JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Adrenal activity can be assessed in the equine species by analysis of feces for corticosterone metabolites. The method offers a non-invasive option to assess long term patterns in both domestic and free ranging horses. This protocol describes the enzyme linked immunoassay involved and the associated biochemical validation.

Abstract

Adrenal activity can be assessed in the equine species by analysis of feces for corticosterone metabolites. During a potentially aversive situation, corticotrophin releasing hormone (CRH) is released from the hypothalamus in the brain. This stimulates the release of adrenocorticotrophic hormone (ACTH) from the pituitary gland, which in turn stimulates release of glucocorticoids from the adrenal gland. In horses the glucocorticoid corticosterone is responsible for several adaptations needed to support equine flight behaviour and subsequent removal from the aversive situation. Corticosterone metabolites can be detected in the feces of horses and assessment offers a non-invasive option to evaluate long term patterns of adrenal activity. Fecal assessment offers advantages over other techniques that monitor adrenal activity including blood plasma and saliva analysis. The non-invasive nature of the method avoids sampling stress which can confound results. It also allows the opportunity for repeated sampling over time and is ideal for studies in free ranging horses. This protocol describes the enzyme linked immunoassay (EIA) used to assess feces for corticosterone, in addition to the associated biochemical validation.

Introduction

أهداف الطريقة الموصوفة لتحليل تركيز الكورتيزون في البراز الخيول من أجل توفير تقييم غير الغازية للنشاط الغدة الكظرية. قياس النشاط (HPA) محور الغدة النخامية، الغدة الكظرية هو نهج قبولهم للدراسة الاستجابة لحالات يحتمل أن تكون مكره في كل من الأنواع في الأسر والمحلية. تقنية الإشارة وطريقة الأكثر استخداما هو استخدام بلازما الدم 1 ومع ذلك، الطرق البديلة مثل تحليل البراز وضعت من أجل التغلب على الإجهاد الناجم عن اخذ عينات من الدم نفسها والسماح القدرة على رصد الأنواع الطليقة.

أثناء وضع مكره، تعطل التوازن الفيزيولوجي. منطقة ما تحت المهاد في الدماغ النشرات المنمية القشرية الافراج عن هرمون (CRH) الذي يعمل على الغدة النخامية الأمامية ويحفز الافراج عن الهرمون الموجه لقشر الكظر (ACTH). ACTH يدخل مجرى الدم، ويحفز قشرة الغدة الكظرية لإفراز مسكوكةق السكرية محددة (GC). ترتبط ارتباطا وثيقا السكرية الأحداث المجهدة بدلا من أن تنتج باستمرار في جميع ولايات الطاقة المتزايدة ولذا غالبا ما يتم قياسها في تفضيل اكثر من غيرها من الإجهاد ترتبط الهرمونات 2. السكرية هي المسؤولة عن العديد من الآثار التكيف في الخيول. وحشدت الطاقة بسرعة من مواقع التخزين في الجسم في شكل من الأحماض الدهنية والجلوكوز، وزيادة كمية الأوكسجين، مما يعزز وظيفة حسية (3) وانخفاض تدفق الدم الى مناطق غير الضرورية لحركة 4. وكذلك بوصفها آلية التعامل، وارتفاع التوتر الناجم في السكرية قد يساعد أيضا على إعداد الحيوان للالضغوطات المقبل 5.

تقييم مستويات الهرمون في البلازما واللعاب ينطوي على قياس هرمون تعميم الفعلي ومع ذلك، وقياس نواتج الأيض في التدابير البراز المنتج النهائي التمثيل الغذائي للهرمون. وcatabolized المنشطات المتداولة في لترإيفر قبل الإفراز في لالصفراء حيث أنها تخضع لتغييرات أخرى بتسهيل من الأنشطة الإنزيمية من النباتات البكتيرية داخل مسار الأمعاء 6. لذلك، المناعية الموجهة نحو السكرية في الدم قد لا تكون مناسبة لتحليل نواتج الأيض جلايكورتيكود البرازية 7.

كما يمكن أن يتم جمع البراز من دون أي إزعاج للحصان، وتحليل البراز للكورتيزون، وقد استخدم على نطاق واسع لمراقبة نشاط HPA في عدد من الظروف. تم الإبلاغ عن كورتيزون ارتفاع في البراز من الخيول استجابة لحالات يحتمل أن تكون مكره بما في ذلك أثناء العلاج البيطري بعد العملية 8 وفي السكن تقييدا ​​9. تعكس أخذ العينات البرازية مستوى جلايكورتيكود المجمعة مع مرور الوقت بدلا من نقطة في أخذ العينات في الوقت التي تقدمها البلازما واللعاب مما يجعله مناسبا لرصد المدى الطويل المزمن أو الأنماط الموسمية 10. ويرجع ذلك إلى غير الغازيةطبيعة الأسلوب، والعينات ويمكن جمع مرارا وتكرارا للفرد دون الحاجة إلى التقاط أو ضبط النفس 11. ومع ذلك، يجب أن تؤخذ أنواع محددة وقت عبور القناة الهضمية في الاعتبار عند التخطيط لبروتوكول أخذ العينات. في الخيول، والوقت الأمعاء عبور حوالي 18 ساعة 12 وبالتالي، يمكن الكشف عن استجابة الغدة الكظرية والأيض كورتيزون لاحقة في البراز بعد يوم واحد تفعيل الأولي للمحور HPA.

عندما تستخدم تقنيات المناعية غير الغازية التحقق من صحة دقيق لهذه الأنواع يجري التحقيق ضروري 13. وبالإضافة إلى ذلك، تم الإبلاغ عن الفروق بين الجنسين في هرمون الأيض إفراز ربما بسبب الاختلافات في معدل الأيض ونوع الأيض كورتيزون تفرز في مختلف الأنواع بما في ذلك الفئران 14، والدجاج (15). ولذلك كان من المهم كجزء من هذا الأسلوب الذي تم التحقق من صحة فحص للاستخدام في كل من الذكور والإناث الخيول المحلية كما هو مفصل في البروتوكول البريد. هذا الاختلاف في عملية الأيض الهرموني بين الجنسين له عواقب على نوعية البيانات إلا أنه نادرا ما يتم معالجتها وتضمينها كجزء من التحقق من صحة الفحص.

وتسمح هذه الطريقة غير الغازية تقييم المدى الطويل من النشاط الغدة الكظرية في الخيول المحلية. تفاصيل البروتوكول كل من المصادقة على فحص وتقنية فحص نفسها.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

بيان الأخلاق: الإجراءات التي تنطوي على أخذ العينات الميدانية والحيوان موضوعات تم اعتمادها من قبل مدرسة الحيوان، الريفية والعلوم البيئية (آريس) في جامعة نوتنغهام ترنت.

1. جمع عينات البراز

ملاحظة: يجب ارتداء القفازات عند التعامل مع العينات البرازية والميثانول. إذا كان هناك شكوك قوية بأن حيوان يمكن أن يعاني من مرض حيواني المنشأ، ملابس واقية مثل وينبغي أيضا أن ترتديه معطف المختبر.

  1. جمع العينات البرازية في أقرب وقت ممكن (في غضون دقائق إلى بضع ساعة) بعد التغوط ووضعها في كيس من العينة. أخذ 3-5 العينات الفرعية من أي عينة يتبرز مع الوزن الكلي حوالي 10 غرام. تسمية حقيبة مع الوقت والتاريخ من جمع وهوية الأفراد، وتجميد العينة في -20 درجة مئوية حتى التحليل.
  2. لتقليل الخطأ، وتجميد جميع العينات في -20 درجة مئوية حتى الدراسة كاملة ثم جمع عينات معا للتحليل كما دفعة واحدة.

2. برازي هرمون استخراج

  1. ترك عينات البراز لذوبان الجليد في RT.
  2. ضمان أن العينات والمتجانس عن طريق خلط كل عينة يدويا في كيس عينة الخاصة بها.
  3. لكل عينة تزن 0.50 (± 0.003 ز) من المواد البرازية على توازن دقيق في وزن القارب ثم نقل البراز إلى قارورة زجاج 8 مل. استخدام تزن قارب جديد لكل عينة وتنظيف ملاقط مع 30٪ الميثانول بين كل عينة.
  4. الجمع بين 0.5 غرام من المواد البرازية مع 5 مل من 90٪ ميثانول: الماء، ويهز O / N على شاكر المداري في RT.
  5. في صباح اليوم التالي، دوامة العينة ومن ثم الطرد المركزي لمدة 20 دقيقة في 600 غرام.
  6. صب جزء الميثانول في أنبوبة زجاجية 16 × 125 مم 2 ومكان في رف في حمام مائي لتعيين درجة حرارة 37 درجة مئوية. تتبخر إلى جفاف باستخدام الهواء في خزانة الدخان. شطف القارورة استخراج ووضع بيليه البراز المتبقية في كيس النفايات الطبية للتخلص منها.
  7. إعادة تعليق مقتطفات البرازية في 100٪، 1 مل الميثانول ونقل إلى أنبوب البولي بروبلين 12 × 75 مم 2. على الفور سقف ومخزن في -20 درجة مئوية حتى التحليل.

3. تحليل هرمون

  1. إجراء التحليل مع انزيم مرتبط-المناعية (EIA) باستخدام بولكلونل مصل كورتيزون CJM006.
    ملاحظة: تم وتقييم الأثر البيئي الثاني اختبار (الكورتيزول R4866 مصل، ولكن هذا فشل في تحقيق خطوة التحقق من صحة البيوكيميائية (انظر القسم 4.1) يتم توفير الأمصال المضادة بولكلونل كورتيزون CJM006 والكورتيزول R4866 مصل والتي تخصها، برنامج الصحة الإنجابية التي كتبها CJ مونرو، جامعة كاليفورنيا، ديفيس، كاليفورنيا.
  2. تمييع مصل في 1: 15،000 في المخزن طلاء (0.05 M NaHCO3، ودرجة الحموضة 9.6) باستخدام ماصة المتكررة و50 ميكرولتر ماصة، تحميل لوحة التلازن 96-جيدا مع 50 ميكرولتر / جيد. تغطية لوحة مع سداده لوحة واحتضان O / N عند 4 درجات مئوية. ترك بئرين غير المصقول لتمثيل الآبار غير الملزمة محددة (NSB).
  3. مباشرة قبل الاستعمال تغسل الصحون التلازن خمس مرات باستخدام الآلي غسالة لوحة التلازن (محلول الغسيل، 0.15 م كلوريد الصوديوم، 0.05٪ توين 20).
  4. تحميل لوحات مع 50 ميكرولتر لكل بئر لفي جهاز الأمن القومي والآبار [عازلة تقييم الأثر البيئي (0.1 M نابو 0.149 M كلوريد الصوديوم، 0.1٪ زلال المصل البقري، ودرجة الحموضة 7.0) فقط] "صفر"، ومعايير (كورتيزون، 3.9 - 1000 جزء من الغرام / أيضا) أو استخراج عينات البراز (مخفف بشكل مناسب في 1:20 عازلة تقييم الأثر البيئي، انظر القسم 4.1). يجب تشغيل المعايير والأصفار في ثلاث نسخ وquadruplicate، على التوالي. يجب تشغيل المخفف استخراج عينات البراز وفي جهاز الأمن القومي في نسختين.
  5. اتبع هذا على الفور مع اضافة 50 ميكرولتر جيدا / التسمية الفجل البيروكسيديز المترافقة المخفف في المخزن EIA إلى 1: 70000.
  6. احتضان أطباق التلازن في الظلام لمدة 2 ساعة على RT.
  7. غسل أطباق التلازن مع محلول الغسيل 5 مرات، واحتضان لوحات في RT في الظلام مع 100 ميكرولتر / أهلا وسهلالتر من RT الركيزة [0.4 ملي 2،2'-azino-DI- (3-ethylbenzthiazoline السلفونيك حمض) ملح ثنائي الأمونيوم، 1.6 مم H 2 O 0.05 M سترات، ودرجة الحموضة 4.0]. إعداد الركيزة مباشرة قبل الاستعمال.
  8. استخدام spectrophometer عند طول موجي 405 نانومتر لقراءة لوحات التلازن. تعتبر حضانة لوحات كاملة عندما الكثافة البصرية من الآبار الصفر تصل 0،8-1،0.
  9. لضمان التكرار، استخدام عناصر التحكم [معايير تقييم الأثر البيئي أو عينة بيولوجية المخفف في المخزن تقييم الأثر البيئي للربط في ما يقرب من 30٪ (EIA قياسي) و 50٪ (عينة على سبيل المثال البيولوجي، مجموعة من الحصان المحلي استخراج البراز) و 70٪ (EIA قياسي) ] لإثبات وجود داخل وبين فحص معاملات الاختلاف من <10٪ و <15٪ على التوالي.

4. انزيم مرتبط-المناعي: التحقق من صحة لنوع الدراسة والجنس

  1. الكيمياء الحيوية التحقق (التوازي)
    1. باستخدام عازلة تقييم الأثر البيئي، إجراء تخفيف تسلسلي على تجميع البراز خارجط م، والتي اتخذت من الناحية المثالية من يشتبه عينات تركيز الهرمون العالية والمنخفضة من عدة أفراد (المدى: أنيق، 1: 2-1: 8192)، وتعمل على تقييم الأثر البيئي كما هو موضح في القسم 3.
      ملاحظة: يعتبر تحقيق التوازي عند التخفيفات المسلسل من مقتطفات البرازية تسفر عن بالتوازي منحنى النزوح الى نتائج منحنى الانحدار الخطي والقياسية تظهر R2> 0.90، منحدر> 0.50 و p <0.05. ينبغي النظر في استخراج البراز المخفف التسلسلي الذي يربط حوالي 50٪ على المنحنى القياسي لتخفيف المثالي لتشغيل جميع مقتطفات برازي (على سبيل المثال، 1:20). ليس هناك تدخل النظر فيها على الفحص عندما تظهر نتائج الانحدار الخطي R2> 0.90 و p <0.05.
  2. الكيمياء الحيوية التحقق (التدخل)
    1. ارتفاع 200 ميكرولتر من المعايير تخفيفه بشكل متسلسل (صفر، 3،9-1٬000 نانوغرام / جيد كورتيزون) مع 200 ميكرولتر من استخراج البراز بشكل مناسب المخفف المجمعة [المخفف في 50٪ ملزمة تحددها paralleliخ (01:20)] وتعمل على تقييم الأثر البيئي كما هو الحال في الجزء 3. بعد مؤامرة تحليل تقييم الأثر البيئي تركيز لاحظ ناقص الخلفية (تركيز العينة صفر) مقابل تركيز المتوقع.
      ملاحظة: إذا كان إضافة المخفف استخراج البراز المجمعة لمعايير لا يغير كثيرا من المتوقع كمية خطية نتائج الانحدار ينتج R 2> 0.90، منحدر بالقرب 1.0 و p <0.05. لم يتم إحراز أي تدخل في تقييم الأثر البيئي.
  3. التحقق البيولوجي:
    ملاحظة: مظاهرة أن الادارة اختارت لديه القدرة على قياس التغييرات ذات الصلة بيولوجيا من هرمون الفائدة [على سبيل المثال، ارتفاع تركيزات القشرية السكرية بعد الدوائية (ACTH في كثير من الأحيان إجراء مرخص) أو التحدي البيولوجي (على سبيل المثال، نفسية و / أو للبيئة، من المرجح أن يكون حدثا غير المنظم الانتهازية)].
    1. اختيار، واستخراج وتحليل عينات البراز لتركيزات المستقلب القشرية السكريةباستخدام عملية بالتفصيل في القسمين 1-3 قبل وبعد الحدث تحديا.
      ملاحظة: سوف الحدث تحديا تكون أنواع محددة. يتم توفير وسيلة المثال أدناه للحصول على الحصان المحلي. وقد نشرت أمثلة كاملة من الأحداث الصعبة للخيول سابقا بما في ذلك استخدام إدارة 9 و تربية الإجراءات 16. ارتفاع كبير في تركيزات المستقلب القشرية السكرية في أعقاب الحدث تحديا يجب مراعاتها وأكد باستخدام التحليل الإحصائي. هذا يجب أن تتضمن حيثما كان ذلك مناسبا، وتأثير التدابير المتكررة، تاريخ العينة والفرد. ومن ثم يعتبر تحقيق التحقق البيولوجي.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

الخيول المحلية (ن = 16، 8 الأفراس، 8 الحيوانات المخصية) تم تجميع مع متوسط ​​أعمارهم 15 عاما (± 3) وفقا لنوع الجنس وتعرض لأربعة تصاميم المساكن مع مستويات متزايدة من العزلة الاجتماعية (ن = 4 حصان / العلاج). الإسكان 1 تشارك الخيول الذين يعيشون في بيئة القطيع، م...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

يوفر تحليل البراز كورتيزون وسيلة لتقييم أنماط طويلة المدى لنشاط الغدة الكظرية في الخيول. طبيعة غير الغازية من طريقة تتغلب على آثار الخلط من طرق أخذ العينات الأخرى المستخدمة لتقييم نشاط الغدة الكظرية بما في ذلك اللعاب والبلازما تحليل 9. وبالإضافة إلى ذلك الأسلو...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Funding for the production of this manuscript was provided by Nottingham Trent University. The authors wish to thank the University yard manager, Anna Gregory for the use of her horses and provision of fecal samples for use in the protocol. Thanks also to Chester Zoo Wildlife Endocrinology Laboratory for use of their facilities.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Corticosterone antibody & HRP kitCoralie Munro - UC DavisNo longer available through UC Davis - please see Arbor Assays
Cortisol antibody & HRP kitCoralie Munro - UC DavisNo longer available through UC Davis - please see Arbor Assays
Corticosterone synthetic standard hormoneSigma Aldrich50-23-7Harnful if ingested or with skin contact. Use in fume cupboard
Cortisol synthetic standard hormoneSigma Aldrich15087-01-1Harmful if ingested or with skin contact. Use in fume cupboard
MethanolSigma Aldrich67-56-1Irritant. Use in fume cupboard
Sodium BicarbonateSigma Aldrich144-55-8Irritant
Sodium Carbonate AnhydrousSigma Aldrich497-19-8Irritant
Sodium Phosphate DibasicSigma Aldrich7558-79-4Irritant
Sodium Phosphate MonobasicSigma Aldrich10049-21-5Irritant
BSASigma Aldrich9048-46-8Irritant
Tween 20Sigma Aldrich9005-64-5Irritant
Citric AcidSigma Aldrich77-92-9Irritant
ABTSSigma Aldrich30931-67-0Irritant
Hydrogen Peroxide 30%Sigma Aldrich7722-84-1Irritant
Sodium ChlorideSigma Aldrich7647-14-5Irritant
Buffer capsules - pH 4VWR332732B
Buffer capsules - pH 7VWR332742D
Buffer capsules - pH 10VWR332762H
Hydrochloric AcidSigma Aldrich435570Irritant. Use in fume cupboard
Sodium HydroxideSigma AldrichS5881Irritant
Analytical balanceFisher ScientificBFS-525-010A
Air compressor
Centrifuge
Computer +printer
fridge-freezer
Drying apparatus
+tubing
Flammable liquid storagecabinetVWR649-002
Fume cupboard
Hot-plate stirrerVWR640-282
Microplate readerVWR
Microplate washerVWR
pH meterVWR
Eppendorf Research® pipettes - multipack option 2VWR
Pipette - 1,000 µlVWR
Pipette - 200 µlVWR
Pipette - 20 µlVWR
Repeater pipetteVWR
Pipette fillerVWR
Orbital shakerProgen Scientific
SonicatorHilsonic
VortexVWR
Warm water bath
Water purification systemMillipore

References

  1. Mormède, P., et al. Exploration of the hypothalamic-pituitary-adrenal function as a tool to evaluate animal welfare. Physiology and Behaviour. 92 (3), 317-339 (2007).
  2. Lane, J. Can non-invasive glucocorticoid measures be used as reliable indicators of stress in animals? Animal Welfare. 15 (4), 331-342 (2006).
  3. Morgan, K. N., Tromborg, C. T. Sources of stress in captivity. Applied Animal Behaviour Science. 102, 262-302 (2007).
  4. Nelson, R. J. An introduction to behavioural endocrinology (3rd Ed). , Sinaur associates Inc. Ohio, USA. 670-671 (2005).
  5. Sapolsky, R. M., Romero, L. M., Munck, A. U. How Do Glucocorticoids Influence Stress Responses? Integrating Permissive, Suppressive, Stimulatory, and Preparative Actions. Endocrine Reviews. 21 (1), 55-89 (2000).
  6. Macdonald, K. M., Macdonald, I. A., Bokkenheuser, V. D., Winter, J., McLernon, A. M., Mosbach, E. H. Degradation of steroids in the human gut. Journal of Lipid Research. 24, 675-700 (1983).
  7. Young, K. M., et al. Non-invasive monitoring of adrenocortical activity in carnivores by fecal glucocorticoid analysis. General and Comparative Endocrinology. 137, 148-165 (2004).
  8. Merl, S., Scherzer, S., Palme, R., Mostl, E. Pain causes increased concentrations of glucocorticoid metabolites in horse faeces. Journal of Equine Veterinary Science. 20, 586-590 (2000).
  9. Yarnell, K., Hall, C., Royle, C., Walker, S. L. Domesticated horses differ in their behavioural and physiological responses to isolated and group housing. Physiology and Behaviour. 143, 51-57 (2015).
  10. Wielebnowski, N., Watters, J. Applying fecal endocrine monitoring to conservation and behaviour studies of wild mammals: important considerations and preliminary tests. Israel journal of ecology and evolution. 53, 439-460 (2007).
  11. Palme, R. Measuring fecal steroids: guidelines for a practical application. Annals of the New York Academy of Sciences. 1046, 75-80 (2005).
  12. Uden, P., Rounsaville, G. R., Wiggans, G. R., Van Soest, P. J. The measurement of liquid and solid digesta retention in ruminants, equines and rabbits given timothy hay. British Journal of Nutrition. 48, 329-339 (1982).
  13. Goymann, W. Non-invasive monitoring of hormones in bird droppings: biological validations, sampling, extraction, sex differences and the influence of diet on hormone metabolite levels. Annals of the New York Academy of Sciences. 1046, 35-53 (2005).
  14. Touma, C., sachser, N., Mostl, E., Palme, R. Effects of sex and time of day on metabolism and excretion of corticosterone in urine and feces of mice. General and comparative Endocrinology. 130, 267-278 (2003).
  15. Rattenbacher, S., Mostl, E., Hackl, R., Ghareeb, K., Palme, R. Measurement of corticosterone metabolites in chicken droppings. British Poultry Science. 45, 704-711 (2004).
  16. Yarnell, K., Hall, C., Billett, E. An assessment of the aversive nature of an animal management procedure using behavioural and physiological measures. Physiology & Behaviour. 118, 32-39 (2013).
  17. Goymann, W. On the use of non-invasive hormone research in uncontrolled, natural environments: the problem with sex, diet, metabolic rate and the individual. Methods in Ecology and Evolution. 3, 757-765 (2012).
  18. Sheriff, M. J., Dantzer, B., Delehanty, B., Palme, R., Boonstra, R. Measuring stress in wildlife: techniques for quantifying glucocorticoids. Oecologia. 166, 614-619 (2011).
  19. Watson, R., Munro, C. J., Edwards, K. L., Norton, V., Brown, J. L., Walker, S. L. Development of a versatile enzyme immunoassay for non-invasive assessment of glucocorticoid metabolites in a diversity of taxonomic species. General Comparative Endocrinology. 186, 16-24 (2013).
  20. Touma, C., Palme, R. Measuring fecal glucocorticoid metabolites in mammals and birds: the importance of validation. Annals of the New York Academy of Sciences. 1046, 54-74 (2005).
  21. Millspaugh, J. J., Washburn, B. E. Use of fecal glucocorticoid metabolite measures in conservation biology research: considerations for application and interpretation. General and Comparative Endocrinology. 138, 189-199 (2004).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

110

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved