تقييم السلوك الجنسي للفئران الذكور

Zi-Wei Liu; Ning Jiang; Xue Tao; Xiao-Ping Wang; Xin-Min Liu; Shui-Yuan Xiao

doi:10.3791/60154

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

Summary

توضح هذه المقالة كيفية إجراء اختبارات السلوك الجنسي في الفئران الذكور.

Abstract

السلوك الجنسي هو نوع خاص للغاية. على الرغم من أن القوارض لديها سلوكيات جنسية مختلفة قليلاً ، فإن الفئران والجرذان لديها نمط سلوكي جنسي مماثل. الغرض من هذه المقالة هو وصف النموذج الأنثوي المستحث بالهرمونات والإجراء التجريبي لتقييم السلوك الجنسي للفئران الذكور. يتم عرض أهم العناصر السلوكية الجنسية في الفيديو والرسوم التوضيحية. يتم شرح الخطوات الهامة والمزايا والقيود الخاصة باختبار السلوك الجنسي أيضًا. وأخيرا ، يتم تقديم معلمات السلوك ، وتصاعد ، والاستقراء ، وعمليات القذف في التزاوج وتتميز. يتم تقييم المعلمات السلوكية من حيث المدة التي حدثت والعد خلال فترة الاختبار.

Introduction

السلوك الجنسي في الفئران الذكور ناضجة النتائج من التفاعل من سلسلة من النظم الهرمونية المترابطة والمترابطة والنظم العصبية في دوائر الدماغ المختلفة^1. كما يتطلب خبرات تنموية، وتعلم، وسياق، وشريك مناسب. التحليل السلوكي هو انعكاس مهم على وظيفة العصبية أو العصبية. وبالتالي ، تم استخدام دراسة السلوك الجنسي على نماذج الحيوانات على نطاق واسع في علم الأعصاب السلوكي والبحوث الأخرى ذات الصلة^2. وقد تم شرح ethogram من السلوكيات الجنسية في القوارض في العديد من المقالات والكتب¹^،³^،^4. على سبيل المثال ، ساعد وصف Scahs و Barfield للسلوك الجنسي في الفئران⁵ على فهم نمط سلوكي مماثل في الفئران^5. الفأر هو واحد من المواضيع الأكثر استخداما للدراسات السلوكية. هال وآخرون⁶ قدم مقدمة مفصلة من السلوكيات الجنسية الماوس الذكور: عندما يواجه فأر ذكر أنثى، فإنه يبدأ في التحقيق في المنطقة الأنوية التناسلية للأنثى. ثم يضغط الذكر على الكفوف الأمامية ضد أجنحة الأنثى لتركيب الأنثى من الخلف. الأنثى معارض موقف التقبل الجنسي مميزة، الانحناء عمودها الفقري إلى أسفل إلى القوس وتحريك ذيله إلى جانب واحد من الجسم، وفضح مقدمة فتح للاختراق الجنسي للذكر (أي lordosis). بعد تصاعد، والذكور يجعل السريع، والتوجهات الحوض الضحلة، تليها التوجهات المهبلية بطيئة وعميقة. بعد العديد من المقدمات ، يؤدي الدفع طويل الأمد إلى قذف السائل المنوي ، والتي قد يتجمد خلالها الفأر الذكر لحوالي 25 ث قبل الترجل أو السقوط من الأنثى⁶. في القذف قد تنتج الغدد الملحقة الماوس الذكور خليط يحتوي على السائل المنوي الذي يتصلب لتشكيل المكونات copulatory. وأخيرا، بعد القذف، يبدأ الذكور الاستمالة التناسلية ويظهر عدم الاهتمام في الأنثى. باختصار ، فإن التسلسل الأساسي للسلوك الجنسي الذكري يتكون من الشم ، والمتابعة ، والتركيب ، والانطوان ، والقذف ، والاستمالة بعد القذف. الفأر السلوك الجنسي معارض الخلافات سلالة. على سبيل المثال، تتراوح العداونات القذف من 594 إلى 6943 ث، وتتراوح أعداد المقدمات من 5 إلى أكثر من 100. تتراوح التار المتأخرة بعد القذف من 17 إلى 60 دقيقة. ومع ذلك ، فإن إدخال أنثى جديدة يمكن أن يقلل من هذه الفترة الزمنية. في بعض الحالات ، يقذف الذكور على الانطوان الأول مع الأنثى الجديدة^7.

الأحداث الرئيسية لتقييم السلوك الجنسي تتصاعد، والانطوان، والقذف. وقد أوصى علماء السلوك قياس ليس فقط تواتر كل عمل، ولكن أيضا الكمون والفاصل الزمني^5،^8. وتشمل بعض مؤشرات القياس الرئيسية في الدراسات السابقة: عدد الجبال، وعدد من intromissions، جبل الكمون، الكمون استتار الاستقراء، الكمون القذف، بعد الكمون بعد التأنق بعد التبصر بعد التبصر (أو فترات ما بعد القذف)، بعد الاستجابة بعد القذف، عدد من سلسلة copulatory، ومدة سلسلة copulatory. ووصف بارك وآخرون⁸ وساكس وآخرون⁵ كيفية تحديد كل عمل من أعمال التركيب والمغفرة والقذف من القوارض. يتم تعريف تصاعد الذكور تصاعد الأنثى من العمق، بالربت جناحيها مع ساقيه، ودفع قضيبه بسرعة ومرارا وتكرارا دون إدراج القضيب. يتم تحديد الانساق ، المعروف أيضًا باسم إدخال القضيب ، من خلال واحد أو أكثر من الأفعال التالية: دفع طويل وعميق بعد الاتجاهات الضحلة السريعة ، وركلة سريعة مع ساق واحدة ، وانسحاب جانبي ملحوظ للذكر من الأنثى. يتم تحديد القذف من خلال قوة دفع الحوض الطرفية التي هي أبطأ وأعمق من ذلك من مقدمة وانخفاض في ارتفاع الساق الخلفية. يتم تحديد سلسلة copulatory من قبل كل تسلسل من تصاعد للقذف. وترد تعاريف البارامترات السلوكية المستخدمة في هذه الدراسة على النحو التالي: 1) تصاعد الكمون: الوقت من إدخال الأنثى إلى أول تركيب للذكر؛ (2) تصاعد الكمون: الفترة الزمنية من إدخال الأنثى إلى أول تركيب للذكر؛ (2) التأخر في العمل؛ (2) ارتفاع عدد الذكور؛ (2) ارتفاع عدد الذكور؛ (2) ارتفاع عدد الذكور؛ (2) ارتفاع درجة الاتساق بين الذكور؛ (2) ارتفاع عدد الذكور؛ (2) ارتفاع عدد الذكور؛ (2) ارتفاع درجة الإناث. 2) الكمون التقديم: الوقت من إدخال الأنثى إلى التقديم الأول؛ 3) الكمون القذف: الوقت من التقديم الأول إلى القذف الأول (عموما بعد دفعة الحوض الماضي)؛ 4) بعد الكمون جبل ما بعد القذف: الوقت من القذف إلى تصاعد المقبل؛ 5) بعد وصول الاستراحة بعد القذف: الوقت من القذف ومقدمة المقبل؛ 6) عدد من يتصاعد: عدد مرات تصاعد قبل القذف الأول؛ 7) عدد المقدمات: عدد المقدمات قبل القذف الأول؛ 8) عدد المسلسلات التعاونية: عدد المسلسلات التعاونية خلال فترة المراقبة؛ 9) مدة سلسلة copulatory: الوقت من جميع سلسلة copulatory خلال فترة المراقبة.

يمكن إجراء السلوك الجنسي والسلوك المرتبط به إما في قفص منزل الذكر أو في ساحة مغلقة ، من بينها جهاز يسمى مربع ريسمان "لا أسرار" معكوسلمراقبة سلوك التزاوج^3. يتم وضع كاميرا فيديو أمام الصندوق لتسجيل عمل الفئران في وقت واحد من منظر جانبي ومن خلال مرآة مائلة من منظر بطني. ومع ذلك ، تتطلب هذه الطريقة أضواء ساطعة ، مما يؤدي حتما إلى التعود لفترة أطول من أجل القضاء على الإجهاد البيئي في الفئران. أما بالنسبة لطريقة القياس ، فمن المستحسن التحليل السلوكي المستند إلى الفيديو لتسجيل السلوك وقياسه^{كميًا 4.} يمكن استخدام مسجل فيديو يحتوي على خيار متقدم فيديو إطاري مع سرعات مصراع موصى بها أكبر من 1/1000 s لتسجيل حركات الماوس السريعة. كاميرا الأشعة تحت الحمراء عالية الدقة ضرورية عند التسجيل في بيئة مظلمة. لتحليل الفيلم ، وهناك حاجة إلى جهاز كمبيوتر مع المختطف الإطار للسماح لإطارات السلوك الفردية ليتم التقاطها للتلاعب الكمبيوتر. الفئران هي متعددة للغاية ويمكن أن تظهر السلوك التعويضي بعد أي علاج تقريبا. الغموض يمكن أن توجد حول كل جزء الجسم تتحرك⁴. وبالتالي، قد يتطلب تحليل بعض السلوكيات دقة أكبر وكاميرات سرعة أعلى.

تتأثر السلوكيات الجنسية الذكورية في الفئران بالعديد من العوامل ، بما في ذلك اختلافات السلالات ، والتغيرات الهرمونية ، وطفرات الجينات¹^،³^،⁹^،^10. وأوضح ماكغيل وبلايت¹¹ الاختلافات سلالة في سلوكيات التزاوج الماوس. على سبيل المثال، C57BL/6 الذكور عادة الحصول على الانطوان بسرعة والقذف في حوالي 20 دقيقة¹¹. DBA/2 الذكور بطيئة في الحصول على الانطوان ولكن القذف بسرعة. BALB / ج الذكور بطيئة لتحقيق القذف (متوسط الكمون من 1 ح) بسبب فترة طويلة من المغازلة¹¹. التستوستيرون يسهل ويحافظ على السلوك الجنسي الذكور², والتغيرات في مستويات هرمون تستوستيرون يمكن أن تغير أداء السلوك الجنسي¹². يمكن أن يقلل كل من الإخصاء الجراحي وعلاج مضادات الاندروجين من مستوى هرمون التستوستيرون ويؤدي إلى انخفاض سريع في السلوكيات الجنسية وحتى الدافع الجنسي والإثارة الجنسية^13. التستوستيرون تدار يمكن استعادة السلوكيات precopulatory وcopulatory في الفئران مخصي. وأخيرا، عرض الفئران بالضربة القاضية وضربة قاضية الاختلافات في جوانب السلوكيات الجنسية بالمقارنة مع الفئران نوع البرية. على سبيل المثال ، الفئران الذكور مع الطفرات المستهدفة من Adcy3 ، Cnga2 ، وGnao يحمل انخفاض القدرة على الكشف عن الفيرومونات ، في حين أن الفئران Trpc2 بالضربة القاضية تظهر تفضيل الشريك المتغير¹⁴^،¹⁵^،¹⁶. يتم شرح الآثار الأخرى من المعدلة وراثيا والضربات القاضية على السلوك الجنسي للفئران من قبل كراولي³.

هنا ، واحدة من الإجراءات الأكثر شيوعا لتقييم السلوك الجنسي في الاقتران من الفئران الذكور مع أنثى المبيضين التي تم تستعد هرمونيا لتكون متقبلة. يتم تقديم بروتوكول تجريبي لإجراء تجارب السلوك الجنسي في الفئران. بالإضافة إلى ذلك ، يظهر مثال على تغيير أنماط السلوك الجنسي الناتجة عن العزلة الاجتماعية في الفئران CD-1.

Protocol

أجريت جميع التجارب وفقا ً للمبادئ التوجيهية لمبادئ رعاية الحيوانات المختبرية (منشور المعاهد القومية للصحة رقم 80-23، المنقح لعام 1996) وتحت موافقة وإشراف أكاديمية مركز الحيوانات التجريبي التابع لمعهد الطب الطبي تطوير النباتات (الصين).

1- تربية الحيوانات

منزل الفئران الإناث والذكور في 25 درجة مئوية ل12 ساعة الضوء / 12 ساعة دورات الظلام.
توفير إمكانية الوصول المجاني إلى المياه واتباع نظام غذائي قياسي.
السماح للفئران بالتكيف مع بيئتها لمدة 7 أيام قبل العملية إذا تم نقلها من منشأة مختلفة.

2. استئصال المبيضين في الفئران الإناث

تفنيع الأنثى (8 أسابيع بعد الولادة، ولا تقل عن 6 أسابيع) مع الإيفورلوران (~ 4-5٪ للتحريض، ~ 1-2٪ للصيانة) في الأكسجين بنسبة 100٪ عن طريق قناع مخروط الوجه.
تأكد من أن العمق المناسب للتخدير قد تحقق من خلال التأكد من عدم وجود حركات طوعية لأكثر من 30 عامًا ، جنبًا إلى جنب مع معدل تنفسية مناسب (على سبيل المثال ، نفسواحد لكل 2 s أو أكثر). بدلا من ذلك، اختبار استجابة الماوس للضغط لطيف على أقدام الكفوف الخلفية.
ملاحظة: معدل التنفس الطبيعي هو ~ 180/min. انخفاض معدل 50٪ مقبول أثناء التخدير^17.
1. استخدام مرهم العيون لمنع جفاف القرنية وصدمة العين أثناء التخدير.
2. الحفاظ على درجة حرارة الجسم من الماوس في أو فوق 36 درجة مئوية. توفير دعم حراري تكميلي خلال فترة التخدير عند الضرورة.
تعقيم وتطهير جميع الأدوات الجراحية والأسطح الصلبة من طاولة العمليات مع الإيثانول 75٪ قبل الاستخدام.
ضع الحيوان على ستارة معقمة.
الفرون الحليق ثنائيا فوق العمود الفقري القطني على الجزء الخلفي من الماوس لفضح الجلد.
تعقيم الجلد المكشوف بالإيثانول بنسبة 75%.
جعل شق خط وسط واحد (حوالي 0.5 سم في الطول) على ظهره من وسط جذور الفخذين نحو رأس ~ 1 سم المسافة (يظهر الموقف في الشكل 1).
استخدام مقص صغير لاختراق الجلد لتحرير الأنسجة تحت الجلد بلطف من العضلات الكامنة من أجل فضح طبقة العضلات.
حدد موقع المبيض تحت طبقة العضلات الرقيقة واصنع شقًا صغيرًا (حوالي 5 مم في الطول) للدخول إلى التجويف الرُمي.
1. استخدم ملاقط صغيرة لسحب الأنسجة قليلاً على الجانب الأيسر من تجويف البطن لإظهار التفاف المبيض الأيسر حول الأنسجة الدهنية البيضاء (كتلة شفافة وغير منتظمة كما تراها العين المجردة ، انظر الشكل 1).
سحب وسادة الدهون المبيض المحيطة المبيض مع ملقط حادة لفضح oviduct.
قم بإجراء رباط واحد حول القناة الهوائية لمنع النزيف.
استخدام مقص صغير لقطع oviduct بلطف وإزالة المبيض.
تحقق من المبيض بعناية للتأكد من إزالة جميع أنسجة المبيض. المبيض حوالي 5 ملم × 4 ملم × 3 ملم مع العقيدات غير النظامية على السطح.
ضع الجزء المتبقي من المبيض مرة أخرى في تجويف البطن.
خياطة طبقة العضلات مع الغرز القابلة للامتصاص.
اسحب الجلد إلى الجانب الأيمن لكشف طبقة العضلات على الجانب الأيمن وإزالة المبيض الأيمن عن طريق تكرار الخطوات 2.9-2.16.
أغلق شق الجلد باستخدام الغرز القابلة للامتصاص.
1. حقن كل فأر داخل النبلانمع مع الصوديوم (10،000 وحدة / 10 غرام لكل فأرة) لمنع العدوى.
2. حقن الليدوكائين (4 ملغ/كغ، 0.4 مل/كغ من محلول 1%) تحت الجلد على طول موقع الشق. كما توفر ايبوبروفين (50-60 ملغ / كغ / يوم؛ 10 مل من موترين الأطفال في 500 مل من الماء) بشكل مستمر في مياه الشرب لمدة 3 أيام لعلاج الألم.
وضع كل فأر في قفص تعقيم على حدة.
إبقاء تحت مراقبة وثيقة لمدة 1-2 ساعة تقريبا حتى يتعافى تماما من التخدير.
1. استعادة الحيوانات على مناشف ورقية في قفص نظيف دون الفراش. تقلل هذه الخطوة من خطر انسداد القصبة الهوائية أو الالتهاب الرئوي. توفير دعم حراري تكميلي أثناء التعافي من التخدير. مراقبة موقع الجراحة لمنع تمزق الجرح.
بعد فترة النقاهة (حوالي 24 ساعة بعد الجراحة) ، ضع الفئران مرة أخرى إلى قفصها المنزلي.
لا تقم بإجراء التجربة لمدة أسبوعين على الأقل بعد الجراحة.

3. هرمون الناجمة عن estrus في الإناث

تحديد مرحلة estrous من الإناث من خلال إجراء مسحة المهبل كما هو موضح في ماكلين^{وآخرون.} لا يوجد تغيير في دورة estrus يشير إلى أن استئصال المبيض للأنثى كان ناجحًا.
حقن بنزوات استراديول (20 ميكروغرام لكل فأر، حلفي في 0.1 مل من زيت الزيتون المعقم، داخل الانفيتيوني) 48 ساعة قبل اختبار السلوك الجنسي.
حقن البروجسترون (500 ميكروغرام لكل فأر، حل في 0.1 مل من النفط، داخل العينية) 4 ساعة قبل اختبار السلوك الجنسي.
ملاحظة: يتم تحديد أهلية أنثى الإسترو من قبل الأنثى قبول إدخال الأعضاء التناسلية للفأر الذكر 3 مرات أو أكثر، عندما تتعايش مع ذكر نشط جنسيا ً وذو خبرة في قفص واحد.

4. التحضير لاختبار السلوك الجنسي

إجراء اختبار السلوك الجنسي للفئران الذكور في مربع حقل مستطيل ومفتوح (40 سم × 40 سم × 40 سم) مع جدران زجاج شبكي أسود ، باستثناء جدار أمامي شفاف يسمح بمراقبة حركة الماوس.
تعيين إضاءة الغرفة العامة إلى 650 لوكس.
ملاحظة: لا ينبغي أن تكون مضيئة الفئران مباشرة لتجنب أنماط السلوك غير طبيعية.
استخدم كاميرا رقمية مرتبطة بكمبيوتر لتصوير حركة الفئران وسلوكها بالفيديو.
إجراء الاختبار السلوكي على الفئران الذكور خلال الساعات الأولى من الدورة المظلمة.

5- التعود

أبقي غرفة التجارب هادئة.
ضع الفئران ليتم اختبارها في وسط مربع الحقل المفتوح ، مما يسمح لها باستكشاف البيئة بحرية لمدة 30 دقيقة.
معتاد الفئران لمدة 2 أيام متتالية قبل يوم الاختبار في الجهاز لمنع الإجهاد من البيئة الجديدة.
ملاحظة: يجب على الفئران التحرك واستكشاف بحرية دون الشعور بالتوتر. يجب أن تعتاد الفئران الذكور والإناث على بيئة الاختبار.

6. الاختبارات السلوكية

قم بتشغيل الكاميرا قبل بداية الاختبار.
ضع الماوس ليتم اختباره في وسط الحقل المفتوح في مربع الاختبار ، مما يسمح بالاستكشاف المجاني لمدة 5 سنوات للتأقلم مع البيئة.
وضع أنثى في estrus في مربع الاختبار.
تسجيل السلوكيات الاجتماعية والتزاوج والتفاعلات بين الفئران الذكور والإناث لمدة 30 دقيقة.
قم بإيقاف تشغيل الكاميرا وتأكد من حفظ الفيديو.
أخرج الأنثى من صندوق الاختبار وسجل تكوين قابس مهبلي.
ملاحظة: لا يمكن استخدام الماوس الأنثوي الذي قبل التزاوج في اختبار سلوك جنسي آخر في يوم واحد.
ضع الأنثى إلى قفصها المنزلي.
أعد الذكر إلى قفصه المنزلي
تنظيف البول والبراز والحشو داخل الجهاز.
إزالة رائحة الفئران اختبارها مع الإيثانول 75٪.
ابدأ اختبار الماوس الذكر التالي بتكرار الخطوات 6.1-6.10.

7. استخراج البيانات السلوكية

تشغيل تسجيل الفيديو واستخراج المعلمات السلوكية (انظر الشكل 2).
1. سجل عدد يتصاعد في 30 دقيقة.
2. سجل عدد المقدمات في 30 دقيقة عد دفعة الحوض كمقدمة.
3. سجل الوقت من إدخال الأنثى إلى أول تصاعد كما الكمون المتصاعد.
4. تسجيل الوقت من إدخال الأنثى إلى أول استلمانة التقديم.
5. سجل الوقت من أول استهتار إلى القذف الأول كما الكمون القذف.
6. سجل الوقت من القذف إلى تركيب المقبل كما بعد الكمون جبل ما بعد القذف.
7. رقم قياسي من سلسلة copulatory في 30 دقيقة. سلسلة copulatory هو كل تسلسل من تصاعد للقذف.
8. سجل وقت جميع سلسلة copulatory في 30 دقيقة كمدة لسلسلة copulatory.

النتائج

تظهر مقارنة السلوك الجنسي بين فئران CD-1 التي تربى في عزلة وفئران CD-1 التي تم إسكانها جماعيًا. تم تعيين فئران CD-1 الذكور بشكل عشوائي في مجموعة تربى العزل (IS، فأر واحد لكل قفص، n = 30) ومجموعة تضم مجموعة (GH، خمسة فئران لكل قفص، n = 15). خضعت الفئران لعزلتربية من يوم ما بعد الولادة 23 إلى اليوم 93. ثم، تم تق...

Discussion

هناك بعض الخطوات الهامة في البروتوكول المقدم. فيما يتعلق باستئصال المبيض للإناث ، فإن فتحة شق الجراحة من الظهر أقل ضررًا من ذلك من البطن. وبالنظر إلى أن وضع المبيض عميق ، فإن سحب الأعضاء الأخرى عندما يتم قطع الشق مفتوحًا من البطن غالبًا ما يؤدي إلى النزيف ويؤدي إلى رؤية جراحية غير واضحة

Disclosures

وليس لدى صاحبي البلاغ ما يكشفان عنه.

Acknowledgements

نشكر لو كونغ، وتشانغ هونغ شيا، وتشانغ بييو، وهو مي على اقتراحاتهم للتجارب.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Choral hydrate	Sinopharm Chenmical Reagent Co., Ltd.	20160225
Coated VICRYL Plus Sutures	Ethicon, Inc.	missing
Estradiol benzoate	J&K Scientific, Ltd.	L930Q170
Ethanol absolute	Beijing Chemical Works Co., Ltd.	20160715
Ibuprofen (Children's Motrin)	Shanghai Johnson & Johnson Co., Ltd.	160629478
Isoflurane	RWD Life Science Co., Ltd.	217180501
Lidocaine	HebeI Tiancheng Pharmacreutical Co., Ltd.	1170506107
Male and female CD-1 mice	Vital River Beijing	SCXK()2013-0023
Olive oil
Penicillin sodium	North China Pharmaceutical Co., Ltd.	F5126420
Progesterone	J&K Scientific, Ltd.	LR50Q07
Sony digital camera	Sony Corporation	HDR-CX290E
Test box			DIY
ThinkStation Computer	Lenovo	S/N PCOGLQKG
Vaporizer for Isoflurane	RWD Life Science Co., Ltd.	E05904-009M

References

The staff of the Jackson laboratory. . Biology of the Laboratory Mouse. , (2007).
Burns-Cusato, M., Scordalakes, E. M., Rissman, E. F. Of mice and missing data: what we know (and need to learn) about male sexual behavior. Physiology & Behavior. 83 (2), 217-232 (2004).
Crawley, J. N. . What's Wrong With My Mouse?. , (2006).
Whishaw, I. Q., Haun, F., Kolb, B., Windhorst, U., Johansson, H. Analysis of Behavior in Laboratory Rodents. Modern Techniques in Neuroscience Research. , (1999).
Sachs, B., Barfield, R. . Functional Analysis of Masculine Copulatory Behavior in the Rat. 7, (1976).
Hull, E. M., Dominguez, J. M. Sexual behavior in male rodents. Hormones and Behavior. 52 (1), 45-55 (2007).
Mosig, D. W., Dewsbury, D. A. Studies of the copulatory behavior of house mice (Mus musculus). Behavioral Biology. 16 (4), 463-473 (1976).
Park, J. H., Gould, T. Assessment of Male Sexual Behavior in Mice. Mood and Anxiety Related Phenotypes in Mice. 63, (2011).
Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
Levine, L., Barsel, G. E., Diakow, C. A. Mating behaviour of two inbred strains of mice. Animal Behavior. 14 (1), 1-6 (1966).
McGill, T. E. Sexual Behavior in Three Inbred Strains of Mice. Behaviour. 19 (4), 341 (1962).
James, P. J., Nyby, J. G. Testosterone rapidly affects the expression of copulatory behavior in house mice (Mus musculus). Physiology & Behavior. 75 (3), 287-294 (2002).
Arteaga-Silva, M., Rodriguez-Dorantes, M., Baig, S., Morales-Montor, J. Effects of castration and hormone replacement on male sexual behavior and pattern of expression in the brain of sex-steroid receptors in BALB/c AnN mice. Comparative Biochemistry and Physiology - Part A: Molecular & Integrative Physiology. 147 (3), 607-615 (2007).
Zhang, Z., et al. Deletion of Type 3 Adenylyl Cyclase Perturbs the Postnatal Maturation of Olfactory Sensory Neurons and Olfactory Cilium Ultrastructure in Mice. Frontiers in Cellular Neuroscience. 11, 1 (2017).
Mandiyan, V. S., Coats, J. K., Shah, N. M. Deficits in sexual and aggressive behaviors in Cnga2 mutant mice. Nature Neurosciemce. 8 (12), 1660-1662 (2005).
Choi, C. I., et al. Simultaneous deletion of floxed genes mediated by CaMKIIalpha-Cre in the brain and in male germ cells: application to conditional and conventional disruption of Goalpha. Experimental & Molecular Medicine. 46, 93 (2014).
Pelch, K. E., Sharpe-Timms, K. L., Nagel, S. C. Mouse model of surgically-induced endometriosis by auto-transplantation of uterine tissue. Journal of Visualized Experiments. (59), e3396 (2012).
McLean, A. C., Valenzuela, N., Fai, S., Bennett, S. A. Performing vaginal lavage, crystal violet staining, and vaginal cytological evaluation for mouse estrous cycle staging identification. Journal of Visualized Experiments. (67), e4389 (2012).
Liu, Z. W., et al. Postweaning Isolation Rearing Alters the Adult Social, Sexual Preference and Mating Behaviors of Male CD-1 Mice. Frontiers in Behavioral Neuroscience. 13, 21 (2019).
TIan, E. P., Long, T., Qin, D. N. Establishment and applications of mating model in male rat. Chinese Journal of Andrology. 22 (1), 7-10 (2008).
. Anesthesia Guidelines: Mice Available from: https://www.researchservices.umn.edu/services-name/research-animal-resources/research-support/guidelines/anesthesia-mice (2019)
Leypold, B. G., et al. Altered sexual and social behaviors in trp2 mutant mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (9), 6376-6381 (2002).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

157 ovariectomized estrus

This article has been published

Video Coming Soon

Keep me updated: