Name: dissection of the mouse pancreas for histological analysis and metabolic profiling
Uploaded: 2017-08-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 21 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling at JoVE.com

MAK kabul eder bu işten Ulusal Sağlık Enstitüleri için destek / Ulusal Kanser Enstitüsü vermek sayı - 1R15CA152985-01A1. Bu proje aynı zamanda Miami Üniversitesi lisans Araştırma Ödülü programı, Miami Üniversitesi doktora-lisans fırsatları burs programı ve Miami Üniversitesi yaz bilim programı tarafından desteklenmiştir.

videoda yürütülen ve aşağıda açıklanan yordamları kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi (IACUC) Miami Üniversitesi'nde tarafından onaylanmış olan.
 1. hazırlanması ve uyarıcı Test <ol><li>Ağımdaki iki farklı alanlara cerrahi işlem, ameliyat masasına ve sonrası operasyon Masası için. Her iki alanda tüm malzeme ve gerekli aletleri ile sahne.
	Bacalı bir başlık altında <ol><li>sahne işletim tablo. Yordamı sürekli ve engelsiz performansını sağlayan bir şekilde ekipman ile tablo düzenlemek.</li>
		<li>Ameliyat sonrası bir tablo aynı odada ve operasyonun ana tablo yakınındaki kurmak. Prosedür boyunca steril ortam olarak her iki tabloları korumak.</li>
	</ol></li> <li>Yer şu ameliyat masasında sağlar: bir cam kavanoz kapağı, bir 15 mL tüp, Cerrahi makas, % 70 etanol, iki köpük panoları, iki forseps, iki 1 mL 21 ölçer şırınga, iki 50 mL tüp, bir santrifüj tüpü bir sıkma şişe bir çift ile , bir kriyojenik şişe, dört cerrahi yastıkları, on iğne, sterilize mendil dispenser ve "Sharps" konteyner.</li>
	<li>Sonrası işlemi masaya aşağıdaki malzemeleri koyun: bir analitik denge, bir 4 L dewar sıvı azot, sığ geniş ağız dewar, kayan bir microtube raf, bir cerrahi makas çifti, iki forseps, dört kriyojenik şişeleri ve bir dispenser steril mendil.</li>
	<li>Doldurmak bir 50 mL ve bir 15 mL tüp % 75 birime formalin ile.</li>
	<li>Her köşede bir PIN kullanarak bir cerrahi pedi diseksiyon panosu olarak hizmet etmek bir yaklaşık 30 cm x 30 cm köpük kuruluna yapıştırmayın. Kalan dört pimleri işlem sırasında kullanın. Organları ameliyat sonrası tabloya aktarmak için cerrahi bir yastık ile daha küçük bir köpük tahta hazırlayın. 
	Dikkat: Isoflurane (% 99.9) bir toksik kimyasal ve havalandırma mahallede Emanet atık anestezik gaz 8 atma gelen en yüksek düzeyde sağlamak için kullanılmalıdır. Araştırmacılar isoflurane kullanarak açık bırak yöntemi ile ilişkili riskleri hakkında daha fazla bilgi Taylor ve Mook 8 tarafından bir makalede bulunabilir.</li>
	<li>Cam kavanoz ve emmek isoflurane (% 99.9) birkaç damla ile bir cerrahi pedi yerleştirin ve fare isoflurane ile doğrudan temas önlemek için üst üzerinde bir kağıt havlu yer. Benzer şekilde, kalan boru hattı ve isoflurane birkaç damla ile ıslatın ve ek bir pad fare ve isoflurane arasında doğrudan temas önlemek için üst üzerinde yer için bir cerrahi pedi kullanın.</li>
	<li>Maksimum doldurana kadar hattı dewar ulaşıldığında sığ geniş ağız içine dökün sıvı nitrojen.</li>
	<li>Yer diseksiyon anestezi içine seçilmiş fare odası, Cam Kavanoz ile beraber batırılmış bir yastık bırakır ~ 1 dakika süreyle kapak ile örtülü isoflurane (% 99.9), Yani 
	Not: Bu süre fare fare değişir. Fare bilinçsiz olduğunda, odasından çıkarın ve çalışma kartı üzerine yerleştirin.</li>
	Ventral tarafı yukarı ve onun baş bilim adamı uzak işaret ile yalan söylüyor <li>fare gelecek şekilde yönlendirin. Kafasının isoflurane (% 99.9) birkaç damla ile batırılmış bir cerrahi pedi ile kaplı tüp içine yerleştirin ve fare uyaranlara yanıt vermeyen olduğundan emin olmak için bir ayak çimdik tarafından bir uyarıcı testi gerçekleştirin.
	<ol><li>Bu sınama başarısız olursa ve fare ayak çimdik testine yanıt verir, adımları yineleyin 1.8.</li>
	</ol></li></ol> 2. İlk kesi, kalp ponksiyon ve ötenazi <ol><li>cerrahi köpük kartına fare ekstremitelerin Pin ve fare ile % 70 etanol ventral tarafına ıslak.</li>
	<li>Kürk/cilt üretral açılış yakınındaki Forseps ile pinch ve biraz yukarı doğru çekin. Bir kesi ile karın boşluğu üretral açılması orta hat üzerinden başlayıp çene Cerrahi makas ile kesme yapmak.
	<ol><li>İlk belgili tanımlık kesme başlangıç noktasının yakınını, kürk/deri bir taraftan Forseps ile tut ve başka bir kesi makas ile aşağı ve çapraz olarak doğru arka pençe yapmak.</li>
		<li>Bu şekilde karşı tarafta tekrarlayın. 
		Not: Kürk/cilt daha geniş bir açıklık oluşturmanızı sıkıştırdık, ancak gerekli değildir.</li>
	</ol></li> <li>Kalp bulun ve kesesi çevresinde şırınga iğne tıkanmasını önlemek için kalp, kalp zarını kaldırın.
	<ol><li>Kalp zarını Forseps ile kavramak ve makasla kesti. Kalp ponksiyon dikkatli kalbi şırınga iğne ekleyerek gerçekleştirmek ve pistonu geri çekmek yavaş yavaş başlamak.</li>
		<li>Kalbin pompalama eylemi taklit ve çok hızlı çizim önlemek için iğne pistonu en uygun kan toplanması için kullanılmasını. 
		Not: Genellikle 1 mL kan toplanabilir.</li>
		<li>Kan toplama işlemini tamamladıktan sonra kan santrifüj tüpü ve "Sharps" konteyner içine şırınga atmayın içine ortadan kaldırmak.</li>
		Kalbi delik gerçekleştirildikten sonra <li>kalp bağlanma ekleri kaldırarak ötenazi taşımak. 
		Not: Bu yordam belirli bu çalışmada serum koleksiyonu için koagüle kan izin vermek için kalbi delik önce şırıngada Heparin, bir anti-koagulant eklenmedi. Araştırmacı plazma toplamak için kan pıhtılaşması önlemek isterseniz, ancak, heparin kalbi delik önce şırınga için eklenebilir.</li>
	</ol></li> <li>Çalışma Genotipleme fare gerektirir, bir bölümü Kulak makasla makasla kesme ve yer içine bir santrifüj tüpü genotip doğrulama için.</li></ol>
 3. pankreas çıkarma <ol><li>bulun mide fare sol tarafında. Begin yavaşça (yırtılma önlemek için) pankreas mide ve oniki parmak bağırsağı ayıran iki forseps kullanarak. 
	Not: mide ve bağırsak pankreas ayırma, o forseps pankreas dokusu organları uzak yol değil ezmek, veya pankreas Forseps ile gözyaşı hafifçe kullanılır çok önemlidir.
	<ol><li>Pankreas ince bağırsak değişir ve ileum bölümlerine ayırmak devam etmek ve son olarak gelen kalın bağırsak caecum.</li>
	</ol></li> <li>Caecum, forseps yeniden konumlandırmak ve pankreas boyunca kalan kolon rektum doğru ayrılması devam. 
	Not: Bu noktada, bu kesmek ve kolon rektum hemen önceki bölgesine mide bölümü kaldırmak uygundur.</li>
	<li>Pankreas bulun ve dalak bağlı. Pankreas fareyi sağ tarafına doğru kaydırın. Pankreas ve göğüs boşluğuna arasında kalan bağlantı Forseps ile tam olarak pankreas ve dalak keşfedemiyoruz ayırmak için ayırmak.</li>
	<li>Pankreas kaldırmak ve sınav için dışarı yayılır. Tanıtım amaçlı pankreas bağlı dalak bırakın.
	<ol><li>Tümünü Kaldır bağ dokusu, pankreas şişman ve Mezenterik dokudan. 
		Not: Bu doku daha beyaz renkte ve böylece kolayca ayırt edici renkte pembe pankreas dokusundan olabilir. Bütün pankreas kaldırılması gerekiyor, bu özellikle önemlidir. Örneğin, pankreas tartılır ve vücut ağırlığı için ya da hayvan grupları arasında karşılaştırıldığında gerekiyor. Ptf1a içinde cre / +; LSI-Kras G12D / + fare modeli, özellikle içinde belgili tanımlık büyük ay, zor fibröz pankreas dokusu mevcut olabilir. Bu durumda, bağırsak tümör dokusunda titreşimli gibi dikkatli pankreas kaldırılması yürütülmelidir. İleri durumlarda, anormal dalak ve karaciğer dokusu de gözlenebilir.</li>
	</ol></li> <li>İsterseniz, diğer organlara bu noktada kaldırmak.</li></ol>
 4. veri toplama ve depolama <ol><li>sonra ayıklama organların Ģunları alanının korunmasına ilişkin örnekler taşımak.</li>
	<li>Her organ tartmak ve onların anılan sıraya göre kriyojenik şişe koyun. 
	Not: zekâh kitle her örnek, daha sonra başvurmak için herhangi bir usulsüzlük kaydedilmelidir.</li>
	<li>Bir kez organları tartılır vardır, ek dondurma için sıvı azot içine koyup.</li>
	<li>Buz gibi ek sonra-80 ° C'de organları uzun süreli depolama için mağaza.</li>
	<li>Yer depolanan formalin örnekleri tezgah üstüne gece ve ertesi sabah değiştirmek onların çözüm formalin % 70 etanol için. 
	Not: Bu örnekler uzun süreli depolama için 4 ° C'de muhafaza edilmelidir.</li>
	<li>Uzun süreli depolama için kan ve kulak yumruk-80 ° C'de dondurmak. Kan serumu koleksiyonundan için kan koyulaştırmak için 30 dk sonra bu santrifüj kapasitesi izin. Bir pipet kullanarak serum bölümü kaldırmak ve sonra-80 ° C.</li>
</ol> 5. Clean Up <ol><li>Sanitize tüm diseksiyon araçları sterilizing mendil ile. Cap isoflurane ile kaplı tüp cerrahi pedi batırılmış. Köpük gemide cerrahi pedi taze bir cerrahi pedi ile değiştirin. Tesisin toplanan değil fare bölümlerini elden &#39; un hayvan elden çıkarma ilkesinin.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Fesinmeyer, M. D., Austin, M. A., Li, C. I., De Roos, A. J., Bowen, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differences+in+Survival+by+Histologic+Type+of+Pancreatic+Cancer.">Differences in Survival by Histologic Type of Pancreatic Cancer.</a> Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 14 (7), 1766-1773 (2005).</li><li>Jackson-Grusby, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+cancer+in+mice.">Modeling cancer in mice.</a> Oncogene. 21 (35), 5504-5514 (2002).</li><li>Heid, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+requirement+of+Rac1+in+a+mouse+model+of+pancreatic+cancer.">Early requirement of Rac1 in a mouse model of pancreatic cancer.</a> Gastroenterology. 141 (2), 719-730 (2011).</li><li>Hingorani, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preinvasive+and+invasive+ductal+pancreatic+cancer+and+its+early+detection+in+the+mouse.">Preinvasive and invasive ductal pancreatic cancer and its early detection in the mouse.</a> Cancer cell. 4 (6), 437-450 (2003).</li><li>Shi, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=KRAS2+Mutations+in+Human+Pancreatic+Acinar-Ductal+Metaplastic+Lesions+Are+Limited+to+Those+with+PanIN+Implications+for+the+Human+Pancreatic+Cancer+Cell+of+Origin.">KRAS2 Mutations in Human Pancreatic Acinar-Ductal Metaplastic Lesions Are Limited to Those with PanIN Implications for the Human Pancreatic Cancer Cell of Origin.</a> Mol Cancer Res. 7 (2), 230-236 (2009).</li><li>LaConti, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+serum+metabolomics+profiles+associated+with+malignant+progression+in+the+KrasG12D+mouse+model+of+pancreatic+ductal+adenocarcinoma.">Distinct serum metabolomics profiles associated with malignant progression in the KrasG12D mouse model of pancreatic ductal adenocarcinoma.</a> BMC Genomics. 16 (1), 1-10 (2015).</li><li>Ludwig, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surveying+the+serologic+proteome+in+a+tissue-specific+kras(G12D)+knockin+mouse+model+of+pancreatic+cancer.">Surveying the serologic proteome in a tissue-specific kras(G12D) knockin mouse model of pancreatic cancer.</a> Proteomics. 16 (3), 516-531 (2016).</li><li>Taylor, D. K., Mook, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isoflurane+Waste+Anesthetic+Gas+Concentrations+Associated+with+the+Open-Drop+Method.">Isoflurane Waste Anesthetic Gas Concentrations Associated with the Open-Drop Method.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 48 (1), 61-64 (2009).</li><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals.">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).</li><li>Li, D. S., Yuan, Y. H., Tu, H. J., Liang, Q. L., Dai, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protocol+for+islet+isolation+from+mouse+pancreas.">A protocol for islet isolation from mouse pancreas.</a> Nature Protocols. 4 (11), 1649-1652 (2009).</li><li>Auer, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+frozen+tissue+storage+conditions+on+the+integrity+of+RNA+and+protein.">The effects of frozen tissue storage conditions on the integrity of RNA and protein.</a> Biotech Histochem. 89 (7), 518-528 (2014).</li><li>Ma, J., Leung, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Limbic+System+Participates+in+Mediating+the+Effects+of+General+Anesthetics.">Limbic System Participates in Mediating the Effects of General Anesthetics.</a> Neuropsychopharmacology. 31, 1177-1192 (2006).</li><li>Ijichi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aggressive+pancreatic+ductal+adenocarcinoma+in+mice+caused+by+pancreas-specific+blockade+of+transforming+growth+factor-&#946;+signaling+in+cooperation+with+active+Kras+expression.">Aggressive pancreatic ductal adenocarcinoma in mice caused by pancreas-specific blockade of transforming growth factor-&#946; signaling in cooperation with active Kras expression.</a> Genes Dev. 20 (22), 3147-3160 (2006).</li><li>Abiatari, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Moesin-dependent+cytoskeleton+remodelling+is+associated+with+an+anaplastic+phenotype+of+pancreatic+cancer.">Moesin-dependent cytoskeleton remodelling is associated with an anaplastic phenotype of pancreatic cancer.</a> J Cell Mol Med. 14 (5), 1166-1179 (2010).</li><li>Goodpaster, A. M., Romick-Rosendale, L. E., Kennedy, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=a+Statistical+significance+analysis+of+nuclear+magnetic+resonance-based+metabonomics+data.">a Statistical significance analysis of nuclear magnetic resonance-based metabonomics data.</a> Analytical biochemistry. 401, 134-143 (2010).</li><li>Yadav, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Idiopathic+Tumefactive+Chronic+Pancreatitis:+Clinical+Profile,+Histology,+and+Natural+History+After+Resection.">Idiopathic Tumefactive Chronic Pancreatitis: Clinical Profile, Histology, and Natural History After Resection.</a> Clin Gastroenterol Hepatol. 1 (2), 129-135 (2003).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Mevcut yöntemler açısından önemi Fare diseksiyonlarının resmi olmayan diğer videolar var iken, ilk profesyonel kalitede video bu makale sağlar, akran gözden, görsel gösteri tüm çıkış için gerekli ve fare pankreas diseksiyon10 tarafından hasat ayrıntılı adımlar . Metabolik aktivite ve insülin için ana bir organ olan pankreas ile üretim, diseksiyon ve pankreas hasat sağlayan fizyolojik özellikleri11korunması için. Pankreas izo...

Fare insan pankreas kanseri1,2önemli bir hayvan modeli olarak ortaya çıkmıştır. Ptf1a içindecre / +; LSI-KrasG12D / + fare modeli, sıçan sarkomu (K-Ras) onkogen pankreas İntraepitelyal Neoplazi (PanINs), bu ilerleme bilinen pankreasın prekanseröz lezyonlar inisiyasyon sonuçlanan pankreasın sadece aktif Kristen pankreas duktal Adenokanserine için genellikle PDACs3adlandırılır. Bu fare modeli sistemi insan pankreas kanseri4,5, PanINs hayat ve sık sık PDAC içinde ilerleme ilk beş ay içinde ortaya ek avantajı için en iyi mevcut hayvan modellerinden birini sağlayan bir Pankreas kanseri en sık 60-70 yaşın insanlarda ortaya çıkar, ancak yıl4,5, tek.
Pankreas diseksiyon Ptf1a dan tarafından çıkarılmasıcre / +; LSI-KrasG12D / + fareler çeşitli yaş itibariyle sağlar detaylı boyuna histolojik muayene pankreas kanseri gelişimi için en erken PanIN aşamaları ilerleme PDAC3,4 ' e değişen , 5. pankreas yaşları 5 ila 15 ay arasında değişen, hasat da kullanılabilir doku özleri pankreas4 metabolizması sağlıklı hastalıklı doku geçiş sırasında oluşan küresel değişiklikleri tanımlamak için hazırlamak için 6,7.
Bu yazı bir fare pankreas çekimi gerçekleştirmek için gereken adımları, tam bir görsel kılavuzu sunar ve daha fazla çözümleme için bir pankreas depolamak için yönergeler sağlar. Bu kılavuz-ecek var olmak aynı derecede değerli bireyler de dahil olmak üzere diğer pankreas Hastalıkları Araştırma tip ı diyabet ve özellikle öğrenciler ve araştırmacılar fare pankreas kullanarak hasat içeren araştırma için yeni yararlı olmalıdır diseksiyon metabolik profil oluşturma veya histolojik analizler için.

<table><tbody><tr><td>Glass Jar&amp;nbsp;</td><td>Corning</td><td>3140-150</td><td>The glass jar used in the video has been discontinued.&amp;nbsp; This is its replacement.</td></tr><tr><td>Lid of Glass Jar</td><td>Corning</td><td>9985-150</td><td>The glass jar lid used in the video has been discontinued.&amp;nbsp; This is its replacement.</td></tr><tr><td>15 mL Falcon Tubes</td><td>Fisher Scientific</td><td>339650</td><td></td></tr><tr><td>Surgical Scissors</td><td>Fisher Scientific</td><td>9201</td><td></td></tr><tr><td>Squeeze bottle&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-409-10DD</td><td></td></tr><tr><td>100% Ethanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-032-103</td><td></td></tr><tr><td>Formalin</td><td>Fisher Scientific</td><td>245-684</td><td></td></tr><tr><td>Foam Boards</td><td>Therapak</td><td>562908</td><td></td></tr><tr><td>Forceps</td><td>Fisher Scientific</td><td>200205SHN</td><td></td></tr><tr><td>1 mL 21G Syringes</td><td>BD Biosciences</td><td>309624</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Falcon Tubes</td><td>Fisher Scientific</td><td>339652</td><td></td></tr><tr><td>2.0 mL Microcentrifuge Tubes&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-681-258</td><td></td></tr><tr><td>Surgical Pads</td><td>Fisher Scientific</td><td>S67011</td><td></td></tr><tr><td>T-Pins Length:&amp;nbsp; 2&quot;&amp;nbsp;</td><td>Advance Store Products</td><td>X32T-05</td><td></td></tr><tr><td>Sterilizing Wipes</td><td>Professional Disposables International Inc.</td><td>Q85084</td><td></td></tr><tr><td>Sharps Container</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-827-122</td><td></td></tr><tr><td>Analytical Balance</td><td>Marshall Scientific</td><td>ME-AE200</td><td></td></tr><tr><td>4L Dewar</td><td>Taylor-Wharton</td><td>4LD</td><td></td></tr><tr><td>Shallow Wide Mouth Dewar</td><td>Fisher Scientific</td><td>F3087-V</td><td></td></tr><tr><td>Floating Microtube Rack</td><td>VWR</td><td>60986-100</td><td></td></tr><tr><td>Cryogenic Vial 1.2 mL, Sterile</td><td>Fisher Scientific</td><td>10-500-25</td><td></td></tr><tr><td>Isothesia (Isoflurane)&amp;nbsp;</td><td>Henry Schein Animal Health</td><td>050033</td><td></td></tr><tr><td>Liquid Nitrogen</td><td>Wright Brothers</td><td>NIT-60-XX</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Kras Strain</td><td>The Jackson Laboratory</td><td>OO8179</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Cre Strain</td><td>MMRRC</td><td>OOO435-UNC</td><td></td></tr></tbody></table>

dissection of the mouse pancreas for histological analysis and metabolic profiling

Biz pankreas belirli transkripsiyon faktörü, 1a cre-recombinase soruşturma edilmiştir; füme balığı-dur-lox-Kristen sıçan sarkomu, 12 kodon aspartik asit glisin (Ptf1acre / +; LSL-KrasG12D / +) fare zorlanma insan pankreas kanseri bir model olarak. Bizim mevcut çalışmalar amacı pankreas kanseri ilerleme roman metabolik biyolojik belirlemektir. İdrar, dışkı, kan ve pankreas dokusu özler yanı sıra pankreas kanseri ilerleme yerleştirmeye histolojik analizler metabolik profil oluşturma gerçekleştirdiniz. Fare pankreas insanlar gibi iyi tanımlanmış bir solid organ değil, ama oldukça kolayca bireyler ile fare iç anatomi yabancı veya az veya hiç deneyimi gerçekleştirme sahip bireyler tarafından tanımlanmış değildir havza dağıtılmış bir yumuşak doku fare organ diseksiyonu. Bu makalenin amacı ayrıntılı bir step-wise sağlamaktır diseksiyon tarafından fare pankreas kaldırma yeni başlayanlar Kılavuzu için görsel gösteri. Bu madde öğrenciler ve araştırmacılar yeni özellikle değerli diseksiyon metabolik profil oluşturma veya histolojik analizler için tarafından fare pankreas hasat gerektirir araştırma olmalıdır.

Şekil 1 çalışma çevre bölgesi özetini gösterir ve Şekil 2 post işlem alanı gösterir. Süre bu ayar donanımları en az miktarda sağlar ve evreleme, bireylerin bu bireysel gereksinimlerinizi en iyi karşılayacak şekilde değiştirmek tercih edebilir. Protokol deneme belirli ihtiyaçlarına göre optimize edilmelidir. Bu yordamı uygun euthanization9gerektiren bir fare hayat sonlandıran bir ?...

Watch this Scientific Journal Video about Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling at JoVE.com

Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

Video bu makalede ayrıntılı bir gösteri diseksiyon histolojik analizi ve metabolik profil oluşturma için başarıyla bir fareden pankreas kaldırmak için gerekli yordamlar sağlar.

Fare pankreas diseksiyon histolojik analiz ve metabolik profil oluşturma

We have been investigating the pancreas specific transcription factor, 1a cre-recombinase; lox-stop-lox- Kristen rat sarcoma, glycine to aspartic acid at ...

dissection-mouse-pancreas-for-histological-analysis-metabolic

Research

JoVE Journal

Medicine

36.5K Görüntüleme.  Miami University. Video bu makalede ayrıntılı bir gösteri diseksiyon histolojik analizi ve metabolik profil oluşturma için başarıyla bir fareden pankreas kaldırmak için gerekli yordamlar sağlar.

Video: Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

Mimicking and Manipulating Pancreatic Acinar-to-Ductal Metaplasia in 3-dimensional Cell Culture

The differentiation of acinar cells to ductal cells during pancreatitis and in the early development of pancreatic cancer is a key process that requires further study. To understand the mechanisms regulating acinar-to-ductal metaplasia (ADM), ex vivo 3D culture and differentiation of primary acinar cells to ductal cells offers many advantages over other systems. With the technique herein, modulation of protein expression is simple and quick, requiring only one day to isolate, stimulate or virally infect, and begin culturing primary acinar cells to investigate the ADM process. In contrast to using basement membrane matrix, the seeding of acinar cell clusters in collagen I extracellular matrix, allows acinar cells to retain their acinar identity before manipulation. This is vital when testing the contribution of various components to the induction of ADM. Not only are the effects of cytokines or other ectopically administered factors testable through this technique, but the contribution of common mutations, increased protein expression, or knockdown of protein expression is testable via viral infection of primary acinar cells, using adenoviral or lentiviral vectors. Moreover, cells can be re-isolated from collagen or basement membrane matrix at the endpoint and analyzed for protein expression.

Primary acinar cell isolation, protein expression or activity modulation, culture, and down-stream applications are abundantly useful in the ex vivo study of acinar-to-ductal metaplasia (ADM), an early event in the development of pancreatic cancer.

Taklit ve 3 boyutlu hücre kültüründe pankreas Acinar-için-duktal metaplazi manipüle

The differentiation of acinar cells to ductal cells during pancreatitis and in the early development of pancreatic cancer is a key process that requires ...

Kanser Araştırmaları

Isolating and Analyzing Cells of the Pancreas Mesenchyme by Flow Cytometry

The pancreas is comprised of epithelial cells that are required for food digestion and blood glucose regulation. Cells of the pancreas microenvironment, including endothelial, neuronal, and mesenchymal cells were shown to regulate cell differentiation and proliferation in the embryonic pancreas. In the adult, the function and mass of insulin-producing cells were shown to depend on cells in their microenvironment, including pericyte, immune, endothelial, and neuronal cells. Lastly, changes in the pancreas microenvironment were shown to regulate pancreas tumorigenesis. However, the cues underlying these processes are not fully defined. Therefore, characterizing the different cell types that comprise the pancreas microenvironment and profiling their gene expression are crucial to delineate the tissue development and function under normal and diseased states. Here, we describe a method that allows for the isolation of mesenchymal cells from the pancreas of embryonic, neonatal, and adult mice. This method utilizes the enzymatic digestion of mouse pancreatic tissue and the subsequent fluorescence-activated cell sorting (FACS) or flow-cytometric analysis of labeled cells. Cells can be labeled by either immunostaining for surface markers or by the expression of fluorescent proteins. Cell isolation can facilitate the characterization of genes and proteins expressed in cells of the pancreas mesenchyme. This protocol was successful in isolating and culturing highly enriched mesenchymal cell populations from the embryonic, neonatal, and adult mouse pancreas.

Here, we describe a method for the isolation of cells in the pancreas microenvironment from embryonic, neonatal and adult mouse tissue, focusing on the isolation of mesenchymal cells. This method allows profiling of cell gene expression and protein secretion in order to elucidate the extrinsic signals that regulate pancreas development, function, and tumorigenesis.

Yalıtımlı ve Akış Sitometrisi ile Pankreas mezenkim ve Hücreler Analizi

The pancreas is comprised of epithelial cells that are required for food digestion and blood glucose regulation. Cells of the pancreas microenvironment, ...

Gelişim Biyolojisi

Single-cell Transcriptomic Analyses of Mouse Pancreatic Endocrine Cells

Pancreatic endocrine cells, which are clustered in islets, regulate blood glucose stability and energy metabolism. The distinct cell types in islets, including insulin-secreting &#946; cells, are differentiated from common endocrine progenitors during the embryonic stage. Immature endocrine cells expand via cell proliferation and mature during a long postnatal developmental period. However, the mechanisms underlying these processes are not clearly defined. Single-cell RNA-sequencing is a promising approach for the characterization of distinct cell populations and tracing cell lineage differentiation pathways. Here, we describe a method for the single-cell RNA-sequencing of isolated pancreatic &#946; cells from embryonic, neonatal and postnatal pancreases.

We describe a method for the isolation of endocrine cells from embryonic, neonatal and postnatal pancreases followed by single-cell RNA sequencing. This method allows analyses of pancreatic endocrine lineage development, cell heterogeneity and transcriptomic dynamics.

Fare pankreatik endokrin hücreleri tek hücre Transcriptomic analizleri

Pancreatic endocrine cells, which are clustered in islets, regulate blood glucose stability and energy metabolism. The distinct cell types in islets, ...

Pancreatic Tissue Dissection to Isolate Viable Single Cells

The pancreas includes two major systems: the endocrine system, which produces and secretes hormones, and the exocrine system, which accounts for approximately 90% of the pancreas and includes cells that produce and secrete digestive enzymes. The digestive enzymes are produced in the pancreatic acinar cells, stored in vesicles called zymogens, and are then released into the duodenum via the pancreatic duct to initiate metabolic processes. The enzymes produced by the acinar cells can kill cells or degrade cell-free RNA. In addition, acinar cells are fragile, and common dissociation protocols result in a large number of dead cells and cell-free proteases and RNases. Therefore, one of the biggest challenges in pancreatic tissue digestion is recovering intact and viable cells, especially acinar cells. The protocol presented in this article shows a two-step method that we developed to meet this need. The protocol can be used to digest normal pancreata, pancreata that include pre-malignant lesions, or pancreatic tumors that include a large number of stromal and immune cells.

Pancreatic metaplastic cells are precursors of malignant cells that give rise to pancreatic tumors. However, isolating intact viable pancreatic cells is challenging. Here, we present an efficient method for pancreatic tissue dissociation. The cells can then be used for single-cell RNA sequencing (scRNA-seq) or for two- or three-dimensional co-culturing.

Canlı Tek Hücreleri İzole Etmek için Pankreas Doku Diseksiyonu

The pancreas includes two major systems: the endocrine system, which produces and secretes hormones, and the exocrine system, which accounts for ...

In situ Quantification of Pancreatic Beta-cell Mass in Mice

Tracing changes of specific cell populations in health and disease is an important goal of biomedical research. The process of monitoring pancreatic beta-cell proliferation and islet growth is particularly challenging. We have developed a method to capture the distribution of beta-cells in the intact pancreas of transgenic mice with fluorescence-tagged beta-cells with a macro written for ImageJ (rsb.info.nih.gov/ij/). Following pancreatic dissection and tissue clearing, the entire pancreas is captured as a virtual slice, after which the GFP-tagged beta-cells are examined. The analysis includes the quantification of total beta-cell area, islet number and size distribution with reference to specific parameters and locations for each islet and for small clusters of beta-cells. The entire distribution of islets can be plotted in three dimensions, and the information from the distribution on the size and shape of each islet allows a quantitative and qualitative comparison of changes in overall beta-cell area at a glance.

In situ Quantification of Pancreatic Beta-cell Mass in Mice

The following protocol outlines the process of pancreatic dissection for virtual slice imaging, and the subsequent quantification of all GFP-tagged beta-cells in the entire pancreas.

Farelerde, pankreatik beta-hücre Kütle yerinde Niceleme

Tracing changes of specific cell populations in health and disease is an important goal of biomedical research. The process of monitoring pancreatic ...

Biyoloji

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

Type 2 diabetes is a chronic disease affecting 382 million people in 2013, and is expected to rise to 592 million by 2035 1. During the past 2 decades, the role of beta-cell dysfunction in type 2 diabetes has been clearly established 2. Research progress has required methods for the isolation of pancreatic islets. The protocol of the islet isolation presented here shares many common steps with protocols from other groups, with some modifications to improve the yield and quality of isolated islets from both the wild type and diabetic Leprdb (db/db) mice. A live-cell 2-photon imaging method is then presented that can be used to investigate the control of insulin secretion within islets.

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

We present here a protocol for the isolation of islets from the mouse model of type 2 diabetes, Leprdb and details of a live-cell assay for measurement of insulin secretion from intact islets that utilizes 2 photon microscopy.

Lepr<sup&gt; Db</sup&gt; Tip 2 Diyabet Fare Modeli: Bozulmamış Islets Of Pankreas Adacık İzolasyonu ve Canlı hücre 2-Foton Görüntüleme

Type 2 diabetes is a chronic disease affecting 382 million people in 2013, and is expected to rise to 592 million by 2035 1. During the past 2 decades, ...

Tıp

Isolation and Culture of Mouse Primary Pancreatic Acinar Cells

This protocol permits rapid isolation (in less than 1 hr) of murine pancreatic acini, making it possible to maintain them in culture for more than one week. More than 20 x 106 acinar cells can be obtained from a single murine pancreas. This protocol offers the possibility to independently process as many as 10 pancreases in parallel. Because it preserves acinar architecture, this model is well suited for studying the physiology of the exocrine pancreas in vitro in contrast to cell lines established from pancreatic tumors, which display many genetic alterations resulting in partial or total loss of their acinar differentiation.

In this publication, we describe a rapid and convenient procedure for isolating and culturing primary pancreatic acinar cells from the murine pancreas. This method constitutes a valuable approach to study the physiology of fresh primary normal/untransformed exocrine pancreatic cells.

Fare Primer Pankreas Asiner Hücreleri İzolasyon ve Kültür

This protocol permits rapid isolation (in less than 1 hr) of murine pancreatic acini, making it possible to maintain them in culture for more than one ...

Observing Islet Function and Islet-Immune Cell Interactions in Live Pancreatic Tissue Slices

Live pancreatic tissue slices allow for the study of islet physiology and function in the context of an intact islet microenvironment. Slices are prepared from live human and mouse pancreatic tissue embedded in agarose and cut using a vibratome. This method allows for the tissue to maintain viability and function in addition to preserving underlying pathologies such as type 1 (T1D) and type 2 diabetes (T2D). The slice method enables new directions in the study of the pancreas through the maintenance of the complex structures and various intercellular interactions that comprise the endocrine and exocrine tissues of the pancreas. This protocol demonstrates how to perform staining and time-lapse microscopy of live endogenous immune cells within pancreatic slices along with assessments of islet physiology. Further, this approach can be refined to discern immune cell populations specific for islet cell antigens using major histocompatibility complex-multimer reagents.

This study presents the application of live pancreatic tissue slices to the study of islet physiology and islet-immune cell interactions.

Canlı Pankreas Doku Dilimlerinde Adacık fonksiyonu ve Adacık-İmmün Hücre Etkileşimlerinin Gözlemlenmesi

Live pancreatic tissue slices allow for the study of islet physiology and function in the context of an intact islet microenvironment. Slices are prepared ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

A Mouse Model for Chronic Pancreatitis via Bile Duct TNBS Infusion

Chronic pancreatitis (CP) is a complex disease involving pancreatic inflammation and fibrosis, glandular atrophy, abdominal pain and other symptoms. Several rodent models have been developed to study CP, of which the bile duct 2,4,6 -trinitrobenzene sulfonic acid (TNBS) infusion model replicates the features of neuropathic pain seen in CP. However, bile duct drug infusion in mice is technically challenging. This protocol demonstrates the procedure of bile duct TNBS infusion for generation of a CP mouse model. TNBS was infused into the pancreas through the ampulla of Vater in the duodenum. This protocol optimized drug volume, surgical techniques, and drug handling during the procedure. TNBS-treated mice showed features of CP as reflected by bodyweight and pancreas weight reductions, changes in pain-associated behaviors, and abnormal pancreatic morphology. With these improvements, mortality associated with TNBS injection was minimal. This procedure is not only critical in generating pancreatic disease models but is also useful in local pancreatic drug delivery.

Chronic pancreatitis (CP) is a disease characterized by inflammation and fibrosis of the pancreas, often associated with intractable abdominal pain. This article focuses on refining the technique to generate a mouse model of CP via bile duct infusion with 2,4,6 -trinitrobenzene sulfonic acid (TNBS).

Safra Kanalı TNBS infüzyonu ile Kronik Pankreatit için Bir Fare Modeli

Chronic pancreatitis (CP) is a complex disease involving pancreatic inflammation and fibrosis, glandular atrophy, abdominal pain and other symptoms. ...

Acinar-to-Ductal Metaplasia Induction: A Method to Study Acinar Cell to Ductal Cell Differentiation in 3D Ex Vivo Culture

Source: Fleming Martinez, A. K. et. al. <a href="https://www.jove.com/v/59096/" target="_blank">Mimicking and Manipulating Pancreatic Acinar-to-Ductal Metaplasia in 3-dimensional Cell Culture</a>. J. Vis. Exp. (2019).
This video describes the technique of differentiating pancreatic acinar cells to ductal cells in ex vivo 3D culture. This helps to understand the mechanisms regulating the acinar-to-ductal metaplasia (ADM), a key process in the early development of pancreatic cancer.

Acinar-to-duktal Metaplazi İndüksiyonu: Acinar Hücreden Duktal Hücreye Farklılaşmayı 3D Ex Vivo Kültürde İncelemek İçin Bir Yöntem

Source: Fleming Martinez, A. K. et. al. Mimicking and Manipulating Pancreatic Acinar-to-Ductal Metaplasia in 3-dimensional Cell Culture. J. Vis. Exp. ...