 음식이 보관 탱크에 추가되면, 지배 왕새우는 대개 먼저 음식을 소요됩니다. P.과 함께 우리의 연구에 clarkii (예 : 월 &amp; 메르 시에 2006, 2007), 지속적인 페어링 3 일 후에 일반적으로 더 순위 reversals 없습니다. 페어링 기간이 완료되기 전에 드문 경우에는 쌍 멤버는 죽는다. 이것은 페어 링의​​ 기간이있는 경우 발생할 가능성이 높습니다길이 (예 : 십사일)와 왕새우가 너무 밀접하게 크기 또는 무게에 의해 일치하는 경우. 그러므로 죽음은 무게가 약 10 %의 차이를함으로써 피할 수 있습니다. 한 쌍의 한 회원이 죽으면, 다른 회원의 데이터가 연구에 포함되지 않습니다. 지배와 종속 왕새우 일반적으로 반사 환경에 다른 반응을 보여줍니다. 지배 크레이 피쉬는 일관되게 반사 측면에 더 많은 시간을 보내고 있지만, 종속과 격리 왕새우는 (5 월 &amp; 메르 시에, 2006, 2007)하지 않습니다. 지배 크레이 피쉬는 코너링과 비 반사 측면에보다 반사 측면에 더 자주 터닝을 전시지만, 격리하고 부하는 일반적으로하지 않습니다. 지배와 종속 왕새우 사이의 이러한 차이는 그러나, 바로 설립하지만 3-14일의 페어링 기간 (5 월 &amp; 머시, 2007)를 통해 개발되지 않습니다. 예비 증거는 지배와 종속 왕새우가 페어링 3 일 후에 라이브 왕새우 (소스 왕새우) (5 외., 2008)가 제공하는 영상 신호에 다른 반응을 나타냅니다. 지배 크레이 피쉬는 측면에서 더 이상의 소스 왕새우 및 코너와 수족관의 측면에 더 많은 시간을 보내고 있지만, 종속 왕새우는 양측 사이의 이러한 차이점을 전시하지 않습니다. <table border="1"><tbody><tr><td> 행동 </td><td> 설명 </td></tr><tr><td> 매점 </td><td> 수족관의 모서리를 마주하고 다른 벽 (그림 4)을 만지 두 발톱의 도움말과 함께 최소한 5의 곁에 남아 </td></tr><tr><td> 마주 끝 </td><td> 최종 벽을 감동 적어도 하나의 발톱의 일각과 함께 적어도 5의 (그림 5) 수조의 한쪽 끝을에서 벽을 마주 </td></tr><tr><td> 선회 </td><td> 시계 반대 방향으로 또는 그 반대로 시계 방향에서 도보 경로 방향 (그림 6)을 변경 </td></tr><tr><td> 횡단 </td><td> 수족관의 경계를 떠나 및 기타 벽면에 하나 이상의 신체 길이를 도보 (그림 7) </td></tr><tr><td> 도보 반대 </td><td> 적어도 하나의 신체 길이 뒤로 걷기 </td></tr><tr><td> 냉동 </td><td> 최소한 5 s에 대한 부속 및 안테나의 표시를 포함한 모든 운동의 돌연 정지 </td></tr><tr><td> 최대 양육 </td><td> 벽에 흉부의 복부 표면을 운반하고 벽에 적어도 하나 이상 도보로 다리를 놓는 동안 넷째와 다섯째 걷는 다리에 서서 </td></tr></tbody></table> P.에 의해 전시 표 1. 행동 테스트 탱크의 중심 구획에 clarkii. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig1.jpg" alt="그림 1" /> 그림 1. 나머지 절반이 아닌 반사 플라스틱 늘어서있는 동안 수족관의 방법 I. 하프에서 사용 수족관의 도식이, 거울 등이 즐비합니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig2.jpg" alt="그림 2" /> 그림 2. 방법 II에서 사용되는 수족관의 도식. 이 탱크는 손상 플렉시 장벽으로 나누어 테스트 왕새우가 배치됩니다 중심 지역, 두 끝 챔버로 구성되어 있습니다. 라이브 크레이 피쉬 한 최종 챔버에 배치하고, 큐브는 컨트롤과 같은 다른 쪽 끝을 챔버에 배치됩니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig3.jpg" alt="그림 3" /> 그림 3. 수직 점선으로 그려져 정중선과 테스트 수족관의 도식. chelipeds의 coxae가 정중선을 통과하면 왕새우는 한쪽에서 다른 전달합니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig4.jpg" alt="그림 4" /> 그림 4. 지키면서 왕새우의 위치를 나타내는 다이어그램. 두 chelae의 끝을 다른 벽 감동됩니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig5.jpg" alt="그림 5" /> 그림 5. 끝에 벽에 직면하고있는 동안 왕새우의 위치를 나타내는 다이어그램. 두 chelae 같은 벽을 만지됩니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig6.jpg" alt="그림 6" /> 그림 6. 도식 다이어그램 나타내는 가고 있습니다. 운동의 방향을 반대하는 것은 설정을 구성합니다. 밝혀졌는 코너 (예 : 방향 방향 1 2 방향 5 방향 4) 또는 측면에서 (표시되지 않음)에서 발생할 수 있습니다. 매점과 같은 방향으로 떠나는를 입력하면 (예 : 방향 3 방향 1) 회전되지 않습니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig7.jpg" alt="그림 7" /> FigurE 7. 건너 동작을 보여주는 도식. 크레이 피쉬는 가장 가까운 벽 (화살표)에서 적어도 한 몸 길이의 거리에서, 또 다른 벽 한 벽면과 여행을 떠났을 때 크로싱 발생합니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig8.jpg" alt="그림 8" /> 그림 8. 사진은 행동을 양육 묘사. 크레이 피쉬는 지난 두 걷는 다리에 서서 최소한 한 걸을 수있는 다리와 접촉을하고, 벽에 몸을 리프트.

<ol>
	<li>Bruski, C. A., Dunham, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+importance+of+vision+in+agonistic+communication+of+the+crayfish+Orconectes+rusticus.+I:+an+analysis+of+bout+dynamics.">The importance of vision in agonistic communication of the crayfish Orconectes rusticus. I: an analysis of bout dynamics.</a> Behav. 103, 83-107 (1987).</li><li>Delgado-Morales, G., Hernandez-Falcon, J., Ramon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Agnostic+behavior+in+crayfish:the+importance+of+sensory+inputs.">Agnostic behavior in crayfish:the importance of sensory inputs.</a> Crustaceana. 77 (1), 1-24 (2004).</li><li>Guiasu, R. C., Dunham, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inter-form+agonistic+contests+in+male+crayfishes,+Cambarus+robustus+(Decapoda,+Cambaridae).">Inter-form agonistic contests in male crayfishes, Cambarus robustus (Decapoda, Cambaridae).</a> Invert. Biol.. 117 (2), 144-154 (1998).</li><li>May, H. Y., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+crayfish+to+a+reflective+environment+depend+on+dominance+status.">Responses of crayfish to a reflective environment depend on dominance status.</a> Can. J. Zool. 84 (8), 1104-1111 (2006).</li><li>May, H. Y., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Joffre+Duration+of+socialization+influences+responses+to+a+mirror:+responses+of+dominant+and+subordinate+crayfish+diverge+with+time+of+pairing.">Joffre Duration of socialization influences responses to a mirror: responses of dominant and subordinate crayfish diverge with time of pairing.</a> J. Exp. Biol. 210, 4428-4436 (2007).</li><li>May, H. Y., Luebbert, J., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+Crayfish+to+a+Visual+Stimulus+Provided+by+a+Conspecific.">Responses of Crayfish to a Visual Stimulus Provided by a Conspecific.</a> , (2008).</li></ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

지배 크레이 피쉬는 반사 환경에서 더 많은 시간을 보내고있는 관찰, 그들은 conspecific로 반영 이미지를 인식하고 영상 신호는 접근 행동을 이끌어내는 충분한 것을 제안합니다. 대신 반사 이미지의 라이브 왕새우를 사용하여 유사한 결과가 이러한 해석을 지원합니다. 종속과 고립된 왕새우는 반사 환경에 대한 이러한 환경 설정을 표시하지 않으며 종속 왕새우는 큐브를 통해 살아있는 왕새우을 ?...

<table><tbody><tr><td>Single chamber test tank</td><td>Brock University Machine Shop</td><td></td><td></td></tr><tr><td>End-chamber test tank</td><td>Brock University Machine Shop</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isolation container</td><td>Rubbermaid</td><td></td><td>30 cm x 17.5 cm x 13 cm holes in lid to allow air and light to pass through when lid is on</td></tr><tr><td>Fighting chamber</td><td></td><td></td><td>48 cm x 25 cm x 13 cm</td></tr><tr><td>Social housing chamber</td><td></td><td></td><td>58 cm x 30 cm x 35 cm</td></tr><tr><td>small plastic flower pot</td><td></td><td></td><td>to serve as shelter</td></tr><tr><td>Coolpix 4500 camera</td><td>Nikon Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>T120 video cassette recorder</td><td>RCA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Computer</td><td></td><td></td><td>Windows Movie Maker or other video acquiring software</td></tr><tr><td>webcam</td><td>Logitech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>modelling clay</td><td>Sculptee</td><td></td><td>to make control cube</td></tr><tr><td>red latex paint</td><td>FolkArt</td><td></td><td>to make control cube</td></tr><tr><td>waterbase varnish</td><td>FolkArt</td><td></td><td>to make control cube</td></tr></tbody></table>

recording behavioral responses to reflection in crayfish

사회 문제는 시각, 기계와 후각 시스템에서 감각 입력에 따라 달라집니다. 중요한 문제는 행동을 유도 각 감각 양상의 상대 역할을 우려. 영상 입력의 역할은 기계 chemosensory 자극의 시각적 자극을 분리하여 검사되었습니다. 일부 연구에서는 (Bruski &amp; 던햄, 1987 :. 델가도 - 모랄레스 외, 2004) 영상 입력은 blindfolds 또는 낮은 빛의 강도와 함께 제거되어 있고, 나머지 감각 modalities의 효과가 elucidated되었습니다. 대체 접근법은 적절한 기계적 chemosensory 단서의 부재에서 영상 입력의 효과를 연구하는 것입니다. 이 방법은 시각적인 입력의 독점적인 역할을 파악하는 것을 목표로하고있다. 우리는 화학 및 기계적 단서를 제공하지 않고 왕새우으로 시각적 자극을 제공하는 두 가지 방법을 사용했습니다. 한 방법으로, 왕새우는 성벽의 절반이 반사 환경을 제공하기 위해 거울에 나와있는 수족관에서 촬영하고 있으며, 나머지 절반은 아닌 반사 (무광택 마무리) 비닐에 싸여있다. 이것은 가재에게 반사가 아닌 반사 환경 사이의 선택을 제공합니다. 그것은 탱크의 절반에 걸쳐 이동으로 반사 환경은 왕새우 반영 ​​이미지의 형태로 시각 단서를 제공, 이러한 시각적 신호가 탱크의 비 반사 이분의 일에서 누락되었습니다. 다른 방법은, 작은 챔버가 아닌 이동의 시각 입력을 제공하는 반대 소형 챔버의 영상 신호와 불활성 개체를 제공하는 왕새우와 비디오 테이프의 각 끝에 작은 챔버로 구분하여 수족관의 가재의 행동을하는 것입니다 비 크레이 피쉬 소스. 우리 게시된 결과는 반사 환경에 왕새우 답변 사회화 및 지배력 순위에 따라 나타냅니다. Socialized 크레이 피쉬는 반사 환경에 더 많은 시간을 할애하고 비 반사 환경에서보다 더 자주이 특정 행동을 전시, 격리 왕새우는 이러한 차이를 보여 않습니다. 동성 쌍 안에 보관되어 있었다 왕새우가 지배 또는 종속 중 하나의 사회 계급을 개발했습니다. 반사에 대한 답변은 지배와 종속 왕새우 사이마다 (5 월 &amp; 메르 시에, 2006, 2007 월 &amp; 머시). 지배 크레이 피쉬는 반사 측면에 더 많은 시간을 소비 더 자주 반사 모서리를 입력하고 비 반사 측면에 비해 반사 모서리에 더 많은 시간을 보냈다. 하위 크레이 피쉬가 아닌 반사 측면에보다 반사 측면에 더 자주 반대로 걸었다. 예비 데이터는 작은 인접한 챔버에서 왕새우 (5 외., 2008)에서 제공하는 시각적 단서에서 유사한 효과를 보시기 바랍니다.

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Recording Behavioral Responses to Reflection in Crayfish

우리는 촉각과 화학적 단서의 부재에서 행동 시각적 단서의 효과를 연구를위한 두 가지 방법을 개발했습니다. 한 가지 방법은 수족관에서 반사 벽에 왕새우 찍고 답변을 포함, 다른 하나는 투명 파티션 뒤에 살아있는 왕새우가 제공하는 시각 입력의 효과를 검사합니다.

크레이 피쉬에 리플렉션하는 행동 응답 녹음

Social behavior depends on sensory input from the visual, mechanical and olfactory systems.  One important issue concerns the relative roles of each ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

10.7K 조회수.  Brock University. 우리는 촉각과 화학적 단서의 부재에서 행동 시각적 단서의 효과를 연구를위한 두 가지 방법을 개발했습니다. 한 가지 방법은 수족관에서 반사 벽에 왕새우 찍고 답변을 포함, 다른 하나는 투명 파티션 뒤에 살아있는 왕새우가 제공하는 시각 입력의 효과를 검사합니다.

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Physiological Recordings of High and Low Output NMJs on the Crayfish Leg Extensor Muscle

We explain in detail how to expose and conduct electrophysiological recordings of synaptic responses for high (phasic) and low (tonic) output motor neurons innervating the extensor muscle in the walking leg of a crayfish. Distinct differences are present in the physiology and morphology of the phasic and tonic nerve terminals. The tonic axon contains many more mitochondria, enabling it to take a vital stain more intensely than the phasic axon. The tonic terminals have varicosities, and the phasic terminal is filiform. The tonic terminals are low in synaptic efficacy but show dramatic facilitated responses. In contrast, the phasic terminals are high in quantal efficacy but show synaptic depression with high frequency stimulation. The quantal output is measured with a focal macropatch electrode placed directly over the visualized nerve terminals. Both phasic and tonic terminals innervate the same muscle fibers, which suggests that inherent differences in the neurons, rather than differential retrograde feedback from the muscle, account for the morphological and physiological differentiation.

This article demonstrates how to conduct electrophysiological recordings of synaptic responses on the extensor muscle in the walking leg of a crayfish and how the nerve terminals are visualized to show the gross morphological differences of high- and low-output nerve terminals.

크레이 레그 신근 근육에 높은 및 낮은 출력 NMJs의 생리 레코딩

We explain in detail how to expose and conduct electrophysiological recordings of synaptic responses for high (phasic) and low (tonic) output motor ...

연구

신경과학

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that influence a cell's membrane potential and which we address in these experiments are: (1) Ion concentration of K+ on the outside of the membrane, and (2) the permeability of the membrane to specific ions. The crayfish abdominal extensor muscles are in groupings with some being tonic (slow) and others phasic (fast) in their biochemical and physiological phenotypes, as well as in their structure; the motor neurons that innervate these muscles are correspondingly different in functional characteristics. We use these muscles as well as the superficial, tonic abdominal flexor muscle to demonstrate properties in synaptic transmission. In addition, we introduce a sensory-CNS-motor neuron-muscle circuit to demonstrate the effect of cuticular sensory stimulation as well as the influence of neuromodulators on certain aspects of the circuit. With the techniques obtained in this exercise, one can begin to answer many questions remaining in other experimental preparations as well as in physiological applications related to medicine and health. We have demonstrated the usefulness of model invertebrate preparations to address fundamental questions pertinent to all animals.

The experiments demonstrate an easy approach for students to gain experience in examining muscle structure, synaptic responses, the effects of ion gradients and permeability on membrane potentials. Also, a sensory-CNS-motor-muscle circuit is presented to show a means to test effects of compounds on a neuronal circuit.

멤브레인 후보, 시냅틱 응답,의 연결 회로, Neuromodulation과 크레이를 사용하여 근육 조직학 : 학생 실험실 연습

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that ...

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception 

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this experiment is to learn anatomy of the preparation by staining, dissection and viewing of neurons and sensory structures under a dissecting microscope. This is performed by using basic neurophysiological equipment to record the electrical activity from a joint receptor organ and staining techniques. The muscle receptor organ (MRO) system in the crayfish is analogous to the intrafusal muscle spindle in mammals, which aids in serving as a comparative model that is more readily accessible for electrophysiological recordings. In addition, these are identifiable sensory neurons among preparations. The preparation is viable in a minimal saline for hours which is amenable for student laboratory exercises. The MRO is also susceptible to neuromodulation which encourages intriguing questions in the sites of modulatory action and integration of dynamic signals of movements and static position along with a gain that can be changed in the system.

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception

The primary purpose of this experiment is to understand how primary sensory neurons convey information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this report is present the anatomy of the preparation by dissection and viewing of neurons under a dissecting microscope.

크레이 피쉬 복부 근육 수용체 기관 : Proprioception에서 학생 실험실 연습

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive ...

A Behavioral Assay to Measure Responsiveness of Zebrafish to Changes in Light Intensities 

The optokinetic reflex (OKR) is a basic visual reflex exhibited by most vertebrates and plays an important role in stabilizing the eye relative to the visual scene. However, the OKR requires that an animal detect moving stripes and it is possible that fish that fail to exhibit an OKR may not be completely blind. One zebrafish mutant, the no optokinetic response c (nrc) has no OKR under any light conditions tested and was reported to be completely blind. Previously, we have shown that OFF-ganglion cell activity can be recorded in these mutants. To determine whether mutant fish with no OKR such as the nrc mutant can detect simple light increments and decrements we developed the visual motor behavioral assay (VMR). In this assay, single zebrafish larvae are placed in each well of a 96-well plate allowing the simultaneous monitoring of larvae using an automated video-tracking system. The locomotor responses of each larva to 30 minutes light ON and 30 minutes light OFF were recorded and quantified. WT fish have a brief spike of motor activity upon lights ON, known as the startle response, followed by return to lower-than baseline activity, called a freeze. WT fish also sharply increase their locomotor activity immediately following lights OFF and only gradually (over several minutes) return to baseline locomotor activity. The nrc mutants respond similarly to light OFF as WT fish, but exhibit a slight reduction in their average activity as compared to WT fish. Motor activity in response to light ON in nrc mutants is delayed and sluggish. There is a slow rise time of the nrc mutant response to light ON as compared to WT light ON response. The results indicate that nrc fish are not completely blind. Because teleosts can detect light through non-retinal tissues, we confirmed that the immediate behavioral responses to light-intensity changes require intact eyes by using the chokh (chk) mutants, which completely lack eyes from the earliest stages of development. In our VMR assay, the chk mutants exhibit no startle response to either light ON or OFF, showing that the lateral eyes mediate this behavior. The VMR assay described here complements the well-established OKR assay, which does not test the ability of zebrafish larvae to respond to changes in light intensities. Additionally, the automation of the VMR assay lends itself to high-throughput screening for defects in light-intensity driven visual responses.

A Behavioral Assay to Measure Responsiveness of Zebrafish to Changes in Light Intensities

We developed the Visual-Motor Response to quantitate the motor output of larval zebrafish in response to light increments and decrements. We also examined zebrafish vision mutants, including the no optokinetic response (nrc) mutants, which were thought to be completely blind when tested by another vision assay, the optokinetic reflex.

라이트 농도의 변화에​​ Zebrafish의 응답을 측정하기 위하여 행동 어세이

The optokinetic reflex (OKR) is a basic visual reflex exhibited by most vertebrates and plays an important role in stabilizing the eye relative to the ...

생물학

Retrograde Fluorescent Labeling Allows for Targeted Extracellular Single-unit Recording from Identified Neurons In vivo

The overall goal of this method is to record single-unit responses from an identified population of neurons. In vivo electrophysiological recordings from individual neurons are critical for understanding how neural circuits function under natural conditions. Traditionally, these recordings have been performed 'blind', meaning the identity of the recorded cell is unknown at the start of the recording. Cellular identity can be subsequently determined via intracellular1, juxtacellular2 or loose-patch3 iontophoresis of dye, but these recordings cannot be pre-targeted to specific neurons in regions with functionally heterogeneous cell types. Fluorescent proteins can be expressed in a cell-type specific manner permitting visually-guided single-cell electrophysiology4-6. However, there are many model systems for which these genetic tools are not available. Even in genetically accessible model systems, the desired promoter may be unknown or genetically homogenous neurons may have varying projection patterns. Similarly, viral vectors have been used to label specific subgroups of projection neurons7, but use of this method is limited by toxicity and lack of trans-synaptic specificity. Thus, additional techniques that offer specific pre-visualization to record from identified single neurons in vivo are needed. Pre-visualization of the target neuron is particularly useful for challenging recording conditions, for which classical single-cell recordings are often prohibitively difficult8-11. The novel technique described in this paper uses retrograde transport of a fluorescent dye applied using tungsten needles to rapidly and selectively label a specific subset of cells within a particular brain region based on their unique axonal projections, thereby providing a visual cue to obtain targeted electrophysiological recordings from identified neurons in an intact circuit within a vertebrate CNS.
The most significant novel advancement of our method is the use of fluorescent labeling to target specific cell types in a non-genetically accessible model system. Weakly electric fish are an excellent model system for studying neural circuits in awake, behaving animals12. We utilized this technique to study sensory processing by "small cells" in the anterior exterolateral nucleus (ELa) of weakly electric mormyrid fish. "Small cells" are hypothesized to be time comparator neurons important for detecting submillisecond differences in the arrival times of presynaptic spikes13. However, anatomical features such as dense myelin, engulfing synapses, and small cell bodies have made it extremely difficult to record from these cells using traditional methods11, 14. Here we demonstrate that our novel method selectively labels these cells in 28% of preparations, allowing for reliable, robust recordings and characterization of responses to electrosensory stimulation.

Retrograde Fluorescent Labeling Allows for Targeted Extracellular Single-unit Recording from Identified Neurons In vivo

Retrograde transport of fluorescent dye labels a sub-population of neurons based on anatomical projection. Labeled axons can be visually targeted in vivo, permitting extracellular recording from identified axons. This technique facilitates recording when neurons cannot be labeled through genetic manipulation or are difficult to isolate using 'blind' in vivo approaches.

역행 형광 라벨이 확인 된 신경 세포의 표적 세포 외 단일 단위 기록을 허용<em&gt; 생체 내</em

The overall goal of this method is to record single-unit responses from an identified population of neurons. In vivo electrophysiological recordings from ...

Continuous Noninvasive Measuring of Crayfish Cardiac and Behavioral Activities

A crayfish is a pivotal aquatic organism that serves both as a practical biological model for behavioral and physiological studies of invertebrates and as a useful biological indicator of water quality. Even though crayfish cannot directly specify the substances that cause water quality deterioration, they can immediately (within a few seconds) warn humans of water quality deterioration via acute changes in their cardiac and behavioral activities.
In this study, we present a noninvasive method that is simple enough to be implemented under various conditions due to a combination of simplicity and reliability in one model.
This approach, in which the biological organisms are implemented into environmental evaluation processes, provides a reliable and timely alarm for warning of and preventing acute water deterioration in an ambient environment. Therefore, this noninvasive system based on crayfish physiological and ethological parameter recordings was investigated for the detection of changes in an aquatic environment. This system is now applied at a local brewery for controlling&#160;quality of the water used for beverage production, but it can be used at any water treatment and supply facility for continuous, real-time water quality evaluation and for regular laboratory investigations of crayfish cardiac physiology and behavior.

This article presents a noninvasive biomonitoring system for the continuous recording and analyses of crayfish cardiac and locomotor activities. This system consists of a near-infrared optical sensor, a video-tracking module, and software for evaluating crayfish heartbeats that reflects its physiological condition and characterizes crayfish behavior during heartbeat fluctuations.

왕새우 심장 및 동작 활동의 지속적인 비 침범 성 측정

A crayfish is a pivotal aquatic organism that serves both as a practical biological model for behavioral and physiological studies of invertebrates and as ...

행동분석학

Recordings of Neural Circuit Activation in Freely Behaving Animals

The relationship between patterns of neural activity and corresponding behavioral expression is difficult to establish in unrestrained animals. Traditional non-invasive methods require at least partially restrained research subjects, and they only allow identification of large numbers of simultaneously activated neurons. On the other hand, small ensembles of neurons or individual neurons can only be measured using single-cell recordings obtained from largely reduced preparations. Since the expression of natural behavior is limited in restrained and dissected animals, the underlying neural mechanisms that control such behavior are difficult to identify. 
Here, I present a non-invasive physiological technique that allows measuring neural circuit activation in freely behaving animals. Using a pair of wire electrodes inside a water-filled chamber, the bath electrodes record neural and muscular field potentials generated by juvenile crayfish during natural or experimentally evoked escape responses. The primary escape responses of crayfish are mediated by three different types of tail-flips which move the animals away from the point of stimulation. Each type of tail-flip is controlled by its own neural circuit; the two fastest and most powerful escape responses require activation of different sets of large &#8220;command&#8221; neurons. In combination with behavioral observations, the bath electrode recordings allow unambiguous identification of these neurons and the associated neural circuits. Thus activity of neural circuitry underlying naturally occurring behavior can be measured in unrestrained animals and in different behavioral contexts.

Non-invasive measurements of neural activity patterns in freely behaving animals are obtained by combining neurophysiological recordings with high speed videography.

자유롭게 동물 행동의 신경 회로 활성화의 기록

The relationship between patterns of neural activity and corresponding behavioral expression is difficult to establish in unrestrained animals. ...

Measures of Heart and Ventilatory Rates in Freely Moving Crayfish

The fear, flight or fight response serves as the fundamental physiological basis for examining an organism's awareness of its environment under an impending predator attack.  Although it is not known whether invertebrates posses an autonomic nervous system identical to that of vertebrates, evidence shows invertebrates have a  sympathetic-like  response to regulate the internal environment and ready the organism to act behaviorally to a given stimuli.  Furthermore, this physiological response can be feasibly measured and it acts as a biological index for the animal's internal state.  Measurements of the physiological response can be directly related to internal and external stressors through changes in the central nervous system controlled coordination of the cardio-vascular and respiratory systems.   More specifically, monitoring heart and ventilation rates provide quantifiable measures of the stress response not always behaviorally observed. Crayfish are good model organisms for heart and ventilatory rate measurements due to the feasibility of recording, as well as the rich history known of the morphology of the crayfish, dating back to Huxley in 1888, and the well-studied typical behaviors.

Invertebrates show an autonomic sympathetic-like response similar to that described for vertebrates. The coordination of the cardio-vascular and ventilatory systems allows for measurement of a biological index in which to assess an organism internal state.

자유롭게 크레이 피쉬 이동에 마음을 Ventilatory 요금 대책

The fear, flight or fight response serves as the fundamental physiological basis for examining an organism's awareness of its environment under an ...

Historical View and Physiology Demonstration at the NMJ of the Crayfish Opener Muscle

Here we present some of the key important discoveries made with the opener neuromuscular (NMJ) preparation of crustaceans and illustrate that there is still much to learn from this model preparation. In understanding the history one can appreciate why even today this NMJ still offers a rich playground to address questions regarding pre- and post-synaptic function and plasticity. The viability and ease of access to the terminal for intracellular as well as extracellular electrophysiology and imaging are significant advantages. The mechanisms behind the modulation of vesicular kinetics and fusion within the high- and low-output terminals are begging for investigation. The preparation also offers a testable model system for computational assessments and manipulations to examine key variables in theoretical models of synaptic function, for example calcium dynamics during short-term facilitation. The synaptic complexity of active zone and statistical nature of quantal release is also an open area for future investigation both experimentally and computationally.

The opener muscle of the crayfish leg is presented for its historical importance and experimental versatility in muscle phenotype, synaptic physiology and plasticity.

크레이 피쉬 오프너 근육의 NMJ에서 역사보기 및 생리학 시범

Here we present some of the key important discoveries made with the opener neuromuscular (NMJ) preparation of crustaceans and illustrate that there is ...

Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons responsible for proprioception as they are detecting joint position and movement, and muscle tension. Electrical activity from crustacean proprioceptors and tension receptors is recorded by basic neurophysiological instrumentation, and a transducer is used to simultaneously measure force that is generated by stimulating a motor nerve. In addition, we demonstrate how to stain the neurons for a quick assessment of their anatomical arrangement or for permanent fixation. Staining reveals anatomical organization that is representative of chordotonal organs in most crustaceans. Comparing the tension nerve responses to the proprioceptive responses is an effective teaching tool in determining how these sensory neurons are defined functionally and how the anatomy is correlated to the function. Three staining techniques are presented allowing researchers and instructors to choose a method that is ideal for their laboratory.

Physiological and anatomical techniques are demonstrated to address function and structure for joint proprioceptors and muscle tension receptors in crustacean walking limbs.

게 사지에서 고유 감각과 긴장 수용체 : 학생 실험실 연습

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons ...

크레이 피쉬에 리플렉션하는 행동 응답 녹음

요약

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크레이 레그 신근 근육에 높은 및 낮은 출력 NMJs의 생리 레코딩

멤브레인 후보, 시냅틱 응답,의 연결 회로, Neuromodulation과 크레이를 사용하여 근육 조직학 : 학생 실험실 연습

크레이 피쉬 복부 근육 수용체 기관 : Proprioception에서 학생 실험실 연습

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역행 형광 라벨이 확인 된 신경 세포의 표적 세포 외 단일 단위 기록을 허용

왕새우 심장 및 동작 활동의 지속적인 비 침범 성 측정

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