Laboratuarımızın araştırmada Şu anda Avustralya Araştırma Konseyi (ARC, DP170100008 ve DP180100144), bize hava kuvvetleri Office bilimsel araştırma (AFOSR, FA9550-15-1-0188) ve Stiftelsen Olle Engkvist Byggmästare tarafından finanse edilmektedir (2016/348). Biz teşekkür ederiz hoverfly hisse senetleri, Cederholms Lantbruk ve C M & T L yeşil & Son inek gübresi ve hoverflies onların çiftlikleri, erişim için geliştirmek için katkıda bulunan laboratuvar üyeleri geçmiş ve Adelaide ve Uppsala Botanik Bahçeleri koleksiyonu için izin verir ve devam eden destek.

1. kurmak esir E. tenax koloni
<ol><li>Olgun larva (adım 1.2) koleksiyonu üzerinden koloni kurmak veya alternatif olarak ücretsiz uçan hoverflies (adım 1.3) topluluğu ile.</li>
	<li>
Olgun larva topluluğu
	<ol>
<li>İkinci olarak toplamak ve üçüncü larva gübre açılan çukurlar Sığır çiftlikleri, biçim. Not: etkin bir şekilde YavruIar için karanlık bir kuru ortam aradıkları gibi olgun larva göç onların aşama başlangıç sırasında bulmak kolay olan. Bu çukurlar nemli gübre nerede saman büyük miktarlarda içeren kuru alanları kapatmak gübre sınırları yakınında olma eğilimindedir. Bir sığır çiftliğinin yakınlarında Uppsala, İsveç izni altında toplanan.</li>
		<li>Olgun larva inek gübresi içinde adım 3.2 belirtildiği gibi arka.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Vahşi Hoverflies topluluğu
	<ol>
<li>Örgü yer alan alanında, genellikle botanik bahçeler ve Parklar tarafından vahşi hoverflies toplamak olduğu yerde bir bolluk çiçekli bitkiler. Not: Herhangi bir üç Adelaide Botanik Bahçeleri, mandıra Myponga, Güney Avustralya ve çeşitli botanik bahçeler ve Parklar boyunca Uppsala, İsveç dahil olmak üzere çeşitli konumlardan izni altında toplanan.</li>
		<li>Evi alan adım 2'de belirtildiği gibi hoverflies toplanan.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Konut ve uzun vadeli bakım Hoverflies
<ol><li>Ev hoverflies 20 veya daha az gruplar için 30 cm x 45 cm plastik torbalarda veya kafes yetiştirme bir böcek (25 cm x 25 cm x 25 cm) daha büyük gruplar için.</li>
	<li>Gıda sağlamak ve ad libitum, 10-20 tane arı polen ve 2-3 mL bal birkaç nemli pamuk topları üstüne yerleştirilen şeklinde su. Not: plastik torbalarda konut için herhangi bir çanta içinde su birikimi sağkalım oranları için zararlı olabilir gibi pamuk topları nemli ama aşırı doymuş değil, önemli olan. Diğer taraftan, böcek yetiştirme kafeslerde konut için kafes taraf önemli buharlaşma meydana izin verir. Pamuk topları bu nedenle sığ bir kap içinde yer almalıdır ve tam doymuş.<ol>
<li>Hoverflies 6 saat oda sıcaklığında beslemek için bırakın.</li>
		<li>Hoverflies yiyecek ve su ile onların konut, 8-10 ° C'de buzdolabında yerleştirin ve karanlıkta tut. Not: hoverflies 8-10 ° C'de karanlıkta saklamak hazırda, etkinlik ve metabolizma hızı bir azalma ile bir devlet girin hoverflies neden olur.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Her 3-4 gün hoverflies böylece yolcularınsuni uykularını kırma ve hem besleyen hem de gerçekleşmesi için damat buzdolabından çıkarın.<ol>
<li>Hoverflies bir yeni plastik torba ya da temiz böcek kafes taze yiyecek ve su ile aktarın. Bu transfer, küçük sayılar sinekler, ya da fototaksis, daha büyük sayılar için kullanmak için el ile de yapılabilir.</li>
		<li>Fototaksis kullanmak için bir temiz böcek kafes eskisine katıl, kaçan olmadan ikisi arasında serbestçe hareket hoverflies için bir açık olduğundan emin olun. Eski böcek kafes opak bir kumaş ile kapak. Hoverflies ışık doğru ve temiz böcek kafes içine taşır.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Hoverflies yem ve 6 h için oda sıcaklığında damat izin.</li>
	<li>Hoverflies, yiyecek ve su buzdolabında 8-10 ° C'de karanlık içine onların konut ile dönün. Bu hoverflies yolcularınsuni uykularını recommences.</li>
	<li>Döngüsel hazırda bekleme, her 3-4 gün sağlık ve uzun ömür hoverflies, onların esaret süresi için emin olmak için kırma devam edin.</li>
</ol>3. laboratuvar Rearing, E. tenax
<ol><li>Arka olgun larva Sığır çiftlikleri (adım 3.2) toplanan veya alternatif olarak arka yumurta gravid vahşi yakalanan kadın (adım 3.3) tarafından atılmıştır.</li>
	<li>
Laboratuvar sığır çiftliklerden olgun larva yetiştirme
	<ol>
<li>Sığır çiftlikleri 30 L kovalar inek gübresi toplanan larva yerleştirin.</li>
		<li>Bir büyük kutu veya çanta (50-60 m en küçük birim) içinde olgun larva içeren kova getirin ve kova kenarında yüksekliği kadar 20-30 L talaş yerleştirin. Not: Bu 3rd biçim larva talaş tarama ve YavruIar sağlar.</li>
		<li>Böylece ne larva ne de herhangi bir gelişmekte olan hoverflies kaçabilir sağlanması kutuları ve/veya Çantalar, asmak izin tavandan çift katmanlı cibinlik asmak. Not: bir önlem olarak, Çift taraflı yapışkan bant olarak kaçan herhangi bir larva sıkışmış almak ve bu kasette YavruIar Kur, surround için kullanılabilir. Eğer onlar yapmak, pupa eclosion önce kaldırın.</li>
		<li>Larva ve pupa, oda sıcaklığında (21,5 ± 2,5 ° C), ev ve ya dolaylı güneş ışığı yanı sıra oda ışıkları çalışma saatleri sırasında ortaya çıkarmak veya 12 saat ışık: 12 h bir ışık: karanlık döngüsü karanlık tutun. Not: 24 h ışığa maruz kalma sağkalım oranları için zararlı olabilir. Sığır çiftlikleri pupation zaman toplanan larva için 1 - 20 gün sonra onların olgunluk bağlı olarak koleksiyon koleksiyon zaman değişir.</li>
		<li>Yiyecek ve su içinde asılı sivrisinek net muhafaza (adım 2.2 hazırlanırken) beklenen eclosion tarihten önce ve yerine 2-3 günde sağlamak. Eclosion 7-10 gün sonra pupation ortaya çıkar.</li>
		<li>2. adımda açıklandığı şekilde konut yerleştirerek önce 6 saat oda sıcaklığında beslemek için hoverflies ortaya çıkan izin verir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Yumurta Gravid vahşi yakalanan kadın tarafından atılmıştır, yetiştirme laboratuvar
	<ol>
<li>Yumurta, hoverfly Konut Konut (adım 2) değiştirmeden önce hem de onları buzdolabına dönen önce kontrol edin. Oviposition gravid kadın vahşi yakalanan tarafından her iki 8-10 ° C'de ve oda sıcaklığında oluşur.<ol>
<li>Yumurta bir 100 x 20 mm içinde musluk suyu 70 mL içeren Petri kabına yerleştirin ve damızlık, genellikle 2-3 gün sonra oviposition oluşana kadar oda sıcaklığında tutmak.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Yer larva olarak taze tavşan dışkı 1 L ve 1 litre musluk suyu içeren bir 2,3 L demet yumurtadan.<ol>
<li>2-3 günde Bulamaç denetleyin ve gerektiği gibi önce 3rd INSTAR larva ortaya Bulamaç kurumasına olduğunu emin olmak için ek musluk suyu ekleyin.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Daha büyük bir kutu (en küçük birim 30 L) içinde tavşan dışkı Bulamaç larva içeren kova getirin talaş 20 L içeren. Ahşap talaşı kova kenarında yüksekliği kadar olduğundan emin olun. Not: Bu 3rd biçim larva talaş tarama ve YavruIar sağlar.<ol>
<li>Çift katmanlı cibinlik ne larva ne de herhangi bir gelişmekte olan hoverflies kaçabilir emin olmak için kutusunun üzerine yerleştirin.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Larva ve pupa, oda sıcaklığında (21,5 ± 2,5 ° C), ev ve ya dolaylı güneş ışığı yanı sıra oda ışıkları çalışma saatleri sırasında ortaya çıkarmak veya 12 saat ışık: 12 h bir ışık: karanlık döngüsü karanlık tutun. Not: 24 h ışığa maruz kalma sağkalım oranları için zararlı olabilir.</li>
		<li>Pupation 15-20 gün sonra gerçekleşmesini bekliyoruz. Pupa toplamak ve hoverflies orada eclose için izin veren bir böcek kafeste yerleştirin.</li>
		<li>Yiyecek ve su (adım 2.2 hazırlanırken) beklenen eclosion tarihten önce sağlamak - eclosion pupation sonra-6-10 günde bir yapılır ve yerine 2-3 günde.</li>
		<li>Konut, 2. adımda açıklandığı şekilde yerleştirerek önce 6 saat oda sıcaklığında beslemek için hoverflies ortaya çıkan izin verir. Not: Her iki pupation, larva ve pupa eclosion depolama birimi tarafından 8-10 ° C'de karanlıkta gecikebilir Bu amaçla, larva tavşan dışkı bulamaç ve pupa talaş içinde saklayın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Goulard, R., Julien-Laferriere, A., Fleuriet, J., Vercher, J. L., Viollet, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioural+evidence+for+a+visual+and+proprioceptive+control+of+head+roll+in+hoverflies+(Episyrphus+balteatus).">Behavioural evidence for a visual and proprioceptive control of head roll in hoverflies (Episyrphus balteatus).</a> Journal of Experimental Biology. 218 (Pt 23), 3777-3787 (2015).</li><li>Dyakova, O., Lee, Y. J., Longden, K. D., Kiselev, V. G., Nordstr&#246;m, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+higher+order+visual+neuron+tuned+to+the+spatial+amplitude+spectra+of+natural+scenes.">A higher order visual neuron tuned to the spatial amplitude spectra of natural scenes.</a> Nature Communications. 6, 8522 (2015).</li><li>Jauker, F., Bondarenko, B., Becker, H. C., Steffan-Dewenter, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pollination+efficiency+of+wild+bees+and+hoverflies+provided+to+oilseed+rape.">Pollination efficiency of wild bees and hoverflies provided to oilseed rape.</a> Agricultural and Forest Entomology. 14 (1), 81-87 (2012).</li><li>Gladis, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bees+versus+flies?+Rearing+methods+and+effectiveness+of+pollinators+in+crop+germplasm+regeneration.">Bees versus flies? Rearing methods and effectiveness of pollinators in crop germplasm regeneration.</a> ActaHortic. , 235-238 (1997).</li><li>Ssymank, A., Kearns, C. A., Pape, T., Thompson, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pollinating+flies+(Diptera):+A+major+contribution+to+plant+diversity+and+agricultural+production.">Pollinating flies (Diptera): A major contribution to plant diversity and agricultural production.</a> Biodiversity (Ottawa). 9 (1-2), 86-89 (2008).</li><li>Nordstr&#246;m, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+situ+modeling+of+multimodal+floral+cues+attracting+wild+pollinators+across+environments.">In situ modeling of multimodal floral cues attracting wild pollinators across environments.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 114 (50), 13218-13223 (2017).</li><li>Altincicek, B., Vilcinskas, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+the+immune-inducible+transcriptome+from+microbial+stress+resistant,+rat-tailed+maggots+of+the+drone+fly+Eristalis+tenax.">Analysis of the immune-inducible transcriptome from microbial stress resistant, rat-tailed maggots of the drone fly Eristalis tenax.</a> BMC Genomics. 8, 326 (2007).</li><li>Stocker, H., Gallant, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Getting+started+:+an+overview+on+raising+and+handling+Drosophila.">Getting started : an overview on raising and handling Drosophila.</a> Methods in Molecular Biology. 420, 27-44 (2008).</li><li>Gladis, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+and+utilization+of+a+mass+rearing+of+Eristalis+tenax+(Diptera,+Syrphidae)+in+the+Gatersleben+genebank.">Establishment and utilization of a mass rearing of Eristalis tenax (Diptera, Syrphidae) in the Gatersleben genebank.</a> Insecta Berlin. 1, 287-294 (1994).</li><li>Francuski, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Shift+in+phenotypic+variation+coupled+with+rapid+loss+of+genetic+diversity+in+captive+populations+of+Eristalis+tenax+(Diptera:+Syrphidae):+consequences+for+rearing+and+potential+commercial+use.">Shift in phenotypic variation coupled with rapid loss of genetic diversity in captive populations of Eristalis tenax (Diptera: Syrphidae): consequences for rearing and potential commercial use.</a> Journal of Economic Entomology. 107 (2), 821-832 (2014).</li><li>P&#233;rez-Ba&#241;&#243;n, C., Hurtado, P., Garc&#237;a-Gras, E., Rojo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SEM+studies+on+immature+stages+of+the+drone+flies+(diptera,+syrphidae):+Eristalis+similis+(Fallen+1817)+and+Eristalis+tenax+(Linnaeus,+1758).">SEM studies on immature stages of the drone flies (diptera, syrphidae): Eristalis similis (Fallen 1817) and Eristalis tenax (Linnaeus, 1758).</a> Microscopy Research and Technique. 76, 853-861 (2013).</li><li>Fruend, J., Linsenmair, K. E., Bluethgen, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pollinator+diversity+and+specialization+in+relation+to+flower+diversity.">Pollinator diversity and specialization in relation to flower diversity.</a> Oikos. 119 (10), 1581-1590 (2010).</li><li>Biesmeijer, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Parallel+declines+in+pollinators+and+insect-pollinated+plants+in+Britain+and+the+Netherlands.">Parallel declines in pollinators and insect-pollinated plants in Britain and the Netherlands.</a> Science. 313 (5785), 351-354 (2006).</li><li>Pape, T., Evenhuis, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Systema Dipterorum, Version 1.5. , (2013).</li><li>Miranda, G. F. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Key+to+the+genera+of+Nearctic+Syrphidae.">Key to the genera of Nearctic Syrphidae.</a> Canadian Journal of Arthropod Identification. 23, 1-351 (2013).</li><li>Nationalnyckeln. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Nationalnyckeln till Sveriges flora och fauna. Tv&#229;vingar: Blomflugor: Syprhidae: Syrphinae. , (2009).</li><li>Mitra, B., Roy, S., Imam, I., Ghosh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+hover+flies+(Syrphidae:+Diptera)+from+India.">A review of the hover flies (Syrphidae: Diptera) from India.</a> International Journal of Fauna and Biological Studies. 2 (3), 61-73 (2015).</li><li>Sengupta, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+updated+distributional+account+of+indian+hover+flies+(Insecta:+Diptera:+Syrphidae).">An updated distributional account of indian hover flies (Insecta: Diptera: Syrphidae).</a> Journal of Entomology and Zoology Studies. 4 (6), 381-396 (2016).</li><li>Shah, G. M., Jan, U., Wachkoo, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+checklist+of+hoverflies+(Diptera:+Syrphidae)+in+the+western+Himalaya,+India+.">A checklist of hoverflies (Diptera: Syrphidae) in the western Himalaya, India .</a> Acta Zool Acad Scient Hung. 60 (4), 283-305 (2014).</li><li>Francuski, L., Djurakic, M., LUDOS&#780;KI, J., MILANKOV, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Landscape+genetics+and+spatial+pattern+of+phenotypic+variation+of+Eristalis+tenax+across+Europe.">Landscape genetics and spatial pattern of phenotypic variation of Eristalis tenax across Europe.</a> Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research. 51 (3), 227-238 (2013).</li><li>Thomson, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Revision+of+the+Eristalis+flower+flies+(Diptera:+Syrphidae)+of+the+Americas+south+of+the+United+States.">Revision of the Eristalis flower flies (Diptera: Syrphidae) of the Americas south of the United States.</a> Proceedings of the Entomological Society of Washington. 99 (2), 209-237 (1997).</li><li>Hull, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Review+of+the+Genus+Eristalis+Latreille+in+North+America.+Part+II.">A Review of the Genus Eristalis Latreille in North America. Part II.</a> Ohio Journal of Science. 25 (6), 285-312 (1925).</li><li>Osburn, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+in+Syrphid&#230;-IV.+Species+of+Eristalis+New+to+America,+with+Notes+on+Others.">Studies in Syrphid&#230;-IV. Species of Eristalis New to America, with Notes on Others.</a> Journal of the New York Entomological Society. 23 (2), 139-145 (1915).</li><li>Bankowska, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Notes+on+syrphid+flies+(Diptera,+Syrphidae)+of+Japan.">Notes on syrphid flies (Diptera, Syrphidae) of Japan.</a> Fragmenta Faunistica. 43 (16), 203-207 (2000).</li><li>Brower, J., Brower, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+studies+of+mimicry.+8.+Further+investigations+of+honeybees+(Apis+mellifera)+and+their+dronefly+mimics+(Eristalis+spp).">Experimental studies of mimicry. 8. Further investigations of honeybees (Apis mellifera) and their dronefly mimics (Eristalis spp).</a> The American Naturalist. 99, 173-187 (1965).</li><li>Gilbert, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diurnal+activity+patterns+in+hoverfies+(Diptera,+Syphidae).">Diurnal activity patterns in hoverfies (Diptera, Syphidae).</a> Ecological Entomology. 10, 385-392 (1985).</li><li>Ottenheim, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Annual+and+diurnal+rhythms+of+Eristalis+species+(Diptera:+Syrphidae).">Annual and diurnal rhythms of Eristalis species (Diptera: Syrphidae).</a> Proceedings of the Section Experimental and Applied Entomology of the Netherlands Entomological Society (N.E.V.). 11, 169-174 (2000).</li><li>Kendall, D. A., Stradling, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Some+observations+on+over+wintering+of+the+drone+fly+Eristalis+tenax+Syrphidae.">Some observations on over wintering of the drone fly Eristalis tenax Syrphidae.</a> Entomologist. 105 (1311), 229-230 (1972).</li><li>Dolley, J. W., Hassett, C., Bowen, W., Phillies, G., Needham, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Culture methods for invertebrate animals. 550, (1937).</li><li>Heal, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Variation+and+seasonal+changes+in+hoverfly+species:+interactions+between+temperature,+age+and+genotype.">Variation and seasonal changes in hoverfly species: interactions between temperature, age and genotype.</a> Biological Journal of the Linnean Society. 36, 251-269 (1989).</li><li>Ottenheim, M. M., Holloway, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+diet+and+light+and+larval+and+pupal+development+of+laboratory-reared+Eristalis+arbustorum+(Diptera:+Syprhidae).">The effect of diet and light and larval and pupal development of laboratory-reared Eristalis arbustorum (Diptera: Syprhidae).</a> Netherlands Journal of Zoolog. (3-4), 305-314 (1995).</li><li>Hurtado, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Estudio del ciclo de vida de s&#237;rfidos eristalinos (Diptera, Syrphidae) y bases para su cr&#237;a artificial. , (2013).</li><li>Dolley, W. L., White, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+illuminance+on+the+reversal+temperature+in+the+drone+fly,+Eristalis+tenax.">The effect of illuminance on the reversal temperature in the drone fly, Eristalis tenax.</a> Biological Bulletin. 100 (2), 84-89 (1951).</li><li>Wellington, W., Fitzpatrick, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Territoriality+in+the+drone+fly,+Eristalis+tenax+(Diptera,+Syrphidae).">Territoriality in the drone fly, Eristalis tenax (Diptera, Syrphidae).</a> Canadian Entomologist. 113 (6), 695-704 (1981).</li><li>Nordstr&#246;m, K., Barnett, P. D., Moyer de Miguel, I. M., Brinkworth, R. S. A., O'Carroll, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sexual+dimorphism+in+the+hoverfly+motion+vision+pathway.">Sexual dimorphism in the hoverfly motion vision pathway.</a> Current Biology. 18 (9), 661-667 (2008).</li><li>Collett, T. S., Land, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visual+control+of+flight+behaviour+in+the+hoverfly,+Syritta+pipiens+L.">Visual control of flight behaviour in the hoverfly, Syritta pipiens L.</a> Journal of Comparative Physiology A. 99, 1-66 (1975).</li><li>Pitnick, S., Miller, G., Reagan, J., Holland, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Males'+evolutionary+responses+to+experimental+removal+of+sexual+selection.">Males' evolutionary responses to experimental removal of sexual selection.</a> Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 268, 1071-1080 (2001).</li><li>Holland, B., Rice, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+removal+of+sexual+selection+reverses+intersexual+antagonists+coevolution+and+removes+a+reproductive+load.">Experimental removal of sexual selection reverses intersexual antagonists coevolution and removes a reproductive load.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 96, 5083-5088 (1999).</li><li>Thyselius, M., Nordstr&#246;m, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hoverfly+locomotor+activity+is+resilient+to+external+influence+and+intrinsic+factors.">Hoverfly locomotor activity is resilient to external influence and intrinsic factors.</a> Journal of Comparative Physiology A. 202 (1), 45-54 (2016).</li><li>Heal, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Colour+patterns+of+Syrphidae:+1.+Genetic+Variation+in+the+dronefly+Eristalis+tenax.">Colour patterns of Syrphidae: 1. Genetic Variation in the dronefly Eristalis tenax.</a> Heredity. 42 (2), 223-236 (1979).</li><li>Ireland, S., Turner, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+larval+crowding+and+food+type+on+the+size+and+development+of+the+blowfly,+Calliphora+vomitoria.">The effects of larval crowding and food type on the size and development of the blowfly, Calliphora vomitoria.</a> Forensic Science International. 159, 175-181 (2006).</li><li>Dolley, W. L., Golden, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+sex+and+age+on+the+temperature+at+which+reversal+in+reaction+to+light+in+Eristalis+tenax+occurs.">The effect of sex and age on the temperature at which reversal in reaction to light in Eristalis tenax occurs.</a> Biology Bulletin. 92 (3), 178-186 (1947).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Bizim yöntemlerle (Şekil 1) hoverflies edilmiş laboratuvar olarak 1 yıl içinde bir süre için muhafaza ve başarıyla esaret39' 7 ay sonra davranış deneylerde kullanılan. Nitekim, counterintuitive, hoverflies daha doğal bir ortamda tutulması görünse bile 12 s ışık: 12 altında oda sıcaklığında s karanlık koşullar önemli ölçüde azalır onların yaşam süresi 2-3 ay. E. tenax bizim yolcularınsuni uykularını döngüsü için bir yıldan daha önceki önemli ölçüde uzun bakımı farklı protokolleri (77 gün33, 4 ay9, 18 haftalık30) kullanarak çalışır. Artan bu uzun ömürlü etkileyen ana faktör muhtemelen 8-10 ° C'de yolcularınsuni uykularını kullanılır Deliği hazırda bekleme kırarak, her 3-4 gün (2. adımda, resim 1), biz hoverflies hem yem ve kendi kendine damat, böylece olarak gözlenen artış ağırlık (kanıtladığı beslenme durumu ve hoverflies, refah sağlamak için izin Şekil 4) ve Lokomotor aktivite bir değişiklik tutsak (Şekil 3ve bkz:39) uzun süre sonra bile yok. Nitekim, yolcularınsuni uykularını, başarısız denemeleri edebiyat raporlarında böylece artmış mortalite ve kalıp9varlığı için önde gelen hazırda bekleme döngüsü bozulmaz.
Ayrıca, bazı tartışmalara polen sağlanması bir besin kaynağı olarak olarak edebiyat boyunca vardır. Birkaç arı polen özel olarak oviposition için yeterli değildir ve yalnızca gerçekten taze veya kuru polen sağlanması uygun9,29olduğunu söyleyin. Arı polen bal ve su ile tamamlayan tarafından uzun ömür ve oviposition, Esaret, cinsiyetler (Şekil 4) ve hala içinde meydana gelen oviposition görülen kilo artışı ile uzun süre sonra bile görüyoruz ki bizim bulgular göstermektedir Kadın esaret39' den fazla 5 ay sonra. Artan bu uzun ömürlü tüm yaşam evreleri hoverflies davranışlarını incelemek için bize izin verir.
Alanında, kadın hoverflies önce mevsimlik hazırda bekleme döllenmiş ve üreme diapause, nerede sperm depolanır ve yumurta bahar28kadar az gelişmiş, kalan kalır. Tipik bir erkek 60 gün293000 yumurta atma yeteneğine sahip olduğunu göz önüne alındığında, bu yumurta yetiştirme bu nedenle bizim esir nüfusu artırmak için hızlı ve verimli bir şekilde var. Ancak, geçerli anlayışımız hazırda bir süre sonra yumurta geliştirme yol açan faktörlerin sınırlıdır. Sıcaklık, nem, ışık şiddeti ve beslenme durumu tüm üreme diapause28,40kontrol bir rol oynamaya olarak önerilmiştir. Gibi faktörlerin deneysel işleme için daha büyük bir yönetim oviposition zamanlama ve oranları neden olabilir.
Canlılığı çok daha uzun olabilir, ancak benzer şekilde, biz başarıyla larva, gelişimi yanı sıra Pupa, eclosion 2 hafta boyunca 8-10 ° C'de karanlık depoda tarafından ertelediniz. Nitekim, Heal30 37 gün pupa sıcaklık 10 ° C'ye 25 ° C ne zaman kesildi bir pupa süresi artış bildirdi Bu stratejileri istihdam ve yumurta üretimi ve/veya pupa gelişimini geciktirmek esir nüfusun demografik büyük bir manipülasyon için izin verecek.
Arz zamansal tutarlılık büyük verim bizim gereksinimleri için daha çok önemli olmakla birlikte, bu tozlaşma seralarda gibi diğer kullanımlar için daha önemli olabilir. Bizim teknik tavşan dışkı ile kullanırken, biz yumurta (N = 3) her debriyaj 163 ± 34 eclosed hoverflies olduğunu bulmuşlar. Verilen bu tipik bir erkek 200 yumurta40bırakır, biz bunlar larva büyüme9 önemli ölçüde etkileyen olarak karıştığı olmuştur olarak azalan ya da aşırı kalabalık ve gıda rekabet veya sıcaklık ayarlama bu verim artırmak mümkün olabilir ,31,40,41. Ancak, temel medya büyük ölçüde verim32etkiler hiçbir gösterge yoktur. Buna ek olarak, diğer omurgalı29,30,31,42gelen dışkı aksine tavşan dışkı olduğunu nispeten koku ücretsiz, koloni normal laboratuvar koşullarında tutulması izin ezelî belgili tanımlık lüzum için ek havalandırma. Larva medya yoğunluğunu azaltarak veya beslenme ekleyerek Maya gibi takviyeleri gibi 20-25 ° C arasında sabit bir sıcaklıkta tutulması tam verim31,32, iyi duruma getirmek muhtemelen yeterli olacaktır 40.
Özgürce hoverflies uçan veya genetik olarak farklı bir esir nüfus sürdürülmesi yeterli sayıda toplama ve pratik pratik her iki ve küçük ölçekli araştırma projeleri için kısıtlayıcı zaman. Bu nedenle, yıl boyunca kullanım için bir araştırma ortamda en pratik Seçenekler E. tenax , vahşi şeklindeki dişiler yavru yetiştirme ve olgun larva7, hasat tarafından malzemeleri ilave izin verir. Bu yöntemler içinde koleksiyonu ortaya çıkabilir, her iki yetişkin hoverflies uzun ömür sağlamak için bir ihtiyaç ve herhangi bir yumurta yetiştirme koydu mevsim tarafından sınırlı olarak gravid kadın yakalandı.

Hoverflies bilimsel sorular, sinirsel mekanizmalar hareket vision2, tozlaşma verimliliği3,4, temel uçuş davranış1, dahil olmak üzere bir dizi araştırma için faydalı model olarak ortaya çıkıyor 5 , 6 ve mikrobiyal dokunulmazlık7. Ancak, diğer dipteran gibi bazı modeller, Drosophila8, aksine hoverflies kullanılmak üzere bilimsel araştırma laboratuarı yetiştirme için hiçbir standart protokoller vardır. Geçerli edebiyat hoverfly Eristalis tenaxüreme yöntemlerini açıklar bile, gerçekten de, bunların çoğu hoverflies kırpma tozlaşma, biyo-organik atık veya anatomik çalışmalar bozulma için kitle ekimi için geliştirilmiştir 9 , 10 , 11. böylece, nüfusun genetik fitness muhafaza ederken sağlıklı sağlam hoverflies, tutarlı bir tedarik sağlayan kolay bir iletişim kuralları için ihtiyaç karşılarlar değil.
Arılar ve bumblebees, hoverflies en önemli vahşi, kültürlü tozlayıcı grupları12,13vardır. Yaklaşık 6000 hoverfly türler dünya çapında14,15, İsveç16 75 cins 300'den fazla tür ve Hindistan17,18,1969 cins 300'den fazla tür vardır. Örneğin, tarıma önemli marmelat hoverfly reçel sineği ve uçak sinek, biz burada, odak Eristalis tenax, Avrupa, Amerika ve Asya6,16arasındabulunur, 17,18,19,20,21,22,23,24,25. Hoverflies yıl boyunca, ne de gün boyunca aynı derecede aktif değildir. Gerçekten de, sadece sezon ve zaman gün, aynı zamanda ışık şiddeti dalgalanmalar sıcaklık, nem, Rüzgar hızı, etkiler hoverflies26,27etkinlik şekillerinin. Alanında, Eristalis yılın herhangi bir zamanda Akdeniz iklimleri11' bulunabilir ancak active hoverflies sayıda kışın çok düşüktür. Diğer taraftan soğuk ılıman iklimlerde Eristalis kış kış uykusuna ve aktif olarak yer alan alanında çevresinde Ekim-Mart28davranıyor bulunamadı.
Özgürce hoverflies uçan örgü alanında tarafından toplanabilir. Nitekim, ılıman iklimlerde en büyük bolluk içinde buluncaya kadar orta geç sabah için üzerinde sakin sonunda yaz ve sonbahar26,27boyunca güneşli gün. Alternatif olarak, Olgun E. tenax larva, ikinci veya üçüncü biçim, tespit ve gübre gibi organik madde yığın bozulması ya da organik kirli akarsu10,11--dan hasat. Nitekim, laboratuvar E. tenax yetiştirme için yayımlanan teknikleri tüm organik kirli suda, ya bir çeşit bitkisel veya fekal madde9,10,29, üzerinden larva yetiştirme dayanmaktadır 30 , 31 , 32 , 33. ancak, larva toplama sezon tarafından sınırlıdır ve yalnızca bir geçerli koleksiyonu aracından ilkbahar geç sonbahar11başlanır. Ayrıca, ortam sıcaklık değişiklikleri her iki oluşumunu oviposition ve larva geliştirme oranları9,28etkileyebilir gibi larva bolluk yerel hava desen tarafından etkilenir.
Bu nedenle, larva ve yumurta laboratuvar içinde yetiştirme sağlıklı stokları hoverflies korumak için stratejiler deneyler yıl boyunca, sezon veya yerel hava olayları bağımsız olarak yapılabilir emin olmak için ihtiyaç vardır. Önemlisi, burada açıklanan tekniği sadece vahşi şeklindeki kadın üzerinden hoverflies doğurur. Bu Francuski, et al. tarafından yapılan bir çalışma olarak önemlidir 10 bir laboratuvar genetik çeşitlilik hoverflies nüfusu yetiştirilmiş, başlangıçta 120 olgun larva kurulan, bulundu hızla kayboldu. Bu nedenle bu genetik çeşitlilik doldurulan veya hatta tamamen yeniden kurulan, toplanan alan kişilerle her bahar10gerek bu ticari kırpma tozlaşma amaçlar için kullanılmak üzere sömürgelerinde korumak için tavsiye ettiler.
Görme veya Kur ve çiftleşme kullanılan diğer duyuları üzerinde çalışırken, böylece genetik çeşitlilik, koloni kurmak veya düzenli olarak toplanan alan kişilerle koloni Yenileyici korumak öneririz. Bu nüfusun genetik sürüklenme cinsel seçimi etkiler kadar önemlidir. Gerçekten de, vahşi, Erkek hoverflies tanımlamak ve uygun arkadaşları müdahale, aynı zamanda diğer erkek ile onların toprakları34savunmak tarafından hakları çiftleşme için rekabet gerek. Bu işlem en iyi görme ve kayma dikkat ile erkek çiftleşme içinde en başarılı olması muhtemeldir ve dolayısıyla bu özellikler sonraki nesile geçer sağlar. Devam eden bu işlemlerden sonuç etkisi kısmen, cinsel dimorphisms görsel yolu hoverflies35,36varlığı gösterilmiştir. Esaret erkekler başarılı olduğu gibi alan çiftleşme aynı engeller var mı: Birincisi, kadın kolayca kullanılabilir ve ikinci olarak küçük, sınırlı muhafaza çiftleşme erişim diğer caydırmak için hareket toprak davranışları etkisini olumsuzlar rekabetçi erkek. Drosophila melanogaster, cinsel seçim deneysel kaldırılması genel vücut büyüklüğü, testis boyutu ve sperm üretim37ve erkek indirimli oranda bir azalma ile esir nüfus üzerinde önemli bir etkisi için gösterilen Kur davranışları38. Böylece, program, cinsel seçimin herhangi bir göz olmadan üreme bir esir hem görsel ve davranışsal çalışmalar daha sonra yapılan üzerinde derin bir etkisi olabilir.
Sağlıklı hoverflies tutarlı bir tedarik sağlar basit ve düşük maliyetli bir çözüm burada açıklayın. Esnek ve basit-e doğru yeniden başlamak ve/veya, upscale araştırma talepleri bağlı olarak iletişim kuralıdır.

<table><tbody><tr><td>Bee Pollen</td><td>Forest Super Foods</td><td></td><td>any brand of bee pollen is suitable</td></tr><tr><td>Honey</td><td>Bramwells</td><td></td><td>any brand of liquid honey is suitable</td></tr><tr><td>Rabbit Faeces</td><td></td><td></td><td>can be substituted with cow or pig manure made into a slurry</td></tr><tr><td>BugDome</td><td>Australia Entomological Supplies</td><td>EM42222</td><td></td></tr><tr><td>Plastic Bags</td><td>Woolworths Homebrand</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mosquito netting</td><td>Clas Ohlson</td><td>34-1113</td><td></td></tr><tr><td>Cotton Balls</td><td>Woolworths Select</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fridge</td><td>Hisense</td><td></td><td>fridge needs to maintain a stable 8-10&amp;deg;C&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Buckets (2-3L)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Large plastic tubs (30L)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wood shavings</td><td>Pollards Sawdust Supplies</td><td>MaxiFlake (75)&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Bag clips</td><td>IKEA</td><td>Bevara 303.391.70</td><td></td></tr><tr><td>Petri Dish (100mm x 20mm)</td><td>Corning</td><td>430167</td><td></td></tr></tbody></table>

rearing and long-term maintenance of eristalis tenax hoverflies for research studies

Bir tahmini 6000 türler ile dünya çapında, hoverflies Evcil arıları için alternatif tozlayıcı olarak ekolojik önemlidir. Ancak, onlar da hareket vizyon ve uçuş dinamiği kontrollü laboratuvar ortamında çalışmak için yararlı bir bilimsel modeli vardır. Larvalar organik kirli suda geliştirdikçe, onlar yatırım mikrobiyal bağışıklık soruşturma için yararlı modelleri vardır. Tarım için büyük ölçekli ticari doğurmak zaten oluşur iken, bilimsel çalışmalar için esir nüfusu korumak için standart iletişim kuralı yok. Bu dönemler tutarlı, istikrarlı ve sağlam yıl boyunca sık sık diğer araştırma amaçlı gerektiğinde bir nüfus sağlamak için başarısız olabilir en yüksek tozlaşma sırasında çıkış kitle üzerinde odaklanan ticari esir ıslahı programlar olarak önemlidir. Bu nedenle, bir yöntem oluşturmak, sürdürmek ve esir araştırma nüfus yenilemek için gereklidir. Burada, yolcularınsuni uykularını çevriminin, beslenme ve konut gereksinimlerine ek olarak Eristalis tenaxuzun vadeli bakım için kullanımını açıklar. Bu yöntemleri kullanarak, biz önemli ölçüde sağlık ve uzun yaşam-in önceki raporlar'karşılaştırma E. tenax esir nüfus artmıştır. Ayrıca küçük ölçekli yetiştirme yöntemleri ve verimleri en iyi duruma getirme ve nüfus nüfus bilgileri değiştirmek için seçenekleri görüşmek.

Biz görsel ve davranış Araştırmaları ( Şekil 1' de özetlenen) sağlıklı bir nüfus tutar bir üçlü strateji geliştirdik. Bizim Yöntem--dan belgili tanımlık vahşi (adım 1, Şekil 1) hoverflies koleksiyonu ile başlar. Bizim laboratuarımızda hoverflies yerleştirilmiştir böcek kafes veya plastik torbalar, yolcularınsuni uykularını çevriminin altında (2. adımda, resim 1), önemli ölçüde onların ömrü uzatan. Artan numaraları için çoluk çocuk vahşi şeklindeki kadın (adım 3, Şekil 1) yetiştirilen.
Biz vahşi hoverflies sayıda yakalamak zaman yoğun çaba olduğunu, düz ne zaman çevre koşulları olumlu bulduk. Buna ek olarak, başarılı olgun larva yetiştirme çiftlikleri vahşi hoverflies (1. adımda, resim 1), çok sayıda kaynak çok daha verimli bir yoldur sığır gübresi açılan çukurlar bizimle 0,03 m3 ' e kadar 700 larva toplama hasat gübre. Ayrıca, arka yumurta tarafından yakalanan gravid kadın seks bizim teknikleri başarılı (adım 3, Şekil 1) olduğu kanıtlanmıştır. Kadın bir Akdeniz iklimi (Adelaide) sonbahar sırasında yakalanan ve kış aylarında 24 kümeleriyle 19 kadın 20 haftalık bir süre içinde gözlenen yumurta, çeşitli toplu işlemleri koydu. Bu yumurta toplu halde, tüm bunların verimli ve larva tarama sonuçlandı suya 10 yerleştirildi. Larvalar 3 grupları daha sonra bu noktadan sonra alınan ve tavşan dışkı Bulamaç yerleştirilir, sonuçlanan 163 ± 34 (ortalama ± SD, N = 3) hoverflies, ile hiçbir gözlenen cinsiyet önyargı (Şekil 2) ortaya çıktı.
Bu laboratuvar yetiştirilen hoverflies sağlık ağırlığı karşılaştırılması ve kadın hoverflies esir alan kişilere göre lokomotor aktivite tarafından tespit edilmiştir. Genel lokomotor aktivite lokomotor aktivite izleme sistemi (DEKORASYONUNDA),39daha önce açıklandığı gibi kullanarak değerlendirildi. Esaret altında bizim yolcularınsuni uykularını 4 ay döngüsü sonra ağırlık (Şekil 3A) ya da etkinlik (Şekil 3B) hiçbir önemli farklılıkları yetiştirilen laboratuvar ve vahşi yakalanan hoverflies arasında tespit edildi. E. tenax muhafaza ne zaman laboratuvar yolcularınsuni uykularını çevriminin kullanmanıza gerek kalmadan uzun ömürlü, bir ömrü 2,5-3 ay (73 ± 5 kadın için 7 gün) ve 79 ± 4 gün 11 erkekler için önemli bir azalma gördüm. Ne zaman hoverflies yolcularınsuni uykularını tutuldu aşan 12 ay yaşayabilir.
Ayrıca, uzun vadeli bakım bizim açıklanan yöntemleri kullanarak, etkisini daha da yetiştirilen laboratuvar hoverflies her iki cinsiyet için zaman içinde ağırlık bir karşılaştırma tarafından değerlendirildi. Biz sürekli olarak tartım kadın ile erkek karşılıkları (p < 0,0001, iki yönlü ANOVA, N = 12, Şekil 4) fazla ağırlık önemli bir artış için her iki cinste, 4 aylık bir dönemde gözlenen.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57711/57711fig1.jpg"> Şekil 1: Akış diyagramı için sağlıklı esir nüfusu bakım yöntemleri anahat oluşturma E. tenax. (1) burada açıklanan yordamı her iki Olgun larva inek gübresi (adım 1.2) üzerinden veya serbestçe uçan hoverflies (adım 1.3) topluluğu ile başlar. (2) hoverflies böcek kafes veya plastik torbalar, sayı üzerine bağımlı yerleştirilmiştir. 8-10 ° C'de 3-4 günde bozuldu bir yolcularınsuni uykularını döngüsünde tutulur. (3) toplanan larva onların inek gübresi (adım 3.2) tutulur. Laboratuarda koydu yumurta bir tavşan dışkı Bulamaç (adım 3.3) yerleştirilir. Olgunluk ulaşmak zaman, 3rd INSTAR larva nerede onlar YavruIar çevreleyen testere toz sürün. Eclosion 6-10 gün sonra ortaya çıkar ve eclosed hoverflies Konut (adım 2) yerleştirilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57711/57711fig1large.jpg">Bu dosyayı indirmek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57711/57711fig2v3.jpg"> Şekil 2:   Numarası ve cinsiyet oranı E. tenax başarılı bir şekilde yetiştirilen bireysel yumurta toplu işlemleri üzerinden. E. tenax pupa üzerinden bu eclosed sayıda yumurta 3 toplu halde geliştirilmiş veri göstermek bizim laboratuarımızda koydu. Yumurta vahşi yakalanan kadın tarafından atılmıştır. Renk kodlu sineklerin seks için verilerdir. Oranı anlamlı bir fark vardır.
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57711/57711fig3v3.jpg"> Şekil 3:   Nüfus sağlık laboratuvarında değerlendirilmesi yetiştirilen ve alan toplanan kadın hoverflies uzun vadeli esaret sonra. (A) laboratuvar yetiştirilen ve alan arasında Ağırlık karşılaştırma tutsak yolcularınsuni uykularını (N = 12) altında 4 ay sonra kadın hoverflies yakalanan. (B) aktivite düzeyleri laboratuvar yetiştirilen ve alan kadın hoverflies 4 ay sonra tutsak yolcularınsuni uykularını altında ele geçirdi. Hoverflies lokomotor aktivite lokomotor aktivite sistemde onlar hareketi sırasında bir kızılötesi ışını kırarak tarafından ölçüldü. Daha önce biz faaliyet lokomotor aktivite monitör sistemi39 ' ikinci tam gün gün ortasında 6,7 saat arasında ortalama olarak (Nalan yakaladı= 9, NLaboratuvar yetiştirilen= 12). Ortanca, her kutu çizimi merkezi işareti gösterir veri ve bıyık için 75inci testlerinde 25inci kutusu kenarları en fazla veri için en az ve genişletir.
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57711/57711fig4v3.jpg"> Şekil 4:   Uzun vadeli bakım etkisi laboratuvar ağırlığını karşılaştırılması yetiştirilen hoverflies her iki cinsiyetten. Verileri hoverfly ağırlık esaret yolcularınsuni uykularını altında nda zamanın bir fonksiyonu olarak göstermek. Tüm hoverflies bizim laboratuvar (her veri noktasında N = 12) ve t yumurtadan yetiştirilen edildi gibi = 0'a eşit pupa kuluçka süresi, esaret zamanında hayvanlar yaşlandıkça aynıdır. Ortanca, her kutu çizimi merkezi işareti gösterir veri ve bıyık için 75incitestlerinde 25inci kutusu kenarları en fazla veri için en az ve genişletir.

Watch this Scientific Journal Video about Rearing and Long-Term Maintenance of Eristalis tenax Hoverflies for Research Studies at JoVE.com

Rearing and Long-Term Maintenance of Eristalis tenax Hoverflies for Research Studies

Yetiştirme ve araştırma çalışmaları için Eristalis tenax Hoverflies uzun vadeli bakım

Bu yordamları genel amacı kurmak, korumak ve Eristalis tenax esir nüfusu bir araştırma ortamda yenilemek etmektir.

With an estimated 6000 species worldwide, hoverflies are ecologically important as alternative pollinators to domesticated honeybees. However, they are ...

rearing-long-term-maintenance-eristalis-tenax-hoverflies-for-research

Research

JoVE Journal

Environment

Rearing and Long-Term Maintenance of Eristalis tenax Hoverflies for Research Studies

13.4K Görüntüleme.  Flinders University. Bu yordamları genel amacı kurmak, korumak ve Eristalis tenax esir nüfusu bir araştırma ortamda yenilemek etmektir.

Video: Rearing and Long-Term Maintenance of Eristalis tenax Hoverflies for Research Studies

Early Metamorphic Insertion Technology for Insect Flight Behavior Monitoring

Early Metamorphosis Insertion Technology (EMIT) is a novel methodology for integrating microfabricated neuromuscular recording and actuation platforms on insects during their metamorphic development. Here, the implants are fused within the structure and function of the neuromuscular system as a result of metamorphic tissue remaking. The implants emerge with the insect where the development of tissue around the electronics during pupal development results in a bioelectrically and biomechanically enhanced tissue interface. This relatively more reliable and stable interface would be beneficial for many researchers exploring the neural basis of the insect locomotion with alleviated traumatic effects caused during adult stage insertions. In this article, we implant our electrodes into the indirect flight muscles of Manduca sexta. Located in the dorsal-thorax, these main flight powering dorsoventral and dorsolongitudinal muscles actuate the wings and supply the mechanical power for up and down strokes. Relative contraction of these two muscle groups has been under investigation to explore how the yaw maneuver is neurophysiologically coordinated. To characterize the flight dynamics, insects are often tethered with wires and their flight is recorded with digital cameras. We also developed a novel way to tether Manduca sexta on a magnetically levitating frame where the insect is connected to a commercially available wireless neural amplifier. This set up can be used to limit the degree of freedom to yawing &#8220;only&#8221; while transmitting the related electromyography signals from dorsoventral and dorsolongitudinal muscle groups.

We present a novel surgical procedure to implant electrodes in Manduca sexta during its early metamorphic stages. This technique allows mechanically stable and electrically reliable coupling with the neuromuscular tissue to study flight neurophysiology dynamics. We also present a novel magnetic levitation platform for tethered studies of insect yaw.

Böcek Uçuş Behavior Monitoring için erken Metamorfik Yerleştirme Teknoloji

Early Metamorphosis Insertion Technology (EMIT) is a novel methodology for integrating microfabricated neuromuscular recording and actuation platforms on ...

Davranış

Flying Insect Detection and Classification with Inexpensive Sensors

An inexpensive, noninvasive system that could accurately classify flying insects would have important implications for entomological research, and allow for the development of many useful applications in vector and pest control for both medical and agricultural entomology. Given this, the last sixty years have seen many research efforts devoted to this task. To date, however, none of this research has had a lasting impact. In this work, we show that pseudo-acoustic optical sensors can produce superior data; that additional features, both intrinsic and extrinsic to the insect&#8217;s flight behavior, can be exploited to improve insect classification; that a Bayesian classification approach allows to efficiently learn classification models that are very robust to over-fitting, and a general classification framework allows to easily incorporate arbitrary number of features. We demonstrate the findings with large-scale experiments that dwarf all previous works combined, as measured by the number of insects and the number of species considered.

We proposed a system that uses inexpensive, noninvasive pseudo-acoustic optical sensors to automatically and accurately detect, count, and classify flying insects based on their flying sound.

Ucuz Sensörler ile Böcek Tespit ve Sınıflandırma Uçan

An inexpensive, noninvasive system that could accurately classify flying insects would have important implications for entomological research, and allow ...

Biyomühendislik

Mass-Rearing and Molecular Studies in Tortricidae Pest Insects

Tortricidae (Lepidoptera), commonly known as tortrix or leafroller moths, comprises many agricultural and forestry pests, which cause serious agricultural losses. To understand the biology of such pest moths, fundamental techniques have been in high demand. Here, methods for mass-rearing, observations, and molecular studies are developed using two tea tortrix, Homona magnanima and Adoxophyes honmai (Lepidoptera: Tortricidae). Insects were mass-reared with sliced artificial diet and maintained by inbreeding for over 100 generations by considering their biological characteristics. Insects have various sex dimorphisms; hence it is difficult to distinguish the sex during the developing stages, which have prevented subsequent assays. The present work highlighted that the sex of tortricids larvae could be determined by observing testes or lactic-acetic orcein staining to visualize the female-specific W chromosome. Moreover, using the sex determination methods, the present study enabled nucleic acid extractions from sex determined embryos and application toward high throughput sequencing. These tips are applicable for other pest insects and will facilitate further morphological and genetic studies.

The present protocol describes the rearing method of tortricid pest insects in the laboratories. The procedures to distinguish insects' sex and extract nucleic acids for high throughput sequencing are established using two tortricid pests.

Tortricidae Zararlı Böceklerinde Kütle Yetiştirme ve Moleküler Çalışmalar

Tortricidae (Lepidoptera), commonly known as tortrix or leafroller moths, comprises many agricultural and forestry pests, which cause serious agricultural ...

Çevre

A Proboscis Extension Response Protocol for Investigating Behavioral Plasticity in Insects: Application to Basic, Biomedical, and Agricultural Research

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). There are several behavioral mechanisms through which an insect learns salient associations and relates them to these events. It is important to understand this behavioral plasticity for programs aimed toward assisting insects that are beneficial for agriculture. This understanding can also be used for discovering solutions to biomedical and agricultural problems created by insects that act as disease vectors and pests. The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol was developed for honey bees (Apis mellifera) over 50 years ago to study how they perceive and learn about floral odors, which signal the nectar and pollen resources a colony needs for survival. The PER procedure provides a robust and easy-to-employ framework for studying several different ecologically relevant mechanisms of behavioral plasticity. It is easily adaptable for use with several other insect species and other behavioral reflexes. These protocols can be readily employed in conjunction with various means for monitoring neural activity in the CNS via electrophysiology or bioimaging, or for manipulating targeted neuromodulatory pathways. It is a robust assay for rapidly detecting sub-lethal effects on behavior caused by environmental stressors, toxins or pesticides.
We show how the PER protocol is straightforward to implement using two procedures. One is suitable as a laboratory exercise for students or for quick assays of the effect of an experimental treatment. The other provides more thorough control of variables, which is important for studies of behavioral conditioning. We show how several measures for the behavioral response ranging from binary yes/no to more continuous variable like latency and duration of proboscis extension can be used to test hypotheses. And, we discuss some pitfalls that researchers commonly encounter when they use the procedure for the first time.

The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol, developed for the honey bee (Apis mellifera), provides an ecologically-relevant and easily quantifiable means for studying several different mechanisms of learning in many insect species.

Bir burnumun Extension Tepki Böcekler Davranış Plastisitesi incelenmesi için protokol: Basic, Biyomedikal Uygulama ve Tarımsal Araştırma

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). ...

Nörobilim

Maintaining Aedes aegypti Mosquitoes Infected with Wolbachia

Aedes aegypti mosquitoes experimentally infected with Wolbachia are being utilized in programs to control the spread of arboviruses such as dengue, chikungunya and Zika. Wolbachia-infected mosquitoes can be released into the field to either reduce population sizes through incompatible matings or to transform populations with mosquitoes that are refractory to virus transmission. For these strategies to succeed, the mosquitoes released into the field from the laboratory must be competitive with native mosquitoes. However, maintaining mosquitoes in the laboratory can result in inbreeding, genetic drift and laboratory adaptation which can reduce their fitness in the field and may confound the results of experiments. To test the suitability of different Wolbachia infections for deployment in the field, it is necessary to maintain mosquitoes in a controlled laboratory environment across multiple generations. We describe a simple protocol for maintaining Ae. aegypti mosquitoes in the laboratory, which is suitable for both Wolbachia-infected and wild-type mosquitoes. The methods minimize laboratory adaptation and implement outcrossing to increase the relevance of experiments to field mosquitoes. Additionally, colonies are maintained under optimal conditions to maximize their fitness for open field releases.

Maintaining Aedes aegypti Mosquitoes Infected with Wolbachia

Aedes aegypti mosquitoes infected with Wolbachia are being released into natural populations to suppress the transmission of arboviruses. We describe methods to rear Ae. aegypti with Wolbachia infections in the laboratory for experiments and field release, taking precautions to minimize laboratory adaptation and selection.

Aedes aegypti sivrisinek enfekte Wolbachia ile bakımını yapma

Aedes aegypti mosquitoes experimentally infected with Wolbachia are being utilized in programs to control the spread of arboviruses such as dengue, ...

Biyoloji

Laboratory Rearing of Stable Flies and Other Muscoid Diptera

Stable flies, Stomoxys calcitrans, are serious pests of livestock, humans, companion animals and wildlife worldwide. During the last 20+ years, changes in agronomic practices resulted in serious outbreaks of stable flies in several countries. These outbreaks disrupted livestock production and human recreation resulting in public demands for increasing research and management efforts for this pest. A simple and inexpensive procedure for rearing stable flies for laboratory studies is presented. The procedure uses locally available diet components, equipment and supplies. The procedure can be adapted for rearing other muscoid flies including face fly (Musca autumnalis), horn fly (Haematobia irritans), and house fly (Musca domestica). The procedure produces stable fly puparia averaging 12.5 mg and ~35% egg to adult survival. Approximately 3000 flies are produced in each pan.

A procedure for rearing stable flies (Stomoxys calcitrans) is presented. The procedure uses locally available materials for diet components, equipment and supplies.

Laboratuvar istikrarlı sinek ve diğer Muscoid Diptera yetiştirme

Stable flies, Stomoxys calcitrans, are serious pests of livestock, humans, companion animals and wildlife worldwide. During the last 20+ years, changes in ...

At-Risk Butterfly Captive Propagation Programs to Enhance Life History Knowledge and Effective Ex Situ Conservation Techniques

Improving knowledge of ex situ best practices for at-risk butterflies is important for generating successful conservation and recovery program outcomes. Research on such captive populations can also yield valuable data to address key information gaps about the behavior, life history, and ecology of the target taxa. We describe a protocol for captive propagation of the federally endangered Cyclargus thomasi bethunebakeri that can be used as a model for other at-risk butterfly ex situ programs, especially those in the family Lycaenidae. We further provide a simple and straightforward protocol for recording various life history metrics that can be useful for informing ex situ methodologies as well as adapted for laboratory studies of other lepidoptera.

Here, we present protocols for 1) the laboratory captive propagation of the federally endangered Miami blue butterfly (Cyclargus thomasi bethunebakeri), and 2) assessing basic life history information such as immature development time and number of larval stadia. Both methods can be adapted for use with other ex situ conservation programs.

Risk Kelebek Esir Yayılımı Programları Yaşam Tarihi Bilgi ve Etkili Ex Situ Koruma Teknikleri geliştirmek için

Improving knowledge of ex situ best practices for at-risk butterflies is important for generating successful conservation and recovery program outcomes. ...

Maintaining Laboratory Cultures of Gryllus bimaculatus, a Versatile Orthopteran Model for Insect Agriculture and Invertebrate Physiology

Gryllus bimaculatus (De Geer)&#160;is a large-bodied cricket distributed throughout Africa and Southern Eurasia where it is often wild-harvested as human food. Outside its native range, culturing G. bimaculatus is feasible due to its dietary plasticity, rapid reproductive cycle, lack of diapause requirement, tolerance for high-density rearing, and robustness against pathogens. Thus, G. bimaculatus can be&#160;a versatile model for studies of insect physiology, behavior, embryology, or genetics.
Cultural parameters, such as stocking density, within-cage refugia, photoperiod, temperature, relative humidity, and diet, all impact cricket growth, behavior, and gene expression and should be standardized. In the burgeoning literature on farming insects for human consumption, these crickets are frequently employed to evaluate candidate feed admixtures derived from crop residues, food-processing byproducts, and other low-cost waste streams.
To support ongoing experiments evaluating G. bimaculatus growth performance and nutritional quality in response to variable feed substrates, a comprehensive set of standard protocols for breeding, upkeep, handling, measurement, and euthanasia in the laboratory was developed and is presented here. An industry-standard cricket feed has proven nutritionally adequate and functionally appropriate for the long-term maintenance of cricket breeding stocks, as well as for use as an experimental control feed. Rearing these crickets at a density of 0.005 crickets/cm3 in screen-topped 29.3 L polyethylene cages at an average temperature of 27 &#176;C on a 12 light (L)/12 dark (D) photoperiod, with moistened coconut coir serving both as hydration source and oviposition medium has successfully sustained healthy crickets over a 2-year span. Following these methods, crickets in a controlled experiment yielded an average mass of 0.724 g 0.190 g at harvest, with 89% survivorship and 68.2% sexual maturation between stocking (22 days) and harvest (65 days).

Maintaining Laboratory Cultures of Gryllus bimaculatus, a Versatile Orthopteran Model for Insect Agriculture and Invertebrate Physiology

This paper outlines basic methods to standardize important factors such as density, feed availability, hydration source, and environmental controls for the long-term rearing of laboratory cultures of the edible cricket, Gryllus bimaculatus.

Gryllus bimaculatus'un Laboratuvar Kültürlerinin Sürdürülmesi, Böcek Tarımı ve Omurgasız Fizyolojisi için Çok Yönlü Bir Ortopteran Model

Gryllus bimaculatus (De Geer)&#160;is a large-bodied cricket distributed throughout Africa and Southern Eurasia where it is often wild-harvested as human ...

Lahana Beyaz Kelebeklerinde Yapay Yetiştirme ve Ağır Metal Toleransı

Rearing the Cabbage White Butterfly (Pieris rapae) in Controlled Conditions: A Case Study with Heavy Metal Tolerance

The cabbage white butterfly (Pieris rapae) is an important system for applied pest control research and basic research in behavioral and nutritional ecology. Cabbage whites can be easily reared in controlled conditions on an artificial diet, making them a model organism of the butterfly world. In this paper, a manipulation of heavy metal exposure is used to illustrate basic methods for rearing this species. The general protocol illustrates how butterflies can be caught in the field, induced to lay eggs in greenhouse cages, and transferred as larvae to artificial diets. The methods show how butterflies can be marked, measured, and studied for a variety of research questions. The representative results give an idea of how artificial diets that vary in components can be used to assess butterfly performance relative to a control diet. More specifically, butterflies were most tolerant to nickel and least tolerant to copper, with a tolerance of zinc somewhere in the middle. Possible explanations for these results are discussed, including nickel hyper-accumulation in some mustard host plants and recent evidence in insects that copper may be more toxic than previously appreciated. Finally, the discussion first reviews variations to the protocol and directions for troubleshooting these methods, before considering how future research might further optimize the artificial diet used in this study. Overall, by providing a detailed video overview of the rearing and measurement of cabbage whites on artificial diets, this protocol provides a resource for using this system across a wide range of studies.

Yazar Gündemi: Lahana Kelebeklerinin Kentsel Kirleticilere Toleransının Araştırılması 

This paper presents a detailed protocol for rearing the cabbage white butterfly in controlled lab conditions with an artificial diet, which allows precise manipulations of early-life nutrition and toxin exposure. The representative results show how heavy metal toxicity can be assayed with this protocol.

Lahana Beyaz Kelebeğinin (Pieris rapae) Kontrollü Koşullarda Yetiştirilmesi: Ağır Metal Toleranslı Bir Vaka Çalışması

The cabbage white butterfly (Pieris rapae) is an important system for applied pest control research and basic research in behavioral and nutritional ...

Yetiştirme ve araştırma çalışmaları için Eristalis tenax Hoverflies uzun vadeli bakım

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Böcek Uçuş Behavior Monitoring için erken Metamorfik Yerleştirme Teknoloji

Ucuz Sensörler ile Böcek Tespit ve Sınıflandırma Uçan

Tortricidae Zararlı Böceklerinde Kütle Yetiştirme ve Moleküler Çalışmalar

Bir burnumun Extension Tepki Böcekler Davranış Plastisitesi incelenmesi için protokol: Basic, Biyomedikal Uygulama ve Tarımsal Araştırma

Aedes aegypti sivrisinek enfekte Wolbachia ile bakımını yapma

Laboratuvar istikrarlı sinek ve diğer Muscoid Diptera yetiştirme

Risk Kelebek Esir Yayılımı Programları Yaşam Tarihi Bilgi ve Etkili Ex Situ Koruma Teknikleri geliştirmek için

Gryllus bimaculatus'un Laboratuvar Kültürlerinin Sürdürülmesi, Böcek Tarımı ve Omurgasız Fizyolojisi için Çok Yönlü Bir Ortopteran Model

Lahana Beyaz Kelebeğinin (Pieris rapae) Kontrollü Koşullarda Yetiştirilmesi: Ağır Metal Toleranslı Bir Vaka Çalışması

Lahana Beyaz Kelebeğinin (Pieris rapae) Kontrollü Koşullarda Yetiştirilmesi: Ağır Metal Toleranslı Bir Vaka Çalışması