Yayın için Harçlar Cerus Corp, INTERCEPT Kan Sistemi üreticisi tarafından sağlanır.

1. Tam Kan Toplama <ol><li> 450 ml üst gönüllü bağışçılardan kan toplayın / alt koleksiyonu lokal kan toplama kurallarına göre ayarlar. </li><li> Tam kan santrifüjleme ve ayırmasından önce bir soğutucu plaka üzerinde 2 saat arasında, en az saklanır. </li></ol> 2. Buffy Coat Hazırlık <ol><li> Kırmızı kan hücreleri, buffy coat, ve plazma: üç kat içine kan ayırmak için bir sabit döndürme ile tam kan santrifüjleyin. Ikinci Santrifüj değerleri ± 2 ° C&#39;de 22 dakika süreyle 4,880 11 RCF idi </li><li> Toplama kaplarına buffy coat bırakarak, üst uydu çantası ve alt uydu torbaya kırmızı kan hücreleri (RBC) içine plazma ifade etmek için bir otomatik kan ayırıcı kullanılır. Buffy kat sırasıyla yaklaşık 48 ml ve% 37, olan hacim ve hematokrit aralıkları demek hedefleyin. </li><li> Buffy-mont 22 ± 2 ° C&#39;de trombosit karıştırıcı gecede saklanır </li></ol><ol><li> Steril connect 7 buffy mont ve paralel çizgiler bulunan bir tren yapılandırmada SSP + trombosit katkı çözeltisi (PAS), 300 ml tren uzunluğunu azaltmak için; PAS trenin üstünde olmalıdır. PAS ve ilk buffy coat arasındaki çizgi Kelepçe. </li><li> Buffy coat birimler arasındaki steril bağlantıları açın ve buffy kat son kabın içine boşaltın. </li><li> Kaynak ve PAS ve ilk buffy coat arasındaki kelepçesini açın. Katkı çözelti üçte biri sırayla buffy coat kapların her biri yoluyla durulama izin verin. 2 kez daha kalan PAS yarısını kullanarak her zaman tekrarlayın. </li><li> Ortalama buffy coat havuz hacminin yaklaşık olarak 600 ml olmalıdır. Bireysel buffy kat hedef hacmi ve hematokrit yerine getirilirse, plazma oranı 32 olacak -% 47 daha sonra işlem içinde INTERCEPT patojen inaktivasyonu tedavisi için gerekli olduğu gibi. </li><li> Boş SSP + ve buffy atınkat kaplar. </li><li> Optimum trombosit kurtarma için, santrifüj önce 1 saat boyunca karıştırıcı üzerinde havuz tutmak. </li><li> Steril buffy coat havuza entegre leukoreduction filtre ile trombosit saklama kabı bağlayın. </li><li> Süspansiyon trombositlerin (9 dak, 20 sn için 462 RCF) gelen kırmızı kan hücreleri ayırmak için buffy coat havuz &quot;yumuşak spin&quot; gerçekleştirin. Trombosit saklama kabı içine leukoreduction filtre üzerinden otomatik bir kan ayırıcı kullanarak trombosit süspansiyonu ifade. </li><li> 420 ml&#39;lik hacim, 2,5-7,0 x 10 11 trombosit dozu ve ≤ 4 x 10 6 / ml kırmızı hücreleri - Daha önce açıklandığı gibi, işleme gereklilikleri trombosit süspansiyonu INTERCEPT 300 ml işleme özelliklerine uygun olduğundan emin olun. </li></ol> 4. Tedavi KESMENOKTASI <ol><li> Toplandıktan sonra, 1. Gün sonunda (gün 0 toplama günü) önce INTERCEPT tedaviyi gerçekleştirin. </li><li> INTERCEPT İşleme Seti unwrapŞeffaf plastik torbadan Çift Saklama Kapları ile. </li><li> Steril INTERCEPT işleme sette amotosalen kabın hortumuna trombosit süspansiyonu konteyner bağlayın. </li><li> Yerel gereksinimler aşağıdaki uygun kan ürünü tanımlama ile INTERCEPT işleme seti saklama kapları etiketleyin. </li><li> Trombositler asın ve aydınlatma kabına akmaya amotosalen çözüm sağlayan, ilk amotosalen kapsayıcısındaki alt kanül bölünürler. Trombositler aydınlatma kabına amotosalen konteyner akmasına izin amotosalen kapsayıcısındaki üst kanül kırın. </li><li> Yavaşça trombosit ve amotosalen karışımı karıştırın ve amotosalen kabına aydınlatma kabından hava ifade. </li><li> Hortumun yaklaşık 4 cm, doldurma borusuna trombosit karışım küçük bir miktar ifade eder. Bu tüp ve aydınlatma kabı hem de trombositler patojen inactivati ​​geçmesi sağlanırtedavi. </li><li> Aydınlatma konteyner ve amotosalen konteyner arasındaki boru mühürleyin. Aydınlatma konteyner uzanan boru yaklaşık 4 cm&#39;den daha bırak. Çıkarın ve atın boş trombosit ve amotosalen kaplar ve örnekleme torbalar üzerindeki kelepçe kapatın. </li><li> Soldaki büyük bölme içinde aydınlatma kap ve sağ tarafta daha küçük bölme içinde düzenleyici ile aydınlatıcı içine işleme grubu yerleştirin. </li><li> Aydınlatıcı içine bağışı kimliği, ürün kodu, ve işleme set lot numarası girmek için el barkod aygıtı kullanın. Metal kapağını kapatın ve aydınlatıcı grafik arayüzü istendiğinde, çekmeceyi kapatın. Aydınlatma başlatmak için &quot;Başlat&quot; düğmesine basın. </li><li> Aydınlatma sonra aydınlatıcıdan işleme seti kaldırın. Aydınlatıcı otomatik işlenmiş trombosit birim (ler) için tedavi raporu yazdırır. </li><li> Organizatörü konteyner açmak ve p asmaklatelets ve işlem seti, aydınlatma kabın çıkışındaki kanül kırmak ve trombositler bileşik emme cihazı (CAD) bir kaba akmasına izin verir. </li><li> Bir plazma çıkarıcı kullanarak aydınlatma kabına CAD kabından hava ifade, CAD gofret eğmemeye bakımı. </li><li> CAD konteynerin giriş noktasına yakın boru kapatılmalıdır. Çıkarın ve boş aydınlatma kabı atın. </li><li> En az 6 saat boyunca bir karıştırıcı üzerinde trombosit bağlı depolama kapları ile CAD konteyner, ancak en fazla 16 saat yerleştirin. Bu ≤ 2 uM&#39;lik bir konsantrasyona kalıntı amotosalen azalma ile sonuçlanacaktır. </li><li> CAD Tedaviden sonra, karıştırıcı gelen trombosit birimleri çıkarın. Trombositler asın. Kanül kırın ve trombosit saklama kapları içine akmasına izin verin. </li><li> CAD kabına saklama kapları havayı ifade eder. Rezidüel trombosit konsantresi geri akışı saklama kapları içine tarafından Letyerçekimi. Y-uydurma Yukarıda tüp mühür ve boş CAD kabı çıkarın. </li><li> Gerektiği gibi saklama kapları arasındaki yeniden dağıtın hacmi. Cilt ayarlamalar depolama konteynerleri tartı ile yapılır. Bir kaç santimetre saklama kabının giriş yukarıdaki her bir depolama konteyner için hortum mühür; 5.2 &#39;de tarif edildiği gibi bu, son ürünün bir steril bir örnek elde kolaylaştırır. </li></ol> 5. Ürün Örnekleme <ol><li> Rutin QC test için nihai depolama kapları saklama kapları üzerinde örnekleme kese kullanılarak kez tadılabilir. Bunu yapmak için, platelet birim iyice karıştırılmış sağlamak, daha sonra torba için kelepçeyi açmak ve birkaç kez sıkın. Kese trombositler ile doldurduktan sonra tüp mühürleyin. Uygun bir laboratuvar tüpüne trombosit örneği aktarın ve hemen testleri gerçekleştirin. </li><li> Bu tür bir çalışmada, doğrulama için olduğu gibi, depolama boyunca birden çok zaman noktasında örnekler elde etmek için, steril bağlamakTrombosit saklama kabı boru için yeni bir numune kabı. Trombositler de örnekleme konteynere aktarmak için önce karıştırılmalıdır emin olun. </li></ol> 6. In vitro Fonksiyonunun Değerlendirilmesi <ol><li> Bu validasyon çalışması için, in vitro değerlendirilmesi CAD tedavisi (Gün 1 veya Gün 2, CAD süresine bağlı olarak) sonra tekrar 4. Gün yapıldı (veya Gün 5) ve Günlük 7. Vitro ölçümlerde hacmi, trombosit sayımı, pH, dahil kan gazı (pO 2, pCO 2), glikoz, laktat ve dönen. </li><li> Cilt katkı maddesi çözelti içinde, trombositler &#39;in özgül ağırlık olarak 1.01 g / ml ile ağırlık ile tespit edildi. </li><li> Hemoglobin kontaminasyon bir renk skalası ile karşılaştırma kullanılarak görsel olarak değerlendirildi. </li><li> Dönen bir görsel olarak tespit edilmiştir. </li><li> Diğer testlerin metodolojisi için &quot;ekipman Tablosu&quot; na bakınız. </li></ol> 7. Temsilcisi Sonuçlar D üretme süreciouble doz buffy coat trombosit hacmi ve hematokrit için hedef özelliklerine uygun bireysel buffy mont üretimi ile başlar. Bu son işlem doğrulama sırasında bireysel buffy kat hematokrit ölçmek için pratik olmadığı gibi, biz sürekli olarak hedef hacmi ve hematokrit karşılamak olabilir sağlamak için elimizden buffy kat optimize etmek için ayrı bir çaba üstlenerek başladı. Tablo 1 de gösterildiği gibi, Optimize buffy kat 46, hacim ve hematokrit her ikisi de ± 2 ml ve 37 ±% 3, sırasıyla için hedef değerleri ile karşılaştırıldığında olumlu. Havuzlama sonra, buffy coat havuz hacminin ve hematokrit, sırasıyla, yumuşak sıkma santrifüj işleminden önce yaklaşık olarak 600 mL% 20 olmalıdır. Tablo 2 de gösterildiği gibi, havuzlar buffy coat 615 ortalama ± 5 ml; hematokrit 19 ortalama ±% 1. Bir çift doz trombosit kons içinde yumuşak sıkma santrifüj sonuçlarıINTERCEPT Kan Sistemi DS işleme seti kullanılarak patojen inaktivasyonu için girdi şartlarını karşılayacak entrate. INTERCEPT tedavi için anahtar giriş parametreleri hacmi, trombosit, plazma oranı ve RBC içerik bulunmaktadır. Ayrıca, buffy coat havuzu ile karşılaştırıldığında trombosit konsantresi içinde trombositlerin ≥% 75 kurtarmak hedefliyoruz. Yerel gereksinimlere Per, beyaz kan hücresi (WBC) kirlenme &lt;1x10 6 / birim olmalıdır. Trombosit, doğrulama içinde konsantre KESMENOKTASı tedavisi yanı sıra WBC kirlenme ve Tablo 3&#39;te gösterildiği gibi trombosit kurtarma için hedefler için anahtar parametreler araya. Patojen inaktivasyonu için INTERCEPT işlemi tek bir INTERCEPT işleme seti kullanarak çift doz trombosit konsantresi yapılır. Işlem seti, tedavi edilen birim yol tamamlanmasından az iki ayrı terapötik trombosit doz halinde bölünebilir izin veren iki tamamlayıcı depolama konteynerleri içermektedirogen inaktivasyonu süreci. Avrupa yönergeleri test birimlerinin% 75 ≥ 200x10 9 trombositler içermesini gerektirir başına terapötik dose1; İsveç&#39;teki yerel gereksinimler test birimlerinin% 75 içerdikleri&gt; doz başına 240x10 9 trombositler gerektirir. INTERCEPT Tedaviden sonra, ortalama trombosit içeriği 265 oldu ± 22 x10 9 (n = 24). Ayrıca, ünitelerin% 88 yerine veya terapötik doz başına 240x10 9 trombositler aştı; Bu Avrupa yönergeleri ve İsveç yasalarına hem dahilindedir. Çift doz buffy coat hazırlanması ve sırasıyla KESMENOKTASı tedavi süreçlerinin bir örnek için Şekil 1 ve 2&#39;ye bakınız. Bu doğrulama için, trombosit in vitro özellikleri INTERCEPT tedavisi (bireysel depolama kapları içine bölünmüş sonra yani) sonra konsantreleri ölçülür; parametreleri depolama 7 gün boyunca ölçüldü. Ortalama ve standart sapma için toplandıtrombosit dozunun, pH, pO2, pCO 2, laktat üretim ve glukoz tüketimi. Şekil 3, depolama, 7 gün boyunca KESMENOKTASı tedavi sonrası bölünme ürünlerinin her biri içinde KESMENOKTASı tedavi ve ortalama trombosit doz verilmeden önce iki doz trombosit konsantresi trombosit başlangıç ​​dozu ortalaması gösterilmiştir. Depolama sırasında Trombosit kaybı yaklaşık% 9 idi. Bu azalma konvansiyonel trombositlerin depolama sırasında trombositlerin beklenen kayıp farklı değildir. 2 Tablo 4 tek birimler halinde tedavi ve bölme sonra INTERCEPT trombositlerin in vitro özelliklerini özetlemektedir. Avrupa standartlarına Per, trombositlerin pH raf ömrünün sonuna kadar 6.4 üzerinde kalmalıdır. Işlem sırasında, trombosit pH değeri hafifçe trombosit konsantrasyon, ses ve trombosit sto gaz geçirgenliği esas damla konsantreöfke konteyner. Şekil 4, depolama, 7 gün boyunca bölünmüş trombosit ürünlerin pH göstermektedir. Depolama sırasında, pH kararlı olduğunu ve iyi işleme ihtiyaç içinde yapılmaktadır. Olarak Şekil 5A ve 5B, trombosit O2 tüketimi ve CO 2 de gösterildiği depolama 7 gün boyunca PL2410 kap içinde INTERCEPT trombositlerinde solunum devam etmektedir. Şekil 6A ve 6B, depolama, 7 gün boyunca laktat ve glikoz düzeyleri göstermektedir . Trombosit glukoz tüketimi ve laktat üretimi depolama 7 gün boyunca birbirleri ile tutarlıdır. 5 birim glikoz seviyesi daha az 1.11 mmol / l (glükoz tahlil için alt sınır) vardı. Özellikle, hacmi, trombosit, plazma oranı ve kırmızı bl; buffy coat hazırlanması ve havuzlama doğrulama üretilen trombosit olduğunu KESMENOKTASı tedavisi için giriş kriterlerini karşılayan konsantreleriood hücre kontaminasyonu. Nihai birimleri trombosit dozu ve pH dahil depolama 7 gün içinde geçerlilik kriterlerini karşıladı. <table border="1"><tbody><tr><td> Parametre </td><td> Hedef Aralığı </td><td> Sonuçlar ± SD </td></tr><tr><td> Hacim (ml) </td><td> ~ 48 </td><td> 46 ± 2 </td></tr><tr><td> Hematokrit (%) </td><td> ~ 37 </td><td> 37 ± 3 </td></tr><tr><td> Havuzlama önce zaman tutun </td><td> Karıştırıcı üzerinde Overnight </td><td> Karıştırıcı üzerinde Overnight </td></tr></tbody></table> Bireysel Buffy Palto (n = 19) Tablo 1. Özellikler. <table border="1"><tbody><tr><td> Parametre </td><td> Hedef Aralığı </td><td> Sonuçlar ± SD </td></tr><tr><td> Hacim (ml) </td><td> ~ 600 </td><td> 615 ± 5 </td></tr><tr><td> Hematocrit (%) </td><td> ~ 20 </td><td> 19 ± 1 </td></tr><tr><td> Santrifüj önce zaman tutun </td><td> Karıştırıcı üzerinde 1 saat </td><td> Karıştırıcı üzerinde 1 saat </td></tr></tbody></table> Buffy Coat Havuzları (n = 12) Tablo 2. Özellikler. <table border="1"><tbody><tr><td> Parametre </td><td> Hedef </td><td> Sonuçlar ± SD </td></tr><tr><td> Hacim (ml) </td><td> 370-420 </td><td> 404 ± 8 </td></tr><tr><td> Trombosit sayımı (x10 9 / birim) </td><td> 250 - 700 </td><td> 577 ± 62 </td></tr><tr><td> Trombosit kurtarma (%) Ortalama </td><td> ≥ 75 </td><td> 75 ± 4 </td></tr><tr><td> Plazma oranı (%) </td><td> 32-47 </td><td> 38 ± 1 </td></tr><tr><td> RBC (x10 6 / ml) </td><td> ≤ 4 </td><td> 1.2 ± 0.4 </td></tr><tr><td> WBC (x10 6 </s&gt; / birim) </td><td> ≤ 1 </td><td> 0.11 ± 0.1 </td></tr><tr><td> INTERCEPT (saat) önce zaman tutun </td><td> Günde 1 ≤ sonu </td><td> Günde 1 ≤ sonu </td></tr></tbody></table> Çift Doz Trombosit Tablo 3. Özellikleri (n = 12) konsantreler. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> Ortalama ± SD </td><td> Min </td><td> Maksimum </td></tr><tr><td> Hacim (ml) </td><td> 199 ± 16 </td><td> 182 </td><td> 236 </td></tr><tr><td> Trombosit sayımı (x10 9 / birim) </td><td> 265 ± 22 </td><td> 225 </td><td> 292 </td></tr><tr><td> pH (22 ° C) </td><td> 6.9 ± 0.1 </td><td> 6.8 </td><td> 7 </td></tr><tr><td> pO 2 (kPa) </td><td> 21.4 ± 4.8 </td><td> 12.8 </td><td> 27.3 </td></tr><tr><td> pCO 2 (kPa) </td><td> 4.3 &amp; plusmn; 0.4 </td><td> 3.3 </td><td> 4.9 </td></tr><tr><td> Laktat (mmol / l) </td><td> 9.1 ± 1.7 </td><td> 6.8 </td><td> 12.4 </td></tr><tr><td> Glukoz (mmol / l) </td><td> 5.3 ± 0.9 </td><td> 3.7 </td><td> 6.5 </td></tr></tbody></table> INTERCEPT Tedavi Trombositler Gün 1/2 (Tek Üniteleri, n = 24) Tablo 4. Özellikler. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/4414/4414fig1.jpg" /> Şekil 1. 7 buffy kat havuzundan bir çift doz trombosit konsantresi üretimi. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/4414/4414fig2.jpg" /> Şekil 2. INTERCEPT Kan Sistemi ile çift doz trombosit konsantresi Patojen inaktivasyon. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/4414/4414fig3.jpg" /> Şekil 3. Önce ve için trombosit dozu ortalamaINTERCEPT uygulamadan sonra 7 gün (n KESMENOKTASı önce = 12; KESMENOKTASı sonra n = 24). <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/4414/4414fig4.jpg" /> Şekil 4. KESMENOKTASI tedavisi (n = 24) sonra trombosit pH ± SD. <img alt="Şekil 5A" src="/files/ftp_upload/4414/4414fig5a.jpg" /> Şekil 5A. KESMENOKTASI tedavisi (n = 24) sonra pO 2 ± SD. <img alt="Şekil 5B" src="/files/ftp_upload/4414/4414fig5b.jpg" /> Şekil 5B. KESMENOKTASI tedavisi (n = 24) sonra pO 2 ± SD. <img alt="Şekil 6A" src="/files/ftp_upload/4414/4414fig6a.jpg" /> Şekil 6A. KESMENOKTASI tedavisi (n = 24) sonra laktat düzeyleri ± SD. <img alt="Şekil 6B&#39;de" src="/files/ftp_upload/4414/4414fig6b.jpg" /> Şekil 6B. &amp; Glukoz düzeyi ortalamaplusmn; SD KESMENOKTASI tedaviden sonra (n = 24).

<ol><li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guide+to+the+preparation%2C+use+and+quality+assurance+of+blood+components%22">Guide to the preparation, use and quality assurance of blood components</a>. , 16th, Council of Europe. (2010).</li>
<li>Van Rhenen, D. J., Vermeij, J., Mayaudon, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+characteristics+of+S-59+photochemically+treated+platelet+concentrates+derived+from+buffy+coats%5BTitle%5D)+AND+%22Vox+Sang%22%5BJournal%5D)">Functional characteristics of S-59 photochemically treated platelet concentrates derived from buffy coats.</a> Vox Sang. 79, 206-214 (2000).</li>
<li>Wollowitz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+DNA+and+RNA+in+pathogens%3A+mode+of+action+of+amotosalen+HCl%5BTitle%5D)+AND+%22Transfus.+Med.+Rev%22%5BJournal%5D)">Targeting DNA and RNA in pathogens: mode of action of amotosalen HCl.</a> Transfus. Med. Rev. 31, 11-16 (2004).</li>
<li>Irsch, J., Lin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogen+Inactivation+of+Platelet+and+Plasma+Blood+Components+for+Transfusion+Using+the+INTERCEPT+Blood+SystemTM%5BTitle%5D)+AND+%22Transfus.+Med.+Hemother%22%5BJournal%5D)">Pathogen Inactivation of Platelet and Plasma Blood Components for Transfusion Using the INTERCEPT Blood SystemTM.</a> Transfus. Med. Hemother. 38, (2011).</li>
<li>Lin, L., Dikeman, R., Molini, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photochemical+treatment+of+platelet+concentrates+with+amotosalen+and+long-wavelength+ultraviolet+light+inactivates+a+broad+spectrum+of+pathogenic+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Photochemical treatment of platelet concentrates with amotosalen and long-wavelength ultraviolet light inactivates a broad spectrum of pathogenic bacteria.</a> Transfusion. 44, 1496-1504 (2004).</li>
<li>Lin, L., Hanson, C., Alter, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+of+viruses+in+platelet+concentrates+by+photochemical+treatment+with+amotosalen+and+long-wavelength+ultraviolet+light%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Inactivation of viruses in platelet concentrates by photochemical treatment with amotosalen and long-wavelength ultraviolet light.</a> Transfusion. 45, 580-590 (2005).</li>
<li>Allain, J. P., Cianco, C., Blajchman, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protecting+the+blood+supply+from+emerging+pathogens%3A+the+role+of+pathogen+inactivation%5BTitle%5D)+AND+%22Transfus.+Med.+Rev%22%5BJournal%5D)">Protecting the blood supply from emerging pathogens: the role of pathogen inactivation.</a> Transfus. Med. Rev. 19, 110-126 (2005).</li>
<li>Stramer, S., Hollinger, F., Katz, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emerging+infectious+disease+agents+and+their+potential+threat+to+transfusion+safety%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Emerging infectious disease agents and their potential threat to transfusion safety.</a> Transfusion. 49, 1S-29S (2009).</li>
<li>Nussbaumer, W., Allesdorfer, D., Grabmer, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevention+of+transfusion+of+platelet+components+contaminated+with+low+levels+of+bacteria%3A+a+comparison+of+bacteria+culture+and+pathogen+inactivation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Prevention of transfusion of platelet components contaminated with low levels of bacteria: a comparison of bacteria culture and pathogen inactivation methods.</a> Transfusion. 47, 1125-1133 (2007).</li>
<li>Schlenke, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protection+against+Transfusion-Associated+Graft-versus-Host+Disease+in+Blood+transfusion%3A+Is+Gamma-Irradiation+the+Only+Answer%3F+Transfus%5BTitle%5D)+AND+%22Med.+Hemother%22%5BJournal%5D)">Protection against Transfusion-Associated Graft-versus-Host Disease in Blood transfusion: Is Gamma-Irradiation the Only Answer? Transfus.</a> Med. Hemother. 31, 24-31 (2004).</li>
<li>Lin, L., Corash, L., Osselear, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protection+Against+TA-GVHD+Due+to+Platelet+Transfusion+By+Using+Pathogen+Inactivation+with+the+INTERCEPT+Blood+SystemTM+-+Gamma+Irradiation+is+Not+the+Only+Answer%5BTitle%5D)+AND+%22Haematologica%22%5BJournal%5D)">Protection Against TA-GVHD Due to Platelet Transfusion By Using Pathogen Inactivation with the INTERCEPT Blood SystemTM - Gamma Irradiation is Not the Only Answer.</a> Haematologica. 95 (Extra 1), 230-237 (2010).</li>
<li>Corash, L., Lin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+processes+for+inactivation+of+leukocytes+to+prevent+transfusion-associated+graft-verus-host+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Bone+Marrow+Transplant%22%5BJournal%5D)">Novel processes for inactivation of leukocytes to prevent transfusion-associated graft-verus-host disease.</a> Bone Marrow Transplant. 33, 1-7 (2004).</li>
</ol>

Bu makalenin Üretim ve Serbest Giriş Cerus tarafından desteklenmektedir.

Buffy coat trombositler birkaç işlem adımları gerektiren trombosit adet üretim toplam maliyeti çarpanlarına olmalıdır personeli zaman, sarf malzemeleri, ekipman ve atıklar dahil post-toplama maliyetleri, sonuç. Her buffy coat gelen trombosit verimi (buffy coat hacmi ve hematokrit optimize yoluyla) Geliştirilmesi yedi buffy kat havuzundan bir çift doz buffy coat trombosit ünitesi üretimini sağlar. Bu iyileştirme işlemi gerçekleştirildiğinde, buffy kat sayısı trombosit doz, sabit bir sayı üretmek için gerekli azaltılabilir, böylece buffy kat genel kullanımını geliştirmek ve ilave trombosit üretimi (PC) konsantre olanak tanır. Personel zaman yanı sıra havuzlama setleri, trombosit katkı çözeltisi, steril bağlantısı gofret, filtre setleri ve santrifüj işlemleri gibi sarf ve ekipman maliyetlerini% 50 kadar azalır. Trombosit üretimini optimize edip, thi ilişkili maliyetleri azaltmanın yanı sıras havuzlama yöntemi bize de bizim transfüzyon alıcılara gelişmiş koruma sağlamak için izin, KESMENOKTASI ikili saklama kabı işleme seti ile kullanmak için giriş gereksinimi karşılayan bir trombosit konsantresi (PC) üretebilirsiniz. Patojen inaktivasyonu için INTERCEPT Kan Sistemi nükleik asit çoğaltma ve hastalığa neden yapamaz render patojenlerin önlenmesi, kovalent çapraz bağ DNA ve RNA amotosalen ve ultraviyole A (UVA) ışık kullanır. 3. Bu etkili virüs, bakteri gibi patojenlerin geniş bir yelpaze inaktive , parazitler ve kirletici donör beyaz kan hücreleri. 4-6 KESMENOKTASI yeni bir test geliştirdi ve sonuçta uygulamak için önemli bir finansal yatırım gerektiriyor ise tarihsel önemli bir gecikme içerir çıkan patojenler için mevcut test paradigma, bir alternatif sağlar zaman bir test kullanılabilir hale gelir. 7,8 ayrıca gereksiz emniyet measu bir alternatif sağlayabilirbakteriyel algılama 9 ve gama ışınlama gibi res. Ayrıca 10-12, KESMENOKTASI bize çift doz trombosit birimleri tedavi sağlayan üretim verimliliği faydaları ve bize bizim bütçe uygun olur. KESMENOKTASı ve çift doz buffy coat yöntemi kan merkezi iş akışları çeşitli adapte edilebilir. Örnek olarak, tam kan koleksiyon 500 ml &#39;ye edilebilir; koleksiyonları da 22 gece boyunca saklanabilir ° C ayırma ile elde edilebilir. Buna ek olarak, alternatif bir buffy coat biriktirme yöntemi mümkün değildir (örneğin bir ahtapot yöntem yerine bir tren metod) ve / veya otomatik bir cihaz (örneğin TACSI) geri kalan kırmızı hücrelerden ikinci santrifüjleme ve trombosit süspansiyonu ayrılması için kullanılabilmektedir . Artmış trombosit içerik gerekiyorsa, çeşitli teknikler trombosit sayımı, tam kan gecelik inkübasyon, adjus dayalı donörlerin ön seçimi de dahil olmak üzere mevcutsantrifüj ayarlar tment, 7 ya da yerine 8 buffy kat bir havuz sunulabilir. Araya gelme sınırlaması nedeniyle mevcut ve santrifüj kova kapasitesi setleri, buffy coat havuzunun toplam hacmi yaklaşık 600 ml olmalıdır. Bu protokolü açıklanan santrifüj işlemi ve ayarlar 7 buffy kat bir havuz için KESMENOKTASI parametreleri karşılayan ürünü elde etmek için optimize edilmiştir. Havuzda buffy kat sayısı değiştirilirse santrifüj ayarlarını modifiye edilmelidir. Bazı ülkelerde, asgari trombosit dozu yüksek ve QC gereksinimleri İsveç&#39;te daha katıdır. Bu nedenle, bizim sonuçlar evrensel olarak uygulanabilir olmayabilir. Bu ülkelerde, önceki KESMENOKTASI tedaviye çift doz PC KESMENOKTASI tedavi ve bölünme sonra yerel gereksinimlerini karşılamak amacıyla trombositlerin sayıda içermesi gerekir. Çünkü maksimum trombosit içeriği ve tedavi volümü for INTERCEPT sırasıyla 7x10 11 trombosit ve 420 ml &#39;dir, KESMENOKTASI işleme gereksinimlerini aşan veya iki terapötik doz bölünebilir yetersiz trombosit içeriğe sahip birimlerinin yüzdesi gibi trombosit dozu, QC kriterler için yerel gereksinimler gibi faktörlere bağlı olarak değişir buffy coat optimizasyon sonuçları ve üretim istikrarı. Bir çift doz PC INTERCEPT işleme gereksinimlerini aşarsa, elle gereksinimlerini karşılamak için ayarlanabilir ve daha sonra tedavi edilebilir. 7-buffy coat havuzu KESMENOKTASI sonra bir çift doz ürün için yetersiz trombosit verir bu birkaç kez, biz KESMENOKTASI tedavi gerçekleştirmek için değil seçer. Alternatif olarak, diğer kan merkezleri açarak tüm birimler üzerinde patojen inaktivasyonu gerçekleştirerek, tek doz KESMENOKTASI işleme seti (Büyük Hacimli kümesi yani) ile PC tedavi ve tek bir büyük terapötik doz olarak PC saklamayı seçebilirsiniz. Biz karşılamak sağlamak için bizimQC gereksinimleri ve patojen mümkün olan trombosit birimlerinin çok, biz havuza zaman havuzda 5.6x10 11 trombositlerin az trombosit içeriği neden olur, donör trombosit sayımı esas buffy kat seçin inaktive eder. Bu INTERCEPT tedavi sonrası iki tedavi edici dozlarda üretmek için yeterli trombosit içeriği sağlar. Bizim doğrulama 7 tam kan türetilmiş buffy coat birimleri başarıyla toplanmış ve trombositler için INTERCEPT işlemi ile tedavi, imalat (İsveççe gereksinimleri ve Avrupa kılavuzlar) ve hastaların desteği için kabul kriterlerini karşılayan 2 patojen inaktive trombosit ürünler elde edilebileceğini göstermektedir klinik uygulama kılavuzları ve İsveç&#39;te standart trombosit infüzyonu yöntemlere göre trombosit transfüzyonu gerektiren.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Whole blood donation, primary separation, and platelet production</td></tr><tr><td>Blood collection pack</td><td>Fenwal</td><td>R6485</td><td>Top/Bottom set</td></tr><tr><td>Automated component extractor</td><td>Fenwal</td><td>Optipress-II</td><td></td></tr><tr><td>Blood mixer and balance system</td><td>Baxter</td><td>Easymix V3</td><td></td></tr><tr><td>Platelet leukocyte filtration set</td><td>Fenwal</td><td>K4R7042</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>Hettich</td><td>Roto Silenta 63 RS</td><td>Version 5.5</td></tr><tr><td>Platelet additive solution - SSP+</td><td>MacoPharma</td><td>SSP2030U</td><td>300 ml</td></tr><tr><td>Sterile tubing welder</td><td>Terumo</td><td>T-SCD</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">INTERCEPT treatment &amp;amp; storage</td></tr><tr><td>INTERCEPT processing set</td><td><a href="http://www.interceptbloodsystem.com/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Cerus</a></td><td>INT2503</td><td>Dual Storage (DS) set</td></tr><tr><td>INTERCEPT Illuminator</td><td><a href="http://www.interceptbloodsystem.com/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Cerus</a></td><td>INT100</td><td></td></tr><tr><td>PC sample pack</td><td>Fenwal</td><td>FTX 1122</td><td></td></tr><tr><td>Incubator</td><td>Helmer</td><td>PC2200/PC3200</td><td></td></tr><tr><td>Agitator</td><td>Helmer</td><td>PF48H/PF96H</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Evaluation of &lt;em&gt;in vitro&lt;/em&gt; Platelet Function</td></tr><tr><td>Blood gas analyzer</td><td>Radiometer</td><td>ABL 735</td><td>Used for pH, blood gases, and lactate measurement</td></tr><tr><td>Chemistry system</td><td>Ortho Clinical Diagnostic</td><td>Vitros 5.1</td><td>Used for glucose measurement</td></tr><tr><td>Hematology analyzer</td><td>Boule Medical AB</td><td>Medonic CA620-Cellguard</td><td>Used for platelet count measurement</td></tr><tr><td>Flow cytometer</td><td>BD</td><td>FACSCanto</td><td>Used for white blood cell measurement</td></tr></tbody></table>

preparation and pathogen inactivation of double dose buffy coat platelet products using the intercept blood system

Kan merkezleri maksimize üretim aldıkları kan ürünü bağışlardan verimi yanı sıra transfüzyon bulaşan hastalıklardan korunma dahil transfüzyon hastalar için güvenlik en üst düzeyde sağlanması da dahil olmak üzere pek çok sorun ile karşı karşıyayız. Bu sarf malzemeleri, ekipman, atık, ve diğerleri arasında personel giderleri de dahil olmak üzere işletme giderleri en aza indiren bir mali açıdan sorumlu bir şekilde yerine getirmesi gerekir. Çeşitli yöntemler trombosit transfüzyonu konsantreleri üretmek için kullanılabilir. En yaygın olanlarından biri, tek bir terapötik trombosit ünitesi (birim başına ya da yerel yönetmeliklere başına ≥ 2,0 x10 11 trombositler) altı tam kan bağış kadar gelen buffy coat tabakası havuzu tarafından hazırlanan olduğu buffy coat yöntemdir. &quot;Çift doz&quot; tam kan türetilmiş trombosit üretimi için bir prosedür sadece son zamanlarda geliştirilmiştir. Hazırlanması için yeni bir yöntem olup burada sunulançift ​​doz tam kan türetilmiş trombosit 7 buffy mont ve sonradan patojen inaktivasyonu için INTERCEPT Kan Sistemi ile çift doz birimleri tedavi havuzları yoğunlaşmaktadır. INTERCEPT virüsler, bakteriler, parazitler ve bağışlanan kan mevcut olabilir kirlenmesine donör beyaz hücreleri etkisiz hale geliştirilmiştir. , Çift Saklama Kapları (&quot;DS kümesi&quot;) ile ayarlayın INTERCEPT İşleme kullanarak çift doz buffy coat yöntemi ile KESMENOKTASI eşleştirme böylece hasta güvenliği maksimize, kan merkezleri tek bir patojen inaktivasyonu işleme seti kendi çift doz birimlerinin her tedavi sağlar maliyetleri en aza indirirken. Çift doz buffy coat yöntemi az buffy kat gerektirir ve tek doz buffy coat trombosit birimlerin hazırlanması ve tedavi ile karşılaştırıldığında% 50 (örneğin havuzlama setleri, filtre setleri, trombosit katkı çözümü ve steril bağlantı gofret) varan sarf kullanımını azaltır . Diğer maliyet tasarrufu daha az atık, daha az ekipman Maintenan dahilce, düşük güç gereksinimleri, personel zamanı azalır ve daha düşük toplama maliyeti aferez teknikle karşılaştırıldığında.

Watch this Scientific Journal Video about Preparation and Pathogen Inactivation of Double Dose Buffy Coat Platelet Products using the INTERCEPT Blood System at JoVE.com

Preparation and Pathogen Inactivation of Double Dose Buffy Coat Platelet Products using the INTERCEPT Blood System

Bu makalede, tam kan bağışlarından hazırlanmıştır ve patojen inaktivasyonu için INTERCEPT Kan Sistemi ile tedavi çift doz buffy coat trombosit konsantreleri üretmek için Örebro Üniversitesi Hastanesi tarafından kullanılan işlem açıklanmaktadır.<em&gt; In vitro</emNihai trombosit birimlerin&gt; kaliteli depolama 7 gün içinde değerlendirilir.

INTERCEPT Kan Sistemi kullanılarak hazırlanması ve Çift Doz Buffy Coat Trombosit Ürünleri Patojen inaktivasyon

Blood centers are faced with many challenges including maximizing production yield from the blood product donations they receive as well as ensuring the ...

preparation-pathogen-inactivation-double-dose-buffy-coat-platelet

Research

JoVE Journal

Medicine

28.6K Görüntüleme.  Örebro University Hospital. Bu makalede, tam kan bağışlarından hazırlanmıştır ve patojen inaktivasyonu için INTERCEPT Kan Sistemi ile tedavi çift doz buffy coat trombosit konsantreleri üretmek için Örebro Üniversitesi Hastanesi tarafından kullanılan işlem açıklanmaktadır. In vitro kaliteli depolama 7 gün içinde değerlendirilir.

Video: Preparation and Pathogen Inactivation of Double Dose Buffy Coat Platelet Products using the INTERCEPT Blood System

Microfluidic Flow Chambers Using Reconstituted Blood to Model Hemostasis and Platelet Transfusion In Vitro

Blood platelets prepared for transfusion gradually lose hemostatic function during storage. Platelet function can be investigated using a variety of (indirect) in vitro experiments, but none of these is as comprehensive as microfluidic flow chambers. In this protocol, the reconstitution of thrombocytopenic fresh blood with stored blood bank platelets is used to simulate platelet transfusion. Next, the reconstituted sample is perfused in microfluidic flow chambers which mimic hemostasis on exposed subendothelial matrix proteins. Effects of blood donation, transport, component separation, storage and pathogen inactivation can be measured in paired experimental designs. This allows reliable comparison of the impact every manipulation in blood component preparation has on hemostasis. Our results demonstrate the impact of temperature cycling, shear rates, platelet concentration and storage duration on platelet function. In conclusion, this protocol analyzes the function of blood bank platelets and this ultimately aids in optimization of the processing chain including phlebotomy, transport, component preparation, storage and transfusion.

Microfluidic Flow Chambers Using Reconstituted Blood to Model Hemostasis and Platelet Transfusion In Vitro

Platelet transfusion and hemostasis was modeled using blood reconstitution and microfluidic flow chambers to investigate the function of blood banking platelets. The data demonstrate the consequences of platelet storage lesion on hemostasis, in vitro.

Mikroakışkan Akış Chambers Hemostaz ve Trombosit Transfüzyon Model Sulandırılarak Kan kullanma<em&gt; İn Vitro</em

Blood platelets prepared for transfusion gradually lose hemostatic function during storage. Platelet function can be investigated using a variety of ...

Biyomühendislik

Treatment of Platelet Products with Riboflavin and UV Light: Effectiveness Against High Titer Bacterial Contamination

Contamination of platelet units by bacteria has long been acknowledged as a significant transfusion risk due to their post-donation storage conditions. Products are routinely stored at 22 &#176;C on an agitating shaker, a condition that can promote bacterial growth. Although the total number of bacteria believed to be introduced into a platelet product is extremely low, these bacteria can multiply to a very high titer prior to transfusion, potentially resulting in serious adverse events. The aim of this study was to evaluate a riboflavin based pathogen reduction process against a panel of bacteria that have been identified as common contaminants of platelet products. This panel included the following organisms: S. epidermidis, S. aureus, S. mitis, S. pyogenes, S. marcescens, Y. enterocolitica, B. neotomae, B. cereus, E. coli, P. aeruginosa and K. pneumoniae. Each platelet unit was inoculated with a high bacterial load and samples were removed both before and after treatment. A colony forming assay, using an end point dilution scheme, was used to determine the pre-treatment and post-treatment bacterial titers. Log reduction was calculated by subtracting the post-treatment titer from the pre-treatment titer. The following log reductions were observed: S. epidermidis 4.7 log (99.998%), S. aureus 4.8 log (99.998%), S. mitis 3.7 log (99.98%), S. pyogenes 2.6 log (99.7%), S. marcescens 4.0 log (99.99%), Y. enterocolitica 3.3 log (99.95%), B. neotomae 5.4 log (99.9996%), B. cereus 2.6 log (99.7%), E. coli &#8805;5.4 log (99.9996%), P. aeruginosa 4.7 log (99.998%) and K. pneumoniae 2.8 log (99.8%). The results from this study suggest the process could help to lower the risk of severe adverse transfusion events associated with bacterial contamination.

The storage conditions of platelet products create an ideal environment for bacterial contaminants to multiply to dangerous levels. The goal of this study was to use a colony forming assay to evaluate a riboflavin based pathogen reduction process against high titer bacterial contamination in human platelet products.

Riboflavin ile Trombosit Ürünleri ve UV Işık Tedavisi: Yüksek Titre Bakteriyel Kontaminasyon Karşı Etkinliği

Contamination of platelet units by bacteria has long been acknowledged as a significant transfusion risk due to their post-donation storage conditions. ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Rapid Fractionation and Isolation of Whole Blood Components in Samples Obtained from a Community-based Setting

Collection and processing of whole blood samples in a non-clinical setting offers a unique opportunity to evaluate community-dwelling individuals both with and without preexisting conditions. Rapid processing of these samples is essential to avoid degradation of key cellular components. Included here are methods for simultaneous peripheral blood mononuclear cell (PBMC), DNA, RNA and serum isolation from a single blood draw performed in the homes of consenting participants across a metropolitan area, with processing initiated within 2 hr of collection. We have used these techniques to process over 1,600 blood specimens yielding consistent, high quality material, which has subsequently been used in successful DNA methylation, genotyping, gene expression and flow cytometry analyses. Some of the methods employed are standard; however, when combined in the described manner, they enable efficient processing of samples from participants of population- and/or community-based studies who would not normally be evaluated in a clinical setting. Therefore, this protocol has the potential to obtain samples (and subsequently data) that are more representative of the general population.

We outline a methodology for the processing of whole blood to obtain a variety of components for further analysis. We have optimized a streamlined protocol that enables rapid, high-throughput simultaneous processing of whole blood samples in a non-clinical setting.

Topluluk tabanlı Ayar Elde Edilen Örneklerin hızlı Fraksiyonlama ve Tam Kan Bileşenlerinin İzolasyonu

Collection and processing of whole blood samples in a non-clinical setting offers a unique opportunity to evaluate community-dwelling individuals both ...

Tıp

Investigating von Willebrand Factor Pathophysiology Using a Flow Chamber Model of von Willebrand Factor-platelet String Formation

Von Willebrand factor (VWF) is a multimeric glycoprotein coagulation factor that mediates platelet adhesion and aggregation at sites of endothelial damage and that carries factor VIII in the circulation. VWF is synthesized by endothelial cells and is either released constitutively into the plasma or is stored in specialized organelles, called Weibel-Palade bodies (WPBs), for on-demand release in response to hemostatic challenge. Procoagulant and proinflammatory stimuli can rapidly induce WPB exocytosis and VWF release. The majority of VWF released by endothelial cells circulates in the plasma; however, a proportion of VWF is anchored to the endothelial cell surface. Under conditions of physiological shear, endothelial-anchored VWF can bind to platelets, forming a VWF-platelet string that may represent the nidus of thrombus formation. A flow chamber system can be used to visually observe the release of VWF from endothelial cells and the subsequent platelet capture in a manner that is reproducible and relevant to the pathophysiology of VWF-mediated thrombus formation. Using this methodology, endothelial cells are cultured in a flow chamber and are subsequently stimulated with secretagogues to induce WPB exocytosis. Washed platelets are then perfused over the activated endothelium. The platelets are activated and subsequently bind to elongated VWF strings in the direction of fluid flow. Using extracellular histones as a procoagulant and proinflammatory stimulus, we observed increased VWF-platelet string formation on histone-treated endothelial cells compared to untreated endothelial cells. This protocol describes a quantitative, visual, and real-time assessment of the activation of VWF-platelet interactions in models of thrombosis and hemostasis.

In this paper, we describe a method to assess endothelial von Willebrand factor release and the subsequent platelet capture under fluid shear stress in response to inflammatory stimuli using an in vitro flow chamber system.

Soruşturma von Willebrand faktör patofizyolojisi kullanarak bir akışı odası Model von Willebrand faktör-trombosit dize oluşumu

Von Willebrand factor (VWF) is a multimeric glycoprotein coagulation factor that mediates platelet adhesion and aggregation at sites of endothelial damage ...

Routine Screening Method for Microparticles in Platelet Transfusions

Platelet inventory management based on screening microparticle content in platelet concentrates is a new quality improvement initiative for hospital blood banks. Cells fragment off microparticles (MP) when they are stressed. Blood and blood components may contain cellular fragments from a variety of cells, most notably from activated platelets. When performing their roles as innate immune cells and major players in coagulation and hemostasis, platelets change shape and generate microparticles. With dynamic light scattering (DLS)-based microparticle detection, it is possible to differentiate activated (high microparticle) from non-activated (low microparticle) platelets in transfusions, and optimize the use of this scarce blood product. Previous research suggests that providing non-activated platelets for prophylactic use in hematology-oncology patients could reduce their risk of becoming refractory and improve patient care. The goal of this screening method is to routinely differentiate activated from non-activated platelets. The method described here outlines the steps to be performed for routine platelet inventory management in a hospital blood bank: obtaining a sample from a platelet transfusion, loading the sample into the capillary for DLS measurement, performing the DLS test to identify microparticles, and using the reported microparticle content to identify activated platelets.

Platelet inventory management based on screening microparticle content in platelet concentrates is a new quality improvement initiative in hospital blood banks. The goal is to differentiate activated from non-activated platelets to optimize the use of platelets. Providing non-activated platelets to hematology-oncology patients might reduce their high risk to become refractory.

Trombosit transfüzyonları Microparticles için yöntem eleme rutin

Platelet inventory management based on screening microparticle content in platelet concentrates is a new quality improvement initiative for hospital blood ...

<meta charset="utf8"></head><body>Travma ve Transfüzyonda Trombosit Fonksiyonunu Değerlendirme Platformu

Microfluidics in Assessing Platelet Function

Microfluidics incorporate physiologically relevant substrates and flows that mimic the vasculature and are, therefore, a valuable tool for studying aspects of thrombosis and hemostasis. At high-shear environments simulating arterial flow, a microfluidic assay facilitates the study of platelet function, as platelet-rich thrombi form in a localized stenotic region of a flow channel. Utilizing devices that allow for small sample volume can additionally aid in evaluating platelet function under flow from volume-limited patient samples or animal models. Studying trauma patient samples or samples following platelet product transfusion may aid in directing therapeutic strategies for patient populations in which platelet function is critical. Effects of platelet inhibition via pharmacological agents can also be studied in this model. The objective of this protocol is to establish a microfluidic platform that incorporates physiologic flow, biological surfaces, and relevant hemostatic mechanisms to assess platelet function with implications for the study of trauma induced coagulopathy and transfusion medicine.

<meta charset="utf8"></head><body>Trombosit Fonksiyonunun Değerlendirilmesinde Mikroakışkanlar

Platelet function under flow can be assessed and simulated hemostatic resuscitation can be modeled using a microfluidic device, which has applications in trauma and transfusion medicine.

Trombosit Fonksiyonunun Değerlendirilmesinde Mikroakışkanlar

Microfluidics incorporate physiologically relevant substrates and flows that mimic the vasculature and are, therefore, a valuable tool for studying ...

İmmünomanyetik Boncuklar Kullanarak Yüksek Verimli PBMC İzolasyonu

Isolating Human Peripheral Blood Mononuclear Cells from Buffy Coats via High Throughput Immunomagnetic Bead Separation

Peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) are a heterogeneous population of monocytes and lymphocytes. Cryopreserved PBMCs have stable viability in long-term storage, making them an ideal cell type for many downstream research purposes, including flow cytometry, immunoassays, and genome sequencing. Typically, PBMCs are isolated via&#160;density gradient centrifugation, however, it is a low-throughput workflow that is difficult and costly to scale. This article presents a high-throughput workflow using a magnetic bead-based PBMC isolation method that is quick to implement. Total cell concentration, viability, and population distribution with PBMCs obtained using density gradient isolation were compared, and cell viability and proportion of cell types were comparable for both techniques. Isolated PBMCs demonstrated over 70% viability up to 9 days after blood collection, although yield decreased by half after 5 days compared to PBMCs processed within 24 h of collection. In summary, this article describes a PBMC protocol that utilizes a bead-based approach to adapt to a high throughput workflow and demonstrates that both manual and automated bead-based methods can increase processing capacity and provide flexibility for various budgets.

Yazar Spotlight: PBMC İzolasyonundaki Gelişmeler - Araştırmada Verimi ve Tutarlılığı Artırma

This protocol details a high-throughput automation-compatible method to isolate human peripheral blood mononuclear cells for biobanking and other purposes.

İnsan Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinin Buffy Coats'tan Yüksek Verimli İmmünomanyetik Boncuk Ayırma ile İzole Edilmesi

Peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) are a heterogeneous population of monocytes and lymphocytes. Cryopreserved PBMCs have stable viability in ...

INTERCEPT Kan Sistemi kullanılarak hazırlanması ve Çift Doz Buffy Coat Trombosit Ürünleri Patojen inaktivasyon

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Mikroakışkan Akış Chambers Hemostaz ve Trombosit Transfüzyon Model Sulandırılarak Kan kullanma

Riboflavin ile Trombosit Ürünleri ve UV Işık Tedavisi: Yüksek Titre Bakteriyel Kontaminasyon Karşı Etkinliği

Topluluk tabanlı Ayar Elde Edilen Örneklerin hızlı Fraksiyonlama ve Tam Kan Bileşenlerinin İzolasyonu

Soruşturma von Willebrand faktör patofizyolojisi kullanarak bir akışı odası Model von Willebrand faktör-trombosit dize oluşumu

Trombosit transfüzyonları Microparticles için yöntem eleme rutin

Trombosit Fonksiyonunun Değerlendirilmesinde Mikroakışkanlar

Trombosit Fonksiyonunun Değerlendirilmesinde Mikroakışkanlar

Trombosit Fonksiyonunun Değerlendirilmesinde Mikroakışkanlar

İnsan Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinin Buffy Coats'tan Yüksek Verimli İmmünomanyetik Boncuk Ayırma ile İzole Edilmesi

İnsan Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinin Buffy Coats'tan Yüksek Verimli İmmünomanyetik Boncuk Ayırma ile İzole Edilmesi