JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

وصف طريقة العزلة وتوصيف الخلايا الجذعية البشرية الأسنان اللب (hDPSCs) باستخدام إما التفكك الأنزيمية من عجائن (DPSC-ED) أو ثمرة مباشرة للخلايا الجذعية من الأنسجة إإكسبلنتس اللب (DPSC-OG). ثم تليها في المختبر التمايز النسبية لكلا النوعين من hDPSCs في odontoblasts.

Abstract

Introduction

الخلايا الجذعية هي خلايا مولد الرمع التي تمتلك اثنين من الميزات الرائعة، والمعروفة باسم قوة متعددة والتجديد الذاتي 15. بين جميع الخلايا الجذعية مع الفعاليات المختلفة تنسخي، وضعت الخلايا الجذعية الأسنان والخلايا الجذعية بعد الولادة الاهتمام في السنوات الأخيرة بسبب إمكانية الوصول إليها، اللدونة، وقدرة عالية التكاثري بالمقارنة مع غيرها من الخلايا الجذعية البالغة 16. مميز، على غرار الخلايا الجذعية الوسيطة، طب الأسنان الخلايا الجذعية هي لب الخلايا الملتصقة مولد الرمع التي لها قدرة التمايز متعددة في اللحمة المتوسطة و / أو غير اللحمة المتوسطة الأنساب، سواء في التجارب المختبرية والحية. يتم تحديد 1-8،17،18 DPSCs من قبل من التعبير السلبي للمستضدات المكونة للدم (مثل CD45، CD34، CD14)، والتعبير الإيجابي للCD90، CD29، CD73، CD105، CD44 وSTRO 1-. 19،20

من السهل الحصول عليها مع احتمال الألم والمرض جعل الحد الأدنى DPSCs الإنسان باعتبارها valuمصدر من اللجان الدائمة قادرة بالمقارنة مع مصادر العادية، مثل خلايا نخاع العظام الجذعية الوسيطة 21. بشكل عام، تم عزلها من قبل أي من DPSCs طريقة ثمرة، أي هجرة الخلايا الجذعية من الأنسجة إإكسبلنتس اللب (DPSC-OG) 22-24، و / أو عن طريق الهضم الأنزيمي (DPSC-ED) 4،6،25. وقد أظهرت الدراسات السابقة أن طريقة العزل وظروف التربية يمكن أن تحدث السكان تحت الأنساب مختلفة أو في الممرات المختبر 26،27. في حالة الأسنان الدائمة (pDPSCs)، كشفت هوانغ آخرون أن الأنزيمية pDPSCs هضمها وارتفاع احتمال انتشار بالمقارنة مع DPSCs تجاوزت 26 وعلاوة على ذلك، في حالة الأسنان اللبنية (dDPSCs)، وقد تبين أن STRO-1 و CD34 وأعرب علامات اكثر في dDPSC-ED بالمقارنة مع dDPSC-OG. وبالإضافة إلى ذلك، عرض dDPSC-ED أعلى معدل تمعدن العظم في المتوسط ​​/ odonto تعريف 27 لذلك، ونظرا لإمكانية ممتازة من DPSCs في مجال البحثالطب egenerative، وسوف تكون هناك حاجة لمزيد من الدراسات لفهم أفضل لمختلف السكان المحتملة التي هي مستمدة من أساليب العزل المختلفة.

هنا، كان محاولة لإدخال طريقة سهلة لاستخراج اللب، وذلك باستخدام خطوة واحدة القرص الماس الأسنان لتسهيل عملية استخراج اللب. وعلاوة على ذلك، بعد عزل الخلايا الجذعية البشرية المستمدة من اللب من خلال تطبيق أساليب ED أو OG، كما تم بحث خصائص وقدرات عامة التفريق بين مجموعتين.

Protocol

1. إعداد الحل والمتوسطة إنزيم انتشار (PM)

  1. جعل نوع كولاجيناز I الحل: زن من نوع I كولاجيناز (12 ملغ / مل) وتذوب في 1 مل PBS باستخدام فلتر وحقنة ميكرون 0،2 التصفية. ثم ضع على بعد 15 مل أنبوب وابقائه في -20 درجة مئوية حتى الحاجة.
  2. جعل الحل dispase: زن من dispase (16 ملغ / مل) وتذوب في 1 مل PBS باستخدام فلتر وحقنة ميكرون 0،2 التصفية. ثم ضع على بعد 15 مل أنبوب ويبقيه عند 4 ° C لحين الحاجة إليها.
  3. جعل الحل انزيم: إضافة 1 مل كولاجيناز نوع I حلول (12 ملغ / مل) و 1 مل حلول dispase (16 ملغ / مل) في 2 مل العقيمة PBS تحتوي على 100 ​​ملغ / مل البنسلين، 100 ملغ / مل الستربتوميسين. يجب التركيز الكلي للdispase وكولاجيناز I في الحجم النهائي من 4 ملغ / مل و 3 ملغ / مل، receptively. ثم، قسامة في هذا المجلد إلى أربعة أنبوب 15 مل، تحتوي كل منها على انزيم 1 مل الحل. ويمكن استخدام كل أنبوب الهضم لولب 1.
  4. جعل غسل الحل: إضافة 100 ملغ / مل البنسلين، 100 ملغ / مل الستربتوميسين في برنامج تلفزيوني.
  5. جعل وسائل الإعلام الأساسية: ألفا تعديل النسر المتوسط ​​(α-MEM) تستكمل مع FBS 10٪ و 100 وحدة / مل البنسلين، 100 ملغ / مل الستربتوميسين.
  6. جعل وسائل الإعلام انتشار (PM): ألفا تعديل متوسطة النسر (α-MEM) تستكمل مع 10٪ FBS، 100 ميكرومتر L-حمض الاسكوربيك 2-الفوسفات، 2 مم L-الجلوتامين، 100 وحدة / البنسلين مل، 100 ملغ / مل الستربتوميسين، 0.25 ملغ / مل الأمفوتريسين B.
  7. جعل وسائل الإعلام سنية المنشأ: ألفا تعديل متوسطة النسر (α-MEM) تستكمل مع 10٪ FBS، 100 ميكرومتر L-حمض الاسكوربيك 2-الفوسفات، 2 مم L-الجلوتامين، 100 وحدة / البنسلين مل، 100 ملغ / الستربتوميسين مل، 0.01 ميكرومتر ديكساميثازون، 5 ملي β-الجلسرين الفوسفات، 1.8 ملي Monopotassium الفوسفات.

2. إعداد الإنسان الأنسجة لب الأسنان للأسنان اللب الجذعية Isolatio الخليوين

  1. تم جمع الرحى الثالثة العادية الإنسان من البالغين (21-29 عاما) في عيادة الأسنان من الإمام علي في إطار مجلس المراجعة المؤسساتي المعتمدة (IRB).
  2. وضعت الأسنان في وسط قاعدي (α-MEM تستكمل مع FBS 10٪) ونقلت إلى مختبر في C. ° 4
  3. تحت شرط العقيمة، والعمل داخل غطاء تدفق الصفحي بيولوجية، وانشاء يبذل أي 100 ملم أطباق بتري لكل الأسنان التي سيتم تجهيزها. تم تنظيف أسطح الأسنان من الايثانول 70٪.
  4. بينما كان يعمل في واحدة من الأطباق بيتري،، أبقى الأسنان عن طريق ملقط الأسنان، وكان يستخدم شفرة مشرط لتنظيف قبالة الرباط اللثة والحطام على الجذور.
  5. وقطعت ببطء الموصل المينائي الملاطي باستخدام قرص تعقيم الأسنان للكشف عن غرفة اللب. وينبغي النظر إلى أن يجب إجراء عملية القطع ببطء للحد من ارتفاع درجة حرارة الأنسجة الأسنان.
  6. تم فصل بلطف الأنسجة اللب من التاج والجذر.
  7. تم قطع الأنسجة اللب إلى قطع صغيرة مع المعونة من شفرة المشرط.

3. الإنسان عزل لب الأسنان

  1. خضع أنسجة اللب إما التفكك الأنزيمية من الأنسجة أو اللب المباشر ثمرة الخلية من الأنسجة إإكسبلنتس اللب لعزل hDPSCs.
  2. الأنزيمية تفكك النسيج اللب:
    1. تم نقل قطع صغيرة من أنسجة اللب إلى حل لإنزيم 1 ساعة في C. ° 37 دوامة كل 30 دقيقة للمساعدة في كسر الأنسجة.
    2. بعد ذلك، تم إزالة الركام الخلية الكبيرة والتي تم الحصول عليها وحيدة الخلية تعليق عن طريق تمرير الخلايا من خلال مصفاة الخلية 70-ميكرومتر.
    3. تم طرد وحيدة الخلية تعليق في 1200 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
    4. وpipetted بعناية قبالة Supernatants وكان بيليه إعادة علقت في 1 مل انتشار المتوسطة (PM). (ملاحظة: FBS المتوسطة في انتشار إنهاء الأنزيمية ديستكوين الجمعيات.)
    5. كان المصنف وحيدة الخلية تعليق من لب الأسنان إلى 25 قارورة سم 2 مع الثقافة PM ثم حضنت في C ° 37 في 5٪ CO 2.
    6. تم تغيير ثقافة المتوسط ​​كل ثلاثة أيام حتى تم تحقيق confluency الخلية.
  3. ثمرة مباشرة من خلية الأنسجة إإكسبلنتس اللب:
    1. ومفروم الأنسجة اللب إلى 1-2-مم شظايا، ووضع كل قطعة في 25 سم، وقوارير الثقافة PM 2 مع وحضنت ثم في 37 ° C CO في 5٪ 2. وينبغي النظر إلى أن الحجم الكلي للPM ثمرة لخلية يجب أن يعتمد المرفق من قطع اللب للثمرة خلية أخرى (2-3 مل لكل دورق).
    2. تم تغيير المتوسطة لوحظ بعد ثمرة.
    3. كانت الخلايا تجاوزت في التقاء شبه مثقف في نسبة 1:4 (مرور 1).

4. المناعي الظاهري

  1. 250،000 خلية /وحضنت أنبوب من كلا النوعين من الخلايا في مرور 3 قبل PE أو FITC، مترافق المضادة للأضداد الإنسان مع isotypes لمدة 30 دقيقة في 4 درجات مئوية في مكان مظلم. (ملاحظة: تم تطبيق تركيز الأجسام المضادة وفقا لبروتوكول تصنيع)
  2. بعد فترة حضانة، وإضافة 100 ميكرولتر PBS أو التخفيف FACS حل لكل أنبوب الطرد المركزي في 1200 ودورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق في مكان مظلم.
  3. تمت إزالة Supernatants وكانت الكريات إعادة علقت في 100 ميكرولتر PBS أو التخفيف FACS في مكان مظلم.
  4. وجرى تقييم علامات سطح المستهدفة (علامات CD) من قبل FACSCalibur BD.

5. تحريض من التمايز إلى خلايا DPSCs ممعدن وكميا الفحص الصبغ الأحمر الأحمر S

  1. كانت DPSCs التي تم الحصول عليها من قبل أي من التفكك الأنزيمية من الأنسجة اللب (المعروف باسم DPSC-ED)، أو ثمرة مباشرة من خلية الأنسجة إإكسبلنتس اللب (DPSC-OG) شبه مثقف لمدة 3 مقاطع.
  2. Aور مرور 3، البذور الخلايا في لوحة 6 جيدا في 5،000 خلية / جيدا.
  3. في التقاء 60٪، استعيض سنية المنشأ المتوسط ​​عن طريق PM التقليدية. وبقيت ثلاثة آبار كعنصر تحكم سلبية بإضافة المتوسطة النمو.
  4. متوسطة تغيير كل 3 أيام حتى 21 يوما.
  5. في يوم 21، تم غسلها مع خلايا PBS وكانت ثابتة بنسبة 1 مل / 10٪ بارافورمالدهيد جيدا لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
  6. ثم تم إيقاف pipetted بارافورمالدهيد، وكانت تغسل بعناية الخلايا 3 مرات (5-10 دقيقة في كل مرة) مع المقطر O. 2 H (ملاحظة: تجنب تعكير أحادي الطبقة.)
  7. بعد الغسيل، وأضيفت 1 مل / S جيدا الصبغ الأحمر الأحمر لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
  8. تم غسلها من قبل خلايا منزوع الأيونات H 2 O أربع مرات (5 دقائق في كل مرة مع هزاز لطيف) لإزالة أي الصبغ الأحمر أحمر إضافية.
  9. تم إضافة 1 مل / O 2 H جيدا لمنع الخلايا من التجفيف.
  10. كان يفترض لوحات لانس البصريةpection و / أو الحصول على الصور.
  11. لفحص الصبغ الأحمر الأحمر الكمي S، تم استبدال H 2 O بنسبة 1 حمض الخليك مل 10٪ إلى كل بئر من لوحة 6 جيدا واحتضان لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة مع اهتزاز.
  12. ثم، كان أحادي الطبقة خلية / جيدا كشط ونقلت كل من حامض الخليك والخلايا في أنابيب منفصلة 1،5 مل الطرد المركزي الصغيرة. (ملاحظة: يجب أن يكون كل بئر نقل إلى أنبوب منفصل الآبار أي اختبار الثلاث والآبار الثلاث لمراقبة لكل الجماعات ED & OG)
  13. وvortexed أنابيب بقوة لمدة 30 ثانية.
  14. الحرارة إلى 85 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة. (ملاحظة: لتجنب التبخر، تم اغلاق أنابيب مع parafilm.)
  15. بعد التسخين، تم نقل الأنابيب إلى الجليد لمدة 5 دقائق. (ملاحظة: يجب أن لا يتم فتح أنابيب حتى تصبح تبريده.)
  16. تم طرد وعجائن 20000 XG في مدة 15 دقيقة. بينما الطرد المركزي، أدلى الصبغ الأحمر معايير الأحمرحتى.

تم إعداد معيار الأليزارين الأحمر S من تمييع لأول مرة العازلة تخفيف وتستخدم لصنع أضعاف التخفيفات 2-المسلسل استنادا إلى الجدول.

ارتفاع تركيز مجموعة من صبغ انخفاض تركيز مجموعة من صبغ
2 مم 1 ملم 500 ميكرومتر 250 ميكرون 125 ميكرومتر 62،5 ميكرومتر 31،3 ميكرومتر 15،6 ميكرومتر 7،8 ميكرومتر 3،9 ميكرومتر 1،9 ميكرومتر 0،9 ميكرومتر 0.4 ميكرومتر فراغ
  1. بعد الطرد المركزي، تم نقل 1 مل من طاف / أنبوب جديد مستقل في الدقيقة 1،5 أنابيب الطرد المركزي مل.
  2. تم تحييد الحموضة مع ميكرولتر 375 ~ 10٪ هيدروكسيد الأمونيوم في الأنبوب. (ملاحظة: يجب أن تكون درجة الحموضة 4،1-4،5 الغضب.)
  3. وأضيفت 150 ميكرولتر من ستاندرد آند عينات (بما في ذلك اختبارات منفصلة والضوابط) إلى أسفل، مبهمة الجدران شفافة 96-وحة جيدا.
  4. تم قراءة الامتصاصية في 405 نانومتر وتمت مقارنة القيم OD من عينات قياسية مع مؤامرة لمزيد من التحليل.

النتائج

  1. وتظهر DPSCs التي تم الحصول عليها من التفكك الأنزيمية (DPSC-ED) هنا في يوم 10، 15،18 (الشكل 1). المستعمرات بدأت لتشكيل تقريبا على 3 إلى 5 أيام بعد العزلة.
  2. وتظهر DPSCs تجاوزت (DPSC-OG) في الشكل 2 في يوم 5، 10، 13 و 18. الخلايا الليفية مث?...

Discussion

هذا البروتوكول يصف عملية عزل وتوصيف hDPSCs من لب الأسنان باستخدام طريقتين، والتفكك الأنزيمية ثمرة مباشرة للخلايا الجذعية من الأنسجة إإكسبلنتس اللب. وبالإضافة إلى ذلك، في تمايز المختبر من هذه الخلايا في odontoblasts، تم تقييم من قبل فحص كمية الصبغ الأحمر الأحمر S &...

Disclosures

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

Acknowledgements

نحن نعترف بامتنان الدكتورة ليلى شاكري والدكتور عارف Dournaei لرمي انتقاداتهم والسيد محمد رضا شريف خادم للدعم الفني له.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
اسم كاشف شركة كتالوج أو كثيرا. عدد التعليقات (اختياري)
α-MEM GIBCO 11900-073
النوع الأول كولاجيناز سيغما الدريخ C0130-100MG
Dispase GIBCO 17105-041
البنسلين / الستربتوميسين GIBCO 15140-122
الأمفوتريسين B GIBCO 15290-018
الجنين المصل البقري محددة (FBS) HyClone SH30070.03
L-حمض الاسكوربيك 2-الفوسفات سيجما A8960-5G
الجلوتامين L- GIBCO 25030-024
ديكساميثازون سيجما D4902
β-الجلسرين الملح الصوديوم هيدرات الفوسفات، BioUltra سيجما G9422-100G
أحادى فوسفات البوتاسيوم سيغما الدريخ P5655
تكون العظم الفحص كيت ميليبور PS01802031
الماوس IgG2b-PE نمط إسوي السيطرة BD pharmingen 50808088029
FITC الماوس IgG2b نمط إسوي السيطرة BD pharmingen 559532
FITC الماوس IgG1 κ نمط إسوي BD pharmingen 11471471
FITC / PE الماوس المضادة للCD34/CD45 الإنسان BD pharmingen 341071
PE مكافحة CD146 الإنسان BD pharmingen 550315
وحيدة النسيلة المضادة للماوس الإنسان CD90/FITC داكا 00034418
PE الماوس المضادة للCD73 الإنسان BD pharmingen 550257
مكافحة ح CD105/Endoglin PE BD pharmingen FAB10971P
PE الماوس المضادة للCD11b/Mac1 الإنسان BD pharmingen 5553888
CD44 PE الماوس المضادة الإنسان BD pharmingen 555479
الفوسفات العازلة الحل (PBS) GIBCO 003000
70-ميكرومتر مصفاة الخلية صقر 352360
حقنة ميكرون تصفية 0،2 Millex-GV SLGV033RB
25 قارورة سم الثقافة 2 سيغما الدريخ Z707481
EQUIPMENT
BD FACSCalibur BD 342975
multiskan صفيحة ميكروسكوبية الطيف الحرارية العلمية 51119200
Fleurcense مجهر OLYMPUS
تتدفق الإصدار 2.3.1 البرمجيات

References

  1. Volponi, A. A., Pang, Y., Sharpe, P. T. Stem cell-based biological tooth repair and regeneration. Trends Cell Biol. 20, 715-722 (2010).
  2. Nosrat, I. V., Widenfalk, J., Olson, L., Nosrat, C. A. Dental pulp cells produce neurotrophic factors, interact with trigeminal neurons in vitro, and rescue motoneurons after spinal cord injury. Dev. Biol. 238, 120-132 (2001).
  3. Gandia, C., et al. Human dental pulp stem cells improve left ventricular function, induce angiogenesis, and reduce infarct size in rats with acute myocardial infarction. Stem Cells. 26, 638-645 (2008).
  4. Gronthos, S., Mankani, M., Brahim, J., Robey, P. G., Shi, S. Postnatal human dental pulp stem cells (DPSCs) in vitro and in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.. 97, 13625-13630 (2000).
  5. Graziano, A., d'Aquino, R., Laino, G., Papaccio, G. Dental pulp stem cells: a promising tool for bone regeneration. Stem Cell Rev. 4, 21-26 (2008).
  6. Kerkis, I., et al. Early transplantation of human immature dental pulp stem cells from baby teeth to golden retriever muscular dystrophy (GRMD) dogs: Local or systemic. J. Transl. Med. 6, 35 (2008).
  7. Onyekwelu, O., Seppala, M., Zoupa, M., Cobourne, M. T. Tooth development: 2. Regenerating teeth in the laboratory. Dent. Update. 34, 20-29 (2007).
  8. Cordeiro, M. M., et al. Dental pulp tissue engineering with stem cells from exfoliated deciduous teeth. J. Endod. 34 (08), 962-969 (2008).
  9. Pierdomenico, L., et al. Multipotent mesenchymal stem cells with immunosuppressive activity can be easily isolated from dental pulp. Transplantation. 80, 836-842 (2005).
  10. de Mendonca Costa, A., et al. Reconstruction of large cranial defects in nonimmunosuppressed experimental design with human dental pulp stem cells. J. Craniofac. Surg. 19, 204-210 (2008).
  11. Tirino, V., et al. Methods for the identification, characterization and banking of human DPSCs: current strategies and perspectives. Stem Cell Rev. 7, 608-615 (2011).
  12. Tirino, V., Paino, F., De Rosa, A., Papaccio, G. Identification, isolation, characterization, and banking of human dental pulp stem cells. Methods Mol. Biol. 879, 443-463 (2012).
  13. Eslaminejad, M. B., Vahabi, S., Shariati, M., Nazarian, H. In vitro Growth and Characterization of Stem Cells from Human Dental Pulp of Deciduous Versus Permanent Teeth. J. Dent. (Tehran). 7, 185-195 (2010).
  14. Wei, X., Ling, J., Wu, L., Liu, L., Xiao, Y. Expression of mineralization markers in dental pulp cells. J. Endod. 33, 703-708 (2007).
  15. Nombela-Arrieta, C., Ritz, J., Silberstein, L. E. The elusive nature and function of mesenchymal stem cells. Nat. Rev. Mol Cell Biol. 12, 126-131 (2011).
  16. Huang, G. T., Gronthos, S., Shi, S. Mesenchymal stem cells derived from dental tissues vs. those from other sources: their biology and role in regenerative medicine. J. Dent. Res. 88, 792-806 (2009).
  17. Graziano, A., et al. Scaffold's surface geometry significantly affects human stem cell bone tissue engineering. J. Cell Physiol. 214, 166-172 (2008).
  18. d'Aquino, R., et al. Human dental pulp stem cells: from biology to clinical applications. J. Exp. Zool. B. Mol. Dev. Evol. 312, 408-415 (2009).
  19. Mitsiadis, T. A., Feki, A., Papaccio, G., Caton, J. Dental pulp stem cells, niches, and notch signaling in tooth injury. Adv. Dent. Res. 23, 275-279 (2011).
  20. Shi, S., Gronthos, S. Perivascular niche of postnatal mesenchymal stem cells in human bone marrow and dental pulp. J. Bone Miner. Res. 18, 696-704 (2003).
  21. Tomic, S., et al. Immunomodulatory properties of mesenchymal stem cells derived from dental pulp and dental follicle are susceptible to activation by toll-like receptor agonists. Stem Cells Dev. 20, 695-708 (2011).
  22. Tsukamoto, Y., et al. Mineralized nodule formation by cultures of human dental pulp-derived fibroblasts. Arch. Oral Biol. 37, 1045-1055 (1992).
  23. About, I., et al. Human dentin production in vitro. Exp. Cell Res. 258, 33-41 (2000).
  24. Couble, M. L., et al. Odontoblast differentiation of human dental pulp cells in explant cultures. Calcif. Tissue Int. 66, 129-138 (2000).
  25. Onishi, T., Kinoshita, S., Shintani, S., Sobue, S., Ooshima, T. Stimulation of proliferation and differentiation of dog dental pulp cells in serum-free culture medium by insulin-like growth factor. Arch. Oral Biol. 44 (99), 361-371 (1999).
  26. Huang, G. T., Sonoyama, W., Chen, J., Park, S. H. In vitro characterization of human dental pulp cells: various isolation methods and culturing environments. Cell Tissue Res. 324, 225-236 (2006).
  27. Bakopoulou, A., et al. Assessment of the impact of two different isolation methods on the osteo/odontogenic differentiation potential of human dental stem cells derived from deciduous teeth. Calcif. Tissue Int. 88, 130-141 (2011).
  28. Curtis, K. M., et al. EF1alpha and RPL13a represent normalization genes suitable for RT-qPCR analysis of bone marrow derived mesenchymal stem cells. BMC Mol. Biol. 11, 61 (2010).
  29. Suchanek, J., et al. Dental pulp stem cells and their characterization. Biomed. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech Repub. 153, 31-35 (2009).
  30. d'Aquino, R., et al. Human postnatal dental pulp cells co-differentiate into osteoblasts and endotheliocytes: a pivotal synergy leading to adult bone tissue formation. Cell Death Differ. 14, 1162-1171 (2007).
  31. Atari, M., et al. Isolation of pluripotent stem cells from human third molar dental pulp. Histol. Histopathol. 26, 1057-1070 (2011).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

69 hDPSC Odontoblasts MSC

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved