Name: an ultrasonic tool for nerve conduction block in diabetic rat models
Uploaded: 2017-10-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about An Ultrasonic Tool for Nerve Conduction Block in Diabetic Rat Models at JoVE.com

Çalışma Bakanlığı bilim ve Teknoloji (proje en 105-2221-E-400-001) ve Ulusal Sağlık Araştırma kurumları (proje BN-105-s-10), Tayvan tarafından desteklenmiştir.

Kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi Tayvan Ulusal Sağlık Araştırma enstitüleri onaylanmıştır tüm hayvan iletişim kuralları.
 1. indüksiyon, diyabetik modelinde erkek yetişkin Sprague - Dawley (SD) fareler <ol><li>kaldırmak sıçan gıda granül kafes hızlı erkek SD (300-350 g) sıçanlara STZ indüksiyon öncesinde 6 h için.</li>
	<li>Hazırlama sodyum sitrat arabellek (0.1 M, pH 4.5).
	<ol><li>Erimesi 1,05 g sitrik asit monohidrat (C 6 H 8 O 7 · H 2 O; mol. WT 210.14) 50 mL 0.1 M sitrik asit çözüm yapmak için su distile.</li>
		<li>Erimesi 1,47 g TRISODYUM sitrat dihydrate (C 8 H 5 O 7 Na 3 · 2 H 2 O; mol. WT 294.12) 50 mL 0.1 M sodyum sitrat çözüm yapmak için su distile.</li>
		<li>Ekle 25 mL sitrik asit çözüm için 25 mL sodyum sitrat çözüm. Sodyum sitrat tampon pH (pH 4.5) monitör pH metre kullanarak. 
		Not: İzotonik arabellek buna ek olarak 0.1 M sodyum sitrat çözüm uygun bir birimi tarafından yapılır.</li>
	</ol></li> <li>Erimesi 50 mg/mL STZ çözüm getirebilecek STZ 0.1 M sodyum sitrat arabellekte. 
	Not: STZ çözüm ışığa duyarlı olduğunu, bu nedenle, STZ çözüm alüminyum folyo ile kapak ve 15-20 dk. içinde kullanın</li>
	<li>50 mg/kg STZ çözüm ile 26 - 28 gauge iğne. temiz enjeksiyon yeri bir etanol pad ile 1 mL insülin veya tüberkülin şırınga çekmek ve intraperitoneally zarar görmesini önlemek için karın sağ alt çeyreğine STZ çözüm enjekte Karın organları. </li> <li>% 10 Sükroz su ile rats 48 h için tek su kaynağı olarak STZ enjeksiyon sonra hipoglisemi önlemek için tedarik.</li></ol>
 2. onay diyabet STZ kaynaklı Sıçanlarda <ol><li>monitör tüm açlık plazma glukoz konsantrasyonu fareler tarafından STZ enjekte sonrası 72 h ile bir glikoz metre.
	<ol><li>Hızlı STZ-indüklenen diyabetik sıçan oruç ölçme önce 15 h için kan glikoz düzeyi.</li>
		<li>Bir kısıtlama çantasında sıçan dizginlemek ve kan toplama sırasında kan şekeri ölçümleri için kuyruk bulaşmasına neden.</li>
		<li>Küçük bir damla kan almak için kuyruk ucu prick kan lanset kullanın. Damla kan glikoz test şeridi üzerinde bir yer. Açlık plazma glukoz düzeyleri rekor. 
		Not: Glikoz metre algılar ve mg/dL birimlerinde kan şekeri düzeyini görüntüler. Açlık kan şekeri düzeyleri 150 mg/dL altında farelerle STZ-indüksiyon 2 hafta sonra dışlamak.</li>
	</ol></li></ol> 3. Diyabetik periferik nöropati diyabetik Sıçanlarda değerlendirilmesi <ol><li>Elektronik von Frey ile mekanik allodynia değerlendirin.
	<ol><li>Alıştırmak STZ indüklenen diyabetik sıçan 30 dk önce hind değerlendirmek için bir 1 cm çapında metal kafes katta bir kafeste pençe çekilme yanıt.</li>
		<li>El ile fareler arka pençe plantar yüzeye baskı uygulamak için katı ipucu (0.8 mm çapında) ile bir elektronik von Frey sonda kullanın ve bir pençe çekilme yanıt görülür kadar basınç yavaş yavaş artırın.</li>
		<li>Bu sistemdeki gösterir ve ölçüm fareyle her ölçüm arasındaki 30 s aralığı başına 5 kez tekrarlayın basınç kaydetmek.</li>
	</ol></li> <li>Isı hyperalgesia elektrikli Ocak ile değerlendirmek.
	<ol><li>Ağrı yanıt değerlendirmeden önce 10 dakikadır (24 ± 0,5 ° C) sıcak tabakta STZ-indüklenen diyabetik sıçan alıştırmak.</li>
		<li>Kaldırmak ve fareler habituation sonra onların kafes yerleştirin, sıcak plaka ısı ve sıcak plaka korumak &#39; s 55 ± 0,5 ° c sıcaklıkta</li>
		<li>Fare aynı anda zamanlayıcıyı başlatılırken ısıtmalı sıcak tabağa yerleştirin.</li>
		Fareyi farklı davranışlar sergiler, hind yalama gibi pençe veya anormal derecede flicking hind pençe, sayacý durdurmak ve para çekme gecikmesi kaydetmek <li>. 
		Not: Eğer bir fare sonra 20 farklı davranışları ifade değil s (20 s kesme süresi), sıcak plaka test sonlandırmak ve fare sıcak plaka kaldır.</li>
	</ol></li></ol> 4. Vivo Sinir iletim blokajı HIFU dönüştürücü ile Not: vivo içinde deneme hafta 5 50 mg/kg STZ enjeksiyon sonra başlar.
<ol><li>CMAPs HIFU sonication ile engelleme önce hayvan yordamları gerçekleştirin.
	<ol><li>Cerrahi araçlarda (neşter, makas, pens ve cam kanca) bir otoklav ameliyattan önce sterilize.</li>
		<li>Tiletamine/zolazepam karışımı (40 mg/kg) ve xylazine (10 mg/kg) mayi enjeksiyon veya inhalasyon yolu ile isoflurane isoflurane Buharlaştırıcı üzerinden %1.75 farelerle anestezi. Vücut ısısını korumak için bir Isıtma yastığı fareler yer.</li>
		<li>Cerrahi sıçanlara ventral recumbency getirin. Göz merhem uygulamak. Fareyi bacak uzatmak ve anestezi derinliği tespit için tırnakları ayak plantar yüzeyine çimdik. Fareler çekilme yanıtları göstermek, ek anestezi uygulanır.</li>
		<li>Bacağından çıkardığınızı tüylerden ve arkasında bir elektrik kesme makinesi ile fareler daha düşük. Cerrahi alanında temiz gazlı bez ile sıvı iyot uygulamak ve dairesel yayın gazlı bez cerrahi sitesi dışa doğru hareket ettirin. Bir alkol takımını aynı dairesel hareketi ile sıvı iyot silmek için kullanın. Bu deney sol ve sağ cerrahi sitesinde gerçekleştirilir. Diğer cerrahi sitesinde yordamı yineleyin ne zaman yordam sonraki adımında gerçekleştirmek.</li>
		<li>Steril Cerrahi makas veya neşter deri kesik dorsal uyluk olun Dikkatle doku cilt altında ayrı ve cilt ile cilt kanca. uyluk kas içinde görülebilir güvenli künt Cerrahi makas kullanın.</li>
		<li>Makas kasları gömülü orta uyluk siyatik sinir lifleri görünür hale gelene kadar dikkatle femur paralel kasları ayırmak için kullanın. Dikkatle çevreleyen bağ doku ve kasları orta uyluk siyatik sinir ayırmak için bir cam kanca kullanın.</li>
	</ol></li> <li>Siyatik sinir bir ısmarlama sinir fiksatör ( Resim 1 ve şekil 3) kullanarak HIFU odak bölgesi içinde konumlandırın. 
	Not: Özel yapım sinir fiksatör oluşmak-in 3 parça ( şekil 3). Tüm bileşenleri şeffaf Polimetilmetaakrilat (PMMA) yapılır. Dış iş parçacığı bileşen üst yapısını ben aynıdır 2,5 mm boyunda ve M10XP0.7 ( şekil 4A). Merkezi iyi 4.0 mm çaplı delik bileşeni aracılığıyla ben var. Kuyu alt açıklıklı teyp tabakasıyla kaplı kalır. Yuvası çapı 1.2 mm olduğunu ve ben yuvasının Merkezi uçak ve bileşenin üst yüzeyi arasındaki mesafedir 3.1 mm. bileşen II ana gövdesi, dört bacağı ve alt yapı ( şekil 4B) oluşur. 2.5 mm boyunda ve bileşen dış iplik sığacak şekilde M10XP0.7 alt yapısının iç iş parçacığı olduğunu ben. Merkez delik çapi bileşen Merkezi kuyusu aynıdır ben. Ana gövde 32 mm çapında ve 5.4 mm kalınlıkta boyutlardır. Dört bacaklı simetrik olarak dağıtılır. İki özdeş kısa bacakları hizalama için tasarlanmıştır ve iki özdeş uzun bacaklı bileşen III çengel için iş. Dış çap ve bileşenin III yüksekliğini 41 mm ve 9,2 mm dir. İç iş parçacığı M36XP1.0 ve ile delik 27,5 mm çapında (< güçlü sınıfı "xfig" => Şekil 4 c). Koni 84 mm çapında üst açıklıklı ve 27,5 mm alt açıklıklı çapı ile içi boş bir konik olduğunu. Yüksekliği 57,5 ( şekil 5A) mm'dir.
	<ol><li>30-60 dk steril suda ıslatarak takip için çamaşır suyu çözümünde özel akrilik sinir fiksatör deneme önce emmek.</li>
		<li>Bir cam kanca kullanarak sinir çýkýntýdan ve bileşen ı. yuvası koymak</li>
		<li>Vida bileşen II bileşenine ı. dolgu Merkez iyi bileşeni I zil ile &#39; ultrasonik yayılması ve sinir korunması için s çözüm.</li>
		HIFU konut koni <li>vida bileşenine III. Dock bileşeniyle bileşeni bileşen II dört bacağı II III. 
		Not: Üç bileşenden geometrik merkezi ve dönüştürücü hizalanır. Sinir ve dönüştürücü arasındaki mesafe sinir HIFU odak bölge içinde olmasını sağlar odak uzaklığı eşittir.</li>
	</ol></li> <li>Siyatik sinir ve diğer çift gastroknemius kas içine kökeni akupunktur iğneleri bir çift yerleştirin. Her çift iğne Elektrofizyoloji koordinat belirleme sistemi bir elektrik koaksiyel kablo ( şekil 1) aracılığıyla bağlanmak. 
	Not: kablosunun bir ucunu iki iğne küçük ayrı ayrı ve kablosunun diğer ucundaki iki timsah klipleri sistem bağlamak için BNC Bağlayıcısı vardır. Akupunktur iğneleri çiftlerini siyatik sinir, uyarıcı elektrotlar ve kayıt elektrotları gastroknemius kas olarak çalışıyorum.
	<ol><li>Örnekleme hızı ve bant genişliği Elektrofizyoloji koordinat belirleme sistemi 50 kHz ve 70 Hz - 3 kHz ila, anılan sıraya göre ayarlayın. Siyatik sinir kökeni, uyarıcı elektrotlar supra-azami uyarıcı bir darbe genişliği 0.1 MS ile uygulamak.</li>
		<li>Üzerinden kayıt elektrotları CMAPs kaydetmek ve insert ile dahili amplifikatör Elektrofizyoloji koordinat belirleme sistemi yükseltmek. 
		Not: dahili amplifikatör Elektrofizyoloji Koordinat Belirleme Sistemi sinir sinyalleri yükseltmek ve Elektrofizyoloji koordinat belirleme sistemi ile kayıt elektrotları üzerinden CMAPs kaydetmek için kullanabilirsiniz.</li>
	</ol></li> <li>Diyabetik nöropatik Sıçanlarda CMAPs bastırmak için bir ticari 2.68 MHz HIFU çevirici kullanın. 
	Not: Dönüştürücü teknik özellikleri aşağıda açıklanan: tek öğeli bir küresel kase diyafram çapı 6 cm ve 5 cm odak uzaklığı ve 4 mm derinlik ve genişliği ücretsiz alanındaki 0.8 mm elips bir odak bölgesi.
	<ol><li>Küresel koni, HIFU dönüştürücü ve koni içinde belgili tanımlık tank kapak bırakın degassed su. HIFU dönüştürücü küresel koni koymak ve koni kapak küresel konik üst açılması için 6 baş vidalar tarafından ( 5B rakam) düzeltin. Küresel koni kabarcıkları doğal olarak baloncuklar su ile karşılaştırıldığında düşük yoğunluk nedeniyle okuldan sonra ön uç açılış koni şeffaf 0,03 mm kalın bant tarafından mühür. Üzerine küresel konik vida bileşen III.</li>
		<li>Degassed su tankından HIFU dönüştürücü ile küresel koni ve bileşen III çıkar. 
		Not: çalışmada kullanılan Ters Ozmos Ters Ozmos işlem tarafından arıtılmış su sudur. Ters Ozmos su gaz çıkarmak için kaynatılır. Soğutma sonra degassed su içinde bireysel bir kapalı tank elde edilir.</li>
	</ol></li> <li>Bileşen koymak ben sinir ve kas arasındaki boşluğa dikkatle ve sinir bileşen ı. gerçekleştirme adımları 4.2.3 ve sinir HIFU odak bölge içinde olduğundan emin olmak için 4.2.4 boşluk yerleştirin ( şekil 3A < / güçlü >).</li>
	<li>Bir işlev üreteci ve Radyofrekans amplifikatör bağlantı. Güç amplifikatörü HIFU dönüştürücü HIFU kiriş üretimi için bağlayın. El ile güç amplifikatörü HIFU dönüştürücü üzerinden için işlev üreteci gerilim çıkışını ayarlayın. HIFU maruz kalma süresi doldu sonra el ile işlev üreteci kapatmak. Bir zamanlayıcı kullanarak zaman gözlemlemek. 
	Not: Yoğunluk ve enerji bu çalışmada kullanılan HIFU demetinin 2,810 W/cm 2 ve 84 J/mm 2, sırasıyla vardır.</li>
	<li>Aynı anda, uyarıcı Elektrofizyoloji Koordinat Belirleme Sistemi (Adım 4.3) üzerinden ve HIFU ışın HIFU sistemi (Adım 4.6) üzerinden siyatik sinir CMAPs kaydederken teslim. Yavaş yavaş HIFU siyatik sinir üzerindeki 3 artırmak s, 5 s 8 azalması veya insert genliği inhibisyonu görülmektedir kadar s.
	<ol><li>Kayıt HIFU teslimi sırasında saniyede bir kez CMAPs ışın. İnsert genliği değişikliği gözlemleyerek sonra HIFU etmeyi kapat ve el ile Elektrofizyoloji edinme yazılım kayda CMAPs erken 10 min, her 5 dakika içinde arka arkaya 30 dk içinde her 2 dk kayıt simgesini tıklayın ve her 10 min Son aşama kayıt süresi 2 h. ulaşana kadar</li>
	</ol></li> <li>Ayrı bileşen II ve III. sinir fiksatör ( şekil 3) HIFU dönüştürücü kesi siteden kaldırmak için. Ayrı bileşen II ve ben güvenli siyatik sinir serbest bırakmak için. Diyabetik sıçan cerrahi sitesi 4-0 fotokromik akorduna dikiş tarafından CMAPs kaydettikten sonra dikiş. Sıvı iyot enfeksiyonu önlemek için cerrahi sitesi uygulamak.
	<ol><li>Kafesleri Isıtma yastığını yerleştirin ve onların kafes hayvan tesisine dönmeden önce kurtarmak fareler sağlar. Fareler 3 gün veya buprenorfin (0,05 - 0,1 mg/kg) mayi enjeksiyon için ibuprofen içme suyu sağlamak.</li>
	</ol></li> <li>Kayıt ve uyarıcı elektrotlar siyatik sinir ve imzalat diyabetik nöropatik sıçan gastroknemius kas kökenli adımları 4.1.2 ve 4.3 7, 14 ve 28 gün sonra ilk HIFU sonication açıklandığı gibi ekleyin. 4.3.1-4.3.2 adımları yineleyin.
	<ol><li>Kafesleri Isıtma yastığını yerleştirin ve onların kafes kafes hayvan tesisine taşımadan önce kurtarmak fareler sağlar.</li>
	</ol></li> <li>Fareler deneyden sonra ötenazi. Fareyi bir karbon dioksit odaya koyun. 5 dakika farelerin nefes durdurmak için bekleyin. Kalp yenerek durdurdu emin olmak.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Abuaisha, B. B., Costanzi, J. B., Boulton, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acupuncture+for+the+treatment+of+chronic+painful+peripheral+diabetic+neuropathy:+A+long-term+study.">Acupuncture for the treatment of chronic painful peripheral diabetic neuropathy: A long-term study.</a> Diabetes Res Clin Pract. 39 (2), 115-121 (1998).</li><li>Hamza, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Percutaneous+electrical+nerve+stimulation:+A+novel+analgesic+therapy+for+diabetic+neuropathic+pain.">Percutaneous electrical nerve stimulation: A novel analgesic therapy for diabetic neuropathic pain.</a> Diabetes Care. 23 (3), 365-370 (2000).</li><li>Ballantine, H. T., Bell, E., Manlapaz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progress+and+problems+in+the+neurologic+applications+of+focused+ultrasound.">Progress and problems in the neurologic applications of focused ultrasound.</a> J Neurosurg. 17, 858-876 (1960).</li><li>Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Image-guided+high-intensity+focused+ultrasound+for+conduction+block+of+peripheral+nerves.">Image-guided high-intensity focused ultrasound for conduction block of peripheral nerves.</a> Ann Biomed Eng. 35 (1), 109-119 (2007).</li><li>Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-intensity+focused+ultrasound+attenuates+neural+responses+of+sciatic+nerves+isolated+from+normal+or+neuropathic+rats.">High-intensity focused ultrasound attenuates neural responses of sciatic nerves isolated from normal or neuropathic rats.</a> Ultrasound Med Biol. 41 (1), 132-142 (2015).</li><li>Young, R. R., Henneman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversible+block+of+nerve+conduction+by+ultrasound.">Reversible block of nerve conduction by ultrasound.</a> Arch Neurol. 4, 83-89 (1961).</li><li>Lele, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+focused+ultrasonic+radiation+on+peripheral+nerve,+with+observations+on+local+heating.">Effects of focused ultrasonic radiation on peripheral nerve, with observations on local heating.</a> Exp Neurol. 8 (1), 47-83 (1963).</li><li>Hong, C. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversible+nerve+conduction+block+in+patients+with+poly-+neuropathy+after+ultrasound+thermotherapy+at+therapeutic+dosage.">Reversible nerve conduction block in patients with poly- neuropathy after ultrasound thermotherapy at therapeutic dosage.</a> Arch Phys Med Rehabil. 72 (2), 132-137 (1991).</li><li>Okada, A., Morita, Y., Fukunishi, H., Takeichi, K., Murakami, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-invasive+magnetic+resonance-guided+focused+ultrasound+treatment+of+uterine+fibroids+in+a+large+Japanese+population:+impact+of+the+learning+curve+on+patient+outcome.">Non-invasive magnetic resonance-guided focused ultrasound treatment of uterine fibroids in a large Japanese population: impact of the learning curve on patient outcome.</a> Ultrasound Obstet Gynecol. 34 (5), 579-583 (2009).</li><li>Huisman, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=International+consensus+on+use+of+focused+ultrasound+for+painful+bone+metastases:+current+status+and+future+directions.">International consensus on use of focused ultrasound for painful bone metastases: current status and future directions.</a> Int J Hyperthermia. 31 (3), 251-259 (2015).</li><li>Dickinson, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Medium-term+Outcomes+after+Whole-gland+High-intensity+Focused+Ultrasound+for+the+Treatment+of+Nonmetastatic+Prostate+Cancer+from+a+Multicentre+Registry+Cohort.">Medium-term Outcomes after Whole-gland High-intensity Focused Ultrasound for the Treatment of Nonmetastatic Prostate Cancer from a Multicentre Registry Cohort.</a> Eur Urol. 70 (4), 668-674 (2016).</li><li>Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+high-intensity+focused+ultrasound+on+nerve+conduction.">Effects of high-intensity focused ultrasound on nerve conduction.</a> Muscle Nerve. 37 (2), 241-250 (2008).</li><li>Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nerve+conduction+block+in+diabetic+rats+using+high-intensity+focused+ultrasound+for+analgesic+applications.">Nerve conduction block in diabetic rats using high-intensity focused ultrasound for analgesic applications.</a> Br J Anaesth. 114 (5), 840-846 (2015).</li><li>Donoff, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nerve+regeneration:+basic+and+applied+aspects.">Nerve regeneration: basic and applied aspects.</a> Crit Rev Oral Biol Med. 6 (1), 18-24 (1995).</li><li>Fawcett, J. W., Keynes, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peripheral+nerve+regeneration.">Peripheral nerve regeneration.</a> Annu Rev Neurosci. 13, 43-60 (1990).</li><li>Nightingale, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neuropathic+pain+market.">The neuropathic pain market.</a> Nat Rev Drug Discov. 11 (2), 101-102 (2012).</li><li>Lipton, R. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-pulse+transcranial+magnetic+stimulation+for+acute+treatment+of+migraine+with+aura:+a+randomised,+double-blind,+parallel-group,+sham-controlled+trial.">Single-pulse transcranial magnetic stimulation for acute treatment of migraine with aura: a randomised, double-blind, parallel-group, sham-controlled trial.</a> Lancet Neurol. 9 (4), 373-380 (2010).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Action potentials diyabetik sıçan vivo içinde gelen nöropatik sinir ve anlık oluşumunu engelleyici etkisi HIFU tedavisi hem gözlenmiştir sonra kısmi ve geçici bastırma. 28 günlük takip çalışması insert üzerinde güvenli bir abluka sinir iletim, uygun HIFU riziko taşınan dışarı gösterdi. Sonuç olarak, yukarıdaki Protokolü HIFU tedavisi siyatik sinirleri diyabetik Sıçanlarda tersinir iletim bloğu için alternatif bir çözüm sağlayabilir.
Bu yöntemde, i?...

Oral ilaçlar, akupunktur1ve elektriksel sinir stimülasyonu2 ağrılı diyabetik polinöropati tedavisi için kullanılır. Ancak, oral ilaçlar, akupunktur ve elektriksel sinir stimülasyonu invaziv işlem yan etkileri terapötik etkinlik ve hastanın bağlılık engel. Hayvan modellerinde periferik sinirler bloğunu ultrason için onlarca yıl3,4,5araştırmış. Büyük yeşil kurbağa vitro siyatik sinir iletim geri dönülebilir olarak 0.4 için-ultrason pozlama 10-20 darbeleri tedaviden sonra inhibe 1.0 s6. Sinir iletim engellemek için bir ultrason7tarafından indüklenen sıcaklık artışı faktördür. Polinöropati olan hastalar için bileşik kas aksiyon potansiyelleri (insert) bastırılması düşük yoğunluktaki ultrason için 2 dk8maruz peroneal sinir içinde gerçekleştirildi. 5 dk içinde tam kurtarma zamandı.
Son zamanlarda, gıda ve İlaç İdaresi Amerika Birleşik Devletleri'nin HIFU uterin fibroid tümörler9, ağrı palliations kemik metastaz10ve prostat kanseri11için non-invaziv tedavi olarak onaylanmış. Bir HIFU dönüştürücü vücut dışında akustik ışınları yayar ve kirişler çeşitli doku ortamlar içinde iletmek ve odağı hedef tümöre üzerinde birleşirler. Odak bölge hemen hedef tümörler üzerinde lokalize etkileri çevre dokulara zarar vermeden üretmek için kuruldu. HIFU Ayrıca sinir iletim inhibe veya sinir denervation normal Sprague-Dawley (SD) fareler12 in vivo deneyler neden uygulandı. Buna ek olarak, HIFU kısa ve uzun vadeli etkileri nöropatik sinir incelenen13olmuştur. Önceki sonuçlar duyusal sinir iletim tersine çevrilebilir veya kalıcı blok uygun parametrelerle HIFU tarafından elde edilebilir gösterdi. Analjezik uygulamaların yanı sıra HIFU bir araç olarak sinir iletim abluka Nöroloji temel araştırma ve geliştirme ağrı kesici için periferik ve merkezi bileşenleri göreli katkısını araştırmak için kullanılabilir olur. Bu nedenle, bir HIFU engelleme teknoloji platformu belirli hayvan modellerinde periferik sinirler için gereklidir. Bu makalenin amacı, kısmen veya tamamen HIFU tarafından diyabetik nöropatik Sıçanlarda periferik sinir aksiyon potansiyelleri engelleme yordamlarına göstermektir. Diyabetik fare modelleri ve değerlendirme periferik nöropatik semptomların kurulmuştur. Bir HIFU platformu ve deneysel süreçler sıçan siyatik sinirleri tedavisi için belirli sunulmaktadır.

<table><tbody><tr><td>streptozotocin</td><td>Sigma</td><td>85882</td><td></td></tr><tr><td>citric acid monohydrate&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>C1909</td><td></td></tr><tr><td>trisodium citrate dihydrate</td><td>Sigma</td><td>W302600</td><td></td></tr><tr><td>glucose meters</td><td>Roche Accu-Check Active</td><td>GC</td><td></td></tr><tr><td>electronic von Frey device</td><td>IITC Life Science</td><td>2390</td><td></td></tr><tr><td>hot plate</td><td>IITC Life Science</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biopac MP36 acquisition system</td><td>Biopac Systems, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HIFU transducer</td><td>Sonic Concepts</td><td>H108</td><td></td></tr><tr><td>function generator</td><td>Agilent</td><td>33250A</td><td></td></tr><tr><td>power amplifier</td><td>Electronics &amp;amp; Innovation</td><td>1040L</td><td></td></tr><tr><td>Rats&amp;nbsp;</td><td>Biolasco taiwan</td><td>Sprague-Dawley</td><td></td></tr><tr><td>Puralube vet ointment</td><td>Dechra</td><td></td><td></td></tr><tr><td>isoflurane vaporizer</td><td>Parkland Scientific</td><td>V3000PS</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurance</td><td>Attane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Restraint bag (Decapicones)</td><td>Braintree Scientific</td><td>DC 200</td><td></td></tr></tbody></table>

an ultrasonic tool for nerve conduction block in diabetic rat models

Sinir iletim bloğu bir yüksek yoğunluk odaklı ultrason (HIFU) çevirici ile normal ve diyabetik hayvan modellerinde son zamanlarda yapıldı. HIFU geri dönülebilir olarak uygun bir ultrasonik parametresini kullanırken sinirler zarar vermeden periferik sinir iletim engelleyebilir. Sinir aksiyon potansiyelleri geçici ve kısmi bloğunu HIFU ağrı yardım için yararlı bir klinik tedavi olma potansiyeline sahip olduğunu gösterir. Bu eser bir HIFU dönüştürücü kullanarak diyabetik sıçan vivo içinde nöropatik sinirler aksiyon potansiyelleri bastırmak için işlemleri gösterir. İlk adım streptozotocin (STZ) enjeksiyonu ile yetişkin erkek diyabetik nöropatik rats üretmektir. İkinci adım STZ-indüklenen diyabetik Sıçanlarda diyabetik periferik nöropati bir elektronik von Frey sonda ve sıcak bir tabak tarafından değerlendirmek etmektir. Kayıt içinde vivo hücre dışı aksiyon potansiyelleri HIFU sonication için maruz sinir son adım etmektir. Burada ortaya yöntem ultrason analjezik uygulamaları çalışma yararlanabilir.

3 s sonication bir yoğunluk itibariyle 2,810 W/cm2bir HIFU doz, insert temellerin % 20 oranında bastırılır, ancak tamamen (şekil 2A, elmas) 30 dk sonra ele geçirildi ve neredeyse giriyordu, in vivo çalışmada gösterilmiştir 28 gün (şekil 2B, elmas) döneminde sürekli. 5 s HIFU maruz kalma, aynı yoğunlukta CMAPs 65,4 temel 4 dk (%9,5) oranında azalmış ve %73,7 (%12,6) satır taban çizgisiyle...

Watch this Scientific Journal Video about An Ultrasonic Tool for Nerve Conduction Block in Diabetic Rat Models at JoVE.com

An Ultrasonic Tool for Nerve Conduction Block in Diabetic Rat Models

Bu çalışma yüksek yoğunluk odaklı ultrason diyabetik nöropatik sinir aksiyon potansiyelleri engellemek için uygulanan metodoloji sunar.

Sinir iletim için ultrasonik bir araç diyabetik sıçan modellerinde engelleme

Nerve conduction block with a high intensity-focused ultrasound (HIFU) transducer has been performed in normal and diabetic animal models recently. HIFU ...

an-ultrasonic-tool-for-nerve-conduction-block-in-diabetic-rat-models

Research

JoVE Journal

Bioengineering

7.3K Görüntüleme.  National Health Research Institutes. Bu çalışma yüksek yoğunluk odaklı ultrason diyabetik nöropatik sinir aksiyon potansiyelleri engellemek için uygulanan metodoloji sunar.

Video: An Ultrasonic Tool for Nerve Conduction Block in Diabetic Rat Models

Rapid Determination of the Thermal Nociceptive Threshold in Diabetic Rats

Painful diabetic neuropathy (PDN) is characterized by hyperalgesia i.e., increased sensitivity to noxious stimulus, and allodynia i.e., hypersensitivity to normally innocuous stimuli1. Hyperalgesia and allodynia have been studied in many different rodent models of diabetes mellitus2. However, as stated by B&ouml;lcskei et al, determination of "pain" in animal models is challenging due to its subjective nature3. Moreover, the traditional methods used to determine behavioral responses to noxious thermal stimuli usually lack reproducibility and pharmacological sensitivity3. For instance, by using the hot-plate method of Ankier4, flinch, withdrawal and/or licking of either hind- and/or fore-paws is quantified as reflex latencies at constant high thermal stimuli (52-55 &deg;C). However, animals that are hyperalgesic to thermal stimulus do not reproducibly show differences in reflex latencies using those supra-threshold temperatures3,5. As the recently described method of B&ouml;lcskei et al.6, the procedures described here allows for the rapid, sensitive and reproducible determination of thermal nociceptive thresholds (TNTs) in mice and rats. The method uses slowly increasing thermal stimulus applied mostly to the skin of mouse/rat plantar surface. The method is particularly sensitive to study anti-nociception during hyperalgesic states such as PDN. The procedures described bellow are based on the ones published in detail by Alm&aacute;si et al 5 and B&ouml;lcskei et al 3. The procedures described here have been approved the Laboratory Animal Care and Use Committee (LACUC), Wright State University.

Here, we describe a rapid reliable and simple procedure to determine the lowest temperature at which rats or mice show nocifensive behavior, i.e. the thermal nociceptive threshold (TNT). This method applies a slowly increasing thermal stimulus allowing precise and reproducible estimation of TNTs with minimum, if any, stress to the animals.

Diyabetik Sıçanlarda Termal Nosiseptif Eşik Hızlı Belirlenmesinde

Painful diabetic neuropathy (PDN) is characterized by hyperalgesia i.e., increased sensitivity to noxious stimulus, and allodynia i.e., hypersensitivity ...

Nörobilim

The Sciatic Nerve Cuffing Model of Neuropathic Pain in Mice

Neuropathic pain arises as a consequence of a lesion or a disease affecting the somatosensory system. This syndrome results from maladaptive changes in injured sensory neurons and along the entire nociceptive pathway within the central nervous system. It is usually chronic and challenging to treat. In order to study neuropathic pain and its treatments, different models have been developed in rodents. These models derive from known etiologies, thus reproducing peripheral nerve injuries, central injuries, and metabolic-, infectious- or chemotherapy-related neuropathies. Murine models of peripheral nerve injury often target the sciatic nerve which is easy to access and allows nociceptive tests on the hind paw. These models rely on a compression and/or a section. Here, the detailed surgery procedure for the &#34;cuff model&#34; of neuropathic pain in mice is described. In this model, a cuff of PE-20 polyethylene tubing of standardized length (2 mm) is unilaterally implanted around the main branch of the sciatic nerve. It induces a long-lasting mechanical allodynia, i.e., a nociceptive response to a normally non-nociceptive stimulus that can be evaluated by using von Frey filaments. Besides the detailed surgery and testing procedures, the interest of this model for the study of neuropathic pain mechanism, for the study of neuropathic pain sensory and anxiodepressive aspects, and for the study of neuropathic pain treatments are also discussed.

Neuropathic pain is a consequence of a lesion or disease affecting the somatosensory system. The &#8220;cuff model&#8221; of neuropathic pain in mice consists of the implantation of a polyethylene cuff around the main branch of the sciatic nerve. Mechanical allodynia is tested using von Frey filaments.

Farelerde Nöropatik Ağrı Siyatik Sinir cuffing Modeli

Neuropathic pain arises as a consequence of a lesion or a disease affecting the somatosensory system. This syndrome results from maladaptive changes in ...

Tıp

In Vivo Electrophysiological Measurements on Mouse Sciatic Nerves

Electrophysiological studies allow a rational classification of various neuromuscular diseases and are of help, together with neuropathological techniques, in the understanding of the underlying pathophysiology1. Here we describe a method to perform electrophysiological studies on mouse sciatic nerves in vivo.
The animals are anesthetized with isoflurane in order to ensure analgesia for the tested mice and undisturbed working environment during the measurements that take about 30 min/animal. A constant body temperature of 37 &#176;C is maintained by a heating plate and continuously measured by a rectal thermo probe2. Additionally, an electrocardiogram (ECG) is routinely recorded during the measurements in order to continuously monitor the physiological state of the investigated animals.
Electrophysiological recordings are performed on the sciatic nerve, the largest nerve of the peripheral nervous system (PNS), supplying the mouse hind limb with both motoric and sensory fiber tracts. In our protocol, sciatic nerves remain in situ and therefore do not have to be extracted or exposed, allowing measurements without any adverse nerve irritations along with actual recordings. Using appropriate needle electrodes3 we perform both proximal and distal nerve stimulations, registering the transmitted potentials with sensing electrodes at gastrocnemius muscles. After data processing, reliable and highly consistent values for the nerve conduction velocity (NCV) and the compound motor action potential (CMAP), the key parameters for quantification of gross peripheral nerve functioning, can be achieved.

In Vivo Electrophysiological Measurements on Mouse Sciatic Nerves

Measurements of nerve conduction properties in vivo exemplify a powerful tool to characterize various animal models of neuromuscular diseases. Here, we present an easy and reliable protocol by which electrophysiological analysis on sciatic nerves of anesthetized mice can be performed.

Fare Siyatik Sinir Vivo elektrofizyolojik ölçümlerde

Electrophysiological studies allow a rational classification of various neuromuscular diseases and are of help, together with neuropathological ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

Electrophysiology enables the objective assessment of peripheral nerve function in vivo. Traditional nerve conduction measures such as amplitude and latency detect chronic axon loss and demyelination, respectively. Axonal excitability techniques &#34;by threshold tracking&#34; expand upon these measures by providing information regarding the activity of ion channels, pumps and exchangers that relate to acute function and may precede degenerative events. As such, the use of axonal excitability in animal models of neurological disorders may provide a useful in vivo measure to assess novel therapeutic interventions. Here we describe an experimental setup for multiple measures of motor axonal excitability techniques in the rat ulnar nerve.
The animals are anesthetized with isoflurane and carefully monitored to ensure constant and adequate depth of anesthesia. Body temperature, respiration rate, heart rate and saturation of oxygen in the blood are continuously monitored. Axonal excitability studies are performed using percutaneous stimulation of the ulnar nerve and recording from the hypothenar muscles of the forelimb paw. With correct electrode placement, a clear compound muscle action potential that increases in amplitude with increasing stimulus intensity is recorded. An automated program is then utilized to deliver a series of electrical pulses which generate 5 specific excitability measures in the following sequence: stimulus response behavior, strength duration time constant, threshold electrotonus, current-threshold relationship and the recovery cycle.
Data presented here indicate that these measures are repeatable and show similarity between left and right ulnar nerves when assessed on the same day. A limitation of these techniques in this setting is the effect of dose and time under anesthesia. Careful monitoring and recording of these variables should be undertaken for consideration at the time of analysis.

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

Axonal excitability techniques provide a powerful tool to examine pathophysiology and biophysical changes that precede irreversible degenerative events. This manuscript demonstrates the use of these techniques on the ulnar nerve of anesthetized rats.

Vivo Aksonal uyarılabilirlik test ile sıçan Ulnar sinirin Elektrofizyolojik ölçüm

Electrophysiology enables the objective assessment of peripheral nerve function in vivo. Traditional nerve conduction measures such as amplitude and ...

Establishing a Mouse Model of a Pure Small Fiber Neuropathy with the Ultrapotent Agonist of Transient Receptor Potential Vanilloid Type 1

Patients with diabetes mellitus (DM) or those experiencing the neurotoxic effects of chemotherapeutic agents may develop sensation disorders due to degeneration and injury of small-diameter sensory neurons, referred to as small fiber neuropathy. Present animal models of small fiber neuropathy affect both large- and small-diameter sensory fibers and thus create a neuropathology too complex to properly assess the effects of injured small-diameter sensory fibers. Therefore, it is necessary to develop an experimental model of pure small fiber neuropathy to adequately examine these issues. This protocol describes an experimental model of small fiber neuropathy specifically affecting small-diameter sensory nerves with resiniferatoxin (RTX), an ultrapotent agonist of transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1), through a single dose of intraperitoneal injection, referred to as RTX neuropathy. This RTX neuropathy showed pathological manifestations and behavioral abnormalities that mimic the clinical characteristics of patients with small fiber neuropathy, including intraepidermal nerve fiber (IENF) degeneration, specifically injury in small-diameter neurons, and induction of thermal hypoalgesia and mechanical allodynia. This protocol tested three doses of RTX (200, 50, and 10 &#181;g/kg, respectively) and concluded that a critical dose of RTX (50 &#181;g/kg) is required for the development of typical small fiber neuropathy manifestations, and prepared a modified immunostaining procedure to investigate IENF degeneration and neuronal soma injury. The modified procedure is fast, systematic, and economic. Behavioral evaluation of neuropathic pain is critical to reveal the function of small-diameter sensory nerves. The evaluation of mechanical thresholds in experimental rodents is particularly challenging and this protocol describes a customized metal mesh that is suitable for this type of assessment in rodents. In summary, RTX neuropathy is a new and easily established experimental model to evaluate the molecular significance and intervention underlying neuropathic pain for the development of therapeutic agents.

This study establishes an experimental model of pure small fiber neuropathy with resiniferatoxin (RTX). A unique dose of RTX (50 &#181;g/kg) is optimal for developing a small fiber neuropathy model that mimics patient characteristics and could help investigate the nociceptive molecular significance underlying neuropathic pain.

Saf küçük Fiber nöropati bir fare modeli ile geçici reseptör potansiyel Vanilloid tip 1 Ultrapotent Agonist kurulması

Patients with diabetes mellitus (DM) or those experiencing the neurotoxic effects of chemotherapeutic agents may develop sensation disorders due to ...

Use of In Vivo Single-fiber Recording and Intact Dorsal Root Ganglion with Attached Sciatic Nerve to Examine the Mechanism of Conduction Failure

Single-fiber recording has been a classical and effective electrophysiological technique over the last few decades because of its specific application for nerve fibers in the central and peripheral nervous systems. This method is particularly applicable to dorsal root ganglia (DRG), which are primary sensory neurons that exhibit a pseudo-unipolar structure of nervous processes. The patterns and features of the action potentials passed along axons are recordable in these neurons. The present study uses in vivo single-fiber recordings to observe the conduction failure of sciatic nerves in complete Freund&#8217;s adjuvant (CFA)-treated rats. As the underlying mechanism cannot be studied using in vivo single-fiber recordings, patch-clamp-recordings of DRG neurons are performed on preparations of intact DRG with the attached sciatic nerve. These recordings reveal a positive correlation between conduction failure and the rising slope of the after-hyperpolarization potential (AHP) of DRG neurons in CFA-treated animals. The protocol for in vivo single fiber-recordings allows the classification of nerve fibers via the measurement of conduction velocity and monitoring of abnormal conditions in nerve fibers in certain diseases. Intact DRG with attached peripheral nerve allows observation of the activity of DRG neurons in most physiological conditions. Conclusively, single-fiber recording combined with electrophysiological recording of intact DRGs is an effective method to examine the role of conduction failure during the analgesic process.

Single-fiber recording is an effective electrophysiological technique that is applicable to the central and peripheral nervous systems. Along with the preparation of intact DRG with the attached sciatic nerve, the mechanism of conduction failure is examined. Both protocols improve the understanding of the peripheral nervous system&#39;s relationship with pain.

İletim Yetmezliği Mekanizmasını İncelemek Için Bağlı Siyatik Sinir ile In Vivo Tek Lifli Kayıt ve Bozulmamış Dorsal Kök Ganglion Kullanımı

Single-fiber recording has been a classical and effective electrophysiological technique over the last few decades because of its specific application for ...

Modified Spared Nerve Injury Surgery Model of Neuropathic Pain in Mice

Spared nerve injury (SNI) is an animal model that mimics the cardinal symptoms of peripheral nerve injury for studying the molecular and cellular mechanism of neuropathic pain in mice and rats. Currently, there are two types of SNI model, one to cut and ligate the common peroneal and the tibial nerves with intact sural nerve, which is defined as SNIs in this study, and another to cut and ligate the common peroneal and the sural nerves with intact tibial nerve, which is defined as SNIt in this study. Because the sural nerve is purely sensory whereas the tibial nerve contains both motor and sensory fibers, the SNIt model has much less motor deficit than the SNIs model. In the traditional SNIt mouse model, the common peroneal and the sural nerves are cut and ligated separately. Here a modified SNIt surgery method is described to damage both common peroneal and sural nerves with only one ligation and one cut with a shorter procedure time, which is easier to perform and reduces the potential risk of stretching the sciatic or tibial nerves, and produces similar mechanical hypersensitivity as the traditional SNIt model.

<meta charset="utf8"></head><body>Farelerde Nöropatik Ağrının Modifiye Edilmiş Korunmuş Sinir Yaralanması Cerrahisi Modeli

The modified surgery is a simplified method for mouse or rat spared nerve injury model that requires only one ligation and one cut to injure both common peroneal and sural nerves.

Farelerde Nöropatik Ağrının Modifiye Edilmiş Korunmuş Sinir Yaralanması Cerrahisi Modeli

Spared nerve injury (SNI) is an animal model that mimics the cardinal symptoms of peripheral nerve injury for studying the molecular and cellular ...

Preparation of Rat Sciatic Nerve for Ex Vivo Neurophysiology

Ex vivo preparations enable the study of many neurophysiological processes in isolation from the rest of the body while preserving local tissue structure. This work describes the preparation of rat sciatic nerves for ex vivo neurophysiology, including buffer preparation, animal procedures, equipment setup and neurophysiological recording. This work provides an overview of the different types of experiments possible with this method. The outlined method aims to provide 6 h of stimulation and recording on extracted peripheral nerve tissue in tightly controlled conditions for optimal consistency in results. Results obtained using this method are A-fibre compound action potentials (CAP) with peak-to-peak amplitudes in the millivolt range over the entire duration of the experiment. CAP amplitudes and shapes are consistent and reliable, making them useful to test and compare new electrodes to existing models, or the effects of interventions on the tissue, such as the use of chemicals, surgical alterations, or neuromodulatory stimulation techniques. Both conventional commercially available cuff electrodes with platinum-iridium contacts and custom-made conductive elastomer electrodes were tested and gave similar results in terms of nerve stimulus strength-duration response.

Preparation of Rat Sciatic Nerve for Ex Vivo Neurophysiology

This protocol describes the preparation of rat whole sciatic nerve tissue for ex vivo electrophysiological stimulation and recording in an environmentally-regulated, two-compartment, perfused saline bath.

Ex Vivo Nörofizyoloji için Sıçan Siyatik Sinirinin Hazırlanması

Ex vivo preparations enable the study of many neurophysiological processes in isolation from the rest of the body while preserving local tissue structure. ...

Open-Source Real-Time Closed-Loop Electrical Threshold Tracking for Translational Pain Research

Nociceptors are a class of primary afferent neurons that signal potentially harmful noxious stimuli. An increase in nociceptor excitability occurs in acute and chronic pain conditions. This produces abnormal ongoing activity or reduced activation thresholds to noxious stimuli. Identifying the cause of this increased excitability is required for the development and validation of mechanism-based treatments. Single-neuron electrical threshold tracking can quantify nociceptor excitability. Therefore, we have developed an application to allow such measurements and demonstrate its use in humans and rodents. APTrack provides real-time data visualization and action potential identification using a temporal raster plot. Algorithms detect action potentials by threshold crossing and monitor their latency after electrical stimulation. The plugin then modulates the electrical stimulation amplitude using an up-down method to estimate the electrical threshold of the nociceptors. The software was built upon the Open Ephys system (V0.54) and coded in C++ using the JUCE framework. It runs on Windows, Linux, and Mac operating systems. The open-source code is available (<a data-saferedirecturl="https://www.google.com/url?q=https://github.com/Microneurography/APTrack&amp;source=gmail&amp;ust=1680789829274000&amp;usg=AOvVaw0nMk9J_EI2jUn8SlmC5JJm" href="https://github.com/Microneurography/APTrack" target="_blank">https://github.com/Microneurography/APTrack</a>). The electrophysiological recordings were taken from nociceptors in both a mouse skin-nerve preparation using the teased fiber method in the saphenous nerve and in healthy human volunteers using microneurography in the superficial peroneal nerve. Nociceptors were classified by their response to thermal and mechanical stimuli, as well as by monitoring the activity-dependent slowing of the conduction velocity. The software facilitated the experiment by simplifying the action potential identification through the temporal raster plot. We demonstrate real-time closed-loop electrical threshold tracking of single-neuron action potentials during&#160;in vivo&#160;human microneurography, for the first time, and during&#160;ex vivo&#160;mouse electrophysiological recordings of C-fibers and A&#948;-fibers. We establish proof of principle by showing that the electrical threshold of a human heat-sensitive C-fiber nociceptor is reduced by heating the receptive field. This plugin enables the electrical threshold tracking of single-neuron action potentials and allows the quantification of changes in nociceptor excitability.

APTrack is a software plugin developed for the Open Ephys platform that enables real-time data visualization and the closed-loop electrical threshold tracking of neuronal action potentials. We have successfully used this in microneurography for human C-fiber nociceptors and mouse C-fiber and A&#948;-fiber nociceptors.

Translasyonel ağrı araştırması için açık kaynaklı gerçek zamanlı kapalı döngü elektrik eşiği izleme

Nociceptors are a class of primary afferent neurons that signal potentially harmful noxious stimuli. An increase in nociceptor excitability occurs in ...

Sinir iletim için ultrasonik bir araç diyabetik sıçan modellerinde engelleme

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Diyabetik Sıçanlarda Termal Nosiseptif Eşik Hızlı Belirlenmesinde

Farelerde Nöropatik Ağrı Siyatik Sinir cuffing Modeli

Fare Siyatik Sinir Vivo elektrofizyolojik ölçümlerde

Vivo Aksonal uyarılabilirlik test ile sıçan Ulnar sinirin Elektrofizyolojik ölçüm

Saf küçük Fiber nöropati bir fare modeli ile geçici reseptör potansiyel Vanilloid tip 1 Ultrapotent Agonist kurulması

İletim Yetmezliği Mekanizmasını İncelemek Için Bağlı Siyatik Sinir ile In Vivo Tek Lifli Kayıt ve Bozulmamış Dorsal Kök Ganglion Kullanımı

Farelerde Nöropatik Ağrının Modifiye Edilmiş Korunmuş Sinir Yaralanması Cerrahisi Modeli

Farelerde Nöropatik Ağrının Modifiye Edilmiş Korunmuş Sinir Yaralanması Cerrahisi Modeli

Ex Vivo Nörofizyoloji için Sıçan Siyatik Sinirinin Hazırlanması

Translasyonel ağrı araştırması için açık kaynaklı gerçek zamanlı kapalı döngü elektrik eşiği izleme